RU2544951C1 - ATTENUATED STRAIN Bacillus anthracis FOR DEVELOPING MEANS OF SPECIFIC PREVENTION OF ANTHRAX - Google Patents
ATTENUATED STRAIN Bacillus anthracis FOR DEVELOPING MEANS OF SPECIFIC PREVENTION OF ANTHRAX Download PDFInfo
- Publication number
- RU2544951C1 RU2544951C1 RU2013153454/10A RU2013153454A RU2544951C1 RU 2544951 C1 RU2544951 C1 RU 2544951C1 RU 2013153454/10 A RU2013153454/10 A RU 2013153454/10A RU 2013153454 A RU2013153454 A RU 2013153454A RU 2544951 C1 RU2544951 C1 RU 2544951C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- strain
- anthrax
- strains
- vniivvim
- anthracis
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области ветеринарной микробиологии, касается бескапсульного природно ослабленного штамма Bacillus anthracis 363/11 и может быть использовано в научно-исследовательских и биотехнологических центрах для создания средств специфической профилактики сибирской язвы.The invention relates to the field of veterinary microbiology, relates to a capsule-free naturally attenuated strain of Bacillus anthracis 363/11 and can be used in research and biotechnological centers to create specific prophylaxis of anthrax.
В связи с широким распространением сибирской язвы на территории Российской Федерации в прошлом и способностью спор сибиреязвенного микроба сохраняться в почвенных очагах десятками и даже сотнями лет благополучие по данной болезни, главным образом, сохраняется за счет проведения поголовной вакцинации с/х животных. Несмотря на это в России ежегодно регистрируется от 2-х до 16 спорадических случаев сибирской язвы среди восприимчивых животных, большая часть из которых подвергалась профилактической иммунизации. К числу основных причин возникновения вспышек сибирской язвы можно отнести неэффективно проведенные вакцинации, нарушение условий хранения биопрепаратов и циркуляцию в природе изолятов, иммунологически не соответствующих применяемым вакцинным штаммам [Ю.О. Селянинов, И.Ю. Егорова, 2012].Due to the widespread prevalence of anthrax in the Russian Federation in the past and the ability of anthrax microbial spores to remain in the soil foci for dozens or even hundreds of years, well-being for this disease is mainly maintained by conducting universal vaccination of agricultural animals. Despite this, in Russia annually from 2 to 16 sporadic cases of anthrax are recorded among susceptible animals, most of which underwent preventive immunization. Among the main causes of outbreaks of anthrax can be attributed to ineffective vaccinations, violation of the storage conditions of biological products and the circulation in nature of isolates that are not immunologically relevant to the vaccine strains used [Yu.O. Selyaninov, I.Yu. Egorova, 2012].
В настоящее время в Российской Федерации для обеспечения биологической безопасности по сибиреязвенной инфекции в животноводстве используется вакцина живая из бескапсульного авирулентного вакцинного штамма 55-ВНИИВВиМ, а в здравоохранении - из бескапсульного вакцинного штамма СТИ-1. За рубежом для профилактики этой болезни у животных и людей применяются вакцины из штаммов В. anthracis Sterne (34 F2), Вейбридж (Европа, США и др.), Ихтиман (Болгария), K79Z (Украина), 1190-R (Румыния) и др. [Г.Г. Онищенко и др., 1999]. Все перечисленные вакцинные штаммы не содержат плазмиды pXO2, отвечающей за выработку капсулы, основного фактора патогенности сибиреязвенного микроба.Currently, in the Russian Federation, a live vaccine from the capsule-free avirulent vaccine strain 55-VNIIIVViM and in public health from the capsule-free vaccine strain STI-1 are used to ensure biosecurity against anthrax infection in animal husbandry. Abroad, vaccines from B. anthracis Sterne strains (34 F 2 ), Weybridge (Europe, USA, etc.), Ihtiman (Bulgaria), K79Z (Ukraine), 1190-R (Romania) are used to prevent this disease in animals and humans. and others [G.G. Onishchenko et al., 1999]. All of the vaccine strains listed do not contain the pXO2 plasmid, which is responsible for capsule production, the main pathogenicity factor of the anthrax microbe.
Получение штаммов В. anthracis, перспективных для создания на их основе живых вакцин, проводили двумя основными способами: искусственной элиминацией плазмиды pXO2 у ослабленных капсулообразующих штаммов с последующей селекцией бескапсульных вариантов и отбором бескапсульных штаммов В. anthracis из природно ослабленных полевых изолятов.Obtaining strains of B. anthracis, promising to create live vaccines based on them, was carried out in two main ways: by artificial elimination of the plasmid pXO2 in weakened capsule-forming strains, followed by selection of capsule-free variants and selection of capsule-free strains of B. anthracis from naturally weakened field isolates.
