RU2761379C1 - Polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis, method for its production and use - Google Patents
Polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis, method for its production and use Download PDFInfo
- Publication number
- RU2761379C1 RU2761379C1 RU2021111697A RU2021111697A RU2761379C1 RU 2761379 C1 RU2761379 C1 RU 2761379C1 RU 2021111697 A RU2021111697 A RU 2021111697A RU 2021111697 A RU2021111697 A RU 2021111697A RU 2761379 C1 RU2761379 C1 RU 2761379C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- vaccine
- streptococcus
- inactivated
- days
- strain
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
- A61K39/02—Bacterial antigens
- A61K39/116—Polyvalent bacterial antigens
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
- A61P31/04—Antibacterial agents
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Oncology (AREA)
- Communicable Diseases (AREA)
- Immunology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Mycology (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Группа изобретений относится к ветеринарии, а именно к ветеринарной микробиологии и биотехнологии и может быть использована в свиноводстве для обеспечения эпизоотического благополучия по стрептококкозам, вызванным Streptococcus suis, Streptococcus pyogenes, Streptococcus porcinus и Streptococcus dysgalactiae.The group of inventions relates to veterinary medicine, namely to veterinary microbiology and biotechnology, and can be used in pig breeding to ensure epizootic welfare for streptococcosis caused by Streptococcus suis, Streptococcus pyogenes, Streptococcus porcinus and Streptococcus dysgalactiae.
Стрептококкозы являются целой группой инфекционных заболеваний, широко распространенной в свиноводстве, свойственной для различных возрастных и физиологических групп животных [Спиридонов А.Г. и др. Этиология инфекционных диарей новорожденных поросят и телят / Ветеринарная медицина. 2011. В. 95. С. 264-265; Ефанова Л.И. и др. Этиологическая структура факторных инфекций свиней и крупного рогатого скота в хозяйствах ЦЧЗ России / Вестник Курской ГСХА, 2012. №12. С. 71-72; Малик Е.В. Этиологическая структура стрептококкозов свиней / Автореферат диссертации на соискание ученой степени к.в.н./ 2000 г., с. 28; Панин А.Н. Стрептококкозы свиней / Диссертация на соискание ученой степени д.в.н. / 1992 г., с. 45]. Основные экономические потери формируются за счет падежа и выбраковки поросят, снижения продуктивности свиноматок из-за возникающих маститов и эндометритов, снижения привесов, а также повышения затрат на проведение лечебно-профилактических мероприятий [Манжурина О.А., Скогорева A.M., Пархоменко Ю.С., Чернышова И.С., Семенова Е.В. Изучение резистентности к антибактериальным препаратам Streptococcus suis на свиноводческом комплексе Белгородской области // В сборнике: Ветеринарно-санитарные аспекты качества и безопасности сельскохозяйственной продукции Материалы II-й международной конференции по ветеринарно-санитарной экспертизе. 2017. С. 175-179].Streptococcosis is a whole group of infectious diseases, widespread in pig breeding, characteristic of various age and physiological groups of animals [Spiridonov A.G. et al. Etiology of infectious diarrhea in newborn piglets and calves / Veterinary medicine. 2011. V. 95. S. 264-265; Efanova L.I. et al. Etiological structure of factorial infections of pigs and cattle in the farms of the Central ChZ of Russia / Bulletin of the Kursk State Agricultural Academy, 2012. No. 12. S. 71-72; Malik E.V. Etiological structure of streptococcosis of pigs / the dissertation Author's abstract on scientific degree competition kvn / 2000, p. 28; Panin A.N. Swine streptococcosis / Ph.D. thesis / 1992, p. 45]. The main economic losses are formed due to the death and culling of piglets, a decrease in the productivity of sows due to the emerging mastitis and endometritis, a decrease in weight gain, as well as an increase in the cost of carrying out therapeutic and prophylactic measures [Manzhurina OA, Skogoreva AM, Parkhomenko Yu.S. , Chernyshova I.S., Semenova E.V. Study of resistance to antibacterial drugs Streptococcus suis in the pig-breeding complex of the Belgorod region // In the collection: Veterinary and sanitary aspects of the quality and safety of agricultural products Materials of the II International Conference on Veterinary and Sanitary Expertise. 2017. S. 175-179].
Стрептококкозы на свиноводческих предприятиях часто становятся причиной развития артритов, омфалитов, менингитов, маститов, септицемии, лимфаденита, пневмонии и других поражений. При этом сама группа инфекций относится к факторным и, как правило, проявляется на фоне первичных вирусных или бактериальных инфекций, микоплазмоза, стрессов и нарушения зооветеринарных норм содержания [Капустин А.В., Лаишевцев А.И. Современная этиологическая структура стрептококкозов свиней // В сборнике: Единый мир - единое здоровье 2018. С. 218-220].Streptococcosis in pig breeding enterprises often causes the development of arthritis, omphalitis, meningitis, mastitis, septicemia, lymphadenitis, pneumonia and other lesions. In this case, the group of infections itself refers to factorial and, as a rule, manifests itself against the background of primary viral or bacterial infections, mycoplasmosis, stress and violation of zooveterinarian standards [Kapustin A. V., Laishevtsev A. And. The modern etiological structure of swine streptococcosis // In the collection: One world - one health 2018. S. 218-220].
В свою очередь, обеспечение эпизоотического благополучия свинокомплексов является важной задачей для ветеринарной службы. В данном случае проблема может быть решена двумя способами, первый из которых - использование антибактериальных препаратов для лечения, а второй - использование средств специфической профилактики. На фоне широкого распространения антибиотикорезистентности, в том числе у микроорганизмов рода Streptococcus, первый вариант является малоэффективным [Lebel G., Piche F., Frenette M., Grenier D., Gottschalk M. Antimicrobial activity of Nisin against the swine pathogen Streptococcus suis and its synergistic interaction with antibiotics Peptides. 2013. T. 50. C. 19-23]. Использование средств специфической профилактики (вакцин) является более перспективным, чем антибиотикотерапия. Важным условием в достижении высокой протективной активности вакцины, является ее антигенный состав, который должен быть ориентирован на современные эпизоотические данные и этиологическую структуру стрептококкозов.In turn, ensuring the epizootic welfare of pig farms is an important task for the veterinary service. In this case, the problem can be solved in two ways, the first of which is the use of antibacterial drugs for treatment, and the second is the use of specific prophylaxis. Against the background of widespread antibiotic resistance, including among microorganisms of the genus Streptococcus, the first option is ineffective [Lebel G., Piche F., Frenette M., Grenier D., Gottschalk M. Antimicrobial activity of Nisin against the swine pathogen Streptococcus suis and its synergistic interaction with antibiotics Peptides. 2013. T. 50. C. 19-23]. The use of specific prophylaxis (vaccines) is more promising than antibiotic therapy. An important condition for achieving a high protective activity of the vaccine is its antigenic composition, which should be focused on modern epizootic data and the etiological structure of streptococcosis.
В настоящее время уже разработан и активно применяется ряд иммунобиологических средств против рассматриваемой патологии, но все они имеют ограниченный антигенный состав и в полной мере не ориентированы на этиологическую структуру инфекции. Кроме того, антигенный состав вакцин по стрептококковому компоненту не актуализировался уже последние 30-35 лет, а это привело к тому, что в препараты включены виды стрептококков, не имеющие на сегодняшний день первостепенного этиологического значения, например Streptococcus zooepidemicus, но при этом в вакцинах нет многих актуальных видов [Terekhov P.Yu., Matyash Е.А., Yakimova E.A., Kapustin A.V., Belyaeva A.S., Laishevtsev A.I. A new look at the etiological structure of pig streptococcosis // В сборнике: ЮР Conference Series: Earth and Environmental Science conference proceedings. Krasnoyarsk Science and Technology City Hall of the Russian Union of Scientific and Engineering Associations. 2020. C. 32052]. Так, зарегистрированные препараты содержат в своем составе антигены Streptococcus suis и Streptococcus zooepidemicus несмотря на то, что в последние годы исследованиями доказано существенное изменение этиологической структуры инфекции. Наиболее часто от заболевших и павших поросят с типичным клинико-морфологическим проявлением стрептококковой инфекции выделяются: Streptococcus dysgalactiae и Streptococcus massiliensis в 50% предприятий; Streptococcus porcinus, Streptococcus mutans и Streptococcus pyogenes в 37,5% случаев; Streptococcus agalactiae, Streptococcus gallolyticus, Streptococcus rubneri и Streptococcus uberis в 25% случаев; Streptococcus iniae, Streptococcus lutetiensis, Streptococcus pneumoniae и Streptococcus suis в 12,5% случаев, то есть количество случаев выделения Streptococcus suis незначительное, a Streptococcus zooepidemicus не выявляется при стрептококкозах свиней вообще [Laishevtcev A.I., Kapustin A.V., Palazyuk S.V., Matyash A.E. Etiological structure of streptococcosis of pigs in various regions of the Russian Federation // Russian Journal of Agricultural and Socio-Economic Sciences. 2018. №2 (74). С. 257-260]. Из всех выделенных стрептококков патогенностью обладали именно Streptococcus dysgalactiae, Streptococcus porcinus, Streptococcus pyogenes и Streptococcus suis, в то время как другие виды не обладали данным свойством.Currently, a number of immunobiological agents have already been developed and are actively used against the pathology under consideration, but they all have a limited antigenic composition and are not fully focused on the etiological structure of the infection. In addition, the antigenic composition of vaccines for the streptococcal component has not been updated for the last 30-35 years, and this has led to the fact that the preparations include streptococcal species that are not of primary etiological importance today, for example, Streptococcus zooepidemicus, but there is no many actual species [Terekhov P. Yu., Matyash EA, Yakimova EA, Kapustin AV, Belyaeva AS, Laishevtsev AI A new look at the etiological structure of pig streptococcosis // In the collection: YR Conference Series: Earth and Environmental Science conference proceedings. Krasnoyarsk Science and Technology City Hall of the Russian Union of Scientific and Engineering Associations. 2020. C. 32052]. Thus, registered drugs contain Streptococcus suis and Streptococcus zooepidemicus antigens, despite the fact that in recent years, studies have shown a significant change in the etiological structure of the infection. Most often, sick and dead piglets with a typical clinical and morphological manifestation of streptococcal infection are distinguished: Streptococcus dysgalactiae and Streptococcus massiliensis in 50% of enterprises; Streptococcus porcinus, Streptococcus mutans and Streptococcus pyogenes in 37.5% of cases; Streptococcus agalactiae, Streptococcus gallolyticus, Streptococcus rubneri and Streptococcus uberis in 25% of cases; Streptococcus iniae, Streptococcus lutetiensis, Streptococcus pneumoniae and Streptococcus suis in 12.5% of cases, that is, the number of cases of Streptococcus suis isolation is insignificant, and Streptococcus zooepidemicus is not detected in swine streptococcosis in general [Laishevtcev A.I. Etiological structure of streptococcosis of pigs in various regions of the Russian Federation // Russian Journal of Agricultural and Socio-Economic Sciences. 2018. No. 2 (74). S. 257-260]. Of all the isolated streptococci, it was Streptococcus dysgalactiae, Streptococcus porcinus, Streptococcus pyogenes, and Streptococcus suis that possessed pathogenicity, while other species did not possess this property.
