JP7066977B2 - Ｌ－アミノ酸の製造法 - Google Patents

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Description

本発明は、細菌を用いた発酵法によるＬ－グルタミン酸等のＬ－アミノ酸の製造法に関する。Ｌ－アミノ酸は、調味料原料等として産業上有用である。
Ｌ－アミノ酸は、例えば、Ｌ－アミノ酸生産能を有する細菌等の微生物を用いた発酵法により工業生産されている（非特許文献１）。そのような微生物としては、例えば、自然界から分離した菌株やそれらの変異株が用いられている。また、組換えＤＮＡ技術により微生物のＬ－アミノ酸生産能を向上させることができる。例えば、細菌のＬ－グルタミン酸生産能を向上させる手段として、ホスホケトラーゼ活性を増強すること（特許文献１）や変異型yggB遺伝子を利用すること（特許文献２）が知られている。
細菌は、各種糖を細胞外から細胞内に取り込み、炭素源として利用することができる。細菌の糖の取り込み系としては、糖のリン酸化を伴うPhosphotransferase System（PTS）と、糖のリン酸化を伴わない非PTS（non-PTS）が挙げられる。例えば、Corynebacterium glutamicumは、PTSフルクトース取り込み担体であるFruAタンパク質を有しているが、非PTSフルクトース取り込み担体を有さない。FruAタンパク質によれば、フルクトースは、フルクトース－１－リン酸にリン酸化されながら細胞内に取り込まれる。一方、非PTSフル
クトース取り込み担体としては、FucPタンパク質が挙げられる。FucPタンパク質は、フコース取り込み担体であるL-fucose permeaseとして知られているが、フルクトース取り込
み活性も有する（非特許文献２）。FucPタンパク質によれば、フルクトースは、リン酸化されずに細胞内に取り込まれる。細胞内のフルクトースは、例えば、フルクトキナーゼによりリン酸化されてフルクトース－６－リン酸となり、資化され得る（非特許文献３）。
WO2006/016705 WO2006/070944
明石邦彦ら著 アミノ酸発酵、学会出版センター、１９５～２１５頁、１９８６年 Kornberg H, and Lourenco C., A route for fructose utilization by Escherichia coli involving the fucose regulon. Proc Natl Acad Sci U S A. 2006 Dec 19;103(51):19496-9. Caescu CI. et al., Bifidobacterium longum requires a fructokinase (Frk; ATP:D-fructose 6-phosphotransferase, EC 2.7.1.4) for fructose catabolism. J Bacteriol. 2004 Oct;186(19):6515-25.
本発明は、細菌のＬ－アミノ酸生産能を向上させる新規な技術を開発し、効率的なＬ－アミノ酸の製造法を提供することを課題とする。
本発明者は、上記課題を解決するために鋭意研究を行った結果、非PTS（non-PTS）フルクトース取り込み担体をコードする遺伝子およびフルクトキナーゼをコードする遺伝子の
発現が増大するように細菌を改変することによって、フルクトースを炭素源として用いる場合の細菌のＬ－アミノ酸生産能を向上させることができることを見出し、本発明を完成させた。
すなわち、本発明は以下の通り例示できる。
［１］
Ｌ－アミノ酸生産能を有する細菌をフルクトースを含有する培地で培養し、該培地中および／または該細菌の菌体内にＬ－アミノ酸を蓄積すること、および前記培地および／または前記菌体より前記Ｌ－アミノ酸を採取すること、を含むＬ－アミノ酸の製造法であって、
前記細菌が、非改変株と比較して、非PTSフルクトース取り込み担体の活性およびフル
クトキナーゼの活性が増大するように改変されている、方法。
［２］
前記非PTSフルクトース取り込み担体が、fucP遺伝子にコードされるタンパク質である
、前記方法。
［３］
前記フルクトキナーゼが、frk遺伝子にコードされるタンパク質である、前記方法。
［４］
前記fucP遺伝子が、下記（ａ）、（ｂ）、または（ｃ）に記載のタンパク質をコードする遺伝子である、前記方法：
（ａ）配列番号２７または２９に示すアミノ酸配列を含むタンパク質；
（ｂ）配列番号２７または２９に示すアミノ酸配列において、１～１０個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、および／または付加を含むアミノ酸配列を含み、且つ、非PTSフル
クトース取り込み活性を有するタンパク質；
（ｃ）配列番号２７または２９に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、且つ、非PTSフルクトース取り込み活性を有するタンパク質。
［５］
前記frk遺伝子が、下記（ａ）、（ｂ）、または（ｃ）に記載のタンパク質をコードす
る遺伝子である、前記方法：
（ａ）配列番号３１、３３、または３５に示すアミノ酸配列を含むタンパク質；
（ｂ）配列番号３１、３３、または３５に示すアミノ酸配列において、１～１０個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、および／または付加を含むアミノ酸配列を含み、且つ、フルクトキナーゼ活性を有するタンパク質；
（ｃ）配列番号３１、３３、または３５に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、且つ、フルクトキナーゼ活性を有するタンパク質。
［６］
前記非PTSフルクトース取り込み担体をコードする遺伝子および前記フルクトキナーゼ
をコードする遺伝子の発現を上昇させることにより、前記非PTSフルクトース取り込み担
体の活性およびフルクトキナーゼの活性が増大した、前記方法。
［７］
前記遺伝子の発現が、該遺伝子のコピー数を高めること、および／または該遺伝子の発現調節配列を改変することによって上昇した、前記方法。
［８］
前記細菌が、さらに、非改変株と比較して、ホスホケトラーゼの活性が増大するように改変されている、前記方法。
［９］
前記ホスホケトラーゼが、Ｄ－キシルロース－５－リン酸ホスホケトラーゼおよび／またはフルクトース６－リン酸ホスホケトラーゼである、前記方法。
［１０］
ホスホケトラーゼをコードする遺伝子の発現が増大することにより、ホスホケトラーゼ
の活性が増大した、前記方法。
［１１］
前記細菌が、コリネ型細菌または腸内細菌科に属する細菌である、前記方法。
［１２］
前記細菌が、コリネバクテリウム属細菌である、前記方法。
［１３］
前記細菌が、コリネバクテリウム・グルタミカムである、前記方法。
［１４］
前記細菌が、パントエア属細菌またはエシェリヒア属細菌である、前記方法。
［１５］
前記細菌が、パントエア・アナナティスまたはエシェリヒア・コリである、前記方法。［１６］
前記Ｌ－アミノ酸が、グルタミン酸系Ｌ－アミノ酸である、前記方法。
［１７］
前記グルタミン酸系Ｌ－アミノ酸が、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－グルタミン、Ｌ－プロリン、Ｌ－アルギニン、Ｌ－シトルリン、およびＬ－オルニチンから選択される１種またはそれ以上のＬ－アミノ酸である、前記方法。
［１８］
前記グルタミン酸系Ｌ－アミノ酸が、Ｌ－グルタミン酸である、前記方法。
［１９］
前記Ｌ－グルタミン酸が、Ｌ－グルタミン酸アンモニウムまたはＬ－グルタミン酸ナトリウムである、前記方法。
［２０］
前記細菌が、さらに、非改変株と比較して、α－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼおよび／またはコハク酸デヒドロゲナーゼの活性が低下するように改変されている、前記方法。
［２１］
前記細菌が、コリネ型細菌であり、さらに、変異型yggB遺伝子を保持するように改変されている、前記方法。
［２２］
前記変異型yggB遺伝子が、コリネ型細菌のＬ－グルタミン酸生産能を向上させる変異を有するyggB遺伝子である、前記方法。
［２３］
前記変異型yggB遺伝子が、下記（１）、（２）、または（３）に記載の変異を有するyggB遺伝子である、前記方法：
（１）野生型YggBタンパク質の４１９～５３３位のアミノ酸残基をコードする領域における変異；
（２）野生型YggBタンパク質の膜貫通領域をコードする領域における変異；
（３）それらの組み合わせ。
［２４］
前記野生型YggBタンパク質が、下記（ａ）、（ｂ）、または（ｃ）に記載のタンパク質である、前記方法：
（ａ）配列番号１０に示すアミノ酸配列を含むタンパク質；
（ｂ）配列番号１０に示すアミノ酸配列において、１～１０個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、および／または付加を含むアミノ酸配列を含み、且つ、コリネ型細菌において発現を上昇させた際にコリネ型細菌のＬ－グルタミン酸生産能を向上させる性質を有するタンパク質；
（ｃ）配列番号１０に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、且つ、コリネ型細菌において発現を上昇させた際にコリネ型細菌のＬ－グルタミン酸生産能を向上させる性質を有するタンパク質。
［２５］
前記培地が、さらにフルクトース以外の炭素源を含有する、前記方法。
［２６］
前記炭素源が、グルコースである、前記方法。
本発明によれば、フルクトースを炭素源として用いる場合の細菌のＬ－アミノ酸生産能を向上させることができ、Ｌ－アミノ酸を効率よく製造することができる。
fucP-frk遺伝子の発現を増強したC. glutamicum株を用いたフルクトースをC源とした培地でのグルタミン酸生産培養の結果を示す図。 fucP-frk遺伝子の発現を増強したC. glutamicum株を用いたグルコースおよびフルクトースをC源とした培地でのグルタミン酸生産培養の結果を示す図。
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明の方法は、Ｌ－アミノ酸生産能を有する細菌をフルクトースを含有する培地で培養し、該培地中および／または該細菌の菌体内にＬ－アミノ酸を蓄積すること、および前記培地および／または前記菌体より前記Ｌ－アミノ酸を採取すること、を含むＬ－アミノ酸の製造方法であって、前記細菌が非PTSフルクトース取り込み担体の活性およびフルク
トキナーゼの活性が増大するように改変されている、方法である。同方法に用いられる細菌を、「本発明の細菌」ともいう。
＜１＞本発明の細菌
本発明の細菌は、非PTSフルクトース取り込み担体の活性およびフルクトキナーゼの活
性が増大するように改変された、Ｌ－アミノ酸生産能を有する細菌である。
＜１－１＞Ｌ－アミノ酸生産能を有する細菌
本発明において、「Ｌ－アミノ酸生産能を有する細菌」とは、培地（フルクトースを含有する培地、等）で培養したときに、目的とするＬ－アミノ酸を生成し、回収できる程度に培地中および／または菌体内に蓄積する能力を有する細菌をいう。Ｌ－アミノ酸生産能を有する細菌は、非改変株よりも多い量の目的とするＬ－アミノ酸を培地中および／または菌体内に蓄積することができる細菌であってよい。「非改変株」とは、非PTSフルクト
ース取り込み担体の活性およびフルクトキナーゼの活性が増大するように改変されていない対照株をいう。すなわち、非改変株としては、野生株や親株が挙げられる。また、Ｌ－アミノ酸生産能を有する細菌は、好ましくは０．５ｇ／Ｌ以上、より好ましくは１．０ｇ／Ｌ以上の量の目的とするＬ－アミノ酸を培地に蓄積することができる細菌であってもよい。
Ｌ－アミノ酸としては、Ｌ－リジン、Ｌ－オルニチン、Ｌ－アルギニン、Ｌ－ヒスチジン、Ｌ－シトルリン等の塩基性アミノ酸、Ｌ－イソロイシン、Ｌ－アラニン、Ｌ－バリン、Ｌ－ロイシン、グリシン等の脂肪族アミノ酸、Ｌ－スレオニン、Ｌ－セリン等のヒドロキシモノアミノカルボン酸であるアミノ酸、Ｌ－プロリン等の環式アミノ酸、Ｌ－フェニルアラニン、Ｌ－チロシン、Ｌ－トリプトファン等の芳香族アミノ酸、Ｌ－システイン、Ｌ－シスチン、Ｌ－メチオニン等の含硫アミノ酸、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－アスパラギン酸等の酸性アミノ酸、Ｌ－グルタミン、Ｌ－アスパラギン等の側鎖にアミド基を有するアミノ酸が挙げられる。Ｌ－アミノ酸としては、特に、グルタミン酸系Ｌ－アミノ酸（L-amino acid of glutamate family）が挙げられる。「グルタミン酸系Ｌ－アミノ酸」とは、
Ｌ－グルタミン酸、およびＬ－グルタミン酸を中間体として生合成されるＬ－アミノ酸の総称である。Ｌ－グルタミン酸を中間体として生合成されるＬ－アミノ酸としては、Ｌ－グルタミン、Ｌ－プロリン、Ｌ－アルギニン、Ｌ－シトルリン、Ｌ－オルニチンが挙げられる。本発明の細菌は、１種のＬ－アミノ酸の生産能のみを有していてもよく、２種またはそれ以上のＬ－アミノ酸の生産能を有していてもよい。
本発明において、「アミノ酸」という用語は、特記しない限り、Ｌ－アミノ酸を意味する。また、本発明において、「Ｌ－アミノ酸」という用語は、特記しない限り、フリー体のＬ－アミノ酸、その塩、またはそれらの混合物を意味する。塩については後述する。
細菌としては、腸内細菌科（Enterobacteriaceae）に属する細菌やコリネ型細菌が挙げられる。
腸内細菌科に属する細菌としては、エシェリヒア（Escherichia）属、エンテロバクタ
ー（Enterobacter）属、パントエア（Pantoea）属、クレブシエラ（Klebsiella）属、セ
ラチア（Serratia）属、エルビニア（Erwinia）属、フォトラブダス（Photorhabdus）属
、プロビデンシア（Providencia）属、サルモネラ（Salmonella）属、モルガネラ（Morganella）等の属に属する細菌が挙げられる。具体的には、NCBI（National Center for Biotechnology Information）のデータベース（https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Taxonomy/Browser/wwwtax.cgi?id=91347）で用いられている分類法により腸内細菌科に分類されている細菌を用いることができる。
エシェリヒア属細菌としては、特に制限されないが、微生物学の専門家に知られている分類によりエシェリヒア属に分類されている細菌が挙げられる。エシェリヒア属細菌としては、例えば、Neidhardtらの著書（Backmann, B. J. 1996. Derivations and Genotypes
of some mutant derivatives of Escherichia coli K-12, p. 2460-2488. Table 1. In F. D. Neidhardt (ed.), Escherichia coli and Salmonella Cellular and Molecular Biology/Second Edition, American Society for Microbiology Press, Washington, D.C.
）に記載されたものが挙げられる。エシェリヒア属細菌としては、例えば、エシェリヒア・コリ（Escherichia coli）が挙げられる。エシェリヒア・コリとして、具体的には、例えば、W3110株（ATCC 27325）やMG1655株（ATCC 47076）等のエシェリヒア・コリK-12株
；エシェリヒア・コリK5株（ATCC 23506）；BL21(DE3)株等のエシェリヒア・コリB株；およびそれらの派生株が挙げられる。
エンテロバクター属細菌としては、特に制限されないが、微生物学の専門家に知られている分類によりエンテロバクター属に分類されている細菌が挙げられる。エンテロバクター属細菌としては、例えば、エンテロバクター・アグロメランス（Enterobacter agglomerans）やエンテロバクター・アエロゲネス（Enterobacter aerogenes）が挙げられる。エンテロバクター・アグロメランスとして、具体的には、例えば、エンテロバクター・アグロメランスATCC12287株が挙げられる。エンテロバクター・アエロゲネスとして、具体的
には、例えば、エンテロバクター・アエロゲネスATCC13048株、NBRC12010株（Biotechonol Bioeng. 2007 Mar 27; 98(2) 340-348）、AJ110637株（FERM BP-10955）が挙げられる
。また、エンテロバクター属細菌としては、例えば、欧州特許出願公開EP0952221号明細
書に記載されたものが挙げられる。なお、Enterobacter agglomeransには、Pantoea agglomeransと分類されているものも存在する。
パントエア属細菌としては、特に制限されないが、微生物学の専門家に知られている分類によりパントエア属に分類されている細菌が挙げられる。パントエア属細菌としては、例えば、パントエア・アナナティス（Pantoea ananatis）、パントエア・スチューアルティ（Pantoea stewartii）、パントエア・アグロメランス（Pantoea agglomerans）、パン
トエア・シトレア（Pantoea citrea）が挙げられる。パントエア・アナナティスとして、具体的には、例えば、パントエア・アナナティスLMG20103株、AJ13355株（FERM BP-6614
）、AJ13356株（FERM BP-6615）、AJ13601株（FERM BP-7207）、SC17株（FERM BP-11091
）、SC17(0)株（VKPM B-9246）、及びSC17sucA株（FERM BP-8646）が挙げられる。なお、エンテロバクター属細菌やエルビニア属細菌には、パントエア属に再分類されたものもある（Int. J. Syst. Bacteriol., 39, 337-345 (1989); Int. J. Syst. Bacteriol., 43, 162-173 (1993)）。例えば、エンテロバクター・アグロメランスのある種のものは、最近、16S rRNAの塩基配列分析等に基づき、パントエア・アグロメランス、パントエア・アナナティス、パントエア・ステワルティイ等に再分類された（Int. J. Syst. Bacteriol., 39, 337-345 (1989)）。本発明において、パントエア属細菌には、このようにパントエア属に再分類された細菌も含まれる。
エルビニア属細菌としては、エルビニア・アミロボーラ（Erwinia amylovora）、エル
ビニア・カロトボーラ（Erwinia carotovora）が挙げられる。クレブシエラ属細菌としては、クレブシエラ・プランティコーラ（Klebsiella planticola）が挙げられる。
コリネ型細菌としては、コリネバクテリウム（Corynebacterium）属、ブレビバクテリ
ウム（Brevibacterium）属、およびミクロバクテリウム（Microbacterium）属等の属に属する細菌が挙げられる。
コリネ型細菌としては、具体的には、下記のような種が挙げられる。
コリネバクテリウム・アセトアシドフィラム（Corynebacterium acetoacidophilum）
コリネバクテリウム・アセトグルタミカム（Corynebacterium acetoglutamicum）
コリネバクテリウム・アルカノリティカム（Corynebacterium alkanolyticum）
コリネバクテリウム・カルナエ（Corynebacterium callunae）
コリネバクテリウム・クレナタム（Corynebacterium crenatum）
コリネバクテリウム・グルタミカム（Corynebacterium glutamicum）
コリネバクテリウム・リリウム（Corynebacterium lilium）
コリネバクテリウム・メラセコーラ（Corynebacterium melassecola）
コリネバクテリウム・サーモアミノゲネス（コリネバクテリウム・エフィシエンス）（Corynebacterium thermoaminogenes (Corynebacterium efficiens)）
コリネバクテリウム・ハーキュリス（Corynebacterium herculis）
ブレビバクテリウム・ディバリカタム（コリネバクテリウム・グルタミカム）（Brevibacterium divaricatum (Corynebacterium glutamicum)）
ブレビバクテリウム・フラバム（コリネバクテリウム・グルタミカム）（Brevibacterium
flavum (Corynebacterium glutamicum)）
ブレビバクテリウム・イマリオフィラム（Brevibacterium immariophilum）
ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム（コリネバクテリウム・グルタミカム）（Brevibacterium lactofermentum (Corynebacterium glutamicum)）
ブレビバクテリウム・ロゼウム（Brevibacterium roseum）
ブレビバクテリウム・サッカロリティカム（Brevibacterium saccharolyticum）
ブレビバクテリウム・チオゲニタリス（Brevibacterium thiogenitalis）
コリネバクテリウム・アンモニアゲネス（コリネバクテリウム・スタティオニス）（Corynebacterium ammoniagenes (Corynebacterium stationis)）
ブレビバクテリウム・アルバム（Brevibacterium album）
ブレビバクテリウム・セリナム（Brevibacterium cerinum）
ミクロバクテリウム・アンモニアフィラム（Microbacterium ammoniaphilum）
コリネ型細菌としては、具体的には、下記のような菌株が挙げられる。
Corynebacterium acetoacidophilum ATCC 13870
Corynebacterium acetoglutamicum ATCC 15806
Corynebacterium alkanolyticum ATCC 21511
Corynebacterium callunae ATCC 15991
Corynebacterium crenatum AS1.542
Corynebacterium glutamicum ATCC 13020, ATCC 13032, ATCC 13060, ATCC 13869, FERM BP-734
Corynebacterium lilium ATCC 15990
Corynebacterium melassecola ATCC 17965
Corynebacterium efficiens (Corynebacterium thermoaminogenes) AJ12340 (FERM BP-1539)
Corynebacterium herculis ATCC 13868
Brevibacterium divaricatum (Corynebacterium glutamicum) ATCC 14020
Brevibacterium flavum (Corynebacterium glutamicum) ATCC 13826, ATCC 14067, AJ12418 (FERM BP-2205)
Brevibacterium immariophilum ATCC 14068
Brevibacterium lactofermentum (Corynebacterium glutamicum) ATCC 13869
Brevibacterium roseum ATCC 13825
Brevibacterium saccharolyticum ATCC 14066
Brevibacterium thiogenitalis ATCC 19240
Corynebacterium ammoniagenes (Corynebacterium stationis) ATCC 6871, ATCC 6872
Brevibacterium album ATCC 15111
Brevibacterium cerinum ATCC 15112
Microbacterium ammoniaphilum ATCC 15354
なお、コリネバクテリウム属細菌には、従来ブレビバクテリウム属に分類されていたが、現在コリネバクテリウム属に統合された細菌（Int. J. Syst. Bacteriol., 41, 255(1991)）も含まれる。また、コリネバクテリウム・スタティオニスには、従来コリネバクテ
リウム・アンモニアゲネスに分類されていたが、16S rRNAの塩基配列解析等によりコリネバクテリウム・スタティオニスに再分類された細菌も含まれる（Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 60, 874-879(2010)）。
これらの菌株は、例えば、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（住所12301 Parklawn Drive, Rockville, Maryland 20852 P.O. Box 1549, Manassas, VA 20108, United States of America）より分譲を受けることが出来る。すなわち各菌株に対応する
登録番号が付与されており、この登録番号を利用して分譲を受けることが出来る（https://www.atcc.org/参照）。各菌株に対応する登録番号は、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションのカタログに記載されている。また、これらの菌株は、例えば、各菌株が寄託された寄託機関から入手することができる。
本発明の細菌は、本来的にＬ－アミノ酸生産能を有するものであってもよく、Ｌ－アミノ酸生産能を有するように改変されたものであってもよい。Ｌ－アミノ酸生産能を有する細菌は、例えば、上記のような細菌にＬ－アミノ酸生産能を付与することにより、または、上記のような細菌のＬ－アミノ酸生産能を増強することにより、取得できる。
Ｌ－アミノ酸生産能の付与又は増強は、従来、コリネ型細菌又はエシェリヒア属細菌等のアミノ酸生産菌の育種に採用されてきた方法により行うことができる（アミノ酸発酵、（株）学会出版センター、1986年5月30日初版発行、第７７～１００頁参照）。そのよう
な方法としては、例えば、栄養要求性変異株の取得、Ｌ－アミノ酸のアナログ耐性株の取得、代謝制御変異株の取得、Ｌ－アミノ酸の生合成系酵素の活性が増強された組換え株の創製が挙げられる。Ｌ－アミノ酸生産菌の育種において、付与される栄養要求性、アナロ
グ耐性、代謝制御変異等の性質は、単独であってもよく、２種又は３種以上であってもよい。また、Ｌ－アミノ酸生産菌の育種において、活性が増強されるＬ－アミノ酸生合成系酵素も、単独であってもよく、２種又は３種以上であってもよい。さらに、栄養要求性、アナログ耐性、代謝制御変異等の性質の付与と、生合成系酵素の活性の増強が組み合わされてもよい。
Ｌ－アミノ酸生産能を有する栄養要求性変異株、アナログ耐性株、又は代謝制御変異株は、親株又は野生株を通常の変異処理に供し、得られた変異株の中から、栄養要求性、アナログ耐性、又は代謝制御変異を示し、且つＬ－アミノ酸生産能を有するものを選択することによって取得できる。通常の変異処理としては、Ｘ線や紫外線の照射、Ｎ－メチル－Ｎ’－ニトロ－Ｎ－ニトロソグアニジン（ＭＮＮＧ）、エチルメタンスルフォネート（ＥＭＳ）、メチルメタンスルフォネート（ＭＭＳ）等の変異剤による処理が挙げられる。
また、Ｌ－アミノ酸生産能の付与又は増強は、目的のＬ－アミノ酸の生合成に関与する酵素の活性を増強することによっても行うことができる。酵素活性の増強は、例えば、同酵素をコードする遺伝子の発現が増強するように細菌を改変することにより行うことができる。遺伝子の発現を増強する方法は、WO00/18935やEP1010755A等に記載されている。酵素活性を増強する詳細な手法については後述する。