Первым способом из вирулентных капсулообразующих изолятов сибиреязвенного микроба были получены вакцинные штаммы 1190-R (1934), Sterne (1937), Вейбридж (1939), Takahaschi (1939), Мактесвар (1939), СТИ (1940), НИИЭГ K-II (1940), Шуя-15 (1949), вторым - штамм Ихтиман и 55-ВНИИВВиМ [Э.Н. Шляхов, 1960; R.S. Slavtchev, 1967; Г.Г. Онищенко и др., 1999]. Однако при сравнительном изучении специфической активности наиболее известных вакцинных штаммов (СТИ, ГНКИ, Ихтиман, 34-F2, 55-ВНИИВВиМ) была установлена достоверная и существенная разница в их иммуногенности и защитных спектрах по отношению к некоторым полевым изолятам, вплоть до полной незащищенности от заражения [И.А. Бакулов, В.А. Гаврилов, 1991]. Для преодоления указанных недостатков авторы предлагают использовать химические вакцины на основе протективного антигена, комбинированные вакцины на основе спор одного штамма и протективного антигена другого штамма, двух- и трехвалентные вакцины на основе различных штаммов, а также вести поиск новых штаммов, обладающих наиболее полноценным антигенным составом.The vaccine strains 1190-R (1934), Sterne (1937), Weybridge (1939), Takahaschi (1939), Makteswar (1939), STI (1940), NIIEG K-II (1940) were obtained from virulent capsule-forming isolates of the anthrax microbe ), Shuya-15 (1949), the second is the Ihtiman strain and 55-VNIIVViM [E.N. Shlyakhov, 1960; RS Slavtchev, 1967; G.G. Onishchenko et al., 1999]. However, a comparative study of the specific activity of the most well-known vaccine strains (STI, GNOC, Ihtiman, 34-F 2 , 55-VNIIVViM) revealed a significant and significant difference in their immunogenicity and protective spectra with respect to some field isolates, up to complete exposure to infection [I.A. Bakulov, V.A. Gavrilov, 1991]. To overcome these shortcomings, the authors propose using chemical vaccines based on protective antigen, combined vaccines based on spores of one strain and protective antigen of another strain, divalent and trivalent vaccines based on different strains, and also to search for new strains that have the most complete antigenic composition.
Близким аналогом предлагаемого изобретения является бескапсульный авирулентный штамм 55-ВНИИВВиМ, полученный селекцией во ВНИИВВиМ из изолята С-63, выделенного сотрудниками Харьковского зооветинститута из трупа свиньи в 1963 году, и используемый для изготовления вакцины против сибирской язвы животных. Штамм 55-ВНИИВВиМ в прививных дозах 12,5×107 и 25,0×107 спор индуцирует выработку напряженного противосибиреязвенного иммунитета в организме вакцинированных животных (мелкий и крупный рогатый скот, соответственно) и защищает от 40 до 100% поголовья от заражения полевыми вирулентными изолятами [И.А. Бакулов, В.А. Гаврилов, 1991].A close analogue of the present invention is the capsule-free avirulent strain 55-VNIIVViM, obtained by selection in VNIIVViM from isolate C-63, isolated from the Kharkov Veterinary Institute from a pig corpse in 1963, and used to make a vaccine against anthrax in animals. Strain 55-VNIIVViM in grafted doses of 12.5 × 10 7 and 25.0 × 10 7 spores induces the generation of intense anti-anthrax immunity in the body of vaccinated animals (small and cattle, respectively) and protects from 40 to 100% of the livestock from infection by field virulent isolates [I.A. Bakulov, V.A. Gavrilov, 1991].
Недостатками штамма являются его низкая антигенность, недостаточно широкий спектр защитного действия по отношению к полевым изолятам, циркулирующим на территории России и остаточная реактогенность. При получении сибиреязвенных гипериммунных сывороток с использованием 4 различных схем иммунизации титры антител к антигенам штамма 55-ВНИИВВиМ во всех случаях были в 2-8 раз ниже, чем к антигенам штамма Sterne (34F2). Изучение сотрудниками ГНУ ВНИИВВиМ геномного полиморфизма музейных культур В. anthracis показало, что некоторые из них имеют уникальные генотипы, существенно отличающиеся от молекулярных типов большинства изученных изолятов возбудителя сибирской язвы, в том числе и штамма 55-ВНИИВВиМ. Так изолят, выделенный в Удмуртской ССР в 1989 году, отличающийся по генотипу от штамма 55-ВНИИВВиМ, вызвал заболевание крупного рогатого скота спустя месяц после его иммунизации вакциной из штамма 55-ВНИИВВиМ. О наличии у вакцины из штамма 55-ВНИИВВиМ реактогенности свидетельствуют сообщения ветеринарных специалистов о поствакцинальных осложнениях у коз - образование серозных отеков на месте введения препарата.The disadvantages of the strain are its low antigenicity, an insufficiently wide range of protective actions in relation to field isolates circulating in Russia and residual reactogenicity. When receiving anthrax hyperimmune sera using 4 different immunization schemes, antibody titers to antigens of strain 55-VNIIIVViM in all cases were 2-8 times lower than to antigens of strain Sterne (34F 2 ). A study of the genomic polymorphism of museum cultures of B. anthracis by GNU VNIIVViM employees showed that some of them have unique genotypes that differ significantly from the molecular types of the majority of the studied isolates of the anthrax pathogen, including strain 55-VNIIIVViM. So, the isolate isolated in the Udmurt SSR in 1989, which differs in genotype from strain 55-VNIIVViM, caused cattle disease one month after it was immunized with a vaccine from strain 55-VNIIVViM. The presence of reactivity of the vaccine from strain 55-VNIIIVViM is evidenced by reports of veterinarians about post-vaccination complications in goats - the formation of serous edema at the injection site.