Приведенные результаты подтверждаются иностранными учеными, которые в своих трудах так же демонстрируют важную этиологическую роль бактерий вида Streptococcus dysgalactiae, Streptococcus porcinus, Streptococcus pyogenes и Streptococcus suis [Kasuya, K., Yoshida, E., Harada, R., Hasegawa, M., Osaka, H., Kato, M., Shibahara, T. Systemic Streptococcus dysgalactiae Subspecies equisimilis Infection in a Yorkshire Pig with Severe Disseminated Suppurative Meningoencephalomyelitis. Journal of Veterinary Medical Science. 2014. 76(5), 715-718.; Oh, S.-I., Kim, J. W., Jung, J.-Y., Chae, M., Lee, Y.-R., Kim, J. H., ByungJae So, Kim, H.-Y. Pathologic and molecular characterization of Streptococcus dysgalactiae subsp.equisimilis infection in neonatal piglets. Journal of Veterinary Science. 2018. 19(2), 313.; Katsumi, M., Kataoka, Y., Takahashi, Т., Kikuchi, N., Hiramune, T. Biochemical and Serological Examination of. BETA, -hemolytic Streptococci Isolated from Slaughtered Pigs. Journal of Veterinary Medical Science. 1998. 60(1), 129-131.; Arai, S., Kim, H., Watanabe, Т., Tohya, M., Suzuki, E., Ishida-Kuroki, K., Sekizaki, T. Assessment of pig saliva as a Streptococcus suis reservoir and potential source of infection on farms by use of a novel quantitative polymerase chain reaction assay. 2018. American Journal of Veterinary Research, 79(9), 941-948.; Van Samkar, A., Brouwer, M. C, Schultsz, C, van der Ende, A., & van de Beek, D. Streptococcus suis Meningitis: A Systematic Review and Meta-analysis. PLOS Neglected Tropical Diseases. 2015. 9(10), e0004191.; Tang, J., Wang, C, Feng, Y., Yang, W., Song, H., Chen, Z., Gao, G. F. Streptococcal Toxic Shock Syndrome Caused by Streptococcus suis Serotype 2. PLoS Medicine. 2006. 3(5), e151.]. Ввиду того, что различные виды стрептококков не обладают возможностью формирования перекрестного иммунного ответа, существующие препараты не способны в полной мере защитить животных от стрептококкозов, вызванных иными видами.These results are confirmed by foreign scientists, who in their works also demonstrate the important etiological role of bacteria of the species Streptococcus dysgalactiae, Streptococcus porcinus, Streptococcus pyogenes and Streptococcus suis [Kasuya, K., Yoshida, E., Harada, R., Hasegawa, M., Osaka, H., Kato, M., Shibahara, T. Systemic Streptococcus dysgalactiae Subspecies equisimilis Infection in a Yorkshire Pig with Severe Disseminated Suppurative Meningoencephalomyelitis. Journal of Veterinary Medical Science. 2014.76 (5), 715-718 .; Oh, S.-I., Kim, J. W., Jung, J.-Y., Chae, M., Lee, Y.-R., Kim, J. H., ByungJae So, Kim, H.-Y. Pathologic and molecular characterization of Streptococcus dysgalactiae subsp. Equisimilis infection in neonatal piglets. Journal of Veterinary Science. 2018.19 (2), 313 .; Katsumi, M., Kataoka, Y., Takahashi, T., Kikuchi, N., Hiramune, T. Biochemical and Serological Examination of. BETA, -hemolytic Streptococci Isolated from Slaughtered Pigs. Journal of Veterinary Medical Science. 1998. 60 (1), 129-131 .; Arai, S., Kim, H., Watanabe, T., Tohya, M., Suzuki, E., Ishida-Kuroki, K., Sekizaki, T. Assessment of pig saliva as a Streptococcus suis reservoir and potential source of infection on farms by use of a novel quantitative polymerase chain reaction assay. 2018. American Journal of Veterinary Research, 79 (9), 941-948 .; Van Samkar, A., Brouwer, M. C, Schultsz, C, van der Ende, A., & van de Beek, D. Streptococcus suis Meningitis: A Systematic Review and Meta-analysis. PLOS Neglected Tropical Diseases. 2015.9 (10), e0004191 .; Tang, J., Wang, C, Feng, Y., Yang, W., Song, H., Chen, Z., Gao, G. F. Streptococcal Toxic Shock Syndrome Caused by Streptococcus suis Serotype 2. PLoS Medicine. 2006.3 (5), e151.]. Due to the fact that various types of streptococci do not have the ability to form a cross-immune response, existing drugs are not able to fully protect animals from streptococcosis caused by other species.
Решением проблемы является разработка эффективной современной вакцины с расширенным и актуализированным антигенным составом из этиологически значимых для свиноводства видов стрептококков, способа ее получения и применения.The solution to the problem is the development of an effective modern vaccine with an expanded and updated antigenic composition from streptococcus species etiologically significant for pig breeding, a method for its production and use.
Предлагаемое изобретение реализуется в рамках следующих положений: «Стратегии предупреждения распространения антимикробной резистентности в Российской Федерации на период до 2030 года», утвержденной распоряжением Правительства РФ от 25.09.17 г. №2045-р, Стратегии национальной безопасности Российской Федерации, утв. Указом Президента РФ от 31.12.15 г. №683 "О Стратегии национальной безопасности Российской Федерации", и Основ государственной политики в области обеспечения химической и биологической безопасности Российской Федерации на период до 2025 года и дальнейшую перспективу, утв. Президентом РФ от 01.11.13 г. № Пр-2573, а также положений Политической декларации заседания высокого уровня Генеральной Ассамблеи по проблеме устойчивости к противомикробным препаратам, принятой на 71-ой сессии Генеральной Ассамблеи ООН (резолюция A/RES/71/3 от 05.10.16 г.), и Глобального плана действий по борьбе с устойчивостью к противомикробным препаратам, принятого на 68-ой сессии Всемирной ассамблеи здравоохранения (резолюция WHA68.7 от 26.05.15 г.), определяющих комплексный и межсекторальный подход для отраслей, где используются противомикробные препараты (здравоохранение, сельское хозяйство, в том числе растениеводство, животноводство, разведение аквакультуры, а также производство пищевой продукции и очистка воды).The proposed invention is implemented within the framework of the following provisions: "Strategies for preventing the spread of antimicrobial resistance in the Russian Federation for the period up to 2030", approved by the order of the Government of the Russian Federation of 25.09.17, No. 2045-r, the National Security Strategy of the Russian Federation, approved. By the Decree of the President of the Russian Federation of December 31, 15, No. 683 "On the National Security Strategy of the Russian Federation", and the Fundamentals of State Policy in the Field of Chemical and Biological Safety of the Russian Federation for the Period until 2025 and Further Prospect, approved. President of the Russian Federation of 01.11.13, No. Pr-2573, as well as the provisions of the Political Declaration of the High-level Meeting of the General Assembly on the problem of antimicrobial resistance, adopted at the 71st session of the UN General Assembly (resolution A / RES / 71/3 of 05.10 .16), and the 68th World Health Assembly's Global Plan of Action to Combat Antimicrobial Resistance (resolution WHA68.7 of May 26, 2015), defining an integrated and cross-sectoral approach for industries that use antimicrobials (health care, agriculture, including crops, livestock, aquaculture, and food and water treatment).
Уровень техникиState of the art
В Российской Федерации на момент реализации настоящей разработки были зарегистрированы следующие препараты для специфической профилактики стрептококкоза свиней:In the Russian Federation, at the time of the implementation of this development, the following drugs were registered for the specific prevention of swine streptococcosis:
1) Вакцина против сальмонеллеза, пастереллеза и стрептококкоза поросят "ВЕРРЕС-СПС" - ООО "Ветбиохим", Россия. Средство изготовлено из производственных штаммов Salmonella choleraesuis и Salmonella typhimurium, Pasteurella multocida типов А и D, Streptococcus suis серогрупп С и R, инактивированных формалином и адсорбированных на геле гидроокиси алюминия;1) Vaccine against salmonellosis, pasteurellosis and streptococcosis of piglets "VERRES-SPS" - LLC "Vetbiochim", Russia. The product is made from industrial strains Salmonella choleraesuis and Salmonella typhimurium, Pasteurella multocida types A and D, Streptococcus suis serogroups C and R, inactivated with formalin and adsorbed on an aluminum hydroxide gel;
2) Вакцина против сальмонеллеза, пастереллеза и стрептококкоза поросят - ФКП "Армавирская биофабрика", Россия. Вакцина изготовлена из культур бактерий Salmonella choleraesuis 370, Salmonella typhimurium 371, Pasteurella multocida серовары А, В, Д, Streptococcus серогруппы С и R, инактивированных формальдегидом с добавлением адъюванта- геля гидрата окиси алюминия;2) Vaccine against salmonellosis, pasteurellosis and streptococcosis of piglets - FKP "Armavir Biofabrika", Russia. The vaccine is made from cultures of bacteria Salmonella choleraesuis 370, Salmonella typhimurium 371, Pasteurella multocida serovars A, B, D, Streptococcus serogroups C and R, inactivated with formaldehyde with the addition of an adjuvant gel of aluminum oxide hydrate;
3) Вакцина против респираторных болезней свиней поливалентная инактивированная «Донобан-10» - "KBNP, INC.", Республика Корея. Средство изготовлено из суспензии инактивированных бактериальных клеток бордетелл Bordetella bronchiseptica cDNT (SB -11), пастерелл Pasteurella multocida тип A NSPA (SB-40) и Pasteurella multocida тип D cDNT (SB-54), актинобацилл Actinobacillus pleuropneumoniae серотип 2 NAS2 (SB-03) и Actinobacillus pleuropneumoniae серотип 5 NAS5 (SB-04), микоплазм Mycoplasma hyopneumoniae NSM (SB-34), стрептококков Streptococcus suis тип 2 NSS2 (SB-50), штаммов гемофил Haemophilus parasuis серотип 1 NSH1 (SB-30), Haemophilus parasuis серотип 4 NSH4 (SB-31) и Haemophilus parasuis серотип a 5 NSH5 (SB-32), а также дермонекротического токсина (cDNT) Bordetella bronchiseptica и Pasteurella multocida тип D; белка клеточных стенок (ОМР) Pasteurella multocida тип А; Actinobacillus pleuropneumoniae серотип 2 и 5, инактивированных формалином (в концентрации 0,2%), с добавлением в качестве консерванта тиомерсала (0,01%), адъювантов: гидрата окиси алюминия (20%) и ISA 25 (3%) и изотонического раствора натрия хлорида до 2 мл;3) Polyvalent inactivated vaccine against swine respiratory diseases "Donoban-10" - "KBNP, INC.", Republic of Korea. The product is made from a suspension of inactivated bacterial cells of Bordetella bronchiseptica cDNT (SB-11), Pasteurella multocida type A NSPA (SB-40) and Pasteurella multocida type D cDNT (SB-54), Actinobacillus pleuropneumoniae serotype 2 NAS2 (SB-54) ) and Actinobacillus pleuropneumoniae serotype 5 NAS5 (SB-04), mycoplasma Mycoplasma hyopneumoniae NSM (SB-34), streptococci Streptococcus suis type 2 NSS2 (SB-50), hemophilia strains Haemophilus parasuis serotype 1 NSH1 (SB-30), Haemophilus serotype 4 NSH4 (SB-31) and Haemophilus parasuis serotype a 5 NSH5 (SB-32), as well as dermonecrotic toxin (cDNT) Bordetella bronchiseptica and Pasteurella multocida type D; cell wall protein (OMP) Pasteurella multocida type A; Actinobacillus pleuropneumoniae serotype 2 and 5, inactivated with formalin (at a concentration of 0.2%), with the addition of thiomersal (0.01%) as a preservative, adjuvants: aluminum oxide hydrate (20%) and ISA 25 (3%) and isotonic solution sodium chloride up to 2 ml;
4) Вакцина против стрептококкоза инактивированная эмульгированная «СтрептВак-П», ФГБУ «ВНИИЗЖ», Россия. Вакцина изготовлена из инактивированных формальдегидом бактериальных клеток Streptococcus suis серогруппы D типа 2, штамм №4232 с добавление масляного адъюванта - Montanide ISA 206 (50%) и фосфатнобуферного раствора (до 50%).4) Inactivated emulsified vaccine against streptococcosis "StreptVac-P", FGBI "ARRIAH", Russia. The vaccine is made from formaldehyde-inactivated bacterial cells of Streptococcus suis serogroup D type 2, strain 4232 with the addition of an oil adjuvant - Montanide ISA 206 (50%) and a phosphate-buffered solution (up to 50%).
Помимо зарегистрированных на территории РФ средств специфической профилактики стрептококкоза свиней известны (сняты с производства, или зарегистрированы в странах Таможенного Союза):In addition to the means of specific prevention of streptococcosis of pigs registered in the territory of the Russian Federation, there are known (discontinued or registered in the countries of the Customs Union):
1) Вакцина против стрептококкоза свиней инактивированная эмульгированная «Стрептовак-С», ОАО «БелВитунифарм», Республика Беларусь. Вакцина содержит антиген Streptococcus suis с М-белком, инактивированные формалином в концентрации 0,4% и эмульгированные в масляном адъюванте;1) Inactivated emulsified vaccine against pigs streptococcosis "Streptovac-S", JSC "BelVitunifarm", Republic of Belarus. The vaccine contains Streptococcus suis antigen with M-protein, inactivated with formalin at a concentration of 0.4% and emulsified in an oil adjuvant;
2) Вакцина против стрептококкоза сельскохозяйственных животных, плотоядных и грызунов «Стрептоевак», ООО «Торговый дом «БиАгро», Россия. В состав вакцины входят культуры стрептококков серологической группы С, инактивированные формалином и сорбированные на гидрате окиси алюминия.2) Vaccine against streptococcosis of farm animals, carnivores and rodents "Streptoevac", OOO "Trading house" BiAgro ", Russia. The vaccine contains cultures of serological group C streptococci, inactivated with formalin and sorbed on aluminum oxide hydrate.
Кроме приведенных средств известны биопрепараты, в состав которых включены стрептококки, расклассифицированные в род Enterococcus: в частности, Enterococcus faecalis (ранее Streptococcus faecalis), которые в настоящем изобретении не рассматриваются.In addition to these agents, biological products are known, which include streptococci classified in the genus Enterococcus: in particular, Enterococcus faecalis (formerly Streptococcus faecalis), which are not considered in the present invention.
Все приведенные средства, направленные на специфическую профилактику стрептококкоза свиней, являются ограниченными по антигенному составу, что в свою очередь снижает их протективную активность в отношении всех значимых для отрасли видов стрептококков, не включенных в состав препарата, а именно Streptococcus dysgalactiae, Streptococcus porcinus, Streptococcus pyogenes.All the above funds aimed at the specific prevention of swine streptococcosis are limited in antigenic composition, which in turn reduces their protective activity against all streptococcus species important for the industry that are not included in the drug, namely Streptococcus dysgalactiae, Streptococcus porcinus, Streptococcus pyogenes ...