また、Ｌ－アミノ酸生産能の付与又は増強は、目的のＬ－アミノ酸の生合成経路から分岐して目的のＬ－アミノ酸以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素の活性を低下させることによっても行うことができる。なお、ここでいう「目的のＬ－アミノ酸の生合成経路から分岐して目的のＬ－アミノ酸以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素」には、目的のアミノ酸の分解に関与する酵素も含まれる。酵素活性を低下させる手法については後述する。
以下、Ｌ－アミノ酸生産菌、およびＬ－アミノ酸生産能を付与又は増強する方法について具体的に例示する。なお、以下に例示するようなＬ－アミノ酸生産菌が有する性質およびＬ－アミノ酸生産能を付与又は増強するための改変は、いずれも、単独で用いてもよく、適宜組み合わせて用いてもよい。
＜Ｌ－グルタミン酸生産菌＞
Ｌ－グルタミン酸生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－グルタミン酸生合成系酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ（gdhA）、グルタミンシンテターゼ（glnA）、グルタミン酸シンターゼ（gltBD）、イソクエン酸デヒドロゲナーゼ（icdA）、アコニテートヒドラターゼ
（acnA, acnB）、クエン酸シンターゼ（gltA）、メチルクエン酸シンターゼ（prpC）、ピルビン酸カルボキシラーゼ（pyc）、ピルビン酸デヒドロゲナーゼ（aceEF, lpdA）、ピルビン酸キナーゼ（pykA, pykF）、ホスホエノールピルビン酸シンターゼ（ppsA）、エノラーゼ（eno）、ホスホグリセロムターゼ（pgmA, pgmI）、ホスホグリセリン酸キナーゼ（pgk）、グリセルアルデヒド－３－リン酸デヒドロゲナーゼ（gapA）、トリオースリン酸イソメラーゼ（tpiA）、フルクトースビスリン酸アルドラーゼ（fbp）、グルコースリン酸
イソメラーゼ（pgi）、６－ホスホグルコン酸デヒドラターゼ（edd）、２－ケト－３－デオキシ－６－ホスホグルコン酸アルドラーゼ（eda）、トランスヒドロゲナーゼが挙げら
れる。なお、カッコ内は、その酵素をコードする遺伝子の一例である（以下の記載においても同様）。これらの酵素の中では、例えば、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ、クエン酸シンターゼ、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ、及びメチルクエン酸シンターゼから選択される１種またはそれ以上の酵素の活性を増強するのが好ましい。
クエン酸シンターゼ遺伝子、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ遺伝子、および／またはグルタミン酸デヒドロゲナーゼ遺伝子の発現が増大するように改変された腸内細菌科に属する株としては、EP1078989A、EP955368A、及びEP952221Aに開示されたものが挙げられる。また、エントナー・ドゥドロフ経路の遺伝子（edd, eda）の発現が増大するように改変された腸内細菌科に属する株としては、EP1352966Bに開示されたものが挙げられる。また、グルタミン酸シンテターゼ遺伝子（gltBD）の発現が増大するように改変さ
れたコリネ型細菌としては、WO99/07853に開示されたものが挙げられる。
また、Ｌ－グルタミン酸生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－グルタミン酸の生合成経路から分岐してＬ－グルタミン酸以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が低下するように細菌を改変する方法も挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、イソクエン酸リアーゼ（aceA）、α－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ（sucA, odhA）、アセト乳酸シンターゼ（ilvI）、ギ酸アセチルトランスフェラーゼ（pfl）、乳酸デヒドロゲナーゼ（ldh）、アルコールデヒドロゲナーゼ（adh）、グルタミン酸デカルボキシラーゼ（gadAB）、コハク酸デヒドロゲナーゼ（sdhABCD）が挙げられる。これらの酵素の中では、例えば
、α－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性を低下又は欠損させることが好ましい。
α－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性が低下または欠損したエシェリヒア属細菌、及びそれらの取得方法は、米国特許第5,378,616号及び米国特許第5,573,945号に記載されている。また、パントエア属細菌、エンテロバクター属細菌、クレブシエラ属細菌、エルビニア属細菌等の腸内細菌においてα－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性を低下または欠損させる方法は、米国特許第6,197,559号、米国特許第6,682,912号、米国特許第6,331,419号、米国特許第8,129,151号、及びWO2008/075483に開示されている。α－ケトグル
タル酸デヒドロゲナーゼ活性が低下または欠損したエシェリヒア属細菌として、具体的には、例えば、下記の株が挙げられる。
E. coli W3110sucA::Kmr
E. coli AJ12624（FERM BP-3853）
E. coli AJ12628（FERM BP-3854）
E. coli AJ12949（FERM BP-4881）
E. coli W3110sucA::Kmrは、E. coli W3110のα－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼを
コードするsucA遺伝子を破壊することにより得られた株である。この株は、α－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性を完全に欠損している。
α－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性が低下または欠損したコリネ型細菌、及びそれらの取得方法は、WO2008/075483に記載されている。α－ケトグルタル酸デヒドロゲナ
ーゼ活性が低下または欠損したコリネ型細菌として、具体的には、例えば、下記の株が挙げられる。
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium lactofermentum）L30-2株（特開2006-340603）
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium lactofermentum）ΔS株（WO95/34672）
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium lactofermentum）AJ12821（FERM BP-4172；フランス特許第9401748号公報）
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium flavum）AJ12822（FERM BP-4173；フランス特許第9401748号公報）
Corynebacterium glutamicum AJ12823（FERM BP-4174；フランス特許第9401748号公報）
また、Ｌ－グルタミン酸生産菌又はそれを誘導するための親株としては、Pantoea ananatis AJ13355株（FERM BP-6614）、Pantoea ananatis SC17株（FERM BP-11091）、Pantoe
a ananatis SC17(0)株（VKPM B-9246）等のパントエア属細菌も挙げられる。AJ13355株は、静岡県磐田市の土壌から、低pHでＬ－グルタミン酸及び炭素源を含む培地で増殖できる株として分離された株である。SC17株は、AJ13355株から、粘液質低生産変異株として選
択された株である（米国特許第6,596,517号）。SC17株は、2009年2月4日に、独立行政法
人産業技術総合研究所 特許生物寄託センター（現、独立行政法人製品評価技術基盤機構
特許生物寄託センター、郵便番号：292-0818、住所：日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8 120号室）に寄託され、受託番号FERM BP-11091が付与されている。AJ13355株は、1998年2月19日に、工業技術院生命工学工業技術研究所（現、独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許生物寄託センター、郵便番号：292-0818、住所：日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8 120号室）に、受託番号FERM P-16644として寄託され、1999年1月11日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、受託番号FERM BP-6614が付与されている。
また、Ｌ－グルタミン酸生産菌又はそれを誘導するための親株としては、α－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性が低下または欠損したパントエア属細菌も挙げられる。そのような株としては、AJ13355株のα－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼのE1サブユニット
遺伝子（sucA）欠損株であるAJ13356株（米国特許第6,331,419号）、及びSC17株のsucA遺伝子欠損株であるSC17sucA株（米国特許第6,596,517号）が挙げられる。AJ13356株は、1998年2月19日に、工業技術院生命工学工業技術研究所（現、独立行政法人製品評価技術基
盤機構 特許生物寄託センター、郵便番号：292-0818、住所：日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8 120号室）に受託番号FERM P-16645として寄託され、1999年1月11日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、受託番号FERM BP-6616が付与されている。また、SC17sucA株は、ブライベートナンバーAJ417が付与され、2004年2月26日に独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センター（現、独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許生物寄託センター、郵便番号：292-0818、住所：日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8 120号室）に受託番号FERM BP-8646として寄託されている。
尚、AJ13355株は、分離された当時はEnterobacter agglomeransと同定されたが、近年
、16S rRNAの塩基配列解析などにより、Pantoea ananatisに再分類されている。よって、AJ13355株及びAJ13356株は、上記寄託機関にEnterobacter agglomeransとして寄託されているが、本明細書ではPantoea ananatisとして記載する。
また、Ｌ－グルタミン酸生産菌又はそれを誘導するための親株としては、栄養要求性変異株も挙げられる。栄養要求性変異株として、具体的には、例えば、E. coli VL334thrC+（VKPM B-8961；EP1172433）が挙げられる。E. coli VL334（VKPM B-1641）は、thrC遺伝子及びilvA遺伝子に変異を有するＬ－イソロイシン及びＬ－スレオニン要求性株である（米国特許第4,278,765号）。E. coli VL334thrC+は、thrC遺伝子の野生型アレルをVL334に導入することにより得られた、Ｌ－イソロイシン要求性のＬ－グルタミン酸生産菌である。thrC遺伝子の野生型アレルは、野生型E. coli K-12株（VKPM B-7）の細胞で増殖したバクテリオファージP1を用いる一般的形質導入法により導入された。
また、Ｌ－グルタミン酸生産菌又はそれを誘導するための親株としては、アスパラギン酸アナログに耐性を有する株も挙げられる。これらの株は、例えば、α－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性を欠損していてもよい。アスパラギン酸アナログに耐性を有し、α－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ活性を欠損した株として、具体的には、例えば、E. coli AJ13199（FERM BP-5807；米国特許第5,908,768号）、さらにＬ－グルタミン酸分解能が低下したE. coli FERM P-12379（米国特許第5,393,671号）、E. coli AJ13138（FERM BP-5565；米国特許第6,110,714号）が挙げられる。
また、Ｌ－グルタミン酸生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、yhfK遺伝子（WO2005/085419）やybjL遺伝子（WO2008/133161）等のＬ－グルタミン酸排出遺伝
子の発現を増強することも挙げられる。
また、コリネ型細菌について、Ｌ－グルタミン酸生産能を付与又は増強する方法としては、有機酸アナログや呼吸阻害剤などへの耐性を付与する方法や、細胞壁合成阻害剤に対する感受性を付与する方法も挙げられる。そのような方法として、具体的には、例えば、モノフルオロ酢酸耐性を付与する方法（特開昭50-113209）、アデニン耐性またはチミン
耐性を付与する方法（特開昭57-065198）、ウレアーゼを弱化させる方法（特開昭52-038088）、マロン酸耐性を付与する方法（特開昭52-038088）、ベンゾピロン類またはナフト
キノン類への耐性を付与する方法（特開昭56-1889）、HOQNO耐性を付与する方法（特開昭56-140895）、α-ケトマロン酸耐性を付与する方法（特開昭57-2689）、グアニジン耐性
を付与する方法（特開昭56-35981）、ペニシリンに対する感受性を付与する方法（特開平4-88994）が挙げられる。
このような耐性菌または感受性菌の具体例としては、下記のような菌株が挙げられる。Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium flavum）AJ3949（FERM BP-2632；特開昭50-113209）
Corynebacterium glutamicum AJ11628（FERM P-5736；特開昭57-065198）
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium flavum）AJ11355（FERM P-5007；特開昭56-1889）
Corynebacterium glutamicum AJ11368（FERM P-5020；特開昭56-1889）
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium flavum）AJ11217（FERM P-4318；特開昭57-2689）
Corynebacterium glutamicum AJ11218（FERM P-4319；特開昭57-2689）
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium flavum）AJ11564（FERM P-5472；特開昭56-140895）
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium flavum）AJ11439（FERM P-5136；特開昭56-35981）
Corynebacterium glutamicum H7684（FERM BP-3004；特開平04-88994）
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium lactofermentum）AJ11426（FERM P-5123
；特開平56-048890）
Corynebacterium glutamicum AJ11440（FERM P-5137；特開平56-048890）
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium lactofermentum）AJ11796（FERM P-6402
；特開平58-158192）
また、コリネ型細菌について、Ｌ－グルタミン酸生産能を付与又は増強する方法としては、yggB遺伝子の発現を増強する方法やコード領域内に変異を導入した変異型yggB遺伝子を導入する方法も挙げられる（WO2006/070944）。すなわち、本発明の細菌は、yggB遺伝
子の発現が増大するように改変されていてもよく、変異型yggB遺伝子を保持する（有する）ように改変されていてもよい。
yggB遺伝子は、メカノセンシティブチャンネル（mechanosensitive channel）をコードする遺伝子である。yggB遺伝子としては、コリネ型細菌のyggB遺伝子が挙げられる。コリネ型細菌のyggB遺伝子として、具体的には、例えば、Corynebacterium glutamicum ATCC13869、Corynebacterium glutamicum ATCC13032、Corynebacterium glutamicum ATCC14967、Corynebacterium melassecola ATCC17965のyggB遺伝子が挙げられる（WO2006/070944）。Corynebacterium glutamicum ATCC13032のyggB遺伝子は、ＮＣＢＩデータベースにGenBank Accession No. NC_003450で登録されているゲノム配列中、1,336,091～1,337,692の
配列の相補配列に相当し、NCgl1221とも呼ばれる。Corynebacterium glutamicum ATCC13032のyggB遺伝子にコードされるYggBタンパク質は、GenBank accession No. NP_600492と
して登録されている。また、Corynebacterium glutamicum 2256（ATCC 13869）のyggB遺
伝子の塩基配列、及び同遺伝子がコードするYggBタンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ配列番号９および１０に示す。
本発明において、後述する「特定の変異」を有するyggB遺伝子を変異型yggB遺伝子、それによりコードされるタンパク質を変異型YggBタンパク質ともいう。また、本発明において、後述する「特定の変異」を有さないyggB遺伝子を野生型yggB遺伝子、それによりコードされるタンパク質を野生型YggBタンパク質ともいう。なお、YggBタンパク質にあっては、yggB遺伝子における「特定の変異」により引き起こされるアミノ酸配列の変化を「特定の変異」ともいう。ここでいう「野生型」とは、「変異型」と区別するための便宜上の記載であり、「特定の変異」を有しない限り、天然に得られるものには限定されない。野生型YggBタンパク質としては、上記例示したYggBタンパク質、例えば配列番号１０に示すアミノ酸配列を有するタンパク質、が挙げられる。また、野生型YggBタンパク質としては、上記例示したYggBタンパク質の保存的バリアント（元の機能が維持されたバリアント）であって、「特定の変異」を有しないものも挙げられる。YggBタンパク質についての「元の機能」とは、例えば、メカノセンシティブチャネル（mechanosensitive channel）としての機能であってもよく、コリネ型細菌において発現を上昇させた際にコリネ型細菌のＬ－グルタミン酸生産能を向上させる性質であってもよい。
「特定の変異」は、上述したような野生型YggBタンパク質のアミノ酸配列を変化させ、コリネ型細菌のＬ－グルタミン酸生産能を向上させる変異であれば、特に制限されない。「特定の変異」としては、C末端側変異や膜貫通領域の変異が挙げられる（WO2006/070944）。また、「特定の変異」は、それらの変異の組み合わせであってもよい。
（１）C末端側変異
C末端側変異は、野生型yggB遺伝子中の、野生型YggBタンパク質の419～533位のアミノ
酸残基をコードする領域における変異である。C末端側変異は、同領域中の１またはそれ
以上の箇所に導入されてよい。C末端側変異により引き起こされるアミノ酸配列の変化の
種類は特に制限されない。C末端側変異は、例えば、アミノ酸残基の置換（ミスセンス変
異）、アミノ酸残基の挿入、アミノ酸残基の欠失、ストップコドンの出現（ナンセンス変異）、フレームシフト変異、またはそれらの組み合わせを引き起こすものであってよい。C末端側変異としては、例えば、インサーションシーケンス（以下、「IS」ともいう）や
トランスポゾン等の塩基配列の挿入が好ましい。
（１－１）塩基配列の挿入
C末端側変異としては、例えば、野生型YggBタンパク質の419位のバリン残基をコードする箇所に塩基配列が挿入される変異（2A-1型変異）が挙げられる。2A-1型変異は、例えば、野生型YggBタンパク質の419～533位のアミノ酸残基の一部または全部の欠失または置換を引き起こすものであってよい。2A-1型変異を有する変異型yggB遺伝子として、具体的には、例えば、配列番号９の1255位の「G」の次にＩＳが挿入され、元の野生型YggBタンパ
ク質（配列番号１０）よりも短い全長423アミノ残基の変異型YggBタンパク質をコードす
るyggB遺伝子が挙げられる。この変異型yggB遺伝子（V419::IS）の塩基配列、及び同遺伝子がコードする変異型YggBタンパク質（V419::IS）のアミノ酸配列を、それぞれ配列番号１１および１２に示す。配列番号１１中、1～1269位が変異型YggBタンパク質（V419::IS
）のＣＤＳである。変異型yggB遺伝子（V419::IS）を有するＬ－グルタミン酸生産菌として、具体的には、例えば、C. glutamicum 2256ΔsucAΔldhA yggB*株（WO2014/185430）
が挙げられる。
（１－２）プロリン残基の置換
C末端側変異としては、例えば、野生型YggBタンパク質の419～533位に存在するプロリ
ン残基を他のアミノ酸に置換する変異も挙げられる。そのようなプロリン残基としては、
野生型YggBタンパク質の424位、437位、453位、457位、462位、469位、484位、489位、497位、515位、529位、および533位のプロリン残基が挙げられる。中でも、424位および／
または437位のプロリン残基を他のアミノ酸に置換するのが好ましい。「他のアミノ酸」
は、プロリン以外の天然型アミノ酸であれば特に制限されない。「他のアミノ酸」としては、Lys、Glu、Thr、Val、Leu、Ile、Ser、Asp、Asn、Gln、Arg、Cys、Met、Phe、Trp、Tyr、Gly、Ala、Hisが挙げられる。例えば、424位のプロリン残基は、好ましくは疎水性アミノ酸（Ala、Gly、Val、Leu、またはIle）に置換されてよく、より好ましくは分岐鎖ア
ミノ酸（Leu、Val、またはIle）に置換されてよい。また、例えば、437位のプロリン残基は、好ましくは側鎖にヒドロキシル基を有するアミノ酸（Thr、Ser、またはTyr）に置換
されてよく、より好ましくはSerに置換されてよい。
（２）膜貫通領域の変異
YggBタンパク質は、５個の膜貫通領域を有していると推測される。膜貫通領域はそれぞれ、野生型YggBタンパク質の1～23位（第１膜貫通領域）、25～47位（第２膜貫通領域）
、62～84位（第３膜貫通領域）、86～108位（第４膜貫通領域）、110～132位（第５膜貫
通領域）のアミノ酸残基に相当する。膜貫通領域の変異は、野生型yggB遺伝子中の、これら膜貫通領域をコードする領域における変異である。膜貫通領域の変異は、同領域中の１またはそれ以上の箇所に導入されてよい。膜貫通領域の変異は、１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、付加、挿入、又は逆位を引き起こすものであって、且つ、フレームシフト変異およびナンセンス変異を伴わないものが好ましい。「１若しくは数個」とは、好ましくは１～２０個、より好ましくは１～１０個、さらに好ましくは１～５個、特に好ましくは１～３個を意味する。膜貫通領域の変異としては、野生型YggBタンパク質の、１４位のロイシン残基と１５位のトリプトファン残基間に１又は数個のアミノ酸（例えば、Cys-Ser-Leu）を挿入する変異、１００位のアラニン残基を他のアミノ酸残基（例えば、側鎖
にヒドロキシル基を有するアミノ酸（Thr、Ser、またはTyr）、好ましくはThr）へ置換する変異、１１１位のアラニン残基を他のアミノ酸残基（例えば、側鎖にヒドロキシル基を有するアミノ酸（Thr、Ser、またはTyr）、好ましくはThr）へ置換する変異などが挙げられる。
本発明において、「野生型YggBタンパク質のＸ位のアミノ酸残基」とは、特記しない限り、配列番号１０におけるＸ位のアミノ酸残基に相当するアミノ酸残基を意味する。アミノ酸配列における「Ｘ位」とは、同アミノ酸配列のN末端から数えてＸ番目の位置を意味
し、N末端のアミノ酸残基が１位のアミノ酸残基である。なお、アミノ酸残基の位置は相
対的な位置を示すものであって、アミノ酸の欠失、挿入、付加などによってその絶対的な位置は前後することがある。例えば、「野生型YggBタンパク質の419位のアミノ酸残基」
とは、配列番号１０における419位のアミノ酸残基に相当するアミノ酸残基を意味し、419位よりもN末端側の１アミノ酸残基が欠失している場合は、N末端から418番目のアミノ酸
残基が「野生型YggBタンパク質の419位のアミノ酸残基」であるものとする。また、419位よりもN末端側に１アミノ酸残基挿入されている場合は、N末端から420番目のアミノ酸残
基が「野生型YggBタンパク質の419位のアミノ酸残基」であるものとする。具体的には、
例えば、Corynebacterium glutamicum ATCC14967株のYggBタンパク質においては、419～529位のアミノ酸残基が、野生型YggBタンパク質の419～533位のアミノ酸残基に相当する。
任意のYggBタンパク質のアミノ酸配列において、どのアミノ酸残基が「配列番号１０におけるＸ位のアミノ酸残基に相当するアミノ酸残基」であるかは、当該YggBタンパク質のアミノ酸配列と配列番号１０のアミノ酸配列とのアライメントを行うことにより決定できる。アライメントは、例えば、公知の遺伝子解析ソフトウェアを利用して行うことができる。具体的なソフトウェアとしては、日立ソリューションズ製のDNASISや、ゼネティックス製のGENETYXなどが挙げられる（Elizabeth C. Tyler et al., Computers and Biomedical Research, 24(1), 72-96, 1991；Barton GJ et al., Journal of molecular biology,
198(2), 327-37. 1987）。
変異型yggB遺伝子は、野生型yggB遺伝子を上述の「特定の変異」を有するよう改変することにより取得できる。ＤＮＡの改変は公知の手法により行うことができる。具体的には、例えば、ＤＮＡの目的部位に目的の変異を導入する部位特異的変異法としては、PCRを
用いる方法（Higuchi, R., 61, in PCR technology, Erlich, H. A. Eds., Stockton press (1989)；Carter, P., Meth. in Enzymol., 154, 382 (1987)）や、ファージを用いる
方法（Kramer,W. and Frits, H. J., Meth. in Enzymol., 154, 350 (1987)；Kunkel, T.