Целью изобретения является получение нового авирулентного штамма Bacillus anthracis, обладающего более широким спектром защитного действия, большей иммуногенностью и меньшими, по сравнению со штаммом-аналогом, реактогенностью и иммунизирующей дозой.The aim of the invention is to obtain a new avirulent strain of Bacillus anthracis, which has a wider spectrum of protective action, greater immunogenicity and less, compared with the analogue strain, reactogenicity and immunizing dose.
Поставленная цель достигается путем выделения нового природно ослабленного бескапсульного штамма сибиреязвенного микроба. Заявляемый штамм 363/11 выделен сотрудниками ГНУ ВНИИВВиМ в 2011 году от павшего подсвинка.The goal is achieved by isolating a new naturally attenuated capsuleless strain of anthrax microbe. The inventive strain 363/11 isolated by employees of the GNU VNIIVViM in 2011 from the dead gilt.
Штамм 363/11 депонирован в Коллекции штаммов микроорганизмов ГНУ ВНИИВВиМ Россельхозакадемии под инв. №363.Strain 363/11 was deposited in the Collection of microorganism strains of GNU VNIIVViM of the Russian Agricultural Academy under inv. No. 363.
Штамм Bacillus anthracis 363/11 характеризуется следующими культурально-морфологическими, иммунобиологическими и биохимическими признаками.Strain Bacillus anthracis 363/11 is characterized by the following cultural-morphological, immunobiological and biochemical characteristics.
Культуральные свойства. Факультативный аэроб. Оптимальная температура роста на твердых и жидких питательных средах (36±1)°C, оптимум pH (7,4±0,2). Имеет типичные для вида В. anthracis культурально-морфологические свойства: при культивировании в жидких питательных средах бульон остается прозрачным, на дне формируется осадок в виде комочка ваты; на твердых питательных средах образует матовые, шероховатые колонии R-, реже RO-формы, диаметром 3-4 мм. На средах, содержащих сыворотку крови лошади и в присутствии CO2, а также в организме восприимчивых лабораторных животных не образует капсульного полипептида.Cultural properties. Optional aerob. Optimum growth temperature on solid and liquid nutrient media (36 ± 1) ° C, optimum pH (7.4 ± 0.2). It has cultural and morphological properties typical of B. anthracis species: upon cultivation in liquid nutrient media, the broth remains transparent, a sediment in the form of a cotton ball is formed at the bottom; on solid nutrient media forms matte, rough colonies of R-, less often RO-form, with a diameter of 3-4 mm. On media containing horse serum and in the presence of CO 2 , as well as in the body of susceptible laboratory animals, it does not form a capsular polypeptide.
Морфологические свойства. Существует в двух морфологических формах: вегетативной и споровой. В мазках с питательных сред грамположительные палочки располагаются в виде длинных цепочек, которые в местах их соединения выглядят обрубленными или слегка вогнутыми. Споры, окрашенные по Циль-Нильсену, имеют овальную форму, располагаются преимущественно центрально. Клетки жгутиков не имеют, неподвижны.Morphological properties. It exists in two morphological forms: vegetative and spore. In smears from culture media, gram-positive sticks are arranged in the form of long chains, which at their junctions look chopped off or slightly concave. Spores painted according to Ziehl-Nielsen have an oval shape, are located mainly centrally. Cells of flagella do not have, motionless.
In vivo (в организме белых мышей) формирует цепочки, состоящие из 4, 8, 16, 21 и более члеников.In vivo (in the organism of white mice) forms chains consisting of 4, 8, 16, 21 and more segments.