Помимо известных коммерческих препаратов, известна вакцина ассоциированная инактивированная против парвовирусной болезни, стрептококкоза и сальмонеллеза свиней [диссертация Нургалиев Ф.М., Казань, 2006 г.]. Предложенная комбинация антигенов обусловлена тем, что эти бактериальные и вирусные болезни в 40% случаев являются причиной нарушений функций органов репродуктивной системы свиней [Гаффаров, Х.З. Инфекционные болезни свиней и современные средства борьбы с ними / Х.З. Гаффаров, Е.А. Романов. Москва: «Аквариум», 2004. -200 с.]. Вакцина изготовлена из штамма "У-13" парвовируса, штамма "С-05" Streptococcus suis и штамма "К-03" Salmonella choleraesuis, выделенных из абортированных плодов свиноматок. Штаммы депонированы и используются в качестве производственных. Инактивацию бактериальной массы всех штаммов проводят формалином. Адъювант - гель гидрата окиси алюминия (ГОА) и/или масляный адъювант (МА), состоящий из минерального масла с ланолином. Вирусную суспензию штамма ПВС, обладающую до инактивации гемагглютинирующей активностью 1:512, смешивали с бактериальными суспензиями сальмонелл и стрептококков, содержащих по 10 млрд.м.к./мл в равных соотношениях, рН вакцины 7,2-7,4. К недостаткам препарата стоит отнести: узкий видовой спектр стрептококков, введенных в состав вакцины; обладая иммуногенностью в отношении других актуальных инфекций поросят, она защищает животных лишь от одного вида Streptococcus suis; содержит очень высокие дозы бактериальных антигенов (10 млрд.м.к./мл, тогда как аналогичные вакцины содержат в 3-10 раз меньше антигена), что делает производство нерентабельным.In addition to the well-known commercial drugs, an associated inactivated vaccine against parvovirus disease, streptococcosis and salmonellosis of pigs is known [dissertation Nurgaliev FM, Kazan, 2006]. The proposed combination of antigens is due to the fact that these bacterial and viral diseases in 40% of cases are the cause of dysfunctions of the organs of the reproductive system of pigs [Gaffarov, Kh.Z. Infectious diseases of pigs and modern means of combating them / Kh.Z. Gaffarov, E.A. Romanov. Moscow: "Aquarium", 2004. -200 p.]. The vaccine is made from the U-13 strain of parvovirus, the C-05 strain of Streptococcus suis and the K-03 strain of Salmonella choleraesuis isolated from aborted sow fetuses. The strains have been deposited and used as production strains. Inactivation of the bacterial mass of all strains is carried out with formalin. Adjuvant - an alumina hydrate gel (GOA) and / or an oil adjuvant (MA), consisting of mineral oil with lanolin. The viral suspension of the PVA strain, having a hemagglutinating activity of 1: 512 before inactivation, was mixed with bacterial suspensions of Salmonella and streptococci containing 10 billion mc / ml in equal proportions, the vaccine pH 7.2-7.4. The disadvantages of the drug include: a narrow species spectrum of streptococci introduced into the vaccine; being immunogenic against other topical infections of piglets, it protects animals from only one species of Streptococcus suis; contains very high doses of bacterial antigens (10 billion mc / ml, while similar vaccines contain 3-10 times less antigen), which makes production unprofitable.
Из источников патентной информации известна «Вакцина ассоциированная гидроокисьалюминиевая против инфекционных пневмоний свиней бактериальной этиологии и способ ее изготовления» [патента RU 2191598 С2 опубл. 2002.10.27]. Вакцина содержит бактериальную массу Pasteurella multocida серовариантов А, В и D, Haemophilus pleuropneumonia серогрупп 1 и 2 и стрептококков серогрупп С и R, смешанных в равных объемах. При изготовлении вакцины используют щадящие режимы инактивации и управляемый процесс культивирования. Вакцина обеспечивает защиту от инфекционных пневмоний свиней, вызванных широким спектром бактерий. Недостатками данной вакцины являются узкий спектр антигенной активности против стрептококков, причем вид S. zooepidemicus (серогруппа С), как уже было сказано, не представляет клинического значения при стрептококкозах свиней в настоящее время.From sources of patent information known "Associated aluminum hydroxide vaccine against infectious pneumonia of pigs of bacterial etiology and a method for its manufacture" [patent RU 2191598 C2 publ. 2002.10.27]. The vaccine contains the bacterial mass Pasteurella multocida serovariants A, B and D, Haemophilus pleuropneumonia serogroups 1 and 2 and streptococci serogroups C and R, mixed in equal volumes. In the manufacture of the vaccine, sparing modes of inactivation and a controlled cultivation process are used. The vaccine provides protection against infectious swine pneumonia caused by a wide range of bacteria. The disadvantages of this vaccine are a narrow spectrum of antigenic activity against streptococci, and the species S. zooepidemicus (serogroup C), as already mentioned, does not present clinical significance in porcine streptococcosis at the present time.
Известен «Способ получения вакцины ассоциированной против колибактериоза, стрептококкоза и энтерококковой инфекции телят и поросят» [патент RU 2429012 С1 опубл. 2011.09.20; патент RU 2650268 С1 опубл. 2018.04.17]. Указанная вакцина изготавливается из эпизоотических штаммов Escherichia coli, Streptococcus bovis, Enterococcus faecalis, выделенных из пораженных органов телят и поросят. Недостатком способа является то, что при производстве препарата используются полевые изоляты микроорганизмов, что противоречит требованиям Ф3-61 «Об обращении лекарственных средств». Кроме того, недостатком способа и самой вакцины является перегруженность бактериальной массой клеток Escherichia coli, несущих лишнюю антигенную нагрузку, что негативно сказывается на формировании у животных иммунной защиты против стрептококков и энтерококков. Недостатком способа приготовления препарата является и несбалансированный антигенный состав, более ориентированный на профилактику болезней телят, поскольку содержит антигены Streptococcus bovis, не актуальные для свиней, и Enterococcus faecalis, относящийся к оппортунистическим микроорганизмам и имеющий слабое этиологическое значение при кокковых инфекциях у поросят.Known "A method of obtaining a vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and pigs" [patent RU 2429012 C1 publ. 2011.09.20; patent RU 2650268 C1 publ. 2018.04.17]. The specified vaccine is made from epizootic strains of Escherichia coli, Streptococcus bovis, Enterococcus faecalis, isolated from the affected organs of calves and pigs. The disadvantage of this method is that field isolates of microorganisms are used in the manufacture of the drug, which contradicts the requirements of F3-61 "On the Circulation of Medicines". In addition, the disadvantage of the method and the vaccine itself is the overloading of the bacterial mass of Escherichia coli cells carrying an excess antigenic load, which negatively affects the formation of immune defense in animals against streptococci and enterococci. The disadvantage of the preparation method is the unbalanced antigenic composition, more focused on the prevention of calf diseases, since it contains Streptococcus bovis antigens that are not relevant for pigs, and Enterococcus faecalis, which is an opportunistic microorganism and has a weak etiological significance for coccal infections in piglets.
Известна «Вакцинная композиция против инфекции, вызванной Streptococcus suis» [патент RU 27355101 А опубл. 2018.05.29]. Данная разработка ориентирована на использование полипептида и вектора с полинуклеотидом в качестве активного иммуногенного ингредиента при производстве вакцины против Streptococcus suis. Известна «Композиция вакцины против Streptococcus suis, способ ее получения и применения» (Streptococcus suis vaccine composition, and preparation method and application thereof) [патент CN104248754A опубл. 2014.2.31]. Предложенный препарат содержит два вида иммунопротекторных антигенов Streptococcus suis - 34KDA и протеантиген SaoA и адъювант. Получение антигена возможно путем использования генно-инженерных методов, в частности за счет вектора экспрессии полинуклеотида. Дополнительно, данное изобретение может содержать полный бактериальный антиген Streptococcus suis штамма SC типа 2. Помимо этого, предложенная композиция может иметь в своем составе иммуностимуляторы, такие как альфа-интерферон, бета-интерферон, гамма-интерферон, а также интерлейкин-22, антиоксидант, поверхностно-активное вещество, окрашивающий агент, эфирное масло, буферный агент, диспергатор, пропеллент и антисептик. Известна «Аттенуированная вакцина Streptococcus suis и способ ее получения» (It is attenuated Streptococcus suis vaccine and production and preparation method thereof) [патент CN 104780935 B опубл. 2015.7.15]. Данное изобретение основано на использовании ослабленного штамма Streptococcus suis в качестве основного компонента вакцины против стрептококкоза свиней. Известно изобретение «Аттенуированные вакцины против Streptococcus suis и способы их получения и применения» (Attenuated Streptococcus suis vaccines and methods of making and use thereof) [патент AU2016222520B2 опубл. 2018.03.22]. Изобретение ориентировано на использовании ослабленных штаммов Streptococcus suis при производстве живых вакцин против стрептококкоза. Известно изобретение «Комбинированная инактивированная вакцина против контагиозной плевропневмонии и стрептококкоза свиней, вызванных Streptococcus suis и способ ее получения» (Porcine contagious pleuropneumonia and Streptococcus suis disease combined inactivated vaccine and preparation method thereof) [патент CN 103566364 A опубл. 2014.2.12]. Изобретение направлено на создание и использование ассоциированной инактивированной вакцины, изготовленной в комбинации штаммов Actinobacillus pleuropneumonia серотипа 1, 5, 7 и двух высоковирулентных штаммов Streptococcus suis. Недостатком данных изобретений стоит считать узкий антигенный спектр, не позволяющий обеспечить необходимую протективную активность против инфекций вызванных другими видами стрептококков, свойственными для свиноводства.Known "Vaccine composition against infection caused by Streptococcus suis" [patent RU 27355101 A publ. 2018.05.29]. This development is focused on the use of a polypeptide and a vector with a polynucleotide as an active immunogenic ingredient in the production of a vaccine against Streptococcus suis. Known "Composition of a vaccine against Streptococcus suis, a method for its preparation and use" (Streptococcus suis vaccine composition, and preparation method and application thereof) [patent CN104248754A publ. 2014.2.31]. The proposed preparation contains two types of immunoprotective antigens of Streptococcus suis - 34KDA and SaoA proteantigen and an adjuvant. Obtaining an antigen is possible by using genetic engineering methods, in particular, by means of a polynucleotide expression vector. Additionally, the present invention may contain a complete bacterial antigen of Streptococcus suis strain SC type 2. In addition, the proposed composition may contain immunostimulants such as interferon alpha, interferon beta, interferon gamma, and interleukin-22, an antioxidant, surfactant, coloring agent, essential oil, buffering agent, dispersant, propellant and antiseptic. Known "Attenuated Streptococcus suis vaccine and a method for its production" (It is attenuated Streptococcus suis vaccine and production and preparation method thereof) [patent CN 104780935 B publ. 2015.7.15]. This invention is based on the use of an attenuated strain of Streptococcus suis as the main component of a vaccine against swine streptococcosis. Known invention "Attenuated Streptococcus suis vaccines and methods for their production and use" (Attenuated Streptococcus suis vaccines and methods of making and use thereof) [patent AU2016222520B2 publ. 2018.03.22]. The invention is focused on the use of attenuated strains of Streptococcus suis in the production of live vaccines against streptococcosis. Known invention "A combined inactivated vaccine against contagious pleuropneumonia and streptococcosis of pigs caused by Streptococcus suis and a method for its production" (Porcine contagious pleuropneumonia and Streptococcus suis disease combined inactivated vaccine and preparation method thereof) [patent CN 103566364 A publ. 2014.2.12]. The invention is directed to the creation and use of an associated inactivated vaccine made in a combination of strains of Actinobacillus pleuropneumonia serotype 1, 5, 7 and two highly virulent strains of Streptococcus suis. The disadvantage of these inventions should be considered a narrow antigenic spectrum, which does not allow to provide the necessary protective activity against infections caused by other types of streptococci, typical for pig breeding.