A. et al., Meth. in Enzymol., 154, 367 (1987)）が挙げられる。また、変異型yggB遺伝子は、化学合成によっても取得できる。
変異型yggB遺伝子を有するように細菌を改変することは、変異型yggB遺伝子を細菌に導入することにより達成できる。また、変異型yggB遺伝子を有するように細菌を改変することは、自然変異や変異原処理により細菌が有するyggB遺伝子に変異を導入することによっても達成できる。
なお、Ｌ－グルタミン酸の生産能を付与又は増強する方法は、Ｌ－グルタミン酸を中間体として生合成されるＬ－アミノ酸（例えば、Ｌ－グルタミン、Ｌ－プロリン、Ｌ－アルギニン、Ｌ－シトルリン、Ｌ－オルニチン）の生産能を付与又は増強するためにも有効であり得る。すなわち、これらＬ－グルタミン酸を中間体として生合成されるＬ－アミノ酸の生産能を有する細菌は、上記のようなＬ－グルタミン酸生産菌が有する性質を適宜有していてよい。例えば、これらＬ－グルタミン酸を中間体として生合成されるＬ－アミノ酸の生産能を有する細菌は、α－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼおよび／またはコハク酸デヒドロゲナーゼの活性が低下するように改変されていてもよい。
＜Ｌ－グルタミン生産菌＞
Ｌ－グルタミン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－グルタミン生合成系酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ（gdhA）やグルタミンシンセターゼ（glnA）が挙げられる。なお、グルタミンシンセターゼの活性は、グルタミンアデニリルトランスフェラーゼ遺伝子（glnE）の破壊やPII制御タンパク質遺伝子（glnB）の破壊によって増強してもよい（EP1229121）。
また、Ｌ－グルタミン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－グルタミンの生合成経路から分岐してＬ－グルタミン以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が低下するように細菌を改変する方法も挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、グルタミナーゼが挙げられる。
Ｌ－グルタミン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ（gdhA）および／またはグルタミンシンセターゼ（glnA）の活性を増強したコリネ型細菌（EP1229121, EP1424398）やグルタミナーゼ活性が低下したコリネ型細菌（特開2004-187684）が挙げられる。また、Ｌ－グルタミン生産菌又はそれ
を誘導するための親株としては、グルタミンシンセターゼの397位のチロシン残基が他の
アミノ酸残基に置換された変異型グルタミンシンセターゼを有するエシェリヒア属に属する株が挙げられる（US2003-0148474A）。
また、コリネ型細菌について、Ｌ－グルタミン生産能を付与又は増強する方法としては、6-ジアゾ-5-オキソ-ノルロイシン耐性を付与する方法（特開平3-232497）、プリンアナ
ログ耐性及びメチオニンスルホキシド耐性を付与する方法（特開昭61-202694）、α-ケトマロン酸耐性を付与する方法（特開昭56-151495）が挙げられる。Ｌ－グルタミン生産能
を有するコリネ型細菌として、具体的には、例えば、以下の株が挙げられる。
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium flavum）AJ11573（FERM P-5492；特開昭56-151495）
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium flavum）AJ11576（FERM BP-10381；特開
昭56-151495）
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium flavum）AJ12212（FERM P-8123；特開昭61-202694）
＜Ｌ－プロリン生産菌＞
Ｌ－プロリン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－プロリン生合成系酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、グルタミン酸－５－キナーゼ（proB）、γ‐グルタミル－リン酸レダクターゼ、ピロリン－５－カルボキシレートレダクターゼ（putA）が挙げられる。酵素活性の増強には、例えば、Ｌ－プロリンによるフィードバック阻害が解除されたグルタミン酸－５－キナーゼをコードするproB遺伝子（ドイツ特許第3127361号）が好適に利用できる。
また、Ｌ－プロリン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－プロリン分解に関与する酵素の活性が低下するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、プロリンデヒドロゲナーゼやオルニチンアミノトランスフェラーゼが挙げられる。
Ｌ－プロリン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、E. coli NRRL B-12403及びNRRL B-12404（英国特許第2075056号）、E. coli VKPM B-8012（ロシア特許出願第2000124295号）、ドイツ特許第3127361号に記載のE. coliプラスミド変異体、Bloom F.R. et al（The 15th Miami winter symposium, 1983, p.34）に記載のE. coliプラスミド変異体、３，４－デヒドロキシプロリンおよびアザチジン－２－カルボキシレートに耐性のE. coli 702株（VKPM B-8011）、702株のilvA遺伝子欠損株であるE. coli
702ilvA株（VKPM B-8012；EP1172433）が挙げられる。
＜Ｌ－スレオニン生産菌＞
Ｌ－スレオニン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－スレオニン生合成系酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、アスパルトキナーゼIII（lysC）、アスパラギン酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ（asd）、アスパルトキナーゼI（thrA）、ホモセリンキナーゼ（homoserine kinase）（thrB）、スレオニンシンターゼ（threonine synthase）（thrC）、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（アスパラギン酸トランスアミナーゼ）（aspC）が挙げられる。これらの酵素の中では、アスパルトキナーゼIII、アスパラギン酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ、アスパル
トキナーゼI、ホモセリンキナーゼ、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ、及びス
レオニンシンターゼから選択される１種またはそれ以上の酵素の活性を増強するのが好ましい。Ｌ－スレオニン生合成系遺伝子は、スレオニン分解が抑制された株に導入してもよい。スレオニン分解が抑制された株としては、例えば、スレオニンデヒドロゲナーゼ活性が欠損したE. coli TDH6株（特開2001-346578）が挙げられる。
Ｌ－スレオニン生合成系酵素の活性は、最終産物のＬ－スレオニンによって阻害される。従って、Ｌ－スレオニン生産菌を構築するためには、Ｌ－スレオニンによるフィードバック阻害を受けないようにＬ－スレオニン生合成系遺伝子を改変するのが好ましい。上記
thrA、thrB、thrC遺伝子は、スレオニンオペロンを構成しており、スレオニンオペロンは、アテニュエーター構造を形成している。スレオニンオペロンの発現は、培養液中のイソロイシン、スレオニンに阻害を受け、アテニュエーションにより抑制される。スレオニンオペロンの発現の増強は、アテニュエーション領域のリーダー配列あるいはアテニュエーターを除去することにより達成できる（Lynn, S. P., Burton, W. S., Donohue, T. J., Gould, R. M., Gumport, R. I., and Gardner, J. F. J. Mol. Biol. 194:59-69 (1987);
WO02/26993; WO2005/049808; WO2003/097839）。
スレオニンオペロンの上流には固有のプロモーターが存在するが、同プロモーターを非天然のプロモーターに置換してもよい（WO98/04715）。また、スレオニン生合成関与遺伝子がラムダファ－ジのリプレッサーおよびプロモーターの制御下で発現するようにスレオニンオペロンを構築してもよい（EP0593792B）。また、Ｌ－スレオニンによるフィードバック阻害を受けないように改変された細菌は、Ｌ－スレオニンアナログであるα-amino-
β-hydroxyvaleric acid（AHV）に耐性な菌株を選抜することによっても取得できる。
このようにＬ－スレオニンによるフィードバック阻害を受けないように改変されたスレオニンオペロンは、コピー数の上昇により、あるいは強力なプロモーターに連結されることにより、宿主内での発現量が向上しているのが好ましい。コピー数の上昇は、スレオニンオペロンを含むプラスミドを宿主に導入することにより達成できる。また、コピー数の上昇は、トランスポゾン、Muファ－ジ等を利用して、宿主のゲノム上にスレオニンオペロンを転移させることによっても達成できる。
また、Ｌ－スレオニン生産能を付与又は増強する方法としては、宿主にＬ－スレオニン耐性を付与する方法やＬ－ホモセリン耐性を付与する方法も挙げられる。耐性の付与は、例えば、Ｌ－スレオニンに耐性を付与する遺伝子、Ｌ－ホモセリンに耐性を付与する遺伝子の発現を強化することにより達成できる。耐性を付与する遺伝子としては、rhtA遺伝子（Res. Microbiol. 154:123－135 (2003)）、rhtB遺伝子（EP0994190A）、rhtC遺伝子（EP1013765A）、yfiK遺伝子、yeaS遺伝子（EP1016710A）が挙げられる。また、宿主にＬ－
スレオニン耐性を付与する方法は、EP0994190AやWO90/04636に記載の方法を参照出来る。
Ｌ－スレオニン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、E.
coli TDH-6/pVIC40（VKPM B-3996；米国特許第5,175,107号, 米国特許第5,705,371号）
、E. coli 472T23/pYN7（ATCC 98081；米国特許第5,631,157号）、E. coli NRRL B-21593（米国特許第5,939,307号）、E. coli FERM BP-3756（米国特許第5,474,918号）、E. coli FERM BP-3519及びFERM BP-3520（米国特許第5,376,538号）、E. coli MG442（Gusyatiner et al., Genetika (in Russian), 14, 947-956 (1978)）、E. coli VL643及びVL2055
（EP1149911A）、ならびにE. coli VKPM B-5318（EP0593792B）が挙げられる。
VKPM B-3996株は、TDH-6株に、プラスミドpVIC40を導入した株である。TDH-6株は、ス
クロース資化性であり、thrC遺伝子を欠損し、ilvA遺伝子にリーキー（leaky）変異を有
する。また、TDH-6株は、rhtA遺伝子に、高濃度のスレオニンまたはホモセリンに対する
耐性を付与する変異を有する。プラスミドpVIC40は、RSF1010由来ベクターに、スレオニ
ンによるフィードバック阻害に耐性のアスパルトキナーゼホモセリンデヒドロゲナーゼＩをコードする変異型thrA遺伝子と野生型thrBC遺伝子を含むthrA*BCオペロンが挿入されたプラスミドである（米国特許第5,705,371号）。この変異型thrA遺伝子は、スレオニンに
よるフィードバック阻害が実質的に解除されたアスパルトキナーゼホモセリンデヒドロゲナーゼＩをコードする。B-3996株は、1987年11月19日、オールユニオン・サイエンティフィック・センター・オブ・アンチビオティクス（Nagatinskaya Street 3-A, 117105 Moscow, Russia）に、受託番号RIA 1867で寄託されている。この株は、また、1987年4月7日、ルシアン・ナショナル・コレクション・オブ・インダストリアル・マイクロオルガニズム
ズ（VKPM）（FGUP GosNII Genetika, 1 Dorozhny proezd., 1 Moscow 117545, Russia）
に、受託番号VKPM B-3996で寄託されている。
VKPM B-5318株は、イソロイシン非要求性であり、プラスミドpVIC40中のスレオニンオ
ペロンの制御領域を温度感受性ラムダファージC1リプレッサー及びPRプロモーターにより置換したプラスミドpPRT614を保持する。VKPM B-5318は、1990年5月3日、ルシアン・ナショナル・コレクション・オブ・インダストリアル・マイクロオルガニズムズ（VKPM）（FGUP GosNII Genetika, 1 Dorozhny proezd., 1 Moscow 117545, Russia）に、受託番号VKPM B-5318で国際寄託されている。
E. coliのアスパルトキナーゼホモセリンデヒドロゲナーゼＩをコードするthrA遺伝子
は明らかにされている（ヌクレオチド番号337～2799, GenBank accession NC_000913.2, gi: 49175990）。thrA遺伝子は、E. coli K-12の染色体において、thrL遺伝子とthrB遺伝子との間に位置する。Escherichia coliのホモセリンキナーゼをコードするthrB遺伝子は明らかにされている（ヌクレオチド番号2801～3733, GenBank accession NC_000913.2, gi: 49175990）。thrB遺伝子は、E. coli K-12の染色体において、thrA遺伝子とthrC遺伝
子との間に位置する。E. coliのスレオニンシンターゼをコードするthrC遺伝子は明らか
にされている（ヌクレオチド番号3734～5020, GenBank accession NC_000913.2, gi: 49175990）。thrC遺伝子は、E. coli K-12の染色体において、thrB遺伝子とyaaXオープンリ
ーディングフレームとの間に位置する。また、スレオニンによるフィードバック阻害に耐性のアスパルトキナーゼホモセリンデヒドロゲナーゼＩをコードする変異型thrA遺伝子と野生型thrBC遺伝子を含むthrA*BCオペロンは、スレオニン生産株E. coli VKPM B-3996に
存在する周知のプラスミドpVIC40（米国特許第5,705,371号）から取得できる。
E. coliのrhtA遺伝子は、グルタミン輸送系の要素をコードするglnHPQ オペロンに近いE. coli染色体の18分に存在する。rhtA遺伝子は、ORF1（ybiF遺伝子, ヌクレオチド番号764～1651, GenBank accession number AAA218541, gi:440181）と同一であり、pexB遺伝
子とompX遺伝子との間に位置する。ORF1によりコードされるタンパク質を発現するユニットは、rhtA遺伝子と呼ばれている（rht: resistant to homoserine and threonine（ホモセリン及びスレオニンに耐性））。また、高濃度のスレオニン又はホモセリンへの耐性を付与するrhtA23変異が、ATG開始コドンに対して-1位のG→A置換であることが判明してい
る（ABSTRACTS of the 17th International Congress of Biochemistry and Molecular Biology in conjugation with Annual Meeting of the American Society for Biochemistry and Molecular Biology, San Francisco, California August 24-29, 1997, abstract
No. 457, EP1013765A）。
E. coliのasd遺伝子は既に明らかにされており（ヌクレオチド番号3572511～3571408, GenBank accession NC_000913.1, gi:16131307）、その遺伝子の塩基配列に基づいて作製されたプライマーを用いるPCRにより取得できる（White, T.J. et al., Trends Genet., 5, 185 (1989)）。他の微生物のasd遺伝子も同様に得ることができる。
また、E. coliのaspC遺伝子も既に明らかにされており（ヌクレオチド番号983742～984932, GenBank accession NC_000913.1, gi:16128895）、その遺伝子の塩基配列に基づい
て作製されたプライマーを用いるPCRにより得ることができる。他の微生物のaspC遺伝子
も同様に得ることができる。
また、Ｌ－スレオニン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、Corynebacterium acetoacidophilum AJ12318（FERM BP-1172；米国特許第5,188,949号）が挙げられる。
＜Ｌ－リジン生産菌＞
Ｌ－リジン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－リジン生合成系酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、ジヒドロジピコリン酸シンターゼ（dihydrodipicolinate synthase）（dapA）、アスパルトキナーゼIII（aspartokinase III）（lysC）、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ（dihydrodipicolinate reductase）（dapB）、ジアミノピメリン酸デカルボキシラーゼ（diaminopimelate decarboxylase）（lysA）、ジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼ（diaminopimelate dehydrogenase）（ddh）（米国特許第6,040,160号）、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラー
ゼ（phosphoenolpyruvate carboxylase）（ppc）、アスパラギン酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ（aspartate semialdehyde dehydrogenase）（asd）、アスパラギン酸アミノ
トランスフェラーゼ（aspartate aminotransferase）（アスパラギン酸トランスアミナーゼ（aspartate transaminase））（aspC）、ジアミノピメリン酸エピメラーゼ（diaminopimelate epimerase）（dapF）、テトラヒドロジピコリン酸スクシニラーゼ（tetrahydrodipicolinate succinylase）（dapD）、スクシニルジアミノピメリン酸デアシラーゼ（succinyl-diaminopimelate deacylase）（dapE）、及びアスパルターゼ（aspartase）（aspA）（EP 1253195 A）が挙げられる。これらの酵素の中では、例えば、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ、ジアミノピメリン酸デカルボキシラーゼ、ジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼ、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ、ジアミノピメリン酸エピメラーゼ、アスパラギン酸セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ、テトラヒドロジピコリン酸スクシニラーゼ、及びスクシニルジアミノピメリン酸デアシラーゼから選択される１種またはそれ以上の酵素の活性を増強するのが好ましい。また、Ｌ－リジン生産菌又はそれを誘導するための親株では、エネルギー効率に関与する遺伝子（cyo）（EP 1170376 A）、ニコチンアミドヌクレオチドトランスヒドロゲナー
ゼ（nicotinamide nucleotide transhydrogenase）をコードする遺伝子（pntAB）（米国
特許第5,830,716号）、ybjE遺伝子（WO2005/073390）、またはこれらの組み合わせの発現レベルが増大していてもよい。アスパルトキナーゼIII（lysC）はＬ－リジンによるフィ
ードバック阻害を受けるので、同酵素の活性を増強するには、Ｌ－リジンによるフィードバック阻害が解除されたアスパルトキナーゼIIIをコードする変異型lysC遺伝子を利用し
てもよい（米国特許第5,932,453号）。Ｌ－リジンによるフィードバック阻害が解除され
たアスパルトキナーゼIIIとしては、318位のメチオニン残基がイソロイシン残基に置換される変異、323位のグリシン残基がアスパラギン酸残基に置換される変異、352位のスレオニン残基がイソロイシン残基に置換される変異の１またはそれ以上の変異を有するエシェリヒア・コリ由来のアスパルトキナーゼIIIが挙げられる（米国特許第5,661,012号、米国特許第6,040,160号）。また、ジヒドロジピコリン酸合成酵素（dapA）はＬ－リジンによ
るフィードバック阻害を受けるので、同酵素の活性を増強するには、Ｌ－リジンによるフィードバック阻害が解除されたジヒドロジピコリン酸合成酵素をコードする変異型dapA遺伝子を利用してもよい。Ｌ－リジンによるフィードバック阻害が解除されたジヒドロジピコリン酸合成酵素としては、118位のヒスチジン残基がチロシン残基に置換される変異を
有するエシェリヒア・コリ由来のジヒドロジピコリン酸合成酵素が挙げられる（米国特許第6,040,160号）。
また、Ｌ－リジン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－リジンの生合成経路から分岐してＬ－リジン以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が低下するように細菌を改変する方法も挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、ホモセリンデヒドロゲナーゼ（homoserine dehydrogenase）、リジンデカルボキシラーゼ（lysine decarboxylase）（米国特許第5,827,698号）、及びリンゴ酸酵素（malic enzyme）（WO2005/010175）が挙げられる。
また、コリネ型細菌について、Ｌ－リジン生産能を付与又は増強するための方法として
は、例えば、リジン排出系（lysE）の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる（WO97/23597）。Corynebacterium glutamicum ATCC 13032のlysE遺伝子は、NCBIデ
ータベースにGenBank accession NC_006958（VERSION NC_006958.1 GI:62388892）とし
て登録されているゲノム配列中、1329712～1330413位の配列の相補配列に相当する。Corynebacterium glutamicum ATCC13032のLysEタンパク質は、GenBank accession YP_225551
（YP_225551.1 GI:62390149）として登録されている。
また、Ｌ－リジン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、Ｌ－リジンアナログに耐性を有する変異株が挙げられる。Ｌ－リジンアナログは腸内細菌科の細菌やコリネ型細菌等の細菌の生育を阻害するが、この阻害は、Ｌ－リジンが培地に共存するときには完全にまたは部分的に解除される。Ｌ－リジンアナログとしては、特に制限されないが、オキサリジン、リジンヒドロキサメート、Ｓ－（２－アミノエチル）－Ｌ－システイン（AEC）、γ－メチルリジン、α－クロロカプロラクタムが挙げられる。これらのリジンアナ
ログに対して耐性を有する変異株は、細菌を通常の人工変異処理に付すことによって得ることができる。
Ｌ－リジン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、E. coli AJ11442（FERM BP-1543, NRRL B-12185；米国特許第4,346,170号）及びE. coli VL611
が挙げられる。これらの株では、アスパルトキナーゼのＬ－リジンによるフィードバック阻害が解除されている。
Ｌ－リジン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、E. coli WC196
株も挙げられる。WC196株は、E. coli K-12に由来するW3110株にAEC耐性を付与すること
により育種された（米国特許第5,827,698号）。WC196株は、E. coli AJ13069と命名され
、1994年12月6日に、工業技術院生命工学工業技術研究所（現、独立行政法人製品評価技
術基盤機構 特許生物寄託センター、郵便番号：292-0818、住所：日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8 120号室）に受託番号FERM P-14690として寄託され、1995年9月29日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、受託番号FERM BP-5252が付与されている（米国特許第5,827,698号）。
好ましいＬ－リジン生産菌として、E. coli WC196ΔcadAΔldcやE. coli WC196ΔcadA
Δldc/pCABD2が挙げられる（WO2010/061890）。WC196ΔcadAΔldcは、WC196株より、リジンデカルボキシラーゼをコードするcadA及びldcC遺伝子を破壊することにより構築した株である。WC196ΔcadAΔldc/pCABD2は、WC196ΔcadAΔldcに、リジン生合成系遺伝子を含
むプラスミドpCABD2（米国特許第6,040,160号）を導入することにより構築した株である
。WC196ΔcadAΔldcは、AJ110692と命名され、2008年10月7日に、独立行政法人産業技術
総合研究所 特許生物寄託センター（現、独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許生物寄託センター、郵便番号：292-0818、住所：日本国千葉県木更津市かずさ鎌足2-5-8 120
号室）に受託番号FERM BP-11027として国際寄託された。pCABD2は、Ｌ－リジンによるフ
ィードバック阻害が解除される変異（H118Y）を有するエシェリヒア・コリ由来のジヒド
ロジピコリン酸合成酵素（DDPS）をコードする変異型dapA遺伝子と、Ｌ－リジンによるフィードバック阻害が解除される変異（T352I）を有するエシェリヒア・コリ由来のアスパ
ルトキナーゼIIIをコードする変異型lysC遺伝子と、エシェリヒア・コリ由来のジヒドロ
ジピコリン酸レダクターゼをコードするdapB遺伝子と、ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム由来ジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼをコードするddh遺伝子を含んでい
る。
好ましいＬ－リジン生産菌として、E. coli AJIK01株（NITE BP-01520）も挙げられる
。AJIK01株は、E. coli AJ111046と命名され、2013年1月29日に、独立行政法人製品評価
技術基盤機構 特許微生物寄託センター（郵便番号：292-0818、住所：日本国千葉県木更
津市かずさ鎌足2-5-8 122号室）に寄託され、2014年5月15日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、受託番号NITE BP-01520が付与されている。
また、Ｌ－リジン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、AEC耐性変異株（Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium lactofermentum）AJ11082（NRRL B-11470）
株等；特公昭56-1914、特公昭56-1915、特公昭57-14157、特公昭57-14158、特公昭57-30474、特公昭58-10075、特公昭59-4993、特公昭61-35840、特公昭62-24074、特公昭62-36673、特公平5-11958、特公平7-112437、特公平7-112438）；その生育にＬ－ホモセリン等のアミノ酸を必要とする変異株（特公昭48-28078、特公昭56-6499）；AECに耐性を示し、更にＬ－ロイシン、Ｌ－ホモセリン、Ｌ－プロリン、Ｌ－セリン、Ｌ－アルギニン、Ｌ－アラニン、Ｌ－バリン等のアミノ酸を要求する変異株（米国特許第3,708,395号, 米国特許
第3,825,472号）；ＤＬ－α－アミノ－ε－カプロラクタム、α－アミノ－ラウリルラク
タム、アスパラギン酸アナログ、スルファ剤、キノイド、Ｎ－ラウロイルロイシンに耐性を示す変異株；オキザロ酢酸デカルボキシラーゼ阻害剤または呼吸系酵素阻害剤に対する耐性を示す変異株（特開昭50-53588、特開昭50-31093、特開昭52-102498、特開昭53-9394、特開昭53-86089、特開昭55-9783、特開昭55-9759、特開昭56-32995、特開昭56-39778、特公昭53-43591、特公昭53-1833）；イノシトールまたは酢酸を要求する変異株（特開昭55-9784、特開昭56-8692）；フルオロピルビン酸または34℃以上の温度に対して感受性を
示す変異株（特開昭55-9783、特開昭53-86090）；エチレングリコールに耐性を示す変異
株（米国特許第4,411,997号）が挙げられる。
＜Ｌ－アルギニン生産菌＞
Ｌ－アルギニン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－アルギニン生合成系酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、Ｎ－アセチルグルタミン酸シンターゼ（argA）、Ｎ－アセチルグルタミン酸キナーゼ（argB）、Ｎ－アセチルグルタミルリン酸レダクターゼ（argC）、アセチルオルニチントランスアミナーゼ（argD）、アセチルオルニチンデアセチラーゼ（argE）、オルニチンカルバモイルトランスフェラーゼ（argF, argI）、アルギニノコハク酸シンターゼ（argG）、アルギニノコハク酸リアーゼ（argH）、オルニチンアセチルトランスフェラーゼ（argJ）、カルバモイルリン酸シンターゼ（carAB）が挙げられる。Ｎ－アセチルグルタミン酸シンターゼ（argA）遺伝子としては、例えば、野生型の１５位～１９位に相当するアミノ酸残基が置換さ
れ、Ｌ－アルギニンによるフィードバック阻害が解除された変異型Ｎ－アセチルグルタミン酸シンターゼをコードする遺伝子を用いると好適である（EP1170361A）。
Ｌ－アルギニン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、E.