Биохимические свойства. Вызывает α-гемолиз эритроцитов барана. Ферментирует с образованием кислоты без газат целлобиозу, сахарозу, трегалозу. Не разлагает аргинин. Окисляет глюкозу до ацетоина. Восстанавливает нитраты до нитритов. Продуцирует каталазу, не образует щелочную фосфатазу.Biochemical properties. Causes ram hemolysis of sheep erythrocytes. Ferments with the formation of acid without gas cellobiose, sucrose, trehalose. Does not decompose arginine. Oxidizes glucose to acetoin. Restores nitrates to nitrites. It produces catalase, does not form alkaline phosphatase.
Антигенные свойства. Соматический антиген штамма 363/11, полученный путем термоэкстракции, вступает в специфическое взаимодействие с сибиреязвенной преципитирующей сывороткой, а супернатан суточной бульонной культуры - с глобулином противосибиреязвенным из сыворотки крови лошади.Antigenic properties. The somatic antigen of strain 363/11, obtained by thermoextraction, interacts specifically with anthrax precipitating serum, and the daily broth culture supernatan interacts with globulin antisybrasyl from horse blood serum.
При подкожном введении овцам споровой суспензии штамм индуцирует выработку агглютинирующих антител.When a spore suspension is administered subcutaneously to sheep, the strain induces the production of agglutinating antibodies.
Слабо чувствителен к воздействию сибиреязвенного фага Fah-ВНИИВВиМ и высокочувствителен к фагу Rd/Ph/6.Weakly sensitive to the effects of the anthrax phage Fah-VNIIVViM and highly sensitive to the phage Rd / Ph / 6.
Плазмидный состав. Содержит в геноме последовательности pag- гена, гены капсульного оперона отсутствуют (pXO1+pXO2-).Plasmid composition. It contains pag gene sequences in the genome, the genes of the capsular operon are absent (pXO1 + pXO2 - ).
Остаточная вирулентность. LD50 для аутбредных белых мышей живой массой 18-20 г составляет 3,162×105 спор, для морских свинок живой массой 200-300 г - свыше 108 спор.Residual virulence. LD 50 for outbred white mice with a live weight of 18-20 g is 3.162 × 10 5 spores, for guinea pigs with a live weight of 200-300 g - over 10 8 spores.
Реверсибельность. Не восстанавливает способность к капсулообразованию на протяжении 7 последовательных пассажей на морских свинках (на 8 пассаже прекращает размножаться в организме морских свинок) и 10 пассажей на аутбредных белых мышах.Reversibility. It does not restore the ability to capsule formation for 7 consecutive passages in guinea pigs (at passage 8 it ceases to multiply in the body of guinea pigs) and 10 passages in outbred white mice.
Реактогенность. Слабореактогенен для морских свинок: при подкожном введении 107 спор на месте введения образуются серозные отеки, редко с последующими изъязвлениями. Не реактогенен для овец при введении 107 спор подкожно в области бесшерстного участка подмышечной впадины.Reactogenicity. Weakly reactive for guinea pigs: with subcutaneous administration of 10 7 spores, serous edema forms at the injection site, rarely with subsequent ulcerations. Not reactogenic for sheep with the introduction of 10 7 spores subcutaneously in the area of the hairless area of the armpit.
Иммуногенные свойства. В прививной дозе 106-107 спор вызывает формирование у привитых животных (морских свинок, овец) напряженного иммунитета против капсулообразующих референс-заражающих штаммов (II вакцина Ценковского, 17JB) и полевых изолятов.Immunogenic properties. In a graft dose of 10 6 -10 7 spores cause the formation of vaccinated animals (guinea pigs, sheep) of intense immunity against capsule-forming reference infecting strains (II Tsenkovsky vaccine, 17JB) and field isolates.
Для подтверждения преимущества настоящего изобретения приведены примеры конкретного его исполнения.To confirm the advantages of the present invention, examples of its specific implementation are given.
Пример 1. Описание основных биологических свойств вакцинного штамма 55-ВНИИВВиМ и бескапсульного природно ослабленного штамма 363/11.Example 1. Description of the main biological properties of the vaccine strain 55-VNIIVViM and capsule-free naturally attenuated strain 363/11.
Характеристика биологических свойств штаммов 55-ВНИИВВиМ и 363/11 представлена в таблице 1.The biological characteristics of strains 55-VNIIVViM and 363/11 are presented in table 1.
Представленные в таблице 1 данные свидетельствуют о наличии у обоих штаммов свойств, типичных для вакцинных штаммов (стойкая утрата капсулообразования). Различия между штаммами заключаются в способности экспрессировать in vitro различные виды гемолизинов на разных уровнях.The data presented in table 1 indicate the presence of properties typical for vaccine strains in both strains (persistent loss of capsule formation). The differences between the strains are the ability to express in vitro different types of hemolysins at different levels.