Наиболее близким аналогом (прототипом) заявляемой вакцины является «Вакцина против сальмонеллеза, пастереллеза и стрептококкоза поросят» - «ВЕРРЕС-СПС» - ООО "Ветбиохим", Россия. Средство представляет собой суспензию для инъекций (инактивированную вакцину). Вакцина изготовлена из производственных штаммов Salmonella choleraesuis №370 и Salmonella typhimurium №371, Pasteurella multocida тип A №1231 и тип D - «Т-80», Streptococcus серогруппы С штамм П-2082 и Streptococcus suis серогруппы R штамм «Касли», инактивированных формалином (в концентрации 0,3%) и адсорбированных на геле гидроокиси алюминия (20%). По внешнему виду вакцина представляет собой жидкость светло-желтого цвета с серо-белым осадком, легко разбивающимся при взбалтывании. Срок годности вакцины - 18 месяцев с даты выпуска при соблюдении условий хранения и транспортирования. У животных вакцина вызывает формирование иммунитета к сальмонеллезу, пастереллезу и стрептококкозу через 10-12 суток после введения второй дозы препарата, который сохраняется до 5 месяцев. Одна иммунизирующая доза вакцины (3 мл) содержит: инактивированные микробные клетки штаммов сальмонелл Salmonella choleraesuis и Salmonella typhimurium - не менее 4*109 КОЕ каждого; пастерелл Pasteurella multocida тип А и D - не менее 5*109 КОЕ каждого; стрептококков Streptococcus серогруппа С и Streptococcus suis серогруппы R - не менее 3*109 КОЕ каждого. Вакцина безвредна и ареактогенна, лечебными свойствами не обладает.Недостатком прототипа является его ограниченный антигенный состав. В частности, препарат имеет в своем составе антигены Streptococcus zooepidemicus и Streptococcus suis, но не Streptococcus porcinus, Streptococcus pyogenes, Streptococcus dysgalactiae.The closest analogue (prototype) of the claimed vaccine is "Vaccine against salmonellosis, pasteurellosis and streptococcosis of pigs" - "VERRES-SPS" - LLC "Vetbiohim", Russia. The tool is a suspension for injection (inactivated vaccine). The vaccine is made from industrial strains of Salmonella choleraesuis No. 370 and Salmonella typhimurium No. 371, Pasteurella multocida type A No. 1231 and type D - "T-80", Streptococcus serogroup C, strain P-2082 and Streptococcus suis of serogroup R strain, inactivated with formalin (at a concentration of 0.3%) and adsorbed on the gel of aluminum hydroxide (20%). In appearance, the vaccine is a light yellow liquid with a gray-white precipitate that easily breaks down when shaken. The shelf life of the vaccine is 18 months from the date of issue, subject to the storage and transportation conditions. In animals, the vaccine induces the formation of immunity to salmonellosis, pasteurellosis and streptococcosis 10-12 days after the administration of the second dose of the drug, which lasts up to 5 months. One immunizing dose of the vaccine (3 ml) contains: inactivated microbial cells of Salmonella choleraesuis and Salmonella typhimurium strains - at least 4 * 10 9 CFU each; Pasteurella Pasteurella multocida type A and D - not less than 5 * 10 9 CFU each; Streptococci Streptococcus serogroup C and Streptococcus suis serogroup R - at least 3 * 10 9 CFU each. The vaccine is harmless and areactogenic, does not possess medicinal properties. The disadvantage of the prototype is its limited antigenic composition. In particular, the drug contains Streptococcus zooepidemicus and Streptococcus suis antigens, but not Streptococcus porcinus, Streptococcus pyogenes, Streptococcus dysgalactiae.
Наиболее близким аналогом (прототипом) способа изготовления предложенной вакцины является «Вакцина ассоциированная гидроокисьалюминиевая против инфекционных пневмоний свиней бактериальной этиологии и способ ее изготовления» [патента RU 2191598 С2 опубл. 2002.10.27]. Способ изготовления вакцины ассоциированной гидроокисьалюминиевой против инфекционных пневмоний свиней бактериальной этиологии включает засев вакцинных штаммов пастерелл, гемофильных бактерий и стрептококков, их раздельное культивирование в жидкой питательной среде на основе перевара Хоттингера в ферментерах с последующей инактивацией культур формальдегидом, адсорбцией их на адъюванте и смешиванием инактивированных культур, отличается тем, что при культивировании штаммов стрептококков сразу после засева окислительно-восстановительный потенциал культуральной жидкости снижают до (-150) - (-200) мВ, после чего до окончания процесса культивирования поддерживают уровень кислорода рО2 в культуральной жидкости на уровне 15-25% от насыщения кислородом воздуха, рН культуральной жидкости регулируют на уровне 6,8-7,2 ед. рН, а дробную подачу глюкозы осуществляют дозами до концентрации 0,05-0,2% при лимитировании роста стрептококков глюкозой. Кроме того, данный способ подразумевает инактивацию культур стрептококков формальдегидом при температуре 43-48°С в течение 12-36 ч, причем конечная концентрация формальдегида в культуре составляет 0,02-0,08%. Недостатком данного способа является акцентирование изобретения только на способе культивирования штаммов стрептококков, а не на полной последовательности производства готового препарата и его контроля. Кроме того, при культивировании стрептококков предлагается использование только бульона Хоттингера, что ограничивает саму технологию производства вакцин против стрептококкоза, так как известны и иные рост обеспечивающие питательные среды. В отличие от прототипа, заявляемое изобретение подразумевает использование вместо гидроокиси алюминия карбопола-971, что позволяет усилить антигенную активность препарата и обеспечить его высокую специфическую эффективность. Кроме того, во вновь предложенном препарате и способе его производства приведены и охарактеризованы методы контроля антигенной и иммуногенной активности вакцин против стрептококкоза свиней.The closest analogue (prototype) of the method of manufacturing the proposed vaccine is "Associated aluminum hydroxide vaccine against infectious pneumonia of pigs of bacterial etiology and a method for its manufacture" [patent RU 2191598 C2 publ. 2002.10.27]. A method of manufacturing an associated aluminum hydroxide vaccine against infectious pneumonia of pigs of bacterial etiology includes inoculation of vaccine strains of pasteurella, hemophilic bacteria and streptococci, their separate cultivation in a liquid nutrient medium based on Hottinger's digestion in fermenters, followed by inactivation of cultures with formaldehyde, adsorption and inactivation of cultures differs in that during the cultivation of streptococcal strains immediately after inoculation, the redox potential of the culture liquid is reduced to (-150) - (-200) mV, after which, until the end of the cultivation process, the oxygen level pO 2 in the culture liquid is maintained at a level of 15-25% from saturation with air oxygen, the pH of the culture liquid is adjusted at the level of 6.8-7.2 units. pH, and fractional glucose supply is carried out in doses up to a concentration of 0.05-0.2% while limiting the growth of streptococci by glucose. In addition, this method involves the inactivation of streptococcal cultures with formaldehyde at a temperature of 43-48 ° C for 12-36 hours, and the final concentration of formaldehyde in the culture is 0.02-0.08%. The disadvantage of this method is the emphasis of the invention only on the method of cultivating streptococcal strains, and not on the complete sequence of production of the finished product and its control. In addition, in the cultivation of streptococci, it is proposed to use only Hottinger's broth, which limits the technology itself for the production of vaccines against streptococcosis, since other growth providing nutrient media are also known. Unlike the prototype, the claimed invention implies the use of carbopol-971 instead of aluminum hydroxide, which makes it possible to enhance the antigenic activity of the drug and ensure its high specific efficacy. In addition, in the newly proposed preparation and method of its production, methods for controlling the antigenic and immunogenic activity of vaccines against swine streptococcosis are presented and characterized.
Наиболее близким аналогом (прототипом) способа применения является изобретение «Аттенуированные вакцины против Streptococcus suis и способы их получения и применения» (Attenuated Streptococcus suis vaccines and methods of making and use thereof) [патент AU 2016222520 B2, опубл. 2018.03.22]. Изобретение ориентировано на использовании ослабленных штаммов Streptococcus suis при производстве живых вакцин против стрептококкоза. По сравнению с эпизоотическими (полевыми) культурами стрептококков, предложенные вакцинные штаммы могут иметь один или несколько полиморфных вариаций (более 25) в нуклеотидной последовательности, что позволяет снижать вирулентность данных культур. В частности, такие аминокислотные замены находятся в генах вирулентности rpsL-S12 (рибосомный белок субъединицы 30S), АТЦ-связывающий мембранный белок ABC-транспортера (АВС-АТРВМР) и регулятор транскрипции marR. Способ получения рассматриваемого изобретения включает несколько последовательных стадий, а именно: 1) выращивание родительского штамма Streptococcus suis в присутствии мутагенного агента; 2) высев выживших клеток в соответствующую среду; 3) тестирование отдельных колоний путем инфицирования свиней для определения вирулентности. Штамм признается ослабленным, если после инфицирования свиней он не проявляет каких-либо клинических признаков инфекции. При составлении серии препарата, согласно изобретению, может быть использован адъювант, который представляет собой любое вещество, усиливающее иммунный ответ, по сравнению с серией вакцины, не имеющей адъювант в своем составе. Разработчиками делается акцент на том, что адъюванты на основе хитозана являются наиболее подходящими при составлении серии препарата. Способ применения рассматриваемого изобретения на свиньях имеет несколько вариаций. Первый вариант подразумевает «простую» (prime) иммунизацию животных, когда животным однократно или многократно вводится предложенный препарат. Вторая схема вакцинации ориентирована на прайм-бустерную (prime-boost) систему, которая подразумевает одну первичную иммунизацию и одну усиленную иммунизацию. Таким образом, серия вакцины для первичной иммунизации должна отличаться от серии вакцины для усиленной иммунизации. Вакцинация животных проводится с интервалом 1-6 недель, но предпочтительным является интервал 3-5 недель. Оценка эффективности предложенного препарата производится за счет инфицирования животных (свиней) через 2-4 недели после их последней иммунизации. Сама процедура инфицирования может быть произведена внутримышечно, подкожно, спрей методом, интраназально, интратрахеально, перорально, внутриокулярно. Недостатком рассматриваемого изобретения является ограниченный антигенный состав предлагаемого препарата, не способного обеспечить необходимую протективную защиту животных против стрептококков, кроме Streptococcus suis. Способ производства средства в полной мере не охватывает все технологические манипуляции, необходимые для выпуска серии вакцины, а ориентированы исключительно на этап культивирования производственных штаммов. Способ применения рассматриваемого прототипа, согласно патенту, ориентируется на иммунизацию свиноматок, в то время как предложенное изобретение акцентирует важность иммунизации не только свиноматок, но и их потомства. Данный подход способствует увеличению срока напряженности иммунитета у поросят, что благоприятно влияет на обеспечение эпизоотического благополучия на свинокомплексе.The closest analogue (prototype) of the method of application is the invention "Attenuated Streptococcus suis vaccines and methods of making and use thereof" [patent AU 2016222520 B2, publ. 2018.03.22]. The invention is focused on the use of attenuated strains of Streptococcus suis in the production of live vaccines against streptococcosis. Compared to epizootic (field) streptococcal cultures, the proposed vaccine strains may have one or more polymorphic variations (more than 25) in the nucleotide sequence, which makes it possible to reduce the virulence of these cultures. In particular, such amino acid substitutions are found in the virulence genes rpsL-S12 (ribosomal protein of the 30S subunit), the ATC-binding membrane protein of the ABC transporter (ABC-ATPBMP), and the transcriptional regulator marR. The method of obtaining the considered invention includes several sequential stages, namely: 1) growing the parental strain of Streptococcus suis in the presence of a mutagenic agent; 2) sowing the surviving cells into an appropriate medium; 3) testing of individual colonies by infection of pigs to determine virulence. A strain is considered weakened if, after infection of pigs, it does not show any clinical signs of infection. When composing a batch of a preparation according to the invention, an adjuvant can be used, which is any substance that enhances the immune response, compared to a batch of vaccines that does not have an adjuvant in its composition. The developers emphasize that chitosan-based adjuvants are the most suitable for the preparation of a batch of the drug. The method of application of the present invention to pigs has several variations. The first option implies “simple” (prime) immunization of animals, when the proposed drug is administered to the animals once or repeatedly. The second vaccination scheme is focused on a prime-boost system, which implies one primary immunization and one booster immunization. Thus, the primary vaccine lot must be different from the boosted vaccine lot. Animals are vaccinated at intervals of 1-6 weeks, but an interval of 3-5 weeks is preferred. Evaluation of the effectiveness of the proposed drug is carried out due to infection of animals (pigs) 2-4 weeks after their last immunization. The infection procedure itself can be performed intramuscularly, subcutaneously, by spray method, intranasally, intratracheally, orally, intraocularly. The disadvantage of this invention is the limited antigenic composition of the proposed drug, which is not able to provide the necessary protective protection of animals against streptococci, except for Streptococcus suis. The method of production of the product does not fully cover all the technological manipulations necessary for the release of a series of vaccines, but is focused exclusively on the stage of cultivation of industrial strains. The method of using the considered prototype, according to the patent, focuses on the immunization of sows, while the proposed invention emphasizes the importance of immunizing not only sows, but also their offspring. This approach helps to increase the duration of immunity in piglets, which favorably affects the provision of epizootic well-being in the pig farm.
Технической проблемой, на решение которой направлено данное изобретение, является необходимость создания безопасной вакцины против стрептококкоза свиней на основе сбалансированного антигенного состава, содержащего наиболее распространенные на территории РФ виды Streptococcus spp., способа ее получения и применения.The technical problem to be solved by this invention is the need to create a safe vaccine against swine streptococcosis based on a balanced antigenic composition containing the most common Streptococcus spp. Species in the territory of the Russian Federation, a method for its production and use.
Техническим результатом предлагаемого изобретения является создание вакцины с усиленной иммуногенной и антигенной активностью, индуцирующей напряженный и продолжительный иммунитет у свиней против стрептококкозов, вызванных видами S.suis, S.dysgalactiae, S.porcinus и S.pyogenes, что приводит к расширению арсенала поливалентных инактивированных вакцин, направленных на специфическую профилактику инфекционных болезней свиней.The technical result of the proposed invention is the creation of a vaccine with enhanced immunogenic and antigenic activity, inducing intense and long-term immunity in pigs against streptococcosis caused by S. suis, S. dysgalactiae, S. porcinus and S. pyogenes species, which leads to an expansion of the arsenal of polyvalent inactivated vaccines , aimed at the specific prevention of infectious diseases of pigs.