coli 237株（VKPM B-7925；US2002-058315A1）、変異型Ｎ－アセチルグルタミン酸シン
ターゼをコードするargA遺伝子が導入されたその誘導株（ロシア特許出願第2001112869号, EP1170361A1）、237株由来の酢酸資化能が向上した株であるE. coli 382株（VKPM B-7926；EP1170358A1）、及び382株にE. coli K-12株由来の野生型ilvA遺伝子が導入された株であるE. coli 382ilvA+株が挙げられる。E. coli 237株は、2000年4月10日にルシアン・ナショナル・コレクション・オブ・インダストリアル・マイクロオルガニズムズ（VKPM）（FGUP GosNII Genetika, 1 Dorozhny proezd., 1 Moscow 117545, Russia）にVKPM B-7925の受託番号で寄託され、2001年5月18日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され
た。E. coli 382株は、2000年4月10日にルシアン・ナショナル・コレクション・オブ・インダストリアル・マイクロオルガニズムズ（VKPM）（FGUP GosNII Genetika, 1 Dorozhny
proezd., 1 Moscow 117545, Russia）にVKPM B-7926の受託番号で寄託されている。
また、Ｌ－アルギニン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、アミノ酸アナログ等への耐性を有する株も挙げられる。そのような株としては、例えば、α－メチルメチ
オニン、ｐ－フルオロフェニルアラニン、Ｄ－アルギニン、アルギニンヒドロキサム酸、Ｓ－（２－アミノエチル）－システイン、α－メチルセリン、β－２－チエニルアラニン、またはスルファグアニジンに耐性を有するE. coli変異株（特開昭56-106598）が挙げられる。
また、Ｌ－アルギニン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、アルギニンリプレッサーであるArgRを欠損した株（US2002-0045223A）や細胞内のグルタミンシンテター
ゼ活性を上昇させた株（US2005-0014236A）等のコリネ型細菌も挙げられる。
また、Ｌ－アルギニン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、アミノ酸アナログなどへの耐性を有するコリネ型細菌の変異株も挙げられる。そのような株としては、例えば、２－チアゾールアラニン耐性に加えて、Ｌ－ヒスチジン、Ｌ－プロリン、Ｌ－スレオニン、Ｌ－イソロイシン、Ｌ－メチオニン、またはＬ－トリプトファン要求性を有する株（特開昭54-44096）；ケトマロン酸、フルオロマロン酸、又はモノフルオロ酢酸に耐性を有する株（特開昭57-18989）；アルギニノールに耐性を有する株（特公昭62-24075）；Ｘ－グアニジン（Ｘは脂肪鎖又はその誘導体）に耐性を有する株（特開平2-186995）；アルギニンヒドロキサメート及び６－アザウラシルに耐性を有する株（特開昭57-150381）
が挙げられる。Ｌ－アルギニン生産能を有するコリネ型細菌の具体例としては、下記のような菌株が挙げられる。
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium flavum）AJ11169（FERM BP-6892）
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium lactofermentum）AJ12092（FERM BP-6906）
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium flavum）AJ11336（FERM BP-6893）
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium flavum）AJ11345（FERM BP-6894）
Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium lactofermentum）AJ12430（FERM BP-2228）
＜Ｌ－シトルリン生産菌およびＬ－オルニチン生産菌＞
Ｌ－シトルリンおよびＬ－オルニチンは、Ｌ－アルギニン生合成経路における中間体である。よって、Ｌ－シトルリンおよび／またはＬ－オルニチンの生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－アルギニン生合成系酵素から選択される１またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、Ｌ－シトルリンについて、Ｎ－アセチルグルタミン酸シンターゼ（argA）、Ｎ－アセチルグルタミン酸キナーゼ（argB）、Ｎ－アセチルグルタミルリン酸レダクターゼ（argC）、アセチルオルニチントランスアミナーゼ（argD）、アセチルオルニチンデアセチラーゼ（argE）、オルニチンカルバモイルトランスフェラーゼ（argF, argI）、オルニチンアセチルトランスフェラーゼ（argJ）、カルバモイルリン酸シンターゼ（carAB）が挙げられる。また、そのような酵素としては、特に制限されないが
、Ｌ－オルニチンについて、Ｎ－アセチルグルタミン酸シンターゼ（argA）、Ｎ－アセチルグルタミン酸キナーゼ（argB）、Ｎ－アセチルグルタミルリン酸レダクターゼ（argC）、アセチルオルニチントランスアミナーゼ（argD）、アセチルオルニチンデアセチラーゼ（argE）、オルニチンアセチルトランスフェラーゼ（argJ）が挙げられる。
また、Ｌ－シトルリン生産菌は、例えば、任意のＬ－アルギニン生産菌（E. coli 382
株（VKPM B-7926）等）から、argG遺伝子にコードされるアルギニノコハク酸シンターゼ
の活性を低下させることにより容易に得ることができる。また、Ｌ－オルニチン生産菌は、例えば、任意のＬ－アルギニン生産菌（E. coli 382株（VKPM B-7926）等）から、argF及びargI両遺伝子によりコードされるオルニチンカルバモイルトランスフェラーゼの活性を低下させることにより容易に得ることができる。
Ｌ－シトルリン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、変異型Ｎ－アセチルグルタミン酸シンターゼを保持するE. coli 237/pMADS11株、237/pMADS12株、及び237/pMADS13株（ロシア特許第2215783号, 米国特許第6,790,647号, EP1170361B1）、フィードバック阻害に耐性のカルバモイルリン酸シンセターゼを保持するE. coli 333株（VKPM B-8084）及び374株（VKPM B-8086）（ロシア特許第2264459号）、α－ケト
グルタル酸シンターゼの活性が増大し、且つフェレドキシンNADP+レダクターゼ、ピルビ
ン酸シンターゼ、及び／又はα－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼの活性がさらに改変されたE. coli株（EP2133417A1）等のエシェリヒア属に属する株が挙げられる。
＜Ｌ－ヒスチジン生産菌＞
Ｌ－ヒスチジン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－ヒスチジン生合成系酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、ＡＴＰホスホリボシルトランスフェラーゼ（hisG）、ホスホリボシル－ＡＭＰサイクロヒドロラーゼ（hisI）、ホスホリボシル－ＡＴＰピロホスホヒドロラーゼ（hisI）、ホスホリボシルフォルミミノ－５－アミノイミダゾールカルボキサミドリボタイドイソメラーゼ（hisA）、アミドトランスフェラーゼ（hisH）、ヒスチジノールフォスフェイトアミノトランスフェラーゼ（hisC）、ヒスチジノールフォスファターゼ（hisB）、ヒスチジノールデヒドロゲナーゼ（hisD）が挙げられる。
これらの内、hisG及びhisBHAFIにコードされるＬ－ヒスチジン生合成系酵素は、Ｌ－ヒスチジンにより阻害されることが知られている。従って、Ｌ－ヒスチジン生産能は、例えば、ＡＴＰホスホリボシルトランスフェラーゼ遺伝子（hisG）にフィードバック阻害への耐性を付与する変異を導入することにより、付与又は増強することができる（ロシア特許第2003677号及びロシア特許第2119536号）。
Ｌ－ヒスチジン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、E.
coli 24株（VKPM B-5945；RU2003677）、E. coli NRRL B-12116～B-12121（米国特許第4,388,405号）、E. coli H-9342（FERM BP-6675）及びH-9343（FERM BP-6676）（米国特許第6,344,347号）、E. coli H-9341（FERM BP-6674；EP1085087）、E. coli AI80/pFM201
（米国特許第6,258,554号）、Ｌ－ヒスチジン生合成系酵素をコードするDNAを保持するベクターを導入したE. coli FERM P-5038及びFERM P-5048（特開昭56-005099号）、アミノ
酸輸送の遺伝子を導入したE. coli株（EP1016710A）、スルファグアニジン、ＤＬ－１，
２，４－トリアゾール－３－アラニン、及びストレプトマイシンに対する耐性を付与したE. coli 80株（VKPM B-7270；ロシア特許第2119536号）等のエシェリヒア属に属する株が挙げられる。
＜Ｌ－システイン生産菌＞
Ｌ－システイン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－システイン生合成系酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、セリンアセチルトランスフェラーゼ（cysE）や３－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼ（serA）が挙げられる。セリンアセチルトランスフェラーゼ活性は、例えば、システインによるフィードバック阻害に耐性の変異型セリンアセチルトランスフェラーゼをコードする変異型cysE遺伝子を細菌に導入することにより増強できる。変異型セリンアセチルトランスフェラーゼは、例えば、特開平11-155571やUS2005-0112731Aに開示されている。また、３－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼ活性は、例えば、セリンによるフィードバック阻害に耐性の変異型３－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼをコードする変異型serA遺伝子を細菌に導入することにより増強できる。変異型３－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼは、例えば、米国特許第6,180,373号に開示されている。
また、Ｌ－システイン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－システインの生合成経路から分岐してＬ－システイン以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が低下するように細菌を改変する方法も挙げられる。そのような酵素としては、例えば、Ｌ－システインの分解に関与する酵素が挙げられる。Ｌ－システインの分解に関与する酵素としては、特に制限されないが、シスタチオニン－β－リアーゼ（metC）（特開平11-155571号、Chandra et. al., Biochemistry, 21 (1982) 3064-3069））、トリプトファナーゼ（tnaA）（特開2003-169668、Austin Newton et. al., J. Biol. Chem. 240 (1965) 1211-1218）、Ｏ－アセチルセリンスルフヒドリラーゼＢ（cysM）（特開2005-245311）、malY遺伝子産物（特開2005-245311）、Pantoea ananatisのd0191遺伝子産物（特開2009-232844）、システインデスルフヒドラーゼ（aecD）（特開2002-233384）が挙げられる。
また、Ｌ－システイン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－システイン排出系を増強することや硫酸塩／チオ硫酸塩輸送系を増強することも挙げられる。Ｌ－システイン排出系のタンパク質としては、ydeD遺伝子にコードされるタンパク質（特開2002-233384）、yfiK遺伝子にコードされるタンパク質（特開2004-49237）、emrAB、emrKY、yojIH、acrEF、bcr、およびcusAの各遺伝子にコードされる各タンパク質（特開2005-287333）、yeaS遺伝子にコードされるタンパク質（特開2010-187552）が挙げられる。硫酸塩／チオ硫酸塩輸送系のタンパク質としては、cysPTWAM遺伝子クラスターにコードされるタンパク質が挙げられる。
Ｌ－システイン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、フィードバック阻害耐性の変異型セリンアセチルトランスフェラーゼをコードする種々のcysEアレルで形質転換されたE. coli JM15（米国特許第6,218,168号, ロシア特許出願第2003121601号）、細胞に毒性の物質を排出するのに適したタンパク質をコードする過剰発現
遺伝子を有するE. coli W3110（米国特許第5,972,663号）、システインデスルフヒドラーゼ活性が低下したE. coli株（特開平11-155571）、cysB遺伝子によりコードされる正のシステインレギュロンの転写制御因子の活性が上昇したE. coli W3110（WO01/27307A1）が
挙げられる。
また、Ｌ－システイン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、Ｌ－システインによるフィードバック阻害が低減されたセリンアセチルトランスフェラーゼを保持することにより、細胞内のセリンアセチルトランスフェラーゼ活性が上昇したコリネ型細菌（特開2002-233384）が挙げられる。
＜Ｌ－セリン生産菌＞
Ｌ－セリン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－セリン生合成系酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる（特開平11-253187）。そのような酵素としては、特に制限されないが
、３－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼ（serA）、ホスホセリントランスアミナーゼ（serC）、ホスホセリンホスファターゼ（serB）が挙げられる（特開平11-253187）。３
－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼ活性は、例えば、セリンによるフィードバック阻害に耐性の変異型３－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼをコードする変異型serA遺伝子を細菌に導入することにより増強できる。変異型３－ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼは、例えば、米国特許第6,180,373号に開示されている。
Ｌ－セリン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、例えば、アザセリンまたはβ－（２－チエニル）－ＤＬ－アラニンに耐性を示し、かつＬ－セリン分解能を欠失したコリネ型細菌が挙げられる（特開平10-248588）。そのようなコリネ型細菌として、具体
的には、例えば、アザセリンに耐性を示し、かつＬ－セリン分解能を欠失したCorynebacterium glutamicum（Brevibacterium flavum）AJ13324（FERM P-16128）や、β－（２－チエニル）－ＤＬ－アラニンに耐性を示し、かつＬ－セリンの分解能を欠失したCorynebacterium glutamicum（Brevibacterium flavum）AJ13325（FERM P-16129）が挙げられる（特開平10-248588）。
＜Ｌ－メチオニン生産菌＞
Ｌ－メチオニン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、Ｌ－スレオニン要求株や、ノルロイシンに耐性を有する変異株が挙げられる（特開2000-139471）。また、Ｌ－
メチオニン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、Ｌ－メチオニンによるフィードバック阻害に対して耐性をもつ変異型ホモセリントランスサクシニラーゼを保持する株も挙げられる（特開2000-139471、US2009-0029424A）。なお、Ｌ－メチオニンはＬ－システインを中間体として生合成されるため、Ｌ－システインの生産能の向上によりＬ－メチオニンの生産能も向上させることができる（特開2000-139471、US2008-0311632A）。
Ｌ－メチオニン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、E.
coli AJ11539（NRRL B-12399）、E. coli AJ11540（NRRL B-12400）、E. coli AJ11541
（NRRL B-12401）、E. coli AJ11542（NRRL B-12402）（英国特許第2075055号）、Ｌ－メチオニンのアナログであるノルロイシン耐性を有するE. coli 218株（VKPM B-8125；ロシア特許第2209248号）や73株（VKPM B-8126；ロシア特許第2215782号）、E. coli AJ13425（FERM P-16808；特開2000-139471）が挙げられる。AJ13425株は、メチオニンリプレッサーを欠損し、細胞内のＳ－アデノシルメチオニンシンセターゼ活性が弱化し、細胞内のホモセリントランスサクシニラーゼ活性、シスタチオニンγ－シンターゼ活性、及びアスパルトキナーゼ－ホモセリンデヒドロゲナーゼII活性が増強された、E. coli W3110由来の
Ｌ－スレオニン要求株である。
＜Ｌ－ロイシン生産菌＞
Ｌ－ロイシン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－ロイシン生合成系酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、leuABCDオペロ
ンの遺伝子にコードされる酵素が挙げられる。また、酵素活性の増強には、例えば、Ｌ－ロイシンによるフィードバック阻害が解除されたイソプロピルマレートシンターゼをコードする変異leuA遺伝子（米国特許第6,403,342号）が好適に利用できる。
Ｌ－ロイシン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、ロイシン耐性のE. coli株（例えば、57株（VKPM B-7386；米国特許第6,124,121号））、β－
２－チエニルアラニン、３－ヒドロキシロイシン、４－アザロイシン、５，５，５－トリフルオロロイシン等のロイシンアナログに耐性のE. coli株（特公昭62-34397及び特開平8-70879）、WO96/06926に記載された遺伝子工学的方法で得られたE. coli株、E. coli H-9068（特開平8-70879）等のエシェリヒア属に属する株が挙げられる。
Ｌ－ロイシン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、２－チアゾールアラニン及びβ－ハイドロキシロイシンに耐性で、且つイソロイシン及びメチオニン要求性である、Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium lactofermentum）AJ3718（FERM P-2516）が挙げられる。
＜Ｌ－イソロイシン生産菌＞
Ｌ－イソロイシン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－イソロイシン生合成系酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、スレオ
ニンデアミナーゼやアセトヒドロキシ酸シンターゼが挙げられる（特開平2-458, EP0356739A, 米国特許第5,998,178号）。
Ｌ－イソロイシン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、６－ジメチルアミノプリンに耐性を有する変異株（特開平5-304969）、チアイソロイシン、イソロイシンヒドロキサメート等のイソロイシンアナログに耐性を有する変異株、イソロイシンアナログに加えてＤＬ－エチオニン及び／またはアルギニンヒドロキサメートに耐性を有する変異株（特開平5-130882号）等のエシェリヒア属細菌が挙げられる。
Ｌ－イソロイシン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、分岐鎖アミノ酸排出タンパク質をコードするbrnE遺伝子を増幅したコリネ型細菌（特開2001-169788）、Ｌ－
リジン生産菌とのプロトプラスト融合によりＬ－イソロイシン生産能を付与したコリネ型細菌（特開昭62-74293）、ホモセリンデヒドロゲナーゼを強化したコリネ型細菌（特開昭62-91193）、スレオニンハイドロキサメート耐性株（特開昭62-195293）、α-ケトマロン耐性株（特開昭61-15695）、メチルリジン耐性株（特開昭61-15696）、Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium flavum）AJ12149（FERM BP-759；米国特許第4,656,135号）が挙げられる。
＜Ｌ－バリン生産菌＞
Ｌ－バリン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－バリン生合成系酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、ilvGMEDAオペロンやilvBNCオペロンの遺伝子にコードされる酵素が挙げられる。ilvBNはアセトヒドロキシ酸
シンターゼを、ilvCはイソメロリダクターゼ（WO00/50624）を、それぞれコードする。なお、ilvGMEDAオペロンおよびilvBNCオペロンは、Ｌ－バリン、Ｌ－イソロイシン、および／またはＬ－ロイシンによる発現抑制（アテニュエーション）を受ける。よって、酵素活性の増強のためには、アテニュエーションに必要な領域を除去または改変し、生成するＬ－バリンによる発現抑制を解除するのが好ましい。また、ilvA遺伝子がコードするスレオニンデアミナーゼは、Ｌ－イソロイシン生合成系の律速段階であるＬ－スレオニンから２－ケト酪酸への脱アミノ化反応を触媒する酵素である。よって、Ｌ－バリン生産のためには、ilvA遺伝子が破壊等され、スレオニンデアミナーゼ活性が減少しているのが好ましい。
また、Ｌ－バリン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－バリンの生合成経路から分岐してＬ－バリン以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が低下するように細菌を改変する方法も挙げられる。そのような酵素としては、特に制限されないが、Ｌ－ロイシン合成に関与するスレオニンデヒドラターゼやＤ－パントテン酸合成に関与する酵素が挙げられる（WO00/50624）。
Ｌ－バリン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、ilvGMEDAオペロンを過剰発現するように改変されたE. coli株（米国特許第5,998,178号）が挙げられる。
また、Ｌ－バリン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、アミノアシルt-RNA
シンテターゼに変異を有する株（米国特許第5,658,766号）も挙げられる。そのような株
としては、例えば、イソロイシンtRNAシンテターゼをコードするileS遺伝子に変異を有するE. coli VL1970が挙げられる。E. coli VL1970は、1988年6月24日、ルシアン・ナショ
ナル・コレクション・オブ・インダストリアル・マイクロオルガニズムズ（VKPM）（FGUP
GosNII Genetika, 1 Dorozhny proezd., 1 Moscow 117545, Russia）に、受託番号VKPM
B-4411で寄託されている。また、Ｌ－バリン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、生育にリポ酸を要求する、および／または、H+-ATPaseを欠失している変異株（WO96/06926）も挙げられる。
また、Ｌ－バリン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、アミノ酸アナログなどへの耐性を有する株も挙げられる。そのような株としては、例えば、Ｌ－イソロイシンおよびＬ－メチオニン要求性、ならびにＤ－リボース、プリンリボヌクレオシド、またはピリミジンリボヌクレオシドに耐性を有し、且つＬ－バリン生産能を有するコリネ型細菌株（FERM P-1841、FERM P-29）（特公昭53-025034）、ポリケトイド類に耐性を有するコ
リネ型細菌株（FERM P-1763、FERM P-1764）（特公平06-065314）、酢酸を唯一の炭素源
とする培地でＬ－バリン耐性を示し、且つグルコースを唯一の炭素源とする培地でピルビン酸アナログ（フルオロピルビン酸等）に感受性を有するコリネ型細菌株（FERM BP-3006、FERM BP-3007）（特許3006929号）が挙げられる。
＜Ｌ－アラニン生産菌＞
Ｌ－アラニン生産菌又はそれを誘導するための親株としては、H+-ATPaseを欠失してい
るコリネ型細菌（Appl Microbiol Biotechnol. 2001 Nov;57(4):534-40）やアスパラギン酸β－デカルボキシラーゼ活性が増強されたコリネ型細菌（特開平07-163383）が挙げら
れる。
＜Ｌ－トリプトファン生産菌、Ｌ－フェニルアラニン生産菌、Ｌ－チロシン生産菌＞
Ｌ－トリプトファン生産能、Ｌ－フェニルアラニン生産能、および／またはＬ－チロシン生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、Ｌ－トリプトファン、Ｌ－フェニルアラニン、および／またはＬ－チロシンの生合成系酵素から選択される１種またはそれ以上の酵素の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。
これらの芳香族アミノ酸に共通する生合成系酵素としては、特に制限されないが、３－デオキシ－Ｄ－アラビノヘプツロン酸－７－リン酸シンターゼ（aroG）、３－デヒドロキネートシンターゼ（aroB）、シキミ酸デヒドロゲナーゼ（aroE）、シキミ酸キナーゼ（aroL）、５－エノール酸ピルビルシキミ酸３－リン酸シンターゼ（aroA）、コリスミ酸シンターゼ（aroC）が挙げられる（EP763127B）。これらの酵素をコードする遺伝子の発現は
チロシンリプレッサー（tyrR）によって制御されており、tyrR遺伝子を欠損させることによって、これらの酵素の活性を増強してもよい（EP763127B）。
Ｌ－トリプトファン生合成系酵素としては、特に制限されないが、アントラニル酸シンターゼ（trpE）、トリプトファンシンターゼ（trpAB）、及びホスホグリセリン酸デヒド