Пример 2Example 2
Остаточная вирулентность штаммов 55-ВНИИВВиМ и 363/11 определена на модели аутбредных белых мышей живой массой 18-20 г и морских свинках живой массой 200-300 г путем подкожной инокуляции последним в объеме 0,25 см3 споровых суспензий серийных разведений патогенов, приготовленных с пятикратным шагом. Наблюдение за животными проводилось в течение 10 суток. По окончании срока наблюдения определяли отношение числа животных, павших от введения данной дозы, к общему числу животных, которым была введена эта доза. Величина LD50 рассчитывалась по формуле Кербера в модификации И.П. Ашмарина и А.А. Воробьева (табл.2).The residual virulence of strains 55-VNIIVViM and 363/11 was determined on the model of outbred white mice with a live weight of 18-20 g and guinea pigs with a live weight of 200-300 g by subcutaneous inoculation of the latter in a volume of 0.25 cm 3 of spore suspensions of serial dilutions of pathogens prepared with in five steps. Observation of animals was carried out for 10 days. At the end of the observation period, the ratio of the number of animals that died from the administration of a given dose to the total number of animals to which this dose was administered was determined. The value of LD 50 was calculated according to the Kerber formula in the modification of I.P. Ashmarina and A.A. Vorobyov (Table 2).
Данные таблицы 2 свидетельствуют о том, что оба штамма характеризуются сходными показателями LD50 для морских свинок и относятся к группе авирулентных штаммов. По показателю LD50 для аутбредных белых мышей штаммы 363/11 и 55-ВНИИВВиМ имеют отличия, но по классификации Э.Н. Шляхова и Е.В. Груз (1978) оба штамма также относятся к группе авирулентных культур.The data in table 2 indicate that both strains are characterized by similar indicators LD 50 for guinea pigs and belong to the group of avirulent strains. In terms of LD 50 for outbred white mice, strains 363/11 and 55-VNIIIVViM have differences, but according to the classification of E.N. Shlyakhova and E.V. Cargo (1978) both strains also belong to the group of avirulent cultures.
Пример 3.Example 3
В экспериментах на морских свинках определены показатели иммунизирующих доз штаммов 55-ВНИИВВиМ и 363/11, защищающих от гибели 50% вакцинированных животных (ИмД50) после заражения референс-заражающей культурой сибиреязвенного микроба штамма №71/12 в дозе 200 ЛД50. Результаты сравнительного определения на морских свинках ИмД50 штаммов В. anthracis 55-ВНИИВВиМ и 363/11 приведены в табл.3.In experiments on guinea pigs, the parameters of immunizing doses of strains 55-VNIIVViM and 363/11 were determined, which protect against the death of 50% of vaccinated animals (ImD 50 ) after infection with a reference-infecting culture of anthrax microbe strain No. 71/12 at a dose of 200 LD 50 . The results of a comparative determination in guinea pigs of ImD 50 strains of B. anthracis 55-VNIIVViM and 363/11 are given in table 3.
Данные таблицы 3 свидетельствуют о том, что показатель ИмД50 для штамма 363/11 в 10 раз ниже, чем для штамма 55-ВНИИИВВиМ, т.е. для индукции у морских свинок защитного иммунитета, предохраняющего 50% вакцинированных животных от гибели после введения спор штамма №71/12 в дозе 200 ЛД50, требуется в 10 раз меньшая вакцинирующая доза.The data in table 3 indicate that the index of ImD 50 for strain 363/11 is 10 times lower than for strain 55-VNIIIVViM, i.e. to induce protective immunity in guinea pigs, which protects 50% of vaccinated animals from death after the introduction of spores of strain No. 71/12 at a dose of 200 LD 50 , a 10-fold lower vaccination dose is required.
Пример 4.Example 4
В экспериментах на морских свинках показано, что спектр защитного действия штамма 363/11 шире, чем штамма 55-ВНИИВВиМ. Процент выживаемости вакцинированных штаммом 363/11 морских свинок, зараженных референс-заражающими культурами сибиреязвенного микроба (№№71/12, 17JB, 76) и полевыми изолятами, выделенными в различных регионах России и в разное время (№№81, 304, 364), был выше, чем для морских свинок, вакцинированных штаммом 55-ВНИИВВиМ (табл. 4).In experiments on guinea pigs, it was shown that the protective spectrum of strain 363/11 is wider than strain 55-VNIIVViM. Survival percentage of guinea pigs vaccinated with 363/11 strain infected with reference infecting cultures of anthrax microbe (No. 71/12, 17JB, 76) and field isolates isolated in different regions of Russia and at different times (No. 81, 304, 364) was higher than for guinea pigs vaccinated with strain 55-VNIIIVViM (Table 4).