Раскрытие сущности изобретенияDisclosure of the essence of the invention
Вакцина против стрептоккокозов свиней поливалентная инактивированнаяVaccine against pigs streptococosis, polyvalent inactivated
Заявленная вакцина против стрептококкозов свиней инактивированная содержит в своем составе следующие компоненты из расчета на одну иммунизирующую дозу препарата (2 см3): инактивированные формалином протективные антигены штаммов Streptococcus suis № УР-4-ВБХ - 3,5 млрд. мкр. кл.; Streptococcus porcinus УР-3-ВБХ - 3,5 млрд. мкр. кл.; Streptococcus pyogenes ОБ-4-ВБХ - 3,5 млрд. мкр. кл.; Streptococcus dysgalactiae УР-16-ВБХ - 3,5 млрд. мкр. кл., а также фармацевтически приемлемые целевые добавки.The declared inactivated vaccine against swine streptococcosis contains the following components per one immunizing dose of the drug (2 cm 3 ): formalin-inactivated protective antigens of Streptococcus suis strains No. УР-4-ВБХ - 3.5 billion mcr. cl .; Streptococcus porcinus UR-3-VBH - 3.5 billion microns. cl .; Streptococcus pyogenes OB-4-VBH - 3.5 billion microns. cl .; Streptococcus dysgalactiae UR-16-VBKh - 3.5 billion mcr. class, as well as pharmaceutically acceptable target additives.
В качестве фармацевтически приемлемых целевых добавок вакцина, помимо антигенов, содержит:As pharmaceutically acceptable target additives, the vaccine, in addition to antigens, contains:
- инактивант, необходимый для обеззараживания бактериальных антигенов. В качестве инактиванта используется формалин из расчета 0,3% к объему бульонной культуры, содержащий не менее 37% формальдегида;- an inactivant necessary for the disinfection of bacterial antigens. As an inactivant, formalin is used at the rate of 0.3% to the volume of broth culture, containing at least 37% formaldehyde;
- консервант, необходимый для производства многодозовых фасовок препарата. В качестве стандартного консерванта используется водный раствор мертиолята натрия, вводимый в препарат из расчета 1:10000;- a preservative necessary for the production of multi-dose packaging of the drug. As a standard preservative, an aqueous solution of sodium merthiolate is used, introduced into the preparation at a rate of 1: 10000;
- разбавитель, необходимый для разведения концентрированного бактериального антигена до требуемой концентрации. В качестве растворителя используется стерильный фосфатно-буферный солевой раствор (PBS);- a diluent required to dilute the concentrated bacterial antigen to the required concentration. The solvent is sterile phosphate buffered saline (PBS);
- адъювант, необходимый для неспецифического усиления иммунного ответа к антигенам. В качестве адъюванта в предлагаемой вакцине применяют 2% раствор Карбопол-971, который вносят в количестве 10% от объема препарата;- an adjuvant necessary for the nonspecific enhancement of the immune response to antigens. As an adjuvant in the proposed vaccine, a 2% solution of Carbopol-971 is used, which is applied in an amount of 10% of the volume of the drug;
- для установления оптимального уровня водородных ионов в препарате используется 20% раствор гидроксида натрия, уровень рН препарата составляет 6,2-7,8.- to establish the optimal level of hydrogen ions in the preparation, a 20% sodium hydroxide solution is used, the pH level of the preparation is 6.2-7.8.
В готовом виде вакцина против стрептококкозов свиней инактивированная представляет собой суспензию для инъекций, цвет которой может варьировать от светлосерого до желто-серого, с серо-белым осадком, легко разбивающимся при взбалтывании в гомогенную взвесь.In the finished form, the inactivated vaccine against swine streptococcosis is a suspension for injection, the color of which can vary from light gray to yellow-gray, with a gray-white precipitate that easily breaks down when shaken into a homogeneous suspension.
Срок годности препарата составляет 18 месяцев с даты выпуска.The shelf life of the drug is 18 months from the date of release.
Входящие в состав вакцины бактериальные штаммы Streptococcus suis № УР-4-ВБХ, Streptococcus porcinus УР-3-ВБХ, Streptococcus pyogenes ОБ-4-ВБХ, Streptococcus dysgalactiae УР-16-ВБХ являются новыми производственными культурами и впервые используются в составе вакцинных препаратов для широкого применения. Все вновь предложенные штаммы бактерий депонированы в Государственной коллекции патогенных микроорганизмов и клеточных культур «ГКПМ-Оболенск» Федеральное бюджетное учреждение науки «Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии» (ФБУН ГНЦ ПМБ). Все культуры идентифицированы на базе лаборатории микробиологии с музеем типовых культур ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН посредством изучения культуральных, морфологических, ферментативных свойств и определением нуклеотидной последовательности гена 16S rRNA.The bacterial strains of Streptococcus suis No. УР-4-ВБХ, Streptococcus porcinus УР-3-ВБХ, Streptococcus pyogenes ОВ-4-ВБХ, Streptococcus dysgalactiae УР-16-ВБХ are new industrial crops and are used for the first time in vaccine preparations for widespread use. All newly proposed bacterial strains are deposited in the State Collection of Pathogenic Microorganisms and Cell Cultures "GKPM-Obolensk" Federal Budgetary Institution of Science "State Scientific Center for Applied Microbiology and Biotechnology" (FBUN SSC PMB). All cultures were identified on the basis of the laboratory of microbiology with the museum of type cultures of the Federal State Budgetary Scientific Institution FSC VIEW RAS by studying the cultural, morphological, enzymatic properties and determining the nucleotide sequence of the 16S rRNA gene.
Характеристика штаммовCharacterization of strains
Производственно-контрольные штаммы Streptococcus suis УР-4-ВБХ, Streptococcus porcinus УР-3-ВБХ, Streptococcus pyogenes ОБ-4-ВБХ, Streptococcus dysgalactiae УР-16-ВБХ используются для производства иммунобиологических лекарственных средств для ветеринарного применения впервые. Культуры обладают устойчивостью к диссоциации, технологичны, образуя рост на большинстве жидких питательных сред, а также вирулентны для лабораторных животных. Установление значения LD50 для каждого штамма возбудителя позволяет использовать их в качестве штаммов «пробойников» при контроле иммуногенной активности предложенного препарата.Production control strains Streptococcus suis UR-4-VBH, Streptococcus porcinus UR-3-VBH, Streptococcus pyogenes OB-4-VBH, Streptococcus dysgalactiae UR-16-VBH are used for the production of immunobiological drugs for veterinary use for the first time. Cultures are resistant to dissociation, are technologically advanced, forming growth on most liquid nutrient media, and are also virulent for laboratory animals. Establishing the value of LD 50 for each strain of the pathogen allows them to be used as strains of "piercers" when monitoring the immunogenic activity of the proposed drug.
Характеристика производственно-контрольных штаммов:Characteristics of production control strains:
1) Штамм Streptococcus suis № УР-4-ВБХ имеет следующие характеристики и свойства:1) Strain of Streptococcus suis No. УР-4-ВБХ has the following characteristics and properties:
Штамм депонирован в Государственной коллекции патогенных микроорганизмов и клеточных культур «ГКПМ-Оболенск» под регистрационным № В-8345.The strain was deposited in the State Collection of Pathogenic Microorganisms and Cell Cultures "GKPM-Obolensk" under registration number B-8345.
Дата, источник и место выделения: 08.2016 года от павших поросят, принадлежащих ООО СПК Машкино, Коломенский район Московская обл.Date, source and place of isolation: 08.2016 from dead piglets belonging to OOO SPK Mashkino, Kolomensky district, Moscow region.
Морфология: клетки сферические или немного овальные, диаметром 0,5-2,0 мкм, расположены парами или цепочками, неподвижные, неспорообразующие. Грамположительные. Каталазоотрицательные. Факультативные анаэробы. Растет лучше на богатых питательных средах.Morphology: spherical or slightly oval cells, 0.5-2.0 µm in diameter, arranged in pairs or chains, motionless, non-spore-forming. Gram positive. Catalase negative. Optional anaerobes. Grows best on rich nutrient media.
Культуральные свойства: при росте в жидких питательных средах образует равномерное помутнение среды с последующим выпадением культуры в осадок; на кровяном агаре в чашках Петри через 18-24 часа культивирования - мелкие, диаметром около 1 мм, круглые, полупрозрачные колонии. Колонии окружены зоной β- гемолиза.Cultural properties: when growing in liquid nutrient media, forms a uniform turbidity of the medium, followed by precipitation of the culture; on blood agar in Petri dishes after 18-24 hours of cultivation - small, about 1 mm in diameter, round, translucent colonies. The colonies are surrounded by a zone of β-hemolysis.
Биохимические свойства: Культура S. suis №УР-4-ВБХ: VP -, гидролиз эскулина +, бета-глюкоронидаза +, ферментирует с образованием кислоты: глюкозу +, инулин +, лактозу +, мальтозу +, салицин +, трегалозу +, сахарозу +, арабинозу -, глицерол -, маннитол -, мелицитозы -, рибозу -, сорбитол -.Biochemical properties: Culture S. suis No.UR-4-VBH: VP -, hydrolysis of esculin +, beta-glucuronidase +, ferments to form acid: glucose +, inulin +, lactose +, maltose +, salicin +, trehalose +, sucrose +, arabinose -, glycerol -, mannitol -, melicytosis -, ribose -, sorbitol -.
Вирулентность: Производственный штамм S. suis № УР-4-ВБХ вызывает гибель белых мышей массой 16-18 гр. при внутрибрюшинном введении культуры. Величина LD50 - 1,08*109 мкр. кл. Гибель белых мышей наступает в течение 4-10 суток после заражения.Virulence: Industrial strain S. suis No. UR-4-VBH causes the death of white mice weighing 16-18 g. with intraperitoneal injection of culture. The value of LD 50 is 1.08 * 10 9 md. cl. The death of white mice occurs within 4-10 days after infection.
2) Штамм Streptococcus pyogenes № ОБ-6-ВБХ имеет следующие характеристики и свойства:2) Strain of Streptococcus pyogenes No. OB-6-VBH has the following characteristics and properties:
Штамм депонирован в Государственной коллекции патогенных микроорганизмов и клеточных культур «ГКПМ-Оболенск» под регистрационным № В-8344.The strain was deposited in the State Collection of Pathogenic Microorganisms and Cell Cultures "GKPM-Obolensk" under registration number B-8344.
Дата, источник и место выделения: 07.2015 года от павших поросят ООО «ПсковАгроИнвест», Псковский район Псковской обл.Date, source and place of isolation: 07.2015 from dead piglets PskovAgroInvest LLC, Pskov district, Pskov region.
Морфология: Клетки сферические или немного овальные, диаметром 0,5-2,0 мкм, расположены парами или цепочками, неподвижные, неспорообразующие. Грамположительные. Факультативные анаэробы. Каталазоотрицательные. Растет лучше на богатых питательных средах.Morphology: Cells are spherical or slightly oval, 0.5-2.0 µm in diameter, arranged in pairs or chains, motionless, non-spore-forming. Gram positive. Optional anaerobes. Catalase negative. Grows best on rich nutrient media.
Культуральные свойства: при росте в бульоне образуют равномерное помутнение среды с последующим выпадением культуры в осадок; на кровяном агаре в чашках Петри через 18-24 часа культивирования - мелкие, диаметром около 1 мм, круглые, полупрозрачные колонии. Колонии окружены зоной β- гемолиза.Cultural properties: when growing in broth, they form a uniform turbidity of the medium, followed by precipitation of the culture; on blood agar in Petri dishes after 18-24 hours of cultivation - small, about 1 mm in diameter, round, translucent colonies. The colonies are surrounded by a zone of β-hemolysis.
Биохимические свойства: S. pyogenes № ОБ-6-ВБХ: ONPG -, VP -, ферментирует с образованием кислоты: фруктозу +, глюкозу +, галактозу +, лактозу +, салицин +, сахарозу +, адонитола -, арабинозу -, дульцитол -, сорбитол -.Biochemical properties: S. pyogenes No. OB-6-VBH: ONPG -, VP -, ferments to form acid: fructose +, glucose +, galactose +, lactose +, salicin +, sucrose +, adonitol -, arabinose -, dulcitol - , sorbitol -.
Вирулентность: Производственный штамм S. pyogenes № ОБ-6-ВБХ вызывает гибель белых мышей массой 16-18 гр. при внутрибрюшинном введении культуры. Величина LD50 - 1,08*109 мкр. кл. Гибель белых мышей наступает в течение 4-10 суток после заражения.Virulence: Industrial strain S. pyogenes No. OB-6-VBH causes the death of white mice weighing 16-18 g. with intraperitoneal injection of culture. The value of LD 50 is 1.08 * 10 9 md. cl. The death of white mice occurs within 4-10 days after infection.
3) Штамм Streptococcus porcinus № УР-3-ВБХ имеет следующие характеристики и свойства:3) Strain of Streptococcus porcinus No. УР-3-ВБХ has the following characteristics and properties:
Штамм депонирован в Государственной коллекции патогенных микроорганизмов и клеточных культур «ГКПМ-Оболенск» под регистрационным № В-8343.The strain was deposited in the State Collection of Pathogenic Microorganisms and Cell Cultures "GKPM-Obolensk" under registration number B-8343.
Дата, источник и место выделения: 12.2015 года от павших поросят СПА «Колхоз имени Ворошилова», Новоалександровский район Ставропольского края.Date, source and place of isolation: 12.2015 from dead piglets SPA "Kolkhoz named after Voroshilov", Novoaleksandrovsky district, Stavropol Territory.