ロゲナーゼ（serA）が挙げられる。例えば、トリプトファンオペロンを含むＤＮＡを導入することにより、Ｌ－トリプトファン生産能を付与又は増強できる。トリプトファンシンターゼは、それぞれtrpA及びtrpB遺伝子によりコードされるα及びβサブユニットからなる。アントラニル酸シンターゼはＬ－トリプトファンによるフィードバック阻害を受けるので、同酵素の活性を増強するには、フィードバック阻害を解除する変異を導入した同酵素をコードする遺伝子を利用してもよい。ホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼはＬ－セリンによるフィードバック阻害を受けるので、同酵素の活性を増強するには、フィードバック阻害を解除する変異を導入した同酵素をコードする遺伝子を利用してもよい。さらに、マレートシンターゼ（aceB）、イソクエン酸リアーゼ（aceA）、およびイソクエン酸デヒドロゲナーゼキナーゼ／フォスファターゼ（aceK）からなるオペロン（aceオペロン）
の発現を増大させることによりＬ－トリプトファン生産能を付与又は増強してもよい（WO2005/103275）。
Ｌ－フェニルアラニン生合成系酵素としては、特に制限されないが、コリスミ酸ムター
ゼ及びプレフェン酸デヒドラターゼが挙げられる。コリスミ酸ムターゼ及びプレフェン酸デヒドラターゼは、２機能酵素としてpheA遺伝子によってコードされている。コリスミ酸ムターゼ－プレフェン酸デヒドラターゼはＬ－フェニルアラニンによるフィードバック阻害を受けるので、同酵素の活性を増強するには、フィードバック阻害を解除する変異を導入した同酵素をコードする遺伝子を利用してもよい。
Ｌ－チロシン生合成系酵素としては、特に制限されないが、コリスミ酸ムターゼ及びプレフェン酸デヒドロゲナーゼが挙げられる。コリスミ酸ムターゼ及びプレフェン酸デヒドロゲナーゼは、２機能酵素としてtyrA遺伝子によってコードされている。コリスミ酸ムターゼ－プレフェン酸デヒドロゲナーゼはＬ－チロシンによるフィードバック阻害を受けるので、同酵素の活性を増強するには、フィードバック阻害を解除する変異を導入した同酵素をコードする遺伝子を利用してもよい。
Ｌ－トリプトファン、Ｌ－フェニルアラニン、および／またはＬ－チロシンの生産菌は、目的の芳香族アミノ酸以外の芳香族アミノ酸の生合成が低下するように改変されていてもよい。また、Ｌ－トリプトファン、Ｌ－フェニルアラニン、および／またはＬ－チロシンの生産菌は、副生物の取り込み系が増強されるように改変されていてもよい。副生物としては、目的の芳香族アミノ酸以外の芳香族アミノ酸が挙げられる。副生物の取り込み系をコードする遺伝子としては、例えば、Ｌ－トリプトファンの取り込み系をコードする遺伝子であるtnaBやmtr、Ｌ－フェニルアラニンの取り込み系をコードする遺伝子であるpheP、Ｌ－チロシンの取り込み系をコードする遺伝子であるtyrPが挙げられる（EP1484410）。
Ｌ－トリプトファン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、部分的に不活化されたトリプトファニル-tRNAシンテターゼをコードする変異型trpS遺
伝子を保持するE. coli JP4735/pMU3028（DSM10122）及びJP6015/pMU91（DSM10123）（米国特許第5,756,345号）、トリプトファンによるフィードバック阻害を受けないアントラ
ニル酸シンターゼをコードするtrpEアレルを有するE. coli SV164、セリンによるフィー
ドバック阻害を受けないホスホグリセリン酸デヒドロゲナーゼをコードするserAアレル及びトリプトファンによるフィードバック阻害を受けないアントラニル酸シンターゼをコードするtrpEアレルを有するE. coli SV164 (pGH5)（米国特許第6,180,373号）、トリプト
ファンによるフィードバック阻害を受けないアントラニル酸シンターゼをコードするtrpEアレルを含むトリプトファンオペロンが導入された株（特開昭57-71397, 特開昭62-244382, 米国特許第4,371,614号）、トリプトファナーゼが欠損したE. coli AGX17 (pGX44)（NRRL B-12263）及びAGX6(pGX50)aroP（NRRL B-12264）（米国特許第4,371,614号）、ホス
ホエノールピルビン酸生産能が増大したE. coli AGX17/pGX50,pACKG4-pps（WO9708333,
米国特許第6,319,696号）、yedA遺伝子またはyddG遺伝子にコードされるタンパク質の活
性が増大したエシェリヒア属に属する株（US2003-0148473A1及びUS2003-0157667A1）が挙げられる。
Ｌ－トリプトファン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、サルファグアニジンに耐性のCorynebacterium glutamicum AJ12118（FERM BP-478）（特許第1681002号）、トリプトファンオペロンが導入された株（特開昭63-240794）、コリネ型細菌由来のシキ
ミ酸キナーゼをコードする遺伝子が導入された株（特許第1994749号）が挙げられる。
Ｌ－フェニルアラニン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、コリスミ酸ムターゼ－プレフェン酸デヒドロゲナーゼ及びチロシンリプレッサーを欠損したE. coli AJ12739（tyrA::Tn10, tyrR）（VKPM B-8197；WO03/044191）、フィード
バック阻害が解除されたコリスミ酸ムターゼ－プレフェン酸デヒドラターゼをコードする変異型pheA34遺伝子を保持するE. coli HW1089（ATCC 55371；米国特許第5,354,672号）
、E. coli MWEC101-b（KR8903681）、E. coli NRRL B-12141、NRRL B-12145、NRRL B-12146、NRRL B-12147（米国特許第4,407,952号）が挙げられる。また、Ｌ－フェニルアラニ
ン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、フィードバック阻害が解除されたコリスミ酸ムターゼ－プレフェン酸デヒドラターゼをコードする遺伝子を保持するE. coli K-12 ＜W3110 (tyrA)/pPHAB＞（FERM BP-3566）、E. coli K-12 ＜W3110 (tyrA)/pPHAD＞（FERM BP-12659）、E. coli K-12 ＜W3110 (tyrA)/pPHATerm＞（FERM BP-12662）、E. coli K-12 AJ 12604 ＜W3110 (tyrA)/pBR-aroG4, pACMAB＞（FERM BP-3579）も挙げられる（EP488424B1）。また、Ｌ－フェニルアラニン生産菌又はそれを誘導するための親株として、具体的には、例えば、yedA遺伝子またはyddG遺伝子にコードされるタンパク質の活性が増大したエシェリヒア属に属する株も挙げられる（US2003-0148473A,
US2003-0157667A, WO03/044192）。
Ｌ－フェニルアラニン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼまたはピルビン酸キナーゼ活性が低下した、Corynebacterium glutamicum BPS-13株（FERM BP-1777）、Corynebacterium glutamicum K77（FERM BP-2062）、Corynebacterium glutamicum K78（FERM BP-2063；EP331145A, 特開平02-303495
）、チロシン要求性株（特開平05-049489）が挙げられる。
Ｌ－チロシン生産能を有するコリネ型細菌としては、例えば、Corynebacterium glutamicum AJ11655（FERM P-5836；特公平2-6517）、Corynebacterium glutamicum（Brevibacterium lactofermentum）AJ12081（FERM P-7249；特開昭60-70093）が挙げられる。
また、Ｌ－アミノ酸生産能を付与又は増強する方法としては、例えば、細菌の細胞からＬ－アミノ酸を排出する活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。Ｌ－アミノ酸を排出する活性は、例えば、Ｌ－アミノ酸を排出するタンパク質をコードする遺伝子の発現を上昇させることにより、増大させることができる。各種アミノ酸を排出するタンパク質をコードする遺伝子としては、例えば、b2682遺伝子（ygaZ）、b2683遺伝子（ygaH）、b1242遺伝子（ychE）、b3434遺伝子（yhgN）が挙げられる（特開2002-300874）。
また、Ｌ－アミノ酸生産能を付与又は増強する方法としては、例えば、糖代謝に関与するタンパク質やエネルギー代謝に関与するタンパク質の活性が増大するように細菌を改変する方法が挙げられる。
糖代謝に関与するタンパク質としては、糖の取り込みに関与するタンパク質や解糖系酵素が挙げられる。糖代謝に関与するタンパク質をコードする遺伝子としては、グルコース６－リン酸イソメラーゼ遺伝子（pgi；WO01/02542）、ピルビン酸カルボキシラーゼ遺伝
子（pyc；WO99/18228, EP1092776A）、ホスホグルコムターゼ遺伝子（pgm；WO03/04598）、フルクトース二リン酸アルドラーゼ遺伝子（pfkB, fbp；WO03/04664）、トランスアル
ドラーゼ遺伝子（talB；WO03/008611）、フマラーゼ遺伝子（fum；WO01/02545）、non-PTSスクロース取り込み遺伝子（csc；EP1149911A）、スクロース資化性遺伝子（scrABオペ
ロン；米国特許第7,179,623号）が挙げられる。
エネルギー代謝に関与するタンパク質をコードする遺伝子としては、トランスヒドロゲナーゼ遺伝子（pntAB；米国特許第5,830,716号）、チトクロムbo型オキシダーゼ（cytochromoe bo type oxidase）遺伝子（cyoB；EP1070376A）が挙げられる。
また、Ｌ－アミノ酸等の有用物質の生産能を付与又は増強するための方法としては、例えば、ホスホケトラーゼの活性が増大するように細菌を改変する方法も挙げられる（WO2006/016705）。すなわち、本発明の細菌は、ホスホケトラーゼの活性が増大するように改
変されていてよい。同方法は、特に、Ｌ－グルタミン酸等のグルタミン酸系Ｌ－アミノ酸
の生産能を付与又は増強するために有効であり得る。ホスホケトラーゼとしては、Ｄ－キシルロース－５－リン酸－ホスホケトラーゼやフルクトース－６－リン酸ホスホケトラーゼが挙げられる。Ｄ－キシルロース－５－リン酸－ホスホケトラーゼ活性及びフルクトース－６－リン酸ホスホケトラーゼ活性はいずれか一方を増強してもよいし、両方を増強してもよい。
Ｄ－キシルロース－５－リン酸－ホスホケトラーゼ活性とは、リン酸を消費して、キシルロース－５－リン酸をグリセルアルデヒド－３－リン酸とアセチルリン酸に変換し、一分子のH2Oを放出する活性を意味する。この活性は、Goldberg, M.らの文献（Methods Enzymol., 9,515-520 (1966)）またはL. Meileの文献（J.Bacteriol. (2001) 183; 2929-2936）に記載の方法によって測定することができる。Ｄ－キシルロース－５－リン酸ホスホ
ケトラーゼとしては、アセトバクター属、ビフィドバクテリウム属、ラクトバチルス属、チオバチルス属、ストレプトコッカス属、メチロコッカス属、ブチリビブリオ属、またはフィブロバクター属に属する細菌や、カンジダ属、ロドトルラ属、ロドスポリジウム属、ピキア属、ヤロウイア属、ハンセヌラ属、クルイベロミセス属、サッカロミセス属、トリコスポロン属、またはウィンゲア属に属する酵母のＤ－キシルロース－５－リン酸ホスホケトラーゼが挙げられる。Ｄ－キシルロース－５－リン酸ホスホケトラーゼおよびそれをコードする遺伝子の具体例は、WO2006/016705に開示されている。
また、フルクトース－６－リン酸ホスホケトラーゼ活性とは、リン酸を消費して、フルクトース６－リン酸をエリスロース－４－リン酸とアセチルリン酸に変換し、一分子のH2Oを放出する活性を意味する。この活性は、Racker, E.の文献（Methods Enzymol., 5, 276-280 (1962)）またはL. Meileの文献（J.Bacteriol. (2001) 183; 2929-2936）に記載の方法によって測定することができる。フルクトース－６－リン酸ホスホケトラーゼとしては、アセトバクター属、ビフィドバクテリウム属、クロロビウム属、ブルセラ属、メチロコッカス属、またはガードネレラ属に属する細菌や、ロドトルラ属、カンジダ属、サッカロミセス属等に属する酵母のフルクトース－６－リン酸ホスホケトラーゼが挙げられる。フルクトース－６－リン酸ホスホケトラーゼおよびそれをコードする遺伝子の具体例は、WO2006/016705に開示されている。
両ホスホケトラーゼ活性が、単一の酵素（Ｄ－キシルロース－５－リン酸／フルクトース－６－リン酸ホスホケトラーゼ）によって保持される場合もありうる。
ビフィドバクテリウム・ロンガム（Bifidobacterium longum）JCM1217のホスホケトラ
ーゼ遺伝子（xfp遺伝子）の塩基配列、及び同遺伝子がコードするホスホケトラーゼ（Xfpタンパク質）のアミノ酸配列を、それぞれ配列番号１３および１４に示す。
Ｌ－アミノ酸生産菌の育種に使用される遺伝子およびタンパク質は、それぞれ、例えば、上記例示した遺伝子およびタンパク質等の公知の遺伝子およびタンパク質の塩基配列およびアミノ酸配列を有していてよい。また、Ｌ－アミノ酸生産菌の育種に使用される遺伝子およびタンパク質は、それぞれ、上記例示した遺伝子およびタンパク質等の公知の遺伝子およびタンパク質の保存的バリアントであってもよい。具体的には、例えば、Ｌ－アミノ酸生産菌の育種に使用される遺伝子は、元の機能が維持されている限り、公知のタンパク質のアミノ酸配列において、１若しくは数個の位置での１又は数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入又は付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質をコードする遺伝子であってもよい。遺伝子およびタンパク質の保存的バリアントについては、非PTSフルクトース取
り込み担体およびフルクトキナーゼ、並びにそれらをコードする遺伝子の保存的バリアントに関する記載を準用できる。
＜１－２＞非PTSフルクトース取り込み担体の活性およびフルクトキナーゼの活性の増強
本発明の細菌は、非PTSフルクトース取り込み担体の活性およびフルクトキナーゼの活
性が増大するように改変されている。本発明の細菌は、Ｌ－アミノ酸生産能を有する細菌を、非PTSフルクトース取り込み担体の活性およびフルクトキナーゼの活性が増大するよ
うに改変することにより取得できる。また、本発明の細菌は、非PTSフルクトース取り込
み担体の活性およびフルクトキナーゼの活性が増大するように細菌を改変した後に、Ｌ－アミノ酸生産能を付与または増強することによっても取得できる。なお、本発明の細菌は、非PTSフルクトース取り込み担体の活性およびフルクトキナーゼの活性が増大するよう
に改変されたことにより、Ｌ－アミノ酸生産能を獲得したものであってもよい。本発明の細菌は、非PTSフルクトース取り込み担体の活性およびフルクトキナーゼの活性が増大す
るように改変されていることに加えて、例えば、上記のようなＬ－アミノ酸生産菌が有する性質を適宜有していてよい。例えば、本発明の細菌は、ホスホケトラーゼの活性が増大するように改変されていてよい。例えば、特に、Pantoea属細菌について、非PTSフルクトース取り込み担体の活性およびフルクトキナーゼの活性の増強と、ホスホケトラーゼの活性の増強（例えば、xfp遺伝子の導入）とを組み合わせることにより、Ｌ－グルタミン酸
生産を相乗的に向上させることができる。本発明の細菌を構築するための改変は、任意の順番で行うことができる。
非PTSフルクトース取り込み担体の活性およびフルクトキナーゼの活性が増大するよう
に細菌を改変することによって、細菌のＬ－アミノ酸生産能を向上させることができ、すなわち同細菌によるＬ－アミノ酸生産を増大させることができる。特に、非PTSフルクト
ース取り込み担体の活性およびフルクトキナーゼの活性が増大するように細菌を改変することによって、フルクトースを炭素源として用いる条件における細菌のＬ－アミノ酸生産能を向上させることができ、すなわち同細菌によるＬ－アミノ酸生産を増大させることができる。
以下に、非PTSフルクトース取り込み担体およびフルクトキナーゼ、並びにそれらをコ
ードする遺伝子について説明する。
「非PTSフルクトース取り込み担体」とは、非PTSフルクトース取り込み活性を有するタンパク質をいう。「非PTSフルクトース取り込み活性」とは、Phosphotransferase System（PTS）を介さずにフルクトースを細胞外から細胞内に取り込む活性をいう。「Phosphotransferase System（PTS）」とは、糖の取り込み系であって、糖をリン酸化しながら取り
込むものをいう。例えば、フルクトースは、PTSによりフルクトース－１－リン酸として
取り込まれる。すなわち、「非PTSフルクトース取り込み活性」とは、具体的には、フル
クトースをリン酸化せずに細胞外から細胞内に取り込む活性であってよく、より具体的には、フルクトースの１位をリン酸化せずに細胞外から細胞内に取り込む活性であってよい。また、非PTSフルクトース取り込み担体をコードする遺伝子を「非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子」ともいう。
非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子としては、fucP遺伝子が挙げられる。fucP遺伝
子にコードされるタンパク質（非PTSフルクトース取り込み担体）を、FucPタンパク質と
もいう。FucPタンパク質は、フコース取り込み担体であるL-fucose permeaseとして知ら
れているが、フルクトース取り込み活性も有する。非PTSフルクトース取り込み担体の活
性は、例えば、非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子の発現を増強することにより、増
強することができる。すなわち、「非PTSフルクトース取り込み担体の活性が増強される
」とは、例えば、非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子の発現が増強されることを意味
してもよい。「非PTSフルクトース取り込み担体の活性が増強される」とは、具体的には
、例えば、fucP遺伝子の発現が増強されることを意味してもよい。
「フルクトキナーゼ」とは、フルクトキナーゼ活性を有するタンパク質をいう。「フル
クトキナーゼ活性」とは、フルクトースの６位をリン酸化してフルクトース－６－リン酸を生成する反応を触媒する活性をいう（EC 2.7.1.4）。フルクトキナーゼによるフルクトースのリン酸化には、ＡＴＰ等のリン酸基供与体を利用できる。また、フルクトキナーゼをコードする遺伝子を「フルクトキナーゼ遺伝子」ともいう。
フルクトキナーゼ遺伝子としては、frk遺伝子が挙げられる。frk遺伝子は、mak遺伝子
、scrK遺伝子、sacK遺伝子、またはcscK遺伝子等とも呼ばれる場合がある。frk遺伝子に
コードされるタンパク質（フルクトキナーゼ）を、Frkタンパク質ともいう。フルクトキ
ナーゼの活性は、例えば、フルクトキナーゼ遺伝子の発現を増強することにより、増強することができる。すなわち、「フルクトキナーゼの活性が増強される」とは、例えば、フルクトキナーゼ遺伝子の発現が増強されることを意味してもよい。「フルクトキナーゼの活性が増強される」とは、具体的には、例えば、frk遺伝子の発現が増強されることを意
味してもよい。
非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子やフルクトキナーゼ遺伝子としては、腸内細菌
科に属する細菌、コリネ型細菌、乳酸菌等の各種生物の遺伝子が挙げられる。各種生物由来の非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子やフルクトキナーゼ遺伝子の塩基配列および
それらにコードされる非PTSフルクトース取り込み担体やフルクトキナーゼのアミノ酸配
列は、例えば、ＮＣＢＩ等の公開データベースから取得できる。fucP遺伝子として、具体的には、例えば、Corynebacterium ammoniagenesのfucP遺伝子やPantoea ananatisのfucP遺伝子が挙げられる。C. ammoniagenes ATCC 6872のfucP遺伝子の塩基配列、及び同遺伝
子がコードするタンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ配列番号２６および２７に示す。P. ananatis AJ13355のfucP遺伝子の塩基配列、及び同遺伝子がコードするタンパク質の
アミノ酸配列を、それぞれ配列番号２８および２９に示す。frk遺伝子として、具体的に
は、例えば、Bifidobacterium longumのfrk遺伝子やPantoea ananatisのfrk（mak）遺伝
子およびfrk（scrK）遺伝子が挙げられる。B. longum JCM1217のfrk遺伝子の塩基配列、
及び同遺伝子がコードするタンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ配列番号３０および３１に示す。P. ananatis AJ13355のfrk（mak）遺伝子の塩基配列、及び同遺伝子がコード
するタンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ配列番号３２および３３に示す。P. ananatis AJ13355のfrk（scrK）遺伝子の塩基配列、及び同遺伝子がコードするタンパク質のアミノ酸配列を、それぞれ配列番号３４および３５に示す。すなわち、非PTSフルクトース取
り込み担体遺伝子は、例えば、上記例示した非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子の塩
基配列（例えば配列番号２６または２８に示す塩基配列）を有する遺伝子であってよい。また、非PTSフルクトース取り込み担体は、例えば、上記例示した非PTSフルクトース取り込み担体のアミノ酸配列（例えば配列番号２７または２９に示すアミノ酸配列）を有するタンパク質であってよい。また、フルクトキナーゼ遺伝子は、例えば、上記例示したフルクトキナーゼ遺伝子の塩基配列（例えば配列番号３０、３２、または３４に示す塩基配列）を有する遺伝子であってよい。また、フルクトキナーゼは、例えば、上記例示したフルクトキナーゼのアミノ酸配列（例えば配列番号３１、３３、または３５に示すアミノ酸配列）を有するタンパク質であってよい。なお、「（アミノ酸または塩基）配列を有する」という表現は、当該「（アミノ酸または塩基）配列を含む」場合および当該「（アミノ酸または塩基）配列からなる」場合を包含する。
非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子は、元の機能が維持されている限り、上記例示
した非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子（例えば配列番号２６または２８に示す塩基
配列を有する遺伝子）のバリアントであってもよい。同様に、非PTSフルクトース取り込
み担体は、元の機能が維持されている限り、上記例示した非PTSフルクトース取り込み担
体（例えば配列番号２７または２９に示すアミノ酸配列を有するタンパク質）のバリアントであってもよい。また、フルクトキナーゼ遺伝子は、元の機能が維持されている限り、上記例示したフルクトキナーゼ遺伝子（例えば配列番号３０、３２、または３４に示す塩
基配列を有する遺伝子）のバリアントであってもよい。同様に、フルクトキナーゼは、元の機能が維持されている限り、上記例示したフルクトキナーゼ（例えば配列番号３１、３３、または３５に示すアミノ酸配列を有するタンパク質）のバリアントであってもよい。なお、そのような元の機能が維持されたバリアントを「保存的バリアント」という場合がある。「fucP遺伝子」および「frk遺伝子」という用語は、それぞれ、上記例示したfucP
遺伝子およびfrk遺伝子に加えて、それらの保存的バリアントを包含するものとする。同
様に、「FucPタンパク質」および「Frkタンパク質」という用語は、それぞれ、上記例示
したFucPタンパク質およびFrkタンパク質に加えて、それらの保存的バリアントを包含す
るものとする。保存的バリアントとしては、例えば、上記例示した非PTSフルクトース取
り込み担体遺伝子やフルクトキナーゼ遺伝子および非PTSフルクトース取り込み担体やフ
ルクトキナーゼのホモログや人為的な改変体が挙げられる。
「元の機能が維持されている」とは、遺伝子またはタンパク質のバリアントが、元の遺伝子またはタンパク質の機能（活性や性質）に対応する機能（活性や性質）を有することをいう。遺伝子についての「元の機能が維持されている」とは、遺伝子のバリアントが、元の機能が維持されたタンパク質をコードすることをいう。すなわち、非PTSフルクトー
ス取り込み担体遺伝子についての「元の機能が維持されている」とは、遺伝子のバリアントが非PTSフルクトース取り込み活性を有するタンパク質をコードすることをいう。また
、非PTSフルクトース取り込み担体についての「元の機能が維持されている」とは、タン
パク質のバリアントが非PTSフルクトース取り込み活性を有することをいう。また、フル
クトキナーゼ遺伝子についての「元の機能が維持されている」とは、遺伝子のバリアントがフルクトキナーゼ活性を有するタンパク質をコードすることをいう。また、フルクトキナーゼについての「元の機能が維持されている」とは、タンパク質のバリアントがフルクトキナーゼ活性を有することをいう。
タンパク質の非PTSフルクトース取り込み活性は、同タンパク質を発現する菌体をフル
クトースとインキュベートし、同タンパク質依存的な菌体内へのフルクトースの取り込みを測定することにより、測定できる。
タンパク質のフルクトキナーゼ活性は、同タンパク質と基質（フルクトース）をＡＴＰ存在下でインキュベートし、同タンパク質および基質依存的なフルクトース－６－リン酸の生成を測定することにより、測定できる。
以下、保存的バリアントについて例示する。
非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子もしくはフルクトキナーゼ遺伝子のホモログま
たは非PTSフルクトース取り込み担体もしくはフルクトキナーゼのホモログは、例えば、
上記例示した非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子もしくはフルクトキナーゼ遺伝子の
塩基配列または上記例示した非PTSフルクトース取り込み担体もしくはフルクトキナーゼ
のアミノ酸配列を問い合わせ配列として用いたBLAST検索やFASTA検索によって公開データベースから容易に取得することができる。また、非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子
またはフルクトキナーゼ遺伝子のホモログは、例えば、各種生物の染色体を鋳型にして、これら公知の非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子またはフルクトキナーゼ遺伝子の塩
基配列に基づいて作製したオリゴヌクレオチドをプライマーとして用いたPCRにより取得
することができる。
非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子またはフルクトキナーゼ遺伝子は、元の機能が
維持されている限り、上記アミノ酸配列（例えば、非PTSフルクトース取り込み担体につ
いて配列番号２７または２９に示すアミノ酸配列、フルクトキナーゼについて配列番号３１、３３、または３５に示すアミノ酸配列）において、１若しくは数個の位置での１又は
数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入、および／または付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質をコードする遺伝子であってもよい。例えば、コードされるタンパク質は、そのＮ末端および／またはＣ末端が、延長または短縮されていてもよい。なお上記「１又は数個」とは、アミノ酸残基のタンパク質の立体構造における位置や種類によっても異なるが、具体的には、例えば、１～５０個、１～４０個、１～３０個、好ましくは１～２０個、より好ましくは１～１０個、さらに好ましくは１～５個、特に好ましくは１～３個を意味する。