Из представленных в таблице 4 данных видно, что вакцинация животных штаммом 363/11 защищает 100, 50 и 40 процентов морских свинок от заражения культурами вирулентных полевых изолятов В. anthracis штаммы №№81, 304, 364, соответственно, в то время как процент защиты вакцинированных животных штаммом 55-ВНИИВВиМ для указанных полевых изолятов составляет 40, 25 и 10%, соответственно. Иммуногенная активность штаммов 363/11 и 55-ВНИИВВиМ в отношении референс-заражающих культур штаммов №№71/12, 17JB, 76 отличий не имела.From the data presented in table 4 it is seen that vaccination of animals with strain 363/11 protects 100, 50 and 40 percent of guinea pigs from infection with cultures of virulent field isolates of B. anthracis strains Nos. 81, 304, 364, respectively, while the percentage of protection vaccinated animals with strain 55-VNIIVViM for these field isolates is 40, 25 and 10%, respectively. The immunogenic activity of strains 363/11 and 55-VNIIVViM in relation to reference infecting cultures of strains No. 71/12, 17JB, 76 had no differences.
Пример 5.Example 5
Иммуногенную активность штаммов определяли в опытах на овцах возрастом 1-1,5 года из стада, не подвергавшегося вакцинации против сибирской язвы. Овцам вводили под кожу по 10-12 млн спор испытуемых штаммов в объеме 1 мл.The immunogenic activity of the strains was determined in experiments on sheep aged 1-1.5 years from a herd that had not been vaccinated against anthrax. Sheep was injected under the skin with 10-12 million spores of the tested strains in a volume of 1 ml.
Через 21 день вакцинированных овец заражали внутрикожным введением споровых культур высоковирулентных сибиреязвенных штаммов в дозах, составляющих для овцы не менее 10 безусловно смертельных доз. Наблюдение за зараженными животными вели в течение 10 дней. Овцы, у которых сформировался напряженный иммунитет против соответствующего заражающего штамма, оставались клинически здоровыми. Незащищенные животные погибли в течение 3-5 дней после заражения с признаками острой формы сибирской язвы. Специфический характер гибели овец подтверждался микроскопией мазков крови и бактериологическим анализом.After 21 days, the vaccinated sheep were infected by intracutaneous administration of spore cultures of highly virulent anthrax strains in doses of at least 10 unconditionally deadly doses for the sheep. Observation of infected animals was carried out for 10 days. Sheep, which developed intense immunity against the corresponding infecting strain, remained clinically healthy. Unprotected animals died within 3-5 days after infection with signs of acute anthrax. The specific nature of the death of sheep was confirmed by microscopy of blood smears and bacteriological analysis.
Данные таблиц свидетельствуют о том, что спектр защитного действия штамма 363/11 шире, чем у штамма 55-ВНИИВВиМ. Т.е. иммунизация животных штаммом 363/11, в отличие от штамма 55-ВНИИВВиМ предохраняет их от заражения полевыми изолятами В. anthracis, иммунологически не соответствующими штамму 55-ВНИИВВиМ (№№304 и 81).The data in the tables indicate that the spectrum of the protective effect of strain 363/11 is wider than that of strain 55-VNIIVViM. Those. immunization of animals with strain 363/11, unlike strain 55-VNIIVViM, protects them from infection with field isolates of B. anthracis immunologically not corresponding to strain 55-VNIIVViM (Nos. 304 and 81).
Источники информацииInformation sources
1. Ашмарин, И.П. Статистические методы в микробиологических исследованиях / И.П. Ашмарин, А.А. Воробьев. - Л.: Медгиз, 1962. - С.85.1. Ashmarin, I.P. Statistical methods in microbiological research / I.P. Ashmarin, A.A. Vorobiev. - L .: Medgiz, 1962. - P.85.
2. Бакулов, И.А. Иммунопрофилактика сибирской язвы животных /И.А. Бакулов, В.А. Гаврилов // Вести, с.-х. науки. - 1991. - №8. - С.128-131.2. Bakulov, I.A. Immunoprophylaxis of anthrax animals / I.A. Bakulov, V.A. Gavrilov // News, S.-kh. Sciences. - 1991. - No. 8. - S.128-131.
3. Селянинов, Ю.О. О некоторых причинах недостаточной эффективности мероприятий по специфической профилактике сибирской язвы в РФ / Ю.О. Селянинов, И.Ю. Егорова // Актуальные проблемы болезней, общих для человека и животных: Матер. Всерос. науч.-практ. конф. с междунар. участ. - Ставрополь. - 2012. - С.69-70.3. Selyaninov, Yu.O. About some reasons for the lack of effectiveness of measures for the specific prevention of anthrax in the Russian Federation / Yu.O. Selyaninov, I.Yu. Egorova // Actual problems of diseases common to humans and animals: Mater. Vseros. scientific-practical conf. from the international participation - Stavropol. - 2012. - P.69-70.