Морфология: клетки сферические или немного овальные, диаметром 0,5-2,0 мкм, расположены парами или цепочками, неподвижные, неспорообразующие. Грамположительные. Факультативные анаэробы. Каталазоотрицательные. Растет лучше на богатых питательных средах.Morphology: spherical or slightly oval cells, 0.5-2.0 µm in diameter, arranged in pairs or chains, motionless, non-spore-forming. Gram positive. Optional anaerobes. Catalase negative. Grows best on rich nutrient media.
Культуральные свойства: при росте в бульоне образуют равномерное помутнение среды с последующим выпадением культуры в осадок; на кровяном агаре в чашках Петри через 18-24 часа культивирования - мелкие, диаметром около 1 мм, круглые, полупрозрачные колонии. Колонии окружены зоной β- гемолиза.Cultural properties: when growing in broth, they form a uniform turbidity of the medium, followed by precipitation of the culture; on blood agar in Petri dishes after 18-24 hours of cultivation - small, about 1 mm in diameter, round, translucent colonies. The colonies are surrounded by a zone of β-hemolysis.
Биохимические свойства: культура S. porcinus № УР-3-ВБХ: VP +, эскулин +, арабиноза -, дульцитол -, глюкоза -, инозитол -, лактоза -, мальтоза +, маннитол +, раффиноза +, рамноза -, салицин +, сорбитол +, трегалоза +.Biochemical properties: culture of S. porcinus No. UR-3-VBH: VP +, esculin +, arabinose -, dulcitol -, glucose -, inositol -, lactose -, maltose +, mannitol +, raffinose +, rhamnose -, salicin +, sorbitol +, trehalose +.
Вирулентность: Производственный штамм porcinus № УР-3-ВБХ: вызывает гибель белых мышей массой 16-18 гр. при внутрибрюшинном введении культуры. Величина LD50 - 1,08*109 мкр. кл. Гибель белых мышей наступает в течение 4-10 суток после заражения.Virulence: Industrial porcinus strain No. UR-3-VBH: causes the death of white mice weighing 16-18 grams. with intraperitoneal injection of culture. The value of LD 50 is 1.08 * 10 9 md. cl. The death of white mice occurs within 4-10 days after infection.
4) Штамм Streptococcus dysgalactiae № УР-16-ВБХ имеет следующие характеристики и свойства:4) Strain of Streptococcus dysgalactiae No. UR-16-VBH has the following characteristics and properties:
Штамм депонирован в Государственной коллекции патогенных микроорганизмов и клеточных культур «ГКПМ-Оболенск» под регистрационным № В-8342.The strain was deposited in the State Collection of Pathogenic Microorganisms and Cell Cultures "GKPM-Obolensk" under registration number B-8342.
Дата, источник и место выделения: 11.2016 года от маститной свиноматки АО «Агрофирма Дмитрова Гора», Конаковский район Тверской области.Date, source and place of isolation: 11.2016 from a mastitis sow of JSC "Agrofirma Dmitrova Gora", Konakovsky district, Tver region.
Морфология: клетки сферические или немного овальные, диаметром 0,5-2,0 мкм, расположены парами или цепочками, неподвижные, неспорообразующие. Грамположительные. Факультативные анаэробы. Каталазоотрицательные. Растет лучше на богатых питательных средах.Morphology: spherical or slightly oval cells, 0.5-2.0 µm in diameter, arranged in pairs or chains, motionless, non-spore-forming. Gram positive. Optional anaerobes. Catalase negative. Grows best on rich nutrient media.
Культуральные свойства: при росте в бульоне образует равномерное помутнение среды с последующим выпадением культуры в осадок; на кровяном агаре в чашках Петри через 18-24 часа культивирования - мелкие, диаметром около 1 мм, круглые, полупрозрачные колонии. Колонии окружены зоной β-гемолиза.Cultural properties: when growing in broth, it forms a uniform turbidity of the medium, followed by precipitation of the culture; on blood agar in Petri dishes after 18-24 hours of cultivation - small, about 1 mm in diameter, round, translucent colonies. The colonies are surrounded by a zone of β-hemolysis.
Биохимические свойства: Культура штамма S. dysgalactiae № УР-16-ВБХ: VP-, эскулин-, арабиноза+, дульцитол-, фруктоза+, галактоза+, глюкоза+, инозитол-, лактоза+, мальтоза+, маннитол-, раффиноза-, салицин-, сорбитол-, сахароза+, трегалоза+, ксилоза+.Biochemical properties: Culture of S. dysgalactiae strain No. UR-16-VBH: VP-, esculin-, arabinose +, dulcitol-, fructose +, galactose +, glucose +, inositol-, lactose +, maltose +, mannitol-, raffinose- , salicin-, sorbitol-, sucrose +, trehalose +, xylose +.
Вирулентность: Производственный штамм S. dysgalactiae № УР-16-ВБХ вызывает гибель белых мышей массой 16-18 гр. при внутрибрюшинном введении культуры. Величина Ld50 - 1,08*109 мкр. кл. Гибель белых мышей наступает в течение 4-10 суток после заражения.Virulence: Industrial strain S. dysgalactiae No. УР-16-ВБХ causes the death of white mice weighing 16-18 grams. with intraperitoneal injection of culture. The Ld 50 value is 1.08 * 10 9 mcr. cl. The death of white mice occurs within 4-10 days after infection.
Способ получения вакцины:Vaccine production method:
Вакцина изготовлена из четырех штаммов рода Streptococcus: S. suis № УР-4-ВБХ, S. pyogenes № ОБ-6-ВБХ, S. porcinus № УР-3-ВБХ, S. dysgalactiae № УР-6-ВБХ. Все штаммы выделены при бактериологических исследованиях патологического материала от животных, павших или вынужденно убитых, с признаками инфекционного заболевания, клинически соответствующего стрептококковой инфекции.The vaccine is made from four strains of the genus Streptococcus: S. suis No. UR-4-VBH, S. pyogenes No. OB-6-VBH, S. porcinus No. UR-3-VBH, S. dysgalactiae No. UR-6-VBH. All strains were isolated during bacteriological studies of pathological material from animals that died or were forcedly killed, with signs of an infectious disease clinically corresponding to streptococcal infection.
Все штаммы хранятся в виде живых лиофилизированных культур.All strains are stored as live lyophilized cultures.
Для изготовления экспериментальных и опытно-промышленных серий вакцины используются полуфабрикаты - инактивированные формалином (0,3% к объему) антигены Streptococcus suis, S. porcinus, S. pyogenes, S. dysgalactiae, полученные методом глубинного культивирования и концентрированные до 100±5 млрд.м.к./см3.For the manufacture of experimental and pilot-industrial series of vaccines, semi-finished products are used - formalin-inactivated (0.3% by volume) antigens of Streptococcus suis, S. porcinus, S. pyogenes, S. dysgalactiae, obtained by submerged cultivation and concentrated up to 100 ± 5 billion. m.c. / cm 3 .
Способ получения вакцины против стрептококкоза свиней инактивированной.A method of obtaining a vaccine against pigs streptococcosis inactivated.
Получение заявляемого препарата подразумевает реализацию следующих последовательных этапов:Obtaining the proposed drug implies the implementation of the following sequential steps:
1) Культивирование производственных штаммов глубинным методом;1) Cultivation of industrial strains by the deep method;
2) Инактивацию полученной культуральной жидкости;2) Inactivation of the obtained culture liquid;
3) Концентрирование антигенов;3) Concentration of antigens;
4) Определение полноты инактивации антигенов;4) Determination of the completeness of antigen inactivation;
5) Составление серии вакцины;5) Compilation of a series of vaccines;
6) Контроль стерильности вакцины;6) Control of vaccine sterility;
7) Определение безвредности вакцины;7) Determination of the harmlessness of the vaccine;
8) Определение иммуногенной и антигенной активности вакцины.8) Determination of the immunogenic and antigenic activity of the vaccine.
Для глубинного культивирования стрептококков при производстве вакцины, могут быть использованы бульон Хоттингера, триптон-соевый бульон, мясопептонный забуференный бульон и иные среды, обладающие необходимыми ростообеспечивающими свойствами.For deep cultivation of streptococci in the production of vaccines, Hottinger's broth, tryptone-soy broth, mesopatamia buffered broth and other media with the necessary growth-supporting properties can be used.
Последовательность подготовки маточной расплодки штаммов стрептококков:The sequence of preparation of the uterine brood of streptococcal strains:
- в первый день лиофилизированные культуры ресуспендируют в физиологическом растворе, переносят в пробирки для первичного накопления и высевают на агаризированную ростообеспечивающую среду для оценки морфологии колоний. Подготовка каждого штамма производится по отдельности. Культивирование первой генерации продолжается в течение 18-24 часов в аэробных условиях при температуре 37°С;- on the first day, the lyophilized cultures are resuspended in saline, transferred to tubes for primary accumulation and plated on agar growth medium to assess colony morphology. Each strain is prepared separately. The cultivation of the first generation continues for 18-24 hours under aerobic conditions at a temperature of 37 ° C;
- на второй день первичную расплодку контролируют по типичности роста, схожести морфологических и тинкториальных свойств культуры, а также на отсутствие посторонней микрофлоры в жидких и на агаризированных расплодках. При соответствии первой генерации штамма заявленным требованиям проводят пересев для получения второй генерации. Полученные посевы культивируют в течение 18-24 часов в аэробных условиях при температуре 37°С. Для получения максимального накопления бактериальных клеток в бульонной среде пробирки помещают на шейкер для постоянного помешивания при 120-150 об/мин.;- on the second day, the primary brood is monitored according to the typical growth, the similarity of the morphological and tinctorial properties of the culture, as well as the absence of foreign microflora in liquid and agarized broods. If the first generation of the strain meets the stated requirements, reseeding is carried out to obtain the second generation. The obtained crops are cultivated for 18-24 hours under aerobic conditions at a temperature of 37 ° C. To obtain the maximum accumulation of bacterial cells in the broth medium, the tubes are placed on a shaker for constant stirring at 120-150 rpm;
- на третий день, после проведения контроля качества расплодки по ранее обозначенным параметрам, проводят пересев бульонной культуры каждого штамма из пробирок во флаконы со свежей питательной средой (не менее 100 мл). Полученные посевы культивируют в течении 18-24 часов в аэробных условиях при температуре 37°С. Для получения максимального накопления бактериальных клеток в бульонной среде флаконы помещают на шейкер для постоянного помешивания при 120-150 об/мин.;- on the third day, after the quality control of the brood according to the previously indicated parameters, the broth culture of each strain is subcultured from test tubes into vials with fresh nutrient medium (at least 100 ml). The obtained crops are cultivated for 18-24 hours under aerobic conditions at a temperature of 37 ° C. To obtain the maximum accumulation of bacterial cells in the broth medium, the vials are placed on a shaker for constant stirring at 120-150 rpm;
- на четвертый день, после предварительного контроля расплодки, проводится пересев всего объема флакона в бутыли с питательной средой, которые в последующем используются для засева в реакторы. Маточную культуру готовят из расчета 10% к объему питательной среды в реакторе. Культивируют посевы 18-24 часа в аэробных условиях при температуре 37°С;- on the fourth day, after preliminary control of the brood, the entire volume of the bottle is reseeded in bottles with a nutrient medium, which are subsequently used for inoculation into reactors. The mother culture is prepared at the rate of 10% to the volume of the nutrient medium in the reactor. Crops are cultivated for 18-24 hours under aerobic conditions at a temperature of 37 ° C;
- на пятый день проводят культивирование производственных штаммов в ферментере при температурном режиме 37°С и значении рН среды 7,2-7,8. Для достижения максимального накопления бактериальных клеток, в питательную среду дополнительно вносят 1-3% сыворотки крови крупного рогатого скота или лошади. При слабо выраженном росте стрептококков дополнительно вносят 2-3% свежеприготовленного дрожжевого экстракта, что обеспечивает стабильно высокое накопление бактериальной массы.- on the fifth day, the production strains are cultivated in a fermenter at a temperature of 37 ° C and a pH value of 7.2-7.8. To achieve the maximum accumulation of bacterial cells, 1-3% of blood serum of cattle or horses is additionally added to the nutrient medium. With a weakly expressed growth of streptococci, 2-3% of freshly prepared yeast extract is additionally introduced, which ensures a consistently high accumulation of bacterial mass.
Для поддержания необходимого уровня питательных веществ в среду вносят 40%-ный раствор глюкозы из расчета 0,5-1 литр глюкозы на 100 литров питательной среды 1 раз в час, в зависимости от интенсивности роста культуры. Уровень рН во время культивирования поддерживается 10%-ным раствором щелочи. Данный способ культивирования позволяет добиться через 12-14 часов культивирования накопления биомассы до 8,0 млрд. м.к./см.To maintain the required level of nutrients, a 40% glucose solution is introduced into the medium at the rate of 0.5-1 liter of glucose per 100 liters of the nutrient medium 1 time per hour, depending on the intensity of culture growth. The pH level during cultivation is maintained with a 10% alkali solution. This method of cultivation makes it possible to achieve biomass accumulation up to 8.0 billion MC / cm after 12-14 hours of cultivation.