上記の１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入、および／または付加は、タンパク質の機能が正常に維持される保存的変異である。保存的変異の代表的なものは、保存的置換である。保存的置換とは、置換部位が芳香族アミノ酸である場合には、Phe、Trp、Tyr間で、置換部位が疎水性アミノ酸である場合には、Leu、Ile、Val間で、極性アミノ酸である場合には、Gln、Asn間で、塩基性アミノ酸である場合には、Lys、Arg、His間で、酸
性アミノ酸である場合には、Asp、Glu間で、ヒドロキシル基を持つアミノ酸である場合には、Ser、Thr間でお互いに置換する変異である。保存的置換とみなされる置換としては、具体的には、AlaからSer又はThrへの置換、ArgからGln、His又はLysへの置換、AsnからGlu、Gln、Lys、His又はAspへの置換、AspからAsn、Glu又はGlnへの置換、CysからSer又はAlaへの置換、GlnからAsn、Glu、Lys、His、Asp又はArgへの置換、GluからGly、Asn、Gln
、Lys又はAspへの置換、GlyからProへの置換、HisからAsn、Lys、Gln、Arg又はTyrへの置換、IleからLeu、Met、Val又はPheへの置換、LeuからIle、Met、Val又はPheへの置換、LysからAsn、Glu、Gln、His又はArgへの置換、MetからIle、Leu、Val又はPheへの置換、PheからTrp、Tyr、Met、Ile又はLeuへの置換、SerからThr又はAlaへの置換、ThrからSer又はAlaへの置換、TrpからPhe又はTyrへの置換、TyrからHis、Phe又はTrpへの置換、及び、ValからMet、Ile又はLeuへの置換が挙げられる。また、上記のようなアミノ酸の置換、欠失、挿入、付加、または逆位等には、遺伝子が由来する生物の個体差、種の違いに基づく場合などの天然に生じる変異（mutant又はvariant）によって生じるものも含まれる。
また、非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子またはフルクトキナーゼ遺伝子は、元の
機能が維持されている限り、上記アミノ酸配列全体に対して、例えば、50%以上、65%以上、80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、さらに好ましくは97%以上、特に好ましくは99%以上の相同性を有するアミノ酸配列を有するタンパク質をコードする遺
伝子であってもよい。尚、本明細書において、「相同性」（homology）は、「同一性」（identity）を意味する。
また、非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子またはフルクトキナーゼ遺伝子は、元の
機能が維持されている限り、上記塩基配列（例えば、非PTSフルクトース取り込み担体遺
伝子について配列番号２６または２８に示す塩基配列、フルクトキナーゼ遺伝子について配列番号３０、３２、または３４に示す塩基配列）から調製され得るプローブ、例えば上記塩基配列の全体または一部に対する相補配列、とストリンジェントな条件下でハイブリダイズするDNAであってもよい。「ストリンジェントな条件」とは、いわゆる特異的なハ
イブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいう。一例を示せば、相同性が高いDNA同士、例えば、50%以上、65%以上、80%以上、好ましくは90%以上、
より好ましくは95%以上、さらに好ましくは97%以上、特に好ましくは99%以上の相同性を
有するDNA同士がハイブリダイズし、それより相同性が低いDNA同士がハイブリダイズしない条件、あるいは通常のサザンハイブリダイゼーションの洗いの条件である60℃、1×SSC、0.1% SDS、好ましくは60℃、0.1×SSC、0.1% SDS、より好ましくは68℃、0.1×SSC、0.1% SDSに相当する塩濃度および温度で、１回、好ましくは２～３回洗浄する条件を挙げることができる。
上述の通り、上記ハイブリダイゼーションに用いるプローブは、遺伝子の相補配列の一
部であってもよい。そのようなプローブは、公知の遺伝子配列に基づいて作製したオリゴヌクレオチドをプライマーとし、上述の遺伝子を含むDNA断片を鋳型とするPCRによって作製することができる。例えば、プローブとしては、300 bp程度の長さのDNA断片を用いる
ことができる。プローブとして300 bp程度の長さのDNA断片を用いる場合には、ハイブリ
ダイゼーションの洗いの条件としては、50℃、2×SSC、0.1% SDSが挙げられる。
また、宿主によってコドンの縮重性が異なるので、非PTSフルクトース取り込み担体遺
伝子またはフルクトキナーゼ遺伝子は、任意のコドンをそれと等価のコドンに置換したものであってもよい。すなわち、非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子またはフルクトキ
ナーゼ遺伝子は、遺伝コードの縮重による上記例示した非PTSフルクトース取り込み担体
遺伝子またはフルクトキナーゼ遺伝子のバリアントであってもよい。例えば、非PTSフル
クトース取り込み担体遺伝子またはフルクトキナーゼ遺伝子は、使用する宿主のコドン使用頻度に応じて最適なコドンを有するように改変されてよい。
２つの配列間の配列同一性のパーセンテージは、例えば、数学的アルゴリズムを用いて決定できる。このような数学的アルゴリズムの限定されない例としては、Myers and Miller (1988) CABIOS 4:11-17のアルゴリズム、Smith et al (1981) Adv. Appl. Math. 2:482の局所ホモロジーアルゴリズム、Needleman and Wunsch (1970) J. Mol. Biol. 48:443-453のホモロジーアライメントアルゴリズム、Pearson and Lipman (1988) Proc. Natl. Acad. Sci. 85:2444-2448の類似性を検索する方法、Karlin and Altschul (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:5873-5877に記載されているような、改良された、Karlin and Altschul (1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87:2264のアルゴリズムが挙げられる。
これらの数学的アルゴリズムに基づくプログラムを利用して、配列同一性を決定するための配列比較（アラインメント）を行うことができる。プログラムは、適宜、コンピュータにより実行することができる。このようなプログラムとしては、特に限定されないが、PC/GeneプログラムのCLUSTAL（Intelligenetics, Mountain View, Calif.から入手可能）、ALIGNプログラム（Version 2.0）、並びにWisconsin Genetics Software Package, Version 8（Genetics Computer Group (GCG), 575 Science Drive, Madison, Wis., USAから入手可能）のGAP、BESTFIT、BLAST、FASTA、及びTFASTAが挙げられる。これらのプログラムを用いたアライメントは、例えば、初期パラメーターを用いて行うことができる。CLUSTALプログラムについては、Higgins et al. (1988) Gene 73:237-244、Higgins et al. (1989) CABIOS 5:151-153、Corpet et al. (1988) Nucleic Acids Res. 16:10881-90、Huang et al. (1992) CABIOS 8:155-65、及びPearson et al. (1994) Meth. Mol. Biol. 24:307-331によく記載されている。
対象のタンパク質をコードするヌクレオチド配列と相同性があるヌクレオチド配列を得るために、具体的には、例えば、BLASTヌクレオチド検索を、BLASTNプログラム、スコア
＝100、ワード長＝12にて行うことができる。対象のタンパク質と相同性があるアミノ酸
配列を得るために、具体的には、例えば、BLASTタンパク質検索を、BLASTXプログラム、
スコア＝50、ワード長＝3にて行うことができる。BLASTヌクレオチド検索やBLASTタンパ
ク質検索については、https://www.ncbi.nlm.nih.govを参照されたい。また、比較を目的
としてギャップを加えたアライメントを得るために、Gapped BLAST（BLAST 2.0）を利用
できる。また、PSI-BLAST（BLAST 2.0）を、配列間の離間した関係を検出する反復検索を行うのに利用できる。Gapped BLASTおよびPSI-BLASTについては、Altschul et al. (1997) Nucleic Acids Res. 25:3389を参照されたい。BLAST、Gapped BLAST、またはPSI-BLASTを利用する場合、例えば、各プログラム（例えば、ヌクレオチド配列に対してBLASTN、アミノ酸配列に対してBLASTX）の初期パラメーターが用いられ得る。アライメントは、手動にて行われてもよい。
２つの配列間の配列同一性は、２つの配列を最大一致となるように整列したときに２つの配列間で一致する残基の比率として算出される。
なお、上記の遺伝子やタンパク質の保存的バリアントに関する記載は、Ｌ－アミノ酸生合成系酵素等の任意のタンパク質、およびそれらをコードする遺伝子にも準用できる。
＜１－３＞タンパク質の活性を増大させる手法
以下に、非PTSフルクトース取り込み担体やフルクトキナーゼ等のタンパク質の活性を
増大させる手法について説明する。
「タンパク質の活性が増大する」とは、同タンパク質の活性が非改変株と比較して増大することを意味する。「タンパク質の活性が増大する」とは、具体的には、同タンパク質の細胞当たりの活性が非改変株と比較して増大することを意味してよい。ここでいう「非改変株」とは、標的のタンパク質の活性が増大するように改変されていない対照株を意味する。非改変株としては、野生株や親株が挙げられる。非改変株として、具体的には、各細菌種の基準株（type strain）が挙げられる。また、非改変株として、具体的には、細
菌の説明において例示した菌株も挙げられる。すなわち、一態様において、タンパク質の活性は、基準株（すなわち本発明の細菌が属する種の基準株）と比較して増大してよい。また、別の態様において、タンパク質の活性は、C. glutamicum ATCC 13032株と比較して増大してもよい。また、別の態様において、タンパク質の活性は、C. glutamicum 2256株（ATCC 13869）と比較して増大してもよい。また、別の態様において、タンパク質の活性は、E. coli K-12 MG1655株と比較して増大してもよい。なお、「タンパク質の活性が増
大する」ことを、「タンパク質の活性が増強される」ともいう。「タンパク質の活性が増大する」とは、より具体的には、非改変株と比較して、同タンパク質の細胞当たりの分子数が増加していること、および／または、同タンパク質の分子当たりの機能が増大していることをいう。すなわち、「タンパク質の活性が増大する」という場合の「活性」とは、タンパク質の触媒活性に限られず、タンパク質をコードする遺伝子の転写量（ｍＲＮＡ量）または翻訳量（タンパク質の量）を意味してもよい。また、「タンパク質の活性が増大する」とは、もともと標的のタンパク質の活性を有する菌株において同タンパク質の活性を増大させることだけでなく、もともと標的のタンパク質の活性が存在しない菌株に同タンパク質の活性を付与することを含む。また、結果としてタンパク質の活性が増大する限り、宿主が本来有する標的のタンパク質の活性を低下または消失させた上で、好適な標的のタンパク質の活性を付与してもよい。
タンパク質の活性の増大の程度は、タンパク質の活性が非改変株と比較して増大していれば特に制限されない。タンパク質の活性は、例えば、非改変株の、１．５倍以上、２倍以上、または３倍以上に上昇してよい。また、非改変株が標的のタンパク質の活性を有していない場合は、同タンパク質をコードする遺伝子を導入することにより同タンパク質が生成されていればよいが、例えば、同タンパク質はその活性が測定できる程度に生産されていてよい。
タンパク質の活性が増大するような改変は、例えば、同タンパク質をコードする遺伝子の発現を上昇させることによって達成される。「遺伝子の発現が上昇する」とは、同遺伝子の発現が野生株や親株等の非改変株と比較して増大することを意味する。「遺伝子の発現が上昇する」とは、具体的には、同遺伝子の細胞当たりの発現量が非改変株と比較して増大することを意味してよい。「遺伝子の発現が上昇する」とは、具体的には、遺伝子の転写量（ｍＲＮＡ量）が増大すること、および／または、遺伝子の翻訳量（タンパク質の量）が増大することを意味してよい。なお、「遺伝子の発現が上昇する」ことを、「遺伝子の発現が増強される」ともいう。遺伝子の発現は、例えば、非改変株の、１．５倍以上、２倍以上、または３倍以上に上昇してよい。また、「遺伝子の発現が上昇する」とは、
もともと標的の遺伝子が発現している菌株において同遺伝子の発現量を上昇させることだけでなく、もともと標的の遺伝子が発現していない菌株において、同遺伝子を発現させることを含む。すなわち、「遺伝子の発現が上昇する」とは、例えば、標的の遺伝子を保持しない菌株に同遺伝子を導入し、同遺伝子を発現させることを含む。
遺伝子の発現の上昇は、例えば、遺伝子のコピー数を増加させることにより達成できる。
遺伝子のコピー数の増加は、宿主の染色体へ同遺伝子を導入することにより達成できる。染色体への遺伝子の導入は、例えば、相同組み換えを利用して行うことができる（Miller, J. H. Experiments in Molecular Genetics, 1972, Cold Spring Harbor Laboratory）。相同組み換えを利用する遺伝子導入法としては、例えば、Redドリブンインテグレー
ション（Red-driven integration）法（Datsenko, K. A, and Wanner, B. L. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 97:6640-6645 (2000)）等の直鎖状ＤＮＡを用いる方法、温度感受
性複製起点を含むプラスミドを用いる方法、接合伝達可能なプラスミドを用いる方法、宿主内で機能する複製起点を持たないスイサイドベクターを用いる方法、ファージを用いたtransduction法が挙げられる。遺伝子は、１コピーのみ導入されてもよく、２コピーまたはそれ以上導入されてもよい。例えば、染色体上に多数のコピーが存在する配列を標的として相同組み換えを行うことで、染色体へ遺伝子の多数のコピーを導入することができる。染色体上に多数のコピーが存在する配列としては、反復DNA配列（repetitive DNA）、
トランスポゾンの両端に存在するインバーテッド・リピートが挙げられる。また、目的物質の生産に不要な遺伝子等の染色体上の適当な配列を標的として相同組み換えを行ってもよい。また、遺伝子は、トランスポゾンやMini-Muを用いて染色体上にランダムに導入す
ることもできる（特開平2-109985号公報、US5,882,888、EP805867B1）。
染色体上に標的遺伝子が導入されたことの確認は、同遺伝子の全部又は一部と相補的な配列を持つプローブを用いたサザンハイブリダイゼーション、又は同遺伝子の配列に基づいて作成したプライマーを用いたPCR等によって確認できる。
また、遺伝子のコピー数の増加は、同遺伝子を含むベクターを宿主に導入することによっても達成できる。例えば、標的遺伝子を含むＤＮＡ断片を、宿主で機能するベクターと連結して同遺伝子の発現ベクターを構築し、当該発現ベクターで宿主を形質転換することにより、同遺伝子のコピー数を増加させることができる。標的遺伝子を含むＤＮＡ断片は、例えば、標的遺伝子を有する微生物のゲノムＤＮＡを鋳型とするＰＣＲにより取得できる。ベクターとしては、宿主の細胞内において自律複製可能なベクターを用いることができる。ベクターは、マルチコピーベクターであるのが好ましい。また、形質転換体を選択するために、ベクターは抗生物質耐性遺伝子などのマーカーを有することが好ましい。また、ベクターは、挿入された遺伝子を発現するためのプロモーターやターミネーターを備えていてもよい。ベクターは、例えば、細菌プラスミド由来のベクター、酵母プラスミド由来のベクター、バクテリオファージ由来のベクター、コスミド、またはファージミド等であってよい。エシェリヒア・コリ等の腸内細菌科の細菌において自律複製可能なベクターとして、具体的には、例えば、pUC19、pUC18、pHSG299、pHSG399、pHSG398、pBR322、pSTV29（いずれもタカラバイオ社より入手可）、pACYC184、pMW219（ニッポンジーン社）
、pTrc99A（ファルマシア社）、pPROK系ベクター（クロンテック社）、pKK233‐2（クロ
ンテック社）、pET系ベクター（ノバジェン社）、pQE系ベクター（キアゲン社）、pCold TF DNA（タカラバイオ社）、pACYC系ベクター、広宿主域ベクターRSF1010が挙げられる。コリネ型細菌で自律複製可能なベクターとして、具体的には、例えば、pHM1519（Agric. Biol. Chem., 48, 2901-2903(1984)）；pAM330（Agric. Biol. Chem., 48, 2901-2903(1984)）；これらを改良した薬剤耐性遺伝子を有するプラスミド；pCRY30（特開平3-210184
）；pCRY21、pCRY2KE、pCRY2KX、pCRY31、pCRY3KE、およびpCRY3KX（特開平2-72876、米
国特許5,185,262号）；pCRY2およびpCRY3（特開平1-191686）；pAJ655、pAJ611、およびpAJ1844（特開昭58-192900）；pCG1（特開昭57-134500）；pCG2（特開昭58-35197）；pCG4およびpCG11（特開昭57-183799）；pVK7（特開平10-215883）；pVK9（US2006-0141588）
；pVC7（特開平9-070291）；pVS7（WO2013/069634）が挙げられる。
遺伝子を導入する場合、遺伝子は、発現可能に宿主に保持されていればよい。具体的には、遺伝子は、宿主で機能するプロモーター配列による制御を受けて発現するように保持されていればよい。プロモーターは、宿主において機能するものであれば特に制限されない。「宿主において機能するプロモーター」とは、宿主においてプロモーター活性を有するプロモーターをいう。プロモーターは、宿主由来のプロモーターであってもよく、異種由来のプロモーターであってもよい。プロモーターは、導入する遺伝子の固有のプロモーターであってもよく、他の遺伝子のプロモーターであってもよい。プロモーターとしては、例えば、後述するような、より強力なプロモーターを利用してもよい。
遺伝子の下流には、転写終結用のターミネーターを配置することができる。ターミネーターは、宿主において機能するものであれば特に制限されない。ターミネーターは、宿主由来のターミネーターであってもよく、異種由来のターミネーターであってもよい。ターミネーターは、導入する遺伝子の固有のターミネーターであってもよく、他の遺伝子のターミネーターであってもよい。ターミネーターとして、具体的には、例えば、T7ターミネーター、T4ターミネーター、fdファージターミネーター、tetターミネーター、およびtrpAターミネーターが挙げられる。
各種微生物において利用可能なベクター、プロモーター、ターミネーターに関しては、例えば「微生物学基礎講座８ 遺伝子工学、共立出版、1987年」に詳細に記載されており、それらを利用することが可能である。
また、２またはそれ以上の遺伝子を導入する場合、各遺伝子が、発現可能に宿主に保持されていればよい。例えば、各遺伝子は、全てが単一の発現ベクター上に保持されていてもよく、全てが染色体上に保持されていてもよい。また、各遺伝子は、複数の発現ベクター上に別々に保持されていてもよく、単一または複数の発現ベクター上と染色体上とに別々に保持されていてもよい。また、２またはそれ以上の遺伝子でオペロンを構成して導入してもよい。「２またはそれ以上の遺伝子を導入する場合」としては、例えば、２またはそれ以上のタンパク質（例えば酵素）をそれぞれコードする遺伝子を導入する場合、単一のタンパク質複合体（例えば酵素複合体）を構成する２またはそれ以上のサブユニットをそれぞれコードする遺伝子を導入する場合、およびそれらの組み合わせが挙げられる。
導入される遺伝子は、宿主で機能するタンパク質をコードするものであれば特に制限されない。導入される遺伝子は、宿主由来の遺伝子であってもよく、異種由来の遺伝子であってもよい。導入される遺伝子は、例えば、同遺伝子の塩基配列に基づいて設計したプライマーを用い、同遺伝子を有する生物のゲノムDNAや同遺伝子を搭載するプラスミド等を
鋳型として、PCRにより取得することができる。また、導入される遺伝子は、例えば、同
遺伝子の塩基配列に基づいて全合成してもよい（Gene, 60(1), 115-127 (1987)）。取得
した遺伝子は、そのまま、あるいは適宜改変して、利用することができる。すなわち、遺伝子を改変することにより、そのバリアントを取得することができる。遺伝子の改変は公知の手法により行うことができる。例えば、部位特異的変異法により、DNAの目的部位に
目的の変異を導入することができる。すなわち、例えば、部位特異的変異法により、コードされるタンパク質が特定の部位においてアミノ酸残基の置換、欠失、挿入または付加を含むように、遺伝子のコード領域を改変することができる。部位特異的変異法としては、PCRを用いる方法（Higuchi, R., 61, in PCR technology, Erlich, H. A. Eds., Stockton press (1989)；Carter, P., Meth. in Enzymol., 154, 382 (1987)）や、ファージを用
いる方法（Kramer,W. and Frits, H. J., Meth. in Enzymol., 154, 350 (1987)；Kunkel, T. A. et al., Meth. in Enzymol., 154, 367 (1987)）が挙げられる。あるいは、遺伝子のバリアントを全合成してもよい。
なお、タンパク質が複数のサブユニットからなる複合体として機能する場合、結果としてタンパク質の活性が増大する限り、それら複数のサブユニットの全てを改変してもよく、一部のみを改変してもよい。すなわち、例えば、遺伝子の発現を上昇させることによりタンパク質の活性を増大させる場合、それらのサブユニットをコードする複数の遺伝子の全ての発現を増強してもよく、一部の発現のみを増強してもよい。通常は、それらのサブユニットをコードする複数の遺伝子の全ての発現を増強するのが好ましい。また、複合体を構成する各サブユニットは、複合体が標的のタンパク質の機能を有する限り、１種の生物由来であってもよく、２種またはそれ以上の異なる生物由来であってもよい。すなわち、例えば、複数のサブユニットをコードする、同一の生物由来の遺伝子を宿主に導入してもよく、それぞれ異なる生物由来の遺伝子を宿主に導入してもよい。
また、遺伝子の発現の上昇は、遺伝子の転写効率を向上させることにより達成できる。また、遺伝子の発現の上昇は、遺伝子の翻訳効率を向上させることにより達成できる。遺伝子の転写効率や翻訳効率の向上は、例えば、発現調節配列の改変により達成できる。「発現調節配列」とは、遺伝子の発現に影響する部位の総称である。発現調節配列としては、例えば、プロモーター、シャインダルガノ（ＳＤ）配列（リボソーム結合部位（ＲＢＳ）ともいう）、およびＲＢＳと開始コドンとの間のスペーサー領域が挙げられる。発現調節配列は、プロモーター検索ベクターやＧＥＮＥＴＹＸ等の遺伝子解析ソフトを用いて決定することができる。これら発現調節配列の改変は、例えば、温度感受性ベクターを用いた方法や、Ｒｅｄドリブンインテグレーション法（WO2005/010175）により行うことがで
きる。
遺伝子の転写効率の向上は、例えば、染色体上の遺伝子のプロモーターをより強力なプロモーターに置換することにより達成できる。「より強力なプロモーター」とは、遺伝子の転写が、もともと存在している野生型のプロモーターよりも向上するプロモーターを意味する。より強力なプロモーターとしては、例えば、公知の高発現プロモーターであるT7プロモーター、trpプロモーター、lacプロモーター、thrプロモーター、tacプロモーター、trcプロモーター、tetプロモーター、araBADプロモーター、rpoHプロモーター、msrAプロモーター、Bifidobacterium由来のPm1プロモーター、PRプロモーター、およびPLプロモーターが挙げられる。また、コリネ型細菌で利用できるより強力なプロモーターとしては、例えば、人為的に設計変更されたP54-6プロモーター（Appl. Microbiol. Biotechnolo., 53, 674-679(2000)）、コリネ型細菌内で酢酸、エタノール、ピルビン酸等で誘導でき
るpta、aceA、aceB、adh、amyEプロモーター、コリネ型細菌内で発現量が多い強力なプロモーターであるcspB、SOD、tuf（EF-Tu）プロモーター（Journal of Biotechnology 104 (2003) 311-323, Appl Environ Microbiol. 2005 Dec;71(12):8587-96.）、lacプロモー
ター、tacプロモーター、trcプロモーターが挙げられる。また、より強力なプロモーターとしては、各種レポーター遺伝子を用いることにより、在来のプロモーターの高活性型のものを取得してもよい。例えば、プロモーター領域内の-35、-10領域をコンセンサス配列に近づけることにより、プロモーターの活性を高めることができる（国際公開第00/18935号）。高活性型プロモーターとしては、各種tac様プロモーター（Katashkina JI et al. Russian Federation Patent application 2006134574）やpnlp8プロモーター（WO2010/027045）が挙げられる。プロモーターの強度の評価法および強力なプロモーターの例は、Goldsteinらの論文（Prokaryotic promoters in biotechnology. Biotechnol. Annu. Rev.,
1, 105-128 (1995)）等に記載されている。
遺伝子の翻訳効率の向上は、例えば、染色体上の遺伝子のシャインダルガノ（ＳＤ）配
列（リボソーム結合部位（ＲＢＳ）ともいう）をより強力なＳＤ配列に置換することにより達成できる。「より強力なＳＤ配列」とは、ｍＲＮＡの翻訳が、もともと存在している野生型のＳＤ配列よりも向上するＳＤ配列を意味する。より強力なＳＤ配列としては、例えば、ファージＴ７由来の遺伝子１０のＲＢＳが挙げられる（Olins P. O. et al, Gene,
1988, 73, 227-235）。さらに、ＲＢＳと開始コドンとの間のスペーサー領域、特に開始コドンのすぐ上流の配列（5'-UTR）における数個のヌクレオチドの置換、あるいは挿入、あるいは欠失がｍＲＮＡの安定性および翻訳効率に非常に影響を及ぼすことが知られており、これらを改変することによっても遺伝子の翻訳効率を向上させることができる。
遺伝子の翻訳効率の向上は、例えば、コドンの改変によっても達成できる。例えば、遺伝子中に存在するレアコドンを、より高頻度で利用される同義コドンに置き換えることにより、遺伝子の翻訳効率を向上させることができる。すなわち、導入される遺伝子は、例えば、使用する宿主のコドン使用頻度に応じて最適なコドンを有するように改変されてよい。コドンの置換は、例えば、ＤＮＡの目的の部位に目的の変異を導入する部位特異的変異法により行うことができる。また、コドンが置換された遺伝子断片を全合成してもよい。種々の生物におけるコドンの使用頻度は、「コドン使用データベース」（https://www.kazusa.or.jp/codon; Nakamura, Y. et al, Nucl. Acids Res., 28, 292 (2000)）に開示
されている。