4. Сибирская язва: актуальные аспекты микробиологии, эпидемиологии, клиники, диагностики, лечения и профилактики / Г.Г. Онищенко [и др.] - М.: ВУНМЦ МЗ РФ, 1999. - 448 с.4. Anthrax: current aspects of microbiology, epidemiology, clinic, diagnosis, treatment and prevention / G.G. Onishchenko [et al.] - M .: VUNMTS Ministry of Health of the Russian Federation, 1999. - 448 p.
5. Шляхов, Э.Н. Эпидемиология, диагностика и профилактика сибирской язвы / Э.Н. Шляхов. - Кишинев: Картя Молдовеняскэ, 1960. - 116 с.5. Shlyakhov, E.N. Epidemiology, diagnosis and prevention of anthrax / E.N. Shlyakhov. - Chisinau: Cartya Moldovenienasca, 1960 .-- 116 p.
6. Шляхов, Э.Н. Титрация ЛД50 на мышах как метод определения вирулентности сибиреязвенных бацилл / Э.Н. Шляхов, Е.В. Груз // Достижения и перспективы борьбы с сибирской язвой в СССР: Матер. Х пленарного заседания межведомственной комиссии по борьбе с сибирской язвой. - М., 1978. - С.97-99.6. Shlyakhov, E.N. Titration of LD 50 in mice as a method for determining the virulence of anthrax bacilli / E.N. Shlyakhov, E.V. Cargo // Achievements and prospects of the fight against anthrax in the USSR: Mater. X plenary session of the interagency anthrax commission. - M., 1978. - P.97-99.
7. Slavtchev, R.S. Etude comparative de la propriete oedematogene L′une nouvelle souche acapsulogene de Bacillus anthracis (souche Ihtiman) / R.S. Slavtchev // Arch. Inst. Pasteur, Tunis. - 1967. - V.44, №2-3. - P.229-233.7. Slavtchev, R.S. Etude comparative de la propriete oedematogene Lune nouvelle souche acapsulogene de Bacillus anthracis (souche Ihtiman) / R.S. Slavtchev // Arch. Inst. Pasteur, Tunis. - 1967. - V.44, No. 2-3. - P.229-233.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013153454/10A RU2544951C1 (en) | 2013-12-03 | 2013-12-03 | ATTENUATED STRAIN Bacillus anthracis FOR DEVELOPING MEANS OF SPECIFIC PREVENTION OF ANTHRAX |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013153454/10A RU2544951C1 (en) | 2013-12-03 | 2013-12-03 | ATTENUATED STRAIN Bacillus anthracis FOR DEVELOPING MEANS OF SPECIFIC PREVENTION OF ANTHRAX |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2544951C1 true RU2544951C1 (en) | 2015-03-20 |
Family
ID=53290817
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2013153454/10A RU2544951C1 (en) | 2013-12-03 | 2013-12-03 | ATTENUATED STRAIN Bacillus anthracis FOR DEVELOPING MEANS OF SPECIFIC PREVENTION OF ANTHRAX |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2544951C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2622085C2 (en) * | 2015-10-29 | 2017-06-09 | Федеральное государственное учреждение "Федеральный исследовательский центр "Фундаментальные основы биотехнологии" Российской академии наук (ФИЦ Биотехнологии РАН) | Dna-structure encoding modified version of protective antigene bacillus anthracis |
Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2095409C1 (en) * | 1995-06-27 | 1997-11-10 | Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии | Method of preparing vaccine for control of anthrax in animals |
RU2173342C1 (en) * | 2000-01-19 | 2001-09-10 | Научно-исследовательский институт микробиологии МО РФ | Anthrax vaccine strain sti-pr-4 with broadened spectrum of resistance to antibiotics |
RU2180349C1 (en) * | 2001-05-21 | 2002-03-10 | Федеральное государственное учреждение Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" | Strain bacillus anthracis km89 as producer of anthrax antigens |
RU2180916C1 (en) * | 2001-05-21 | 2002-03-27 | Федеральное государственное учреждение Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" | Strain bacillus anthracis km92 as producer of anthrax antigens |
RU2321629C1 (en) * | 2006-06-26 | 2008-04-10 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") | ASPOROGENOUS RECOMBINANT STRAIN Bacillus anthracis 55ΔТПА-1Sро- (pUB110РА-1) AS PRODUCER OF ANTHRAX MICROORGANISM ANTIGEN |
US20110229507A1 (en) * | 2008-07-30 | 2011-09-22 | Elizabet Kaisheva | Stable anthrax vaccine formulations |
-
2013
- 2013-12-03 RU RU2013153454/10A patent/RU2544951C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (6)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2095409C1 (en) * | 1995-06-27 | 1997-11-10 | Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии | Method of preparing vaccine for control of anthrax in animals |