Для инактивации выращенной культуральной жидкости стрептококков в ферментер вносят формалин, содержащий не менее 37% формальдегида, 0,3% к объему культуральной жидкости. Инактивацию проводят в течение 3 суток при комнатной температуре (22±2°С) и периодическом перемешивании через каждые 12 часов.To inactivate the cultured culture liquid of streptococci, formalin is added to the fermenter containing at least 37% formaldehyde, 0.3% by volume of the culture liquid. Inactivation is carried out for 3 days at room temperature (22 ± 2 ° C) and periodic stirring every 12 hours.
Концентрирование культур проводят центрифугированием при 5-6 тыс.об. /мин. в течение 2 часов или сепарированием при 12-15 тысячах оборотах в зависимости от используемого оборудования.Concentration of cultures is carried out by centrifugation at 5-6 thousand rpm. / min. within 2 hours or by separation at 12-15 thousand revolutions, depending on the equipment used.
Полноту инактивации бактериальной массы стрептококков проверяют путем посева концентрированного антигена на ростообеспечивающие питательные среды согласно ГОСТ 25085, а также по безвредности инактивированной бактериальной массы в биопробе на лабораторных мышах массой 16-18 гр., которым подкожно однократно вводятся антигены, предварительно разведенные 1:10 водой для инъекций, в объеме 0,5 см3. Для оценки безвредности каждой серии антигена каждого штамма стрептококков используется по три подопытные мыши. Наблюдение за опытными животными продолжается в течение 10 суток. Препарат считается инактивированным в случае отсутствия роста культур стрептококков и иных микроорганизмов на питательных средах, а также отсутствию каких-либо местных и системных реакций, в том числе гибели, у подопытных животных.The completeness of inactivation of the bacterial mass of streptococci is checked by inoculating a concentrated antigen on growth-supporting nutrient media in accordance with GOST 25085, as well as by the harmlessness of the inactivated bacterial mass in a bioassay on laboratory mice weighing 16-18 grams, which are once subcutaneously injected with antigens previously diluted 1:10 with water for injection, in a volume of 0.5 cm 3 . Three experimental mice are used to assess the safety of each series of antigen for each strain of streptococci. Observation of the experimental animals continues for 10 days. The drug is considered inactivated if there is no growth of cultures of streptococci and other microorganisms on nutrient media, as well as the absence of any local and systemic reactions, including death, in experimental animals.
Составление серии вакцины.Compilation of a vaccine batch.
Предлагаемая вакцина против стрептококкозов свиней инактивированная производится путем смешивания определенных объемов инактивированных антигенов S. suis, S. pyogenes, S. porcinus и S. Dysgalactiae с адъювантом - 2% раствором карбопола-971 (10% от объема), консервантом - 10% раствором мертиолята натрия (до конечной концентрации 1:10000) и разбавителем - фосфатно-буферным раствором (PBS) до требуемого объема.The proposed inactivated vaccine against swine streptococcosis is produced by mixing certain volumes of inactivated S. suis, S. pyogenes, S. porcinus and S. Dysgalactiae antigens with an adjuvant - 2% carbopol-971 solution (10% by volume), preservative - 10% merthiolate solution sodium (to a final concentration of 1: 10000) and a diluent - phosphate buffered saline (PBS) to the required volume.
При компоновке препарата в стерильный реактор вносят необходимое количество PBS, после чего в него поэтапно добавляют антигены четырех производственных культур с установленной концентрацией. После равномерного смешивания инактивированных бактериальных антигенов, в реактор подают адъювант в количестве 10% от объема препарата, и консервант - раствор мертиолята натрия в объеме 1 часть консерванта на 10000 частей препарата, после чего вносят разбавитель до требуемого объема. Концентрация бактериальных антигенов в препарате составляет 14 млрд.м.к./см3, что соответствует 3,5 млрд. мкр. кл. /см каждого штамма. После получения, при постоянном помешивании однородной суспензии, устанавливается рекомендуемый уровень водородных ионов (6,2-7,8). Пропись состава вакцины объемом 100 литров (50 тысяч доз) приведена в таблице №1.When assembling the preparation, the required amount of PBS is introduced into a sterile reactor, after which antigens of four industrial cultures with a specified concentration are added in stages. After uniform mixing of inactivated bacterial antigens, an adjuvant is fed into the reactor in an amount of 10% of the volume of the preparation, and the preservative is a solution of sodium merthiolate in a volume of 1 part of the preservative per 10,000 parts of the preparation, after which the diluent is added to the required volume. The concentration of bacterial antigens in the preparation is 14 billion mc / cm 3 , which corresponds to 3.5 billion mcr. cl. / cm of each strain. After receiving, with constant stirring of a homogeneous suspension, the recommended level of hydrogen ions (6.2-7.8) is established. The recipe for the composition of the vaccine with a volume of 100 liters (50 thousand doses) is shown in Table 1.
Формалин, используемый в качестве инактиванта на этапе получения инактивированных антигенов, также имеет второе предназначение - консервация готового продукта, после составления серии препарата. Данный подход особенно необходим для препаратов, выпускаемых в многодозовых флаконах, так как неоднократное введение иглы во флакон, способно привести к контаминации вакцины, ввиду этого формалин так же стоит рассматривать как целевую добавку.Formalin, used as an inactivant at the stage of obtaining inactivated antigens, also has a second purpose - the preservation of the finished product, after the preparation of a batch of the drug. This approach is especially necessary for drugs produced in multi-dose vials, since repeated insertion of a needle into a vial can lead to contamination of the vaccine, in view of this, formalin should also be considered as a targeted additive.
Контроль стерильности вакцины выполняется в соответствии с ГОСТ 28085-2013 «Средства лекарственные биологические для ветеринарного применения».The control of the sterility of the vaccine is carried out in accordance with GOST 28085-2013 "Biological medicinal products for veterinary use".
Определение иммуногенной активности вакцины проводят с использованием белых мышей и культур стрептококков S. suis УР-4-ВБХ, S. porcinus УР-3-ВБХ, S. pyogenes ОБ-4-ВБХ, S. dysgalactiae УР-16-ВБХ.Determination of the immunogenic activity of the vaccine is carried out using white mice and cultures of streptococci S. suis UR-4-VBH, S. porcinus UR-3-VBH, S. pyogenes OB-4-VBH, S. dysgalactiae UR-16-VBH.
Для проведения испытаний формируют восемь групп белых мышей массой 16-20 г. по 10 голов в каждой (всего 4 опытные группы и 4 контрольные группы: по 1 опытной и контрольной группе на каждый штамм). Вакцину вводят белым мышам опытных групп двукратно с интервалом 21-24 дня подкожно в области холки в дозе по 0,5 мл. Контрольных мышей не иммунизируют. Через 14-16 дней после повторного введения проводят заражение вакцинированных и контрольных мышей-аналогов каждым штаммом, входящим в состав препарата (например: 1 опытную и контрольную группу - Streptococcus suis УР-4-ВБХ; 2 опытную и контрольную группу -Streptococcus porcinus УР-3-ВБХ; 3 опытную и контрольную группу - Streptococcus pyogenes ОБ-4-ВБХ; 4 опытную и контрольную группу - Streptococcus dysgalactiae УР-16-ВБХ). Для заражения используют суточные агаровые культуры стрептококков, которые вводят белым мышам внутрибрюшинно в дозе 5 LD50 в объеме 0,5 мл. Срок наблюдения за всеми животными составляет 10 суток. Значение LD50 заражающих культур стрептококков определяют путем подтитровки на белых мышах той же партии, каждый раз перед проведением опыта по оценке иммуногенности серии вакцины в связи с быстрой утратой штаммами вирулентности при пересевах. Одновременно с заражением мышей проводится контроль метода введения, для чего дополнительно используются 10 мышей, которым внутрибрюшинно вводится стерильный физиологический раствор в дозе 0,5 мл. Срок наблюдения за всеми животными составляет 10 суток. Серию вакцины считают активной, если по окончании срока наблюдения остаются живыми не менее 80% иммунизированных белых мышей в каждой опытной группе, при гибели не менее 80% белых мышей в каждой контрольной группе. При этом, на момент окончания учета результатов, должны выжить не менее 90% мышей, которым вводили физиологический раствор; в противном случае опыт повторяют.For testing, eight groups of white mice weighing 16-20 g are formed, 10 heads each (a total of 4 experimental groups and 4 control groups: 1 experimental and control group for each strain). The vaccine is administered to white mice of the experimental groups twice with an interval of 21-24 days subcutaneously in the area of the withers in a dose of 0.5 ml. Control mice are not immunized. In 14-16 days after repeated administration, vaccinated and control analogous mice are infected with each strain included in the preparation (for example: 1 experimental and control group - Streptococcus suis UR-4-VBH; 2 experimental and control group - Streptococcus porcinus UR- 3-VBH; 3 experimental and control group - Streptococcus pyogenes OB-4-VBH; 4 experimental and control group - Streptococcus dysgalactiae UR-16-VBH). For infection, daily agar cultures of streptococci are used, which are administered to white mice intraperitoneally at a dose of 5 LD 50 in a volume of 0.5 ml. The observation period for all animals is 10 days. The LD 50 value of infecting streptococcal cultures is determined by titrating on white mice of the same batch, each time before conducting an experiment to assess the immunogenicity of a vaccine batch in connection with the rapid loss of virulence by strains during passages. Simultaneously with the infection of the mice, the method of administration is monitored, for which 10 mice are additionally used, which are injected intraperitoneally with a sterile saline solution at a dose of 0.5 ml. The observation period for all animals is 10 days. A series of vaccines is considered active if at the end of the observation period at least 80% of immunized white mice in each experimental group remain alive, with the death of at least 80% of white mice in each control group. At the same time, at the time of the end of the registration of the results, at least 90% of the mice injected with saline should survive; otherwise the experiment is repeated.
Выпущенные описанным способом три серии вакцины были апробированы в условиях вивария, а также на свиноводческих предприятиях, неблагополучных по стрептококкозам. В рамках апробации была подтверждена безвредность препарата и его специфическая эффективность.Released by the described method, three series of vaccines were tested in vivarium conditions, as well as at pig breeding enterprises, unfavorable for streptococcosis. Within the framework of approbation, the harmlessness of the drug and its specific efficacy were confirmed.
Контроль антигенной активности предложенного препарата проводится в пробирочной реакции агглютинации.Control of the antigenic activity of the proposed drug is carried out in a test tube agglutination reaction.
Для проведения исследования вакцину предварительно вводят 40 белым мышам массой 16-18 г двукратно подкожно с интервалом 21-24 дня в области холки в объеме 0,5 мл. Через 14-16 дней после повторного введения у вакцинированных и контрольных мышей-аналогов проводят взятие крови для получения сывороток (фатально). Всю полученную сыворотку крови от мышей объединяют в общий пул и используют для постановки реакции агглютинации с целью определения титра антител к S. suis, S. dysgalactiae, S. porcinus, S. pyogenes - положительная проба. С целью контроля фонового уровня антител у подопытных животных дополнительно производят отбор крови у 10 невакцинированных мышей. Сыворотки перед использованием прогревают на водяной бане при 56°С в течение 30 мин.For the study, the vaccine is preliminarily administered to 40 white mice weighing 16-18 g twice subcutaneously with an interval of 21-24 days at the withers in a volume of 0.5 ml. 14-16 days after re-administration, the vaccinated and control analog mice are bled to obtain sera (fatal). All the obtained blood serum from mice is combined into a common pool and used for staging an agglutination reaction in order to determine the titer of antibodies to S. suis, S. dysgalactiae, S. porcinus, S. pyogenes - a positive test. In order to control the background level of antibodies in experimental animals, blood is additionally taken from 10 unvaccinated mice. Before use, the sera are heated in a water bath at 56 ° C for 30 min.
Полученную сыворотку подвергают двукратному разведению: 1:2, 1:4, 1:8, 1:16, 1:32 стерильным физиологическим раствором. Антиген для опыта получают путем культивирования контрольно-производственных штаммов на агаре МПА. В последующем культуру смывают стерильным физиологическим раствором. Прогревают при 56°С в течение 30 мин, и доводят до концентрации 2 млрд. мкр. кл. см3. В последующем производится смешивание сыворотки и антигена соответствующего штамма в равных объемах (по 0,5 см3). Контролем служит испытуемая культура, смешанная с физиологическим раствором (рН 7,2-7,4) и с нормальной кроличьей сывороткой, разведенной 1:10 (для исключения самоагглютинации культуры). Помимо этого, в контроле также исследуются сыворотки, полученные от невакцинированных мышей. Смешанные сыворотки с антигеном инкубируются при 37°С в течение 18-24 часов.The resulting serum is subjected to a two-fold dilution: 1: 2, 1: 4, 1: 8, 1:16, 1:32 with sterile saline. The antigen for the experiment is obtained by culturing control-production strains on MPA agar. Subsequently, the culture is washed off with sterile saline. The mixture is heated at 56 ° C for 30 minutes and brought to a concentration of 2 billion microns. cl. cm 3 . Subsequently, the serum and antigen of the corresponding strain are mixed in equal volumes (0.5 cm 3 each). A test culture mixed with saline (pH 7.2-7.4) and with normal rabbit serum diluted 1:10 (to exclude self-agglutination of the culture) serves as a control. In addition, sera obtained from unvaccinated mice are also examined in the control. The mixed sera with antigen are incubated at 37 ° C for 18-24 hours.