また、遺伝子の発現の上昇は、遺伝子の発現を上昇させるようなレギュレーターを増幅すること、または、遺伝子の発現を低下させるようなレギュレーターを欠失または弱化させることによっても達成できる。
上記のような遺伝子の発現を上昇させる手法は、単独で用いてもよく、任意の組み合わせで用いてもよい。
また、タンパク質の活性が増大するような改変は、例えば、タンパク質の比活性を増強することによっても達成できる。比活性の増強には、フィードバック阻害の脱感作（desensitization to feedback inhibition）も含まれる。すなわち、タンパク質が代謝物によるフィードバック阻害を受ける場合は、フィードバック阻害が脱感作された変異型タンパク質をコードする遺伝子を細菌に保持させることにより、タンパク質の活性を増大させることができる。なお、本発明において、「フィードバック阻害の脱感作」には、特記しない限り、フィードバック阻害が完全に解除される場合、および、フィードバック阻害が低減される場合が包含される。また、「フィードバック阻害が脱感作されている」（すなわちフィードバック阻害が低減又は解除されている）ことを「フィードバック阻害に耐性」ともいう。比活性が増強されたタンパク質は、例えば、種々の生物を探索し取得することができる。また、在来のタンパク質に変異を導入することで高活性型のものを取得してもよい。導入される変異は、例えば、タンパク質の１若しくは数個の位置での１又は数個のアミノ酸が置換、欠失、挿入、又は付加されるものであってよい。変異の導入は、例えば、上述したような部位特異的変異法により行うことができる。また、変異の導入は、例えば、突然変異処理により行ってもよい。突然変異処理としては、Ｘ線の照射、紫外線の照射、ならびにＮ－メチル－Ｎ'－ニトロ－Ｎ－ニトロソグアニジン（ＭＮＮＧ）、エチル
メタンスルフォネート（ＥＭＳ）、およびメチルメタンスルフォネート（ＭＭＳ）等の変異剤による処理が挙げられる。また、in vitroでDNAを直接ヒドロキシルアミンで処理し
、ランダム変異を誘発してもよい。比活性の増強は、単独で用いてもよく、上記のような遺伝子の発現を増強する手法と任意に組み合わせて用いてもよい。
形質転換の方法は特に限定されず、従来知られた方法を用いることができる。例えば、エシェリヒア・コリ K-12について報告されているような、受容菌細胞を塩化カルシウム
で処理してDNAの透過性を増す方法（Mandel, M. and Higa, A.,J. Mol. Biol. 1970, 53,
159-162）や、バチルス・ズブチリスについて報告されているような、増殖段階の細胞からコンピテントセルを調製してDNAを導入する方法（Duncan, C. H., Wilson, G. A. and Young, F. E.., 1997. Gene 1: 153-167）を用いることができる。あるいは、バチルス・ズブチリス、放線菌類、及び酵母について知られているような、DNA受容菌の細胞を、組
換えDNAを容易に取り込むプロトプラストまたはスフェロプラストの状態にして組換えDNAをDNA受容菌に導入する方法（Chang, S. and Choen, S. N., 1979.Mol. Gen. Genet. 168: 111-115; Bibb, M. J., Ward, J. M. and Hopwood, O. A. 1978.Nature 274: 398-400;
Hinnen, A., Hicks, J. B. and Fink, G. R. 1978. Proc. Natl.Acad. Sci. USA 75: 1929-1933）も応用できる。あるいは、コリネ型細菌について報告されているような、電気
パルス法（特開平2-207791）を利用することもできる。
タンパク質の活性が増大したことは、同タンパク質の活性を測定することで確認できる。
タンパク質の活性が増大したことは、同タンパク質をコードする遺伝子の発現が上昇したことを確認することによっても、確認できる。遺伝子の発現が上昇したことは、同遺伝子の転写量が上昇したことを確認することや、同遺伝子から発現するタンパク質の量が上昇したことを確認することにより確認できる。
遺伝子の転写量が上昇したことの確認は、同遺伝子から転写されるmRNAの量を野生株または親株等の非改変株と比較することによって行うことができる。mRNAの量を評価する方法としてはノーザンハイブリダイゼーション、RT-PCR等が挙げられる（Sambrook, J., et
al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual/Third Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor (USA), 2001）。mRNAの量は、例えば、非改変株
の、１．５倍以上、２倍以上、または３倍以上に上昇してよい。
タンパク質の量が上昇したことの確認は、抗体を用いてウェスタンブロットによって行うことができる（Molecular Cloning（Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor (USA), 2001））。タンパク質の量は、例えば、非改変株の、１．５倍以上、２倍以上、または３倍以上に上昇してよい。
上記したタンパク質の活性を増大させる手法は、非PTSフルクトース取り込み担体の活
性およびフルクトキナーゼの活性の増強に加えて、任意のタンパク質、例えばＬ－アミノ酸生合成系酵素、の活性増強や、任意の遺伝子、例えばそれら任意のタンパク質をコードする遺伝子、の発現増強に利用できる。
＜１－４＞タンパク質の活性を低下させる手法
以下に、タンパク質の活性を低下させる手法について説明する。
「タンパク質の活性が低下する」とは、同タンパク質の活性が非改変株と比較して低下することを意味する。「タンパク質の活性が低下する」とは、具体的には、同タンパク質の細胞当たりの活性が非改変株と比較して低下することを意味してよい。ここでいう「非改変株」とは、標的のタンパク質の活性が低下するように改変されていない対照株を意味する。非改変株としては、野生株や親株が挙げられる。非改変株として、具体的には、各細菌種の基準株（type strain）が挙げられる。また、非改変株として、具体的には、細
菌の説明において例示した菌株も挙げられる。すなわち、一態様において、タンパク質の活性は、基準株（すなわち本発明の細菌が属する種の基準株）と比較して低下してよい。また、別の態様において、タンパク質の活性は、C. glutamicum ATCC 13032株と比較して低下してもよい。また、別の態様において、タンパク質の活性は、C. glutamicum 2256株（ATCC 13869）と比較して低下してもよい。また、別の態様において、タンパク質の活性
は、E. coli K-12 MG1655株と比較して低下してもよい。なお、「タンパク質の活性が低
下する」ことには、同タンパク質の活性が完全に消失している場合も包含される。「タンパク質の活性が低下する」とは、より具体的には、非改変株と比較して、同タンパク質の細胞当たりの分子数が低下していること、および／または、同タンパク質の分子当たりの機能が低下していることを意味してよい。すなわち、「タンパク質の活性が低下する」という場合の「活性」とは、タンパク質の触媒活性に限られず、タンパク質をコードする遺伝子の転写量（ｍＲＮＡ量）または翻訳量（タンパク質の量）を意味してもよい。なお、「タンパク質の細胞当たりの分子数が低下している」ことには、同タンパク質が全く存在していない場合が含まれる。また、「タンパク質の分子当たりの機能が低下している」ことには、同タンパク質の分子当たりの機能が完全に消失している場合が含まれる。タンパク質の活性の低下の程度は、タンパク質の活性が非改変株と比較して低下していれば特に制限されない。タンパク質の活性は、例えば、非改変株の、５０％以下、２０％以下、１０％以下、５％以下、または０％に低下してよい。
タンパク質の活性が低下するような改変は、例えば、同タンパク質をコードする遺伝子の発現を低下させることにより達成できる。「遺伝子の発現が低下する」とは、同遺伝子の発現が非改変株と比較して低下することを意味する。「遺伝子の発現が低下する」とは、具体的には、同遺伝子の細胞当たりの発現量が非改変株と比較して低下することを意味する。「遺伝子の発現が低下する」とは、具体的には、遺伝子の転写量（ｍＲＮＡ量）が低下すること、および／または、遺伝子の翻訳量（タンパク質の量）が低下することを意味してよい。「遺伝子の発現が低下する」ことには、同遺伝子が全く発現していない場合が含まれる。なお、「遺伝子の発現が低下する」ことを、「遺伝子の発現が弱化される」ともいう。遺伝子の発現は、例えば、非改変株の、５０％以下、２０％以下、１０％以下、５％以下、または０％に低下してよい。
遺伝子の発現の低下は、例えば、転写効率の低下によるものであってもよく、翻訳効率の低下によるものであってもよく、それらの組み合わせによるものであってもよい。遺伝子の発現の低下は、例えば、遺伝子のプロモーター、シャインダルガノ（ＳＤ）配列（リボソーム結合部位（ＲＢＳ）ともいう）、ＲＢＳと開始コドンとの間のスペーサー領域等の発現調節配列を改変することにより達成できる。発現調節配列を改変する場合には、発現調節配列は、好ましくは１塩基以上、より好ましくは２塩基以上、特に好ましくは３塩基以上が改変される。遺伝子の転写効率の低下は、例えば、染色体上の遺伝子のプロモーターをより弱いプロモーターに置換することにより達成できる。「より弱いプロモーター」とは、遺伝子の転写が、もともと存在している野生型のプロモーターよりも弱化するプロモーターを意味する。より弱いプロモーターとしては、例えば、誘導型のプロモーターが挙げられる。すなわち、誘導型のプロモーターは、非誘導条件下（例えば、誘導物質の非存在下）でより弱いプロモーターとして機能し得る。また、発現調節配列の一部または全部を欠失させてもよい。また、遺伝子の発現の低下は、例えば、発現制御に関わる因子を操作することによっても達成できる。発現制御に関わる因子としては、転写や翻訳制御に関わる低分子（誘導物質、阻害物質など）、タンパク質（転写因子など）、核酸（siRNAなど）等が挙げられる。また、遺伝子の発現の低下は、例えば、遺伝子のコード領域に
遺伝子の発現が低下するような変異を導入することによっても達成できる。例えば、遺伝子のコード領域のコドンを、宿主においてより低頻度で利用される同義コドンに置き換えることによって、遺伝子の発現を低下させることができる。また、例えば、後述するような遺伝子の破壊により、遺伝子の発現自体が低下し得る。
また、タンパク質の活性が低下するような改変は、例えば、同タンパク質をコードする遺伝子を破壊することにより達成できる。「遺伝子が破壊される」とは、正常に機能するタンパク質を産生しないように同遺伝子が改変されることを意味する。「正常に機能するタンパク質を産生しない」ことには、同遺伝子からタンパク質が全く産生されない場合や
、同遺伝子から分子当たりの機能（活性や性質）が低下又は消失したタンパク質が産生される場合が含まれる。
遺伝子の破壊は、例えば、染色体上の遺伝子のコード領域の一部又は全部を欠損させることにより達成できる。さらには、染色体上の遺伝子の前後の配列を含めて、遺伝子全体を欠失させてもよい。タンパク質の活性の低下が達成できる限り、欠失させる領域は、Ｎ末端領域、内部領域、Ｃ末端領域等のいずれの領域であってもよい。通常、欠失させる領域は長い方が確実に遺伝子を不活化することができる。また、欠失させる領域の前後の配列は、リーディングフレームが一致しないことが好ましい。
また、遺伝子の破壊は、例えば、染色体上の遺伝子のコード領域にアミノ酸置換（ミスセンス変異）を導入すること、終止コドンを導入すること（ナンセンス変異）、あるいは１～２塩基を付加または欠失するフレームシフト変異を導入すること等によっても達成できる（Journal of Biological Chemistry 272:8611-8617(1997), Proceedings of the National Academy of Sciences, USA 95 5511-5515(1998), Journal of Biological Chemistry 26 116, 20833-20839(1991)）。
また、遺伝子の破壊は、例えば、染色体上の遺伝子のコード領域に他の配列を挿入することによっても達成できる。挿入部位は遺伝子のいずれの領域であってもよいが、挿入する配列は長い方が確実に遺伝子を不活化することができる。また、挿入部位の前後の配列は、リーディングフレームが一致しないことが好ましい。他の配列としては、コードされるタンパク質の活性を低下又は消失させるものであれば特に制限されないが、例えば、抗生物質耐性遺伝子等のマーカー遺伝子や目的物質の生産に有用な遺伝子が挙げられる。
染色体上の遺伝子を上記のように改変することは、例えば、正常に機能するタンパク質を産生しないように改変した欠失型遺伝子を作製し、該欠失型遺伝子を含む組換えＤＮＡで宿主を形質転換して、欠失型遺伝子と染色体上の野生型遺伝子とで相同組換えを起こさせることにより、染色体上の野生型遺伝子を欠失型遺伝子に置換することによって達成できる。その際、組換えＤＮＡには、宿主の栄養要求性等の形質にしたがって、マーカー遺伝子を含ませておくと操作がしやすい。欠失型遺伝子としては、遺伝子の全領域あるいは一部の領域を欠失した遺伝子、ミスセンス変異を導入した遺伝子ナンセンス変異を導入した遺伝子、フレームシフト変異を導入した遺伝子、トランスポゾンやマーカー遺伝子等の挿入配列を導入した遺伝子が挙げられる。欠失型遺伝子によってコードされるタンパク質は、生成したとしても、野生型タンパク質とは異なる立体構造を有し、機能が低下又は消失する。このような相同組換えを利用した遺伝子置換による遺伝子破壊は既に確立しており、「Redドリブンインテグレーション（Red-driven integration）」と呼ばれる方法（Datsenko, K. A, and Wanner, B. L. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 97:6640-6645 (2000)）、Redドリブンインテグレーション法とλファージ由来の切り出しシステム（Cho, E.
H., Gumport, R. I., Gardner, J. F. J. Bacteriol. 184: 5200-5203 (2002)）とを組
み合わせた方法（WO2005/010175号参照）等の直鎖状ＤＮＡを用いる方法や、温度感受性
複製起点を含むプラスミドを用いる方法、接合伝達可能なプラスミドを用いる方法、宿主内で機能する複製起点を持たないスイサイドベクターを用いる方法などがある（米国特許第6303383号、特開平05-007491号）。
また、タンパク質の活性が低下するような改変は、例えば、突然変異処理により行ってもよい。突然変異処理としては、Ｘ線の照射、紫外線の照射、ならびにＮ－メチル－Ｎ'
－ニトロ－Ｎ－ニトロソグアニジン（ＭＮＮＧ）、エチルメタンスルフォネート（ＥＭＳ）、およびメチルメタンスルフォネート（ＭＭＳ）等の変異剤による処理が挙げられる。
なお、タンパク質が複数のサブユニットからなる複合体として機能する場合、結果とし
てタンパク質の活性が低下する限り、それら複数のサブユニットの全てを改変してもよく、一部のみを改変してもよい。すなわち、例えば、それらのサブユニットをコードする複数の遺伝子の全てを破壊等してもよく、一部のみを破壊等してもよい。また、タンパク質に複数のアイソザイムが存在する場合、結果としてタンパク質の活性が低下する限り、複数のアイソザイムの全ての活性を低下させてもよく、一部のみの活性を低下させてもよい。すなわち、例えば、それらのアイソザイムをコードする複数の遺伝子の全てを破壊等してもよく、一部のみを破壊等してもよい。
タンパク質の活性が低下したことは、同タンパク質の活性を測定することで確認できる。
タンパク質の活性が低下したことは、同タンパク質をコードする遺伝子の発現が低下したことを確認することによっても、確認できる。遺伝子の発現が低下したことは、同遺伝子の転写量が低下したことを確認することや、同遺伝子から発現するタンパク質の量が低下したことを確認することにより確認できる。
遺伝子の転写量が低下したことの確認は、同遺伝子から転写されるmRNAの量を非改変株と比較することによって行うことが出来る。mRNAの量を評価する方法としては、ノーザンハイブリダイゼーション、RT－PCR等が挙げられる（Molecular Cloning（Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor (USA), 2001））。mRNAの量は、例えば、
非改変株の、５０％以下、２０％以下、１０％以下、５％以下、または０％に低下してよい。
タンパク質の量が低下したことの確認は、抗体を用いてウェスタンブロットによって行うことが出来る（Molecular Cloning（Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor (USA), 2001））。タンパク質の量は、例えば、非改変株の、５０％以下、２０％以下、１０％以下、５％以下、または０％に低下してよい。
遺伝子が破壊されたことは、破壊に用いた手段に応じて、同遺伝子の一部または全部の塩基配列、制限酵素地図、または全長等を決定することで確認できる。
上記したタンパク質の活性を低下させる手法は、任意のタンパク質、例えば目的のＬ－アミノ酸の生合成経路から分岐して目的のＬ－アミノ酸以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素、の活性低下や、任意の遺伝子、例えばそれら任意のタンパク質をコードする遺伝子、の発現低下に利用できる。
＜２＞本発明のＬ－アミノ酸の製造方法
本発明の方法は、本発明の細菌をフルクトースを含有する培地で培養し、該培地中および／または該細菌の菌体内にＬ－アミノ酸を蓄積すること、および前記培地および／または前記菌体より前記Ｌ－アミノ酸を採取すること、を含むＬ－アミノ酸の製造方法である。本発明においては、１種のＬ－アミノ酸が製造されてもよく、２種またはそれ以上のＬ－アミノ酸が製造されてもよい。
使用する培地は、フルクトースを含有し、本発明の細菌が増殖でき、目的のＬ－アミノ酸が生産される限り、特に制限されない。培地としては、例えば、コリネ型細菌や腸内細菌科の細菌等の細菌の培養に用いられる通常の培地を用いることができる。培地としては、例えば、フルクトースに加えて、炭素源、窒素源、リン酸源、硫黄源、その他の各種有機成分や無機成分から選択される成分を必要に応じて含有する培地を用いることができる。培地成分の種類や濃度は、使用する細菌の種類等の諸条件に応じて適宜設定してよい。
本発明の方法において、フルクトースは、唯一炭素源（sole carbon source）として利用されてもよく、そうでなくてもよい。すなわち、本発明の方法においては、フルクトースに加えて、他の炭素源を併用してもよい。他の炭素源として、具体的には、例えば、グルコース、スクロース、ラクトース、ガラクトース、キシロース、アラビノース、廃糖蜜、澱粉加水分解物、バイオマスの加水分解物等の糖類、酢酸、フマル酸、クエン酸、コハク酸等の有機酸類、グリセロール、粗グリセロール、エタノール等のアルコール類、脂肪酸類が挙げられる。他の炭素源としては、特に、グルコースが挙げられる。なお、他の炭素源としては、植物由来原料を好適に用いることができる。植物としては、例えば、トウモロコシ、米、小麦、大豆、サトウキビ、ビート、綿が挙げられる。植物由来原料としては、例えば、根、茎、幹、枝、葉、花、種子等の器官、それらを含む植物体、それら植物器官の分解産物が挙げられる。植物由来原料の利用形態は特に制限されず、例えば、未加工品、絞り汁、粉砕物、精製物等のいずれの形態でも利用できる。また、キシロース等の５炭糖、グルコース等の６炭糖、またはそれらの混合物は、例えば、植物バイオマスから取得して利用できる。具体的には、これらの糖類は、植物バイオマスを、水蒸気処理、濃酸加水分解、希酸加水分解、セルラーゼ等の酵素による加水分解、アルカリ処理等の処理に供することにより取得できる。なお、ヘミセルロースは一般的にセルロースよりも加水分解されやすいため、植物バイオマス中のヘミセルロースを予め加水分解して５炭糖を遊離させ、次いで、セルロースを加水分解して６炭糖を生成させてもよい。また、キシロースは、例えば、本発明の細菌にグルコース等の６炭糖からキシロースへの変換経路を保有させて、６炭糖からの変換により供給してもよい。他の炭素源としては、１種の炭素源を用いてもよく、２種またはそれ以上の炭素源を組み合わせて用いてもよい。
窒素源として、具体的には、例えば、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム等のアンモニウム塩、ペプトン、酵母エキス、肉エキス、大豆タンパク質分解物等の有機窒素源、アンモニア、ウレアが挙げられる。pH調整に用いられるアンモニアガスやアンモニア水を窒素源として利用してもよい。窒素源としては、１種の窒素源を用いてもよく、２種またはそれ以上の窒素源を組み合わせて用いてもよい。
リン酸源として、具体的には、例えば、リン酸２水素カリウム、リン酸水素２カリウム等のリン酸塩、ピロリン酸等のリン酸ポリマーが挙げられる。リン酸源としては、１種のリン酸源を用いてもよく、２種またはそれ以上のリン酸源を組み合わせて用いてもよい。
硫黄源として、具体的には、例えば、硫酸塩、チオ硫酸塩、亜硫酸塩等の無機硫黄化合物、システイン、シスチン、グルタチオン等の含硫アミノ酸が挙げられる。硫黄源としては、１種の硫黄源を用いてもよく、２種またはそれ以上の硫黄源を組み合わせて用いてもよい。
その他の各種有機成分や無機成分として、具体的には、例えば、塩化ナトリウム、塩化カリウム等の無機塩類；鉄、マンガン、マグネシウム、カルシウム等の微量金属類；ビタミンB1、ビタミンB2、ビタミンB6、ニコチン酸、ニコチン酸アミド、ビタミンB12等のビ
タミン類；アミノ酸類；核酸類；これらを含有するペプトン、カザミノ酸、酵母エキス、大豆タンパク質分解物等の有機成分が挙げられる。その他の各種有機成分や無機成分としては、１種の成分を用いてもよく、２種またはそれ以上の成分を組み合わせて用いてもよい。
また、生育にアミノ酸などを要求する栄養要求性変異株を使用する場合には、培地に要求される栄養素を補添することが好ましい。
また、培地中のビオチン量を制限することや、培地に界面活性剤またはペニシリンを添加することも好ましい。
培養条件は、本発明の細菌が増殖でき、目的のＬ－アミノ酸が生産される限り、特に制限されない。培養は、例えば、コリネ型細菌や腸内細菌科の細菌等の細菌の培養に用いられる通常の条件で行うことができる。培養条件は、使用する細菌の種類等の諸条件に応じて適宜設定してよい。
培養は、液体培地を用いて行うことができる。培養の際には、本発明の細菌を寒天培地等の固体培地で培養したものを直接液体培地に接種してもよく、本発明の細菌を液体培地で種培養したものを本培養用の液体培地に接種してもよい。すなわち、培養は、種培養と本培養とに分けて行われてもよい。その場合、種培養と本培養の培養条件は、同一であってもよく、そうでなくてもよい。培養開始時に培地に含有される本発明の細菌の量は特に制限されない。本培養は、例えば、本培養の培地に、種培養液を1～50％（v/v）植菌することにより行ってよい。
培養は、回分培養（batch culture）、流加培養（Fed-batch culture）、連続培養（continuous culture）、またはそれらの組み合わせにより実施することができる。なお、培養開始時の培地を、「初発培地」ともいう。また、流加培養または連続培養において培養系（発酵槽）に供給する培地を、「流加培地」ともいう。また、流加培養または連続培養において培養系に流加培地を供給することを、「流加」ともいう。なお、培養が種培養と本培養とに分けて行われる場合、例えば、種培養と本培養を、共に回分培養で行ってもよい。また、例えば、種培養を回分培養で行い、本培養を流加培養または連続培養で行ってもよい。
本発明において、各培地成分は、初発培地、流加培地、またはその両方に含有されていてよい。初発培地に含有される成分の種類は、流加培地に含有される成分の種類と、同一であってもよく、そうでなくてもよい。また、初発培地に含有される各成分の濃度は、流加培地に含有される各成分の濃度と、同一であってもよく、そうでなくてもよい。また、含有する成分の種類および／または濃度の異なる２種またはそれ以上の流加培地を用いてもよい。例えば、複数回の流加が間欠的に行われる場合、各回の流加培地に含有される成分の種類および／または濃度は、同一であってもよく、そうでなくてもよい。
培地中の炭素源の濃度は、本発明の細菌が増殖でき、Ｌ－アミノ酸が生産される限り、特に制限されない。培地中の炭素源の濃度は、例えば、Ｌ－アミノ酸の生産が阻害されない範囲で可能な限り高くしてよい。培地中の炭素源の濃度は、例えば、初発濃度（初発培地中の濃度）として、１～３０w/v%、好ましくは３～１０w/v%であってよい。また、適宜、炭素源を追加で培地に添加してもよい。例えば、発酵の進行に伴う炭素源の消費に応じて、炭素源を追加で培地に添加してもよい。
フルクトースと他の炭素源を組み合わせて用いる場合、炭素源の総量に対するフルクトースの量の比率は、本発明の細菌がフルクトースを炭素源として利用できる限り、特に制限されない。炭素源の総量に対するフルクトースの量の比率は、例えば、５重量％以上、１０重量％以上、２０重量％以上、３０重量％以上、４０重量％以上、または５０重量％以上であってよい。炭素源の総量に対するフルクトースの量の比率は、例えば、初期量（初発培地中の含有量）、流加量（流加培地中の含有量）、または総使用量（初期量と流加量の総量）として、上記例示した比率であってよい。
培地中のフルクトース濃度は、本発明の細菌がフルクトースを炭素源として利用できる限り、特に制限されない。フルクトースは、例えば、０．２w/v%以上、０．５w/v%以上、または１w/v%以上の濃度で培地に含有されていてもよく、３０w/v%以下、２０w/v%以下、１０w/v%以下、５w/v%以下、または２w/v%以下の濃度で培地に含有されていてもよく、そ
れらの組み合わせの濃度で培地に含有されていてもよい。フルクトースは、初発培地、流加培地、またはその両方に、上記例示した濃度範囲で含有されていてよい。
また、フルクトースが流加培地に含有される場合、フルクトースは、例えば、流加後の培地中のフルクトース濃度が、０．０１w/v%以上、０．０２w/v%以上、または０．０５w/v%以上となるように流加培地に含有されていてもよく、５w/v%以下、２w/v%以下、または１w/v%以下となるように流加培地に含有されていてもよく、それらの組み合わせの濃度となるように流加培地に含有されていてもよい。
フルクトースは、唯一炭素源として利用される場合に、上記例示した濃度範囲で培地に含有されていてよい。また、フルクトースは、他の炭素源を併用する場合に、上記例示した濃度範囲で培地に含有されていてもよい。また、フルクトースは、他の炭素源を併用する場合に、例えば、炭素源の総量に対するフルクトースの量の比率等に応じて、上記例示した濃度範囲を適宜修正した濃度範囲で培地に含有されていてもよい。
フルクトースは、培養の全期間において培地に含有されていてもよく、そうでなくてもよい。例えば、フルクトースは、培養の全期間において上記例示した濃度範囲等の所定の濃度範囲で培地に含有されていてもよく、そうでなくてもよい。フルクトースは、例えば、一部の期間において不足していてもよい。「不足する」とは、要求量を満たさないことをいい、例えば、培地中の濃度がゼロであることであってよい。例えば、フルクトースは、培養開始時から培地に含有されていてもよく、いなくてもよい。フルクトースが培養開始時に培地に含有されていない場合は、培養開始後に培地にフルクトースが供給される。供給のタイミングは、培養時間等の諸条件に応じて適宜設定できる。また、例えば、フルクトースは、培養中に消費されて培地中の濃度がゼロとなってもよい。「一部の期間」とは、例えば、培養の全期間の内の、１％以下の期間、５％以下の期間、１０％以下の期間、２０％以下の期間、３０％以下の期間、または５０％以下の期間であってよい。なお、「培養の全期間」とは、培養が種培養と本培養とに分けて行われる場合には、本培養の全期間を意味してよい。フルクトースが不足する期間には、他の炭素源が充足されているのが好ましい。このように、一部の期間、フルクトースが不足していても、フルクトースを含有する培地での培養期間が存在する限り、「フルクトースを含有する培地で細菌を培養する」ことに含まれる。
フルクトース等の各種成分の濃度は、ガスクロマトグラフィー（Hashimoto, K. et al.