RU2173342C1 (en) * | 2000-01-19 | 2001-09-10 | Научно-исследовательский институт микробиологии МО РФ | Anthrax vaccine strain sti-pr-4 with broadened spectrum of resistance to antibiotics |
RU2180349C1 (en) * | 2001-05-21 | 2002-03-10 | Федеральное государственное учреждение Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" | Strain bacillus anthracis km89 as producer of anthrax antigens |
RU2180916C1 (en) * | 2001-05-21 | 2002-03-27 | Федеральное государственное учреждение Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" | Strain bacillus anthracis km92 as producer of anthrax antigens |
RU2321629C1 (en) * | 2006-06-26 | 2008-04-10 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") | ASPOROGENOUS RECOMBINANT STRAIN Bacillus anthracis 55ΔТПА-1Sро- (pUB110РА-1) AS PRODUCER OF ANTHRAX MICROORGANISM ANTIGEN |
US20110229507A1 (en) * | 2008-07-30 | 2011-09-22 | Elizabet Kaisheva | Stable anthrax vaccine formulations |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
COHEN S. et al., Attenuated nontoxinogenic and nonencapsulated recombinant Bacillus anthracis spore vaccines protect against anthrax, Infect. Immun., 2000, Vol.68, no.8, pp.4549-4558 * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2622085C2 (en) * | 2015-10-29 | 2017-06-09 | Федеральное государственное учреждение "Федеральный исследовательский центр "Фундаментальные основы биотехнологии" Российской академии наук (ФИЦ Биотехнологии РАН) | Dna-structure encoding modified version of protective antigene bacillus anthracis |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
MXPA06000994A (en) | Lawsonia intracellularis of european origin and vaccines, diagnostic agents and methods of use thereof. | |
US8404253B2 (en) | Modified live (JMSO strain) Haemophilus parasuis vaccine | |
KR20160095185A (en) | Mycoplasma bovis vaccine | |
CN102140430B (en) | Mouse-typhus salmonella gene-deletion mutant strain without containing resistance marks, vaccine and application thereof | |
RU2429012C1 (en) | Method of manufacturing associated vaccine against colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets | |
UA121097C2 (en) | Immunogenic composition comprising mycoplasma antigens | |
RU2544951C1 (en) | ATTENUATED STRAIN Bacillus anthracis FOR DEVELOPING MEANS OF SPECIFIC PREVENTION OF ANTHRAX | |
McPherson et al. | A comparison of multivalent and bivalent vaccination strategies for the control of virulent ovine footrot | |
De Alwis | Haemorrhagic septicaemia (Pasteurella multocida serotype B: 2 and E: 2 infection) in cattle and buffaloes | |
CN109735504B (en) | Canine distemper virus attenuated vaccine strain and application thereof | |
KR101210082B1 (en) | Vaccine composition for swine polyserositis and manufacturing method thereof | |
KR101209964B1 (en) | Vaccine composition for swine polyserositis and manufacturing method thereof | |
Ahmed et al. | Comparative study between formalin-killed vaccine and developed gammairradiation vaccine against Mannheimia haemolytica in rabbits | |
CN102676419B (en) | Salmonella typhi gene deletion strain, vaccine prepared from salmonella typhi gene deletion strain and application | |
CN101962625A (en) | Salmonella choleraesuis gene deletion mutant without resistant marker and vaccine thereof | |
RU2263143C2 (en) | Strain of bacterium streptococcus pyogenes 289 used for preparing vaccine against streptococcosis in fur animal | |
RU2761379C1 (en) | Polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis, method for its production and use | |
CN114854654B (en) | Salmonella enteritidis live vaccine | |
RU2521651C1 (en) | STRAINS OF BACTERIA Moraxella bovoculi "SH-CH6 N-DEP" USED TO MANUFACTURE DIAGNOSTIC PREPARATIONS AND VACCINES AGAINST INFECTIOUS KERATOCONJUNCTIVITIS OF CATTLE | |
CN108018228A (en) | One plant of Escherichia coli O 157:H7 low virulent strains and its application | |
Belyaeva et al. | Development and testing of a vaccine against infectious atrophic rhinitis and pasteurellosis in pigs | |
Kamboh et al. | Biochemical properties of bacterial contaminants isolated from livestock vaccines | |
Sen et al. | Immunogenicity and duration of immunity of the polyvalent vaccine against chicken salmonellosis | |
Saha et al. | The F-34 stern strain anthrax vaccine induced higher level of anti-anthrax IgG antibody response and appeared protective in mice model | |
RU2178713C2 (en) | Method to prevent salmonella-caused abortion in mares |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20161204 |