1996. Biosci. Biotechnol. Biochem. 70:22-30）やHPLC（Lin, J. T. et al. 1998. J.
Chromatogr. A. 808: 43-49）により測定することができる。
培養は、例えば、好気条件で行うことができる。好気条件とは、液体培地中の溶存酸素濃度が、酸素膜電極による検出限界である0.33 ppm以上であることをいい、好ましくは1.5 ppm以上であることであってよい。酸素濃度は、例えば、飽和酸素濃度に対して5～50％、好ましくは10％程度に制御されてもよい。好気条件での培養は、具体的には、通気培養、振盪培養、撹拌培養、またはそれらの組み合わせで行うことができる。培地のpHは、例えば、pH3～10、好ましくはpH4.0～9.5であってよい。培養中、必要に応じて培地のpHを
調整することができる。培地のpHは、アンモニアガス、アンモニア水、炭酸ナトリウム、重炭酸ナトリウム、炭酸カリウム、重炭酸カリウム、炭酸マグネシウム、水酸化ナトリウム、水酸化カルシウム、水酸化マグネシウム等の各種アルカリ性または酸性物質を用いて調整することができる。培養温度は、例えば、20～40℃、好ましくは25℃～37℃であってよい。培養期間は、例えば、10時間～120時間であってよい。培養は、例えば、培地中の
炭素源が消費されるまで、あるいは本発明の細菌の活性がなくなるまで、継続してもよい。このような条件下で本発明の細菌を培養することにより、培地中および／または菌体内にＬ－アミノ酸が蓄積する。
また、Ｌ－グルタミン酸を製造する場合、Ｌ－グルタミン酸が析出する条件に調整された液体培地を用いて、培地中にＬ－グルタミン酸を析出させながら培養を行うことも出来る。Ｌ－グルタミン酸が析出する条件としては、例えば、pH5.0～4.0、好ましくはpH4.5
～4.0、さらに好ましくはpH4.3～4.0、特に好ましくはpH4.0の条件が挙げられる（EP1078989A）。
Ｌ－アミノ酸が生成したことは、化合物の検出または同定に用いられる公知の手法により確認することができる。そのような手法としては、例えば、HPLC、LC/MS、GC/MS、NMR
が挙げられる。これらの手法は、単独で、あるいは適宜組み合わせて用いることができる。
発酵液からのＬ－アミノ酸の回収は、化合物の分離精製に用いられる公知の手法により行うことができる。そのような手法としては、例えば、イオン交換樹脂法（Nagai, H. et
al., Separation Science and Technology, 39(16), 3691-3710）、沈殿法、膜分離法（特開平9-164323、特開平9-173792）、晶析法（WO2008/078448、WO2008/078646）が挙げられる。これらの手法は、単独で、あるいは適宜組み合わせて用いることができる。なお、菌体内にＬ－アミノ酸が蓄積する場合には、例えば、菌体を超音波などにより破砕し、遠心分離によって菌体を除去して得られる上清から、イオン交換樹脂法などによってＬ－アミノ酸を回収することができる。回収されるＬ－アミノ酸は、フリー体、その塩、またはそれらの混合物であってよい。塩としては、例えば、硫酸塩、塩酸塩、炭酸塩、アンモニウム塩、ナトリウム塩、カリウム塩が挙げられる。Ｌ－グルタミン酸を製造する場合、回収されるＬ－グルタミン酸は、具体的には、例えば、フリー体のＬ－グルタミン酸、Ｌ－グルタミン酸ナトリウム（monosodium L-glutamate；ＭＳＧ）、Ｌ－グルタミン酸アンモニウム（monoammonium L-glutamate）、またはそれらの混合物であってもよい。例えば、発酵液中のＬ－グルタミン酸アンモニウムを酸を加えて晶析させ、結晶に等モルの水酸化ナトリウムを添加することでＬ－グルタミン酸ナトリウム（ＭＳＧ）が得られる。なお、晶析前後に活性炭を加えて脱色してもよい（グルタミン酸ナトリウムの工業晶析 日本海水学会誌 56巻 5号 川喜田哲哉参照）。Ｌ－グルタミン酸ナトリウム結晶は、例えば
、うま味調味料として用いることができる。Ｌ－グルタミン酸ナトリウム結晶は、同様にうま味を有するグアニル酸ナトリウムやイノシン酸ナトリウム等の核酸と混合して調味料として用いてもよい。
また、Ｌ－アミノ酸が培地中に析出する場合は、遠心分離又は濾過等により回収することができる。また、培地中に析出したＬ－アミノ酸は、培地中に溶解しているＬ－アミノ酸を晶析した後に、併せて単離してもよい。
尚、回収されるＬ－アミノ酸は、Ｌ－アミノ酸以外に、細菌菌体、培地成分、水分、及び細菌の代謝副産物等の成分を含んでいてもよい。Ｌ－アミノ酸は、所望の程度に精製されていてもよい。回収されるＬ－アミノ酸の純度は、例えば、50％（w/w）以上、好まし
くは85％（w/w）以上、特に好ましくは95%（w/w）以上であってよい（JP1214636B, USP5,431,933, USP4,956,471, USP4,777,051, USP4,946,654, USP5,840,358, USP6,238,714, US2005/0025878）。
以下、本発明を実施例によりさらに具体的に説明するが、本発明はこれにより制限されるものではない。
実施例：fucP-frk遺伝子の発現を増強したCorynebacterium glutamicum株を用いたグルタミン酸生産
本実施例では、非PTSフルクトース取り込み担体遺伝子（fucP）およびフルクトキナー
ゼ遺伝子（frk）を導入したC. glutamicumのグルタミン酸生産株を用いてグルタミン酸生産を行い、fucP-frk遺伝子の発現増強がグルタミン酸生産に与える影響を評価した。
（１）材料
本実施例で使用した材料は以下の通りである。
Figure 0007066977000001
＜使用プラスミド＞
pVK9（KmR；US2006-0141588）
pVK9-xfp（KmR；WO2006/016705）
pVK9-PmsrA-fucP-frk（KmR；本願）
pVS7（SpcR；WO2013/069634）
pVS7-xfp（SpcR；本願）
＜使用菌株＞
C. glutamicum 2256ΔsucAΔldhA yggB*（WO2014/185430）
C. glutamicum 2256ΔsucAΔldhA yggB*/pVK9/pVS7（本願）
C. glutamicum 2256ΔsucAΔldhA yggB*/pVK9-PmsrA-fucP-frk/pVS7（本願）
C. glutamicum 2256ΔsucAΔldhA yggB*/pVK9/pVS7-xfp（本願）
C. glutamicum 2256ΔsucAΔldhA yggB*/pVK9-PmsrA-fucP-frk/pVS7-xfp（本願）
（２）プラスミドおよび菌株の構築
C. glutamicum 2256株（ATCC 13869）のゲノムDNAを鋳型として、プライマー1と2を用
いてPCRを行い、C. glutamicum由来のmsrA遺伝子の上流配列（プロモーター領域を含む、369 bp）を含むDNA断片を増幅した。Corynebacterium ammoniagenes ATCC 6872のゲノムDNAを鋳型として、プライマー3と4を用いてPCRを行い、C. ammoniagenes由来のfucP遺伝子（GenBank: AMJ44784.1、1335 bp）を含むDNA断片を増幅した。Bifidobacterium longum JCM1217のゲノムDNAを鋳型として、プライマー5と6を用いてPCRを行い、B. longum由来のfrk遺伝子（GenBank: BAJ66931.1、897 bp）を含むDNA断片を増幅した。得られたDNA断片およびBamHIとPstIで切断したpVK9（US2006-0141588）を、Clontech In-fusion HD Cloning Kit（TaKaRa Inc.）を用いて連結し、fucP-frk遺伝子の発現プラスミドpVK9-PmsrA-fucP-frkを構築した。
プライマー7と8を用いてpVK9-xfp（WO2006/016705）を鋳型としてPCRを行い、B. longum JCM1217由来のホスホケトラーゼ遺伝子（xfp）を含むDNA断片を増幅した。得られたDNA断片およびBamHIとPstIで切断したpVS7（WO2013/069634）をClontech In-fusion HD Cloning Kit（TaKaRa Inc.）を用いて連結し、xfp遺伝子の発現プラスミドpVS7-xfpを構築し
た。
構築したプラスミドを2256ΔsucAΔldhA yggB*株（WO2014/185430）に導入することで
、fucP-frk遺伝子およびxfp遺伝子の発現増強株を構築した。他の使用菌株も適宜プラス
ミドを導入することにより構築した。2256ΔsucAΔldhA yggB*株は、C. glutamicum 2256株（ATCC 13869）から誘導されたグルタミン酸生産株であり、ldhA遺伝子とsucA遺伝子を欠損し、yggB遺伝子にIS変異（V419::IS）を有する。この変異型yggB遺伝子（V419::IS）の塩基配列、及び同遺伝子にコードされる変異型YggBタンパク質（V419::IS）のアミノ酸配列を、それぞれ配列番号１１および１２に示す。
（３）グルタミン酸生産培養
構築した菌株を用いてグルタミン酸生産培養を行った。使用した培地の組成を表２に示す。
Figure 0007066977000002
＜培養評価１：フルクトースをC源とした培地での評価＞
各菌株を、薬剤を添加したCM2Gプレートにて31.5℃で一晩培養した。菌体を1/6プレー
ト分かきとり、培地1を20 mL張り込んだ坂口フラスコに植菌し、30℃、120 rpmにて振盪
培養した。培養開始18時間後に培養液のサンプリングを行い、グルタミン酸濃度をバイオテックアナライザーAS-310（サクラエスアイ）を用いて測定した。
結果を図１に示す。fucP-frk遺伝子の発現増強によってグルタミン酸蓄積の向上が確認された。また、fucP-frk遺伝子とxfp遺伝子を組み合わせて発現増強することで、グルタ
ミン酸蓄積のさらなる向上が確認された。従って、fucP-frk遺伝子はフルクトースをC源
とするグルタミン酸生産に有効な因子であると考察された。
＜培養評価２：グルコースおよびフルクトースをC源とした培地での評価＞
各菌株を、薬剤を添加したCM2Gプレートにて31.5℃で一晩培養した。菌体を1/6プレー
ト分かきとり、培地2を20 mL張り込んだ坂口フラスコに植菌し、30℃、120 rpmにて振盪
培養した。培養開始18時間後に培養液のサンプリングを行い、菌体量（620 nmにおけるOD値、101倍希釈）およびグルタミン酸濃度を測定した。グルタミン酸濃度はバイオテック
アナライザーAS-310（サクラエスアイ）を用いて測定した。
結果を図２に示す。fucP-frk遺伝子の発現増強によって菌体量当たりのグルタミン酸蓄積の向上が確認された。また、fucP-frk遺伝子とxfp遺伝子を組み合わせて発現増強する
ことで、菌体量当たりのグルタミン酸蓄積のさらなる向上が確認された。従って、fucP-frk遺伝子はグルコースおよびフルクトースをC源とするグルタミン酸生成に有効な因子で
あると考察された。
〔配列表の説明〕
配列番号１～８：プライマー
配列番号９：Corynebacterium glutamicum 2256 (ATCC 13869)のyggB遺伝子の塩基配列
配列番号１０：Corynebacterium glutamicum 2256 (ATCC 13869)のYggBタンパク質のアミノ酸配列
配列番号１１：Corynebacterium glutamicum 2256 (ATCC 13869)の変異型yggB遺伝子（V419::IS）の塩基配列
配列番号１２：Corynebacterium glutamicum 2256 (ATCC 13869)の変異型YggBタンパク質（V419::IS）のアミノ酸配列
配列番号１３：Bifidobacterium longum JCM1217のxfp遺伝子の塩基配列
配列番号１４：Bifidobacterium longum JCM1217のXfpタンパク質のアミノ酸配列
配列番号１５～２５：プライマー
配列番号２６：Corynebacterium ammoniagenes ATCC 6872のfucP遺伝子の塩基配列
配列番号２７：Corynebacterium ammoniagenes ATCC 6872のFucPタンパク質のアミノ酸配列
配列番号２８：Pantoea ananatis AJ13355のfucP遺伝子の塩基配列
配列番号２９：Pantoea ananatis AJ13355のFucPタンパク質のアミノ酸配列
配列番号３０：Bifidobacterium longum JCM1217のfrk遺伝子の塩基配列
配列番号３１：Bifidobacterium longum JCM1217のFrkタンパク質のアミノ酸配列
配列番号３２：Pantoea ananatis AJ13355のfrk（mak）遺伝子の塩基配列
配列番号３３：Pantoea ananatis AJ13355のFrk（Mak）タンパク質のアミノ酸配列
配列番号３４：Pantoea ananatis AJ13355のfrk（scrK）遺伝子の塩基配列
配列番号３５：Pantoea ananatis AJ13355のFrk（ScrK）タンパク質のアミノ酸配列

Claims (22)

  1. Ｌ－アミノ酸生産能を有する細菌をフルクトースを含有する培地で培養し、該培地中および／または該細菌の菌体内にＬ－アミノ酸を蓄積すること、および前記培地および／または前記菌体より前記Ｌ－アミノ酸を採取すること、を含むＬ－アミノ酸の製造法であって、
    前記細菌が、非改変株と比較して、非ＰＴＳフルクトース取り込み担体の活性およびフルクトキナーゼの活性が増大するように改変されており、
    前記非ＰＴＳフルクトース取り込み担体が、ｆｕｃＰ遺伝子にコードされるタンパク質であり、
    前記Ｌ－アミノ酸が、グルタミン酸系Ｌ－アミノ酸であり、
    前記非ＰＴＳフルクトース取り込み担体をコードする遺伝子および前記フルクトキナーゼをコードする遺伝子の発現を上昇させることにより、前記非ＰＴＳフルクトース取り込み担体の活性およびフルクトキナーゼの活性が増大した、方法。
  2. 前記フルクトキナーゼが、ｆｒｋ遺伝子にコードされるタンパク質である、請求項１に記載の方法。
  3. 前記ｆｕｃＰ遺伝子が、下記（ａ）、（ｂ）、または（ｃ）に記載のタンパク質をコードする遺伝子である、請求項１または２に記載の方法：
    （ａ）配列番号２７または２９に示すアミノ酸配列を含むタンパク質；
    （ｂ）配列番号２７または２９に示すアミノ酸配列において、１～１０個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、および／または付加を含むアミノ酸配列を含み、且つ、非ＰＴＳフルクトース取り込み活性を有するタンパク質；
    （ｃ）配列番号２７または２９に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、且つ、非ＰＴＳフルクトース取り込み活性を有するタンパク質。
  4. 前記ｆｒｋ遺伝子が、下記（ａ）、（ｂ）、または（ｃ）に記載のタンパク質をコードする遺伝子である、請求項２または３に記載の方法：
    （ａ）配列番号３１、３３、または３５に示すアミノ酸配列を含むタンパク質；
    （ｂ）配列番号３１、３３、または３５に示すアミノ酸配列において、１～１０個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、および／または付加を含むアミノ酸配列を含み、且つ、フ
    ルクトキナーゼ活性を有するタンパク質；
    （ｃ）配列番号３１、３３、または３５に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、且つ、フルクトキナーゼ活性を有するタンパク質。
  5. 前記遺伝子の発現が、該遺伝子のコピー数を高めること、および／または該遺伝子の発現調節配列を改変することによって上昇した、請求項１～４のいずれか一項に記載の方法。
  6. 前記細菌が、さらに、非改変株と比較して、ホスホケトラーゼの活性が増大するように改変されており、
    前記ホスホケトラーゼをコードする遺伝子の発現が増大することにより、前記ホスホケトラーゼの活性が増大した、請求項１～５のいずれか一項に記載の方法。
  7. 前記ホスホケトラーゼが、Ｄ－キシルロース－５－リン酸ホスホケトラーゼおよび／またはフルクトース６－リン酸ホスホケトラーゼである、請求項６に記載の方法。
  8. 前記細菌が、コリネ型細菌または腸内細菌科に属する細菌である、請求項１～７のいずれか一項に記載の方法。
  9. 前記細菌が、コリネバクテリウム属細菌である、請求項１～８のいずれか一項に記載の方法。
  10. 前記細菌が、コリネバクテリウム・グルタミカムである、請求項９に記載の方法。
  11. 前記細菌が、パントエア属細菌またはエシェリヒア属細菌である、請求項１～８のいずれか一項に記載の方法。
  12. 前記細菌が、パントエア・アナナティスまたはエシェリヒア・コリである、請求項１１に記載の方法。
  13. 前記グルタミン酸系Ｌ－アミノ酸が、Ｌ－グルタミン酸、Ｌ－グルタミン、Ｌ－プロリン、Ｌ－アルギニン、Ｌ－シトルリン、およびＬ－オルニチンから選択される１種またはそれ以上のＬ－アミノ酸である、請求項１～１２のいずれか一項に記載の方法。
  14. 前記グルタミン酸系Ｌ－アミノ酸が、Ｌ－グルタミン酸である、請求項１～１３のいずれか一項に記載の方法。
  15. 前記Ｌ－グルタミン酸が、Ｌ－グルタミン酸アンモニウムまたはＬ－グルタミン酸ナトリウムである、請求項１３または１４に記載の方法。
  16. 前記細菌が、さらに、非改変株と比較して、α－ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼおよび／またはコハク酸デヒドロゲナーゼの活性が低下するように改変されている、請求項１～１５のいずれか一項に記載の方法。
  17. 前記細菌が、コリネ型細菌であり、さらに、変異型ｙｇｇＢ遺伝子を保持するように改変されている、請求項１４～１６のいずれか１項に記載の方法。
  18. 前記変異型ｙｇｇＢ遺伝子が、コリネ型細菌のＬ－グルタミン酸生産能を向上させる変異を有するｙｇｇＢ遺伝子である、請求項１７に記載の方法。
  19. 前記変異型ｙｇｇＢ遺伝子が、下記（１）、（２）、または（３）に記載の変異を有するｙｇｇＢ遺伝子である、請求項１７または１８に記載の方法：
    （１）野生型ＹｇｇＢタンパク質の４１９～５３３位のアミノ酸残基をコードする領域における変異；
    （２）野生型ＹｇｇＢタンパク質の膜貫通領域をコードする領域における変異；
    （３）それらの組み合わせ。
  20. 前記野生型ＹｇｇＢタンパク質が、下記（ａ）、（ｂ）、または（ｃ）に記載のタンパク質である、請求項１９に記載の方法：
    （ａ）配列番号１０に示すアミノ酸配列を含むタンパク質；
    （ｂ）配列番号１０に示すアミノ酸配列において、１～１０個のアミノ酸残基の置換、欠失、挿入、および／または付加を含むアミノ酸配列を含み、且つ、コリネ型細菌において発現を上昇させた際にコリネ型細菌のＬ－グルタミン酸生産能を向上させる性質を有するタンパク質；
    （ｃ）配列番号１０に示すアミノ酸配列に対して９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を含み、且つ、コリネ型細菌において発現を上昇させた際にコリネ型細菌のＬ－グルタミン酸生産能を向上させる性質を有するタンパク質。
  21. 前記培地が、さらにフルクトース以外の炭素源を含有する、請求項１～２０のいずれか一項に記載の方法。
  22. 前記炭素源が、グルコースである、請求項２１に記載の方法。
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