Результаты исследования интерпретируют следующим образом:The research results are interpreted as follows:
«++++» - полное просветление жидкости, антиген осел на дне пробирки в виде «зонтика», при встряхивании пробирки осадок разбивается в хлопья при прозрачной жидкости (100%-ная агглютинация);"++++" - complete clarification of the liquid, the antigen has settled at the bottom of the test tube in the form of an “umbrella”, when the test tube is shaken, the precipitate breaks up into flakes with a clear liquid (100% agglutination);
«+++» - неполное просветление жидкости, четко выраженный «зонтик» (75%-ная агглютинация);"+++" - incomplete clarification of the liquid, pronounced "umbrella" (75% agglutination);
«++» - имеются просветления жидкости, «зонтик» умеренно выражен (50%-ная агглютинация);"++" - there are liquid clarifications, the "umbrella" is moderately pronounced (50% agglutination);
«+» - едва заметное просветление, «зонтик» едва заметен, при встряхивании обнаруживается небольшое количество хлопьев агглютината (25%-ная агглютинация);"+" - barely noticeable enlightenment, the "umbrella" is barely noticeable, when shaking, a small amount of agglutinate flakes is found (25% agglutination);
«-» - просветления жидкости нет, «зонтик» отсутствует, осадок легко взмучивается при отсутствии хлопьев агглютината.“-” - there is no clarification of the liquid, there is no “umbrella”, the sediment is easily agitated in the absence of agglutinate flakes.
Вакцину считают иммуногенной, если в сыворотке крови вакцинированных мышей в реакции агглютинации титр специфических антител к антигенам S. suis, S. dysgalactiae, S. porcinus и S. pyogenes не менее, чем на 2(log2) выше по сравнению с соответствующим значением в сыворотке крови мышей контрольной группы. При этом агглютинация антигенов и сыворотки должна проходить не менее чем на 3 креста. Так же должна отсутствовать самоагглютинация антигена с физиологическим раствором и нормальной кроличьей сывороткой.The vaccine is considered immunogenic if in the blood serum of vaccinated mice in the agglutination reaction the titer of specific antibodies to the antigens of S. suis, S. dysgalactiae, S. porcinus and S. pyogenes is not less than 2 (log 2 ) higher than the corresponding value in serum of mice of the control group. In this case, the agglutination of antigens and serum should take place at least 3 crosses. There should also be no self-agglutination of the antigen with saline and normal rabbit serum.
Способ применения поливалентной инактивированной вакцины против стрептококкоза свинейMethod of application of polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis
Вакцина предназначена для профилактики стрептококкозов у свиней всех возрастных групп в хозяйствах, неблагополучных по указанным заболеваниям. Вакцина вызывает формирование иммунитета к стрептококкозам, вызываемым S. suis, S. pyogenes, S. porcinus и S. dysgalactiae через 12-14 дней после повторного введения, который сохраняется не менее 6 месяцев. Колостральный иммунитет у поросят, полученных от иммунизированных свиноматок, сохраняется до 21 дня. Вакцина безвредна, лечебными свойствами не обладает.The vaccine is intended for the prevention of streptococcosis in pigs of all age groups in farms that are unfavorable for these diseases. The vaccine induces the formation of immunity to streptococcosis caused by S. suis, S. pyogenes, S. porcinus and S. dysgalactiae 12-14 days after repeated administration, which lasts for at least 6 months. Colostral immunity in piglets obtained from immunized sows lasts up to 21 days. The vaccine is harmless, has no medicinal properties.
Вакцину вводят супоросным свиноматкам внутримышечно в область верхней трети шеи (за ухом) в дозе 2 мл двукратно: первый раз - за 50-55 суток до опороса, второй раз - за 25-30 суток до опороса. В последующем вакцину вводят за 25-30 суток до каждого последующего опороса однократно в той же дозе. Не допускается проведение вакцинации свиноматок позже, чем за 25-30 суток до опороса, а также лактирующих животных.The vaccine is administered to pregnant sows intramuscularly in the upper third of the neck (behind the ear) in a dose of 2 ml twice: the first time - 50-55 days before farrowing, the second time - 25-30 days before farrowing. Subsequently, the vaccine is administered 25-30 days before each subsequent farrowing once in the same dose. It is not allowed to vaccinate sows later than 25-30 days before farrowing, as well as lactating animals.
Поросят вакцинируют, начиная с 14-дневного возраста. Вакцину вводят внутримышечно в бедренную группу мышц двукратно с интервалом 21-24 дня в дозе 2 мл, дополнительную ревакцинацию проводят в возрасте 4 мес. однократно.Piglets are vaccinated starting at 14 days of age. The vaccine is injected intramuscularly into the femoral muscle group twice with an interval of 21-24 days at a dose of 2 ml, additional revaccination is carried out at the age of 4 months. once.
Запрещено иммунизировать клинически больных и/или ослабленных животных.It is forbidden to immunize clinically sick and / or weakened animals.
Осуществление изобретенияImplementation of the invention
Приведенные ниже примеры являются иллюстративными и, тем самым, не ограничивают рамки настоящего изобретения.The examples below are illustrative and thus do not limit the scope of the present invention.
Пример №1. Культивирование производственных штаммов S. suis УР-4-ВБХ, S. porcinus УР-3-ВБХ, S. pyogenes ОБ-4-ВБХ, S. dysgalactiae УР-16-ВБХ проводили глубинным методом, каждый штамм выращивался отдельно.Example # 1. Cultivation of industrial strains S. suis UR-4-VBH, S. porcinus UR-3-VBH, S. pyogenes OB-4-VBH, S. dysgalactiae UR-16-VBH was carried out by the submerged method, each strain was grown separately.
Подготовка посевного материала проводилась следующим образом: в первый день работы проводили подготовку первой генерации посевного материала, для чего в ампулу с лиофильно высушенным штаммом вносили питательный бульон в объеме 1 мл для восстановления лиофилизата. Полученную суспензию в объеме 0,5 см3 переносили в пробирки с питательным бульоном и параллельно проводили рассев суспензии на чашки Петри с агаром Хоттингера с 10% дефибринированной кровью барана. Посевы культивировали 24±2 ч при температуре 37±1°С, после чего проводили изучение полученных колоний стрептококков по культуральным, морфологическим и тинкториальным свойствам, с целью определения типичности роста и отсутствия роста посторонней микрофлоры. Также культуры микроскопировали после окрашивания по методу Грама. При соответствии производственных штаммов заявленным требованиям и отсутствии посторонней микрофлоры полученные культуры пересевали во флаконы с питательных бульоном для накопления биомассы (1 пробирка на 250 см3 питательной среды).The preparation of inoculum was carried out as follows: on the first day of work, the first generation of inoculum was prepared, for which a nutrient broth in a volume of 1 ml was added to the ampoule with the freeze-dried strain to restore the lyophilisate. The resulting suspension in a volume of 0.5 cm 3 was transferred into tubes with nutrient broth and in parallel, the suspension was plated on Petri dishes with Hottinger's agar with 10% defibrinated ram blood. The inoculations were cultivated for 24 ± 2 h at a temperature of 37 ± 1 ° C, after which the obtained streptococcal colonies were studied by cultural, morphological and tinctorial properties in order to determine the typical growth and the absence of growth of extraneous microflora. Cultures were also microscoped after Gram staining. If the production strains comply with the stated requirements and the absence of extraneous microflora, the resulting cultures were subcultured into flasks with nutrient broth to accumulate biomass (1 test tube per 250 cm 3 nutrient medium).
Полученные флаконы культивировали в течение 24±2 часов при температуре 37±1°С для получения второй генерации штамма. Культуры во флаконах контролировали по культуральным, морфологическим и тинкториальным свойствам, с целью определения типичности роста и отсутствия роста посторонней микрофлоры.The resulting flasks were cultured for 24 ± 2 hours at a temperature of 37 ± 1 ° C to obtain the second generation of the strain. Cultures in flasks were monitored for cultural, morphological and tinctorial properties in order to determine the typical growth and the absence of growth of extraneous microflora.
Для получения необходимого количества бактериальной массы штаммов стрептококков проводили засев ферментера Sartorius «BIOSTAT-А». Культивирование штаммов проводили в бульоне Хоттингера, при этом объем маточной расплодки, вносимой в ферментер составлял 10% к объему питательной среды. Реакторное культивирование проводили при температуре 37°С и рН 7,0-7,8 в течение 14-16 часов, до прекращения стабильного увеличения концентрации бактериальных клеток. В процессе культивирования уровень водородных ионов питательной среды поддерживали на уровне 7,6-7,8 внесением 20% раствора едкого натра. Дополнительно проводили обогащение среды путем внесения через определенные промежутки времени 40% раствора глюкозы до концентрации 0,5% от объема среды.To obtain the required amount of bacterial mass of streptococcal strains, the Sartorius "BIOSTAT-A" fermenter was inoculated. The cultivation of the strains was carried out in Hottinger's broth, while the volume of brood brood introduced into the fermenter was 10% by volume of the nutrient medium. Reactor cultivation was carried out at a temperature of 37 ° C and a pH of 7.0-7.8 for 14-16 hours, until the end of a stable increase in the concentration of bacterial cells. During the cultivation, the level of hydrogen ions in the nutrient medium was maintained at the level of 7.6-7.8 by adding a 20% sodium hydroxide solution. Additionally, the medium was enriched by introducing at regular intervals a 40% glucose solution to a concentration of 0.5% of the medium volume.
Описанная схема культивирования позволяла добиться концентрации бактериальной суспензии стрептококков 8,3±1,8 млрд. мкр. кл. /см3.The described cultivation scheme made it possible to achieve a concentration of a bacterial suspension of streptococci of 8.3 ± 1.8 billion microns. cl. / cm 3 .
Пример №2. Инактивация бактериальной массы штаммов стрептококков.Example No. 2. Inactivation of the bacterial mass of streptococcal strains.
Полученную бактериальную массу стрептококков (пример №1) инактивировали внесением формалина, содержащего не менее 37% формальдегида, из расчета 0,3% к объему культуральной жидкости. Таким образом, к 2750 мл бульонной культуры, полученной методом глубинного культивирования, добавлялось 8,25 мл формалина. Инактивация производилась в течение 72 часов при температуре 21-22°С.The resulting bacterial mass of streptococci (example No. 1) was inactivated by introducing formalin containing at least 37% formaldehyde, at the rate of 0.3% by volume of the culture fluid. Thus, 8.25 ml of formalin was added to 2750 ml of broth culture obtained by submerged cultivation. Inactivation was carried out within 72 hours at a temperature of 21-22 ° C.
Пример №3. Концентрирование бактериальной массы стрептококков.Example No. 3. Concentration of the bacterial mass of streptococci.
Концентрирование полученной инактивированной бактериальной суспензии (пример №2) проводили центрифугированием на оборудовании MPW-380R в течение 1 часа при 3 тысячах оборотах, RCF - 1861. После центрифугирования и отделения надосадочной жидкости (фугата), бактериальную массу собирали в отдельную стерильную емкость, определяли ее объем и концентрацию и хранили при температуре 2-8°С до дальнейшего использования. Определение концентрации суспензии проводили с использованием стандартов мутности - набор ОСО мутности бактериальных взвесей ГКПМ ФГБУ «НЦЭСМП» Минздрава России. В результате данной манипуляции удается сконцентрировать бактериальные клетки в 10-15 раз, по сравнению с первоначальным объемом.Concentration of the resulting inactivated bacterial suspension (example No. 2) was carried out by centrifugation on MPW-380R equipment for 1 hour at 3 thousand revolutions, RCF - 1861. After centrifugation and separation of the supernatant (centrifuge), the bacterial mass was collected in a separate sterile container, it was determined volume and concentration and stored at 2-8 ° C until further use. Determination of the concentration of the suspension was carried out using turbidity standards - a set of TOC of turbidity of bacterial suspensions of the State Committee for the Provision of Mineral Resources of the Federal State Budgetary Institution "NTsESMP" of the Ministry of Health of Russia. As a result of this manipulation, it is possible to concentrate bacterial cells 10-15 times compared to the initial volume.
Пример №4. Определение полноты инактивации антигенов стрептококков.Example No. 4. Determination of the completeness of inactivation of streptococcal antigens.
Полноту инактивации антигенов оценивали по отсутствию жизнеспособных клеток в бактериальной массе путем посева образцов на ростообеспечивающие питательные среды в соответствии с ГОСТ 28085-2013 «Средства лекарственные биологические для ветеринарного применения. Метод бактериологического контроля стерильности». В результате проведенного контроля трех серий препарата была установлена их стерильность. Ни на одной из используемых сред роста посторонней микрофлоры не выявлено.The completeness of antigen inactivation was assessed by the absence of viable cells in the bacterial mass by inoculating samples on growth-supporting nutrient media in accordance with GOST 28085-2013 “Biological medicinal products for veterinary use. Method of bacteriological control of sterility ". As a result of the control carried out on three batches of the preparation, their sterility was established. No extraneous microflora was detected on any of the used growth media.
Также полноту инактивации оценивали по безвредности полученных антигенов в биопробе на лабораторных мышах массой 16-18 грамм. Бактериальную суспензию каждого штамма разводили водой для инъекций 1:10, тщательно перемешивали и вводили мышам подкожно в объеме 0,5 см, используя по четыре подопытных мыши на каждый антиген. Все антигены, используемые для компоновки трех серий вакцин, были стерильными и не вызывали гибель лабораторных животных в течение 14 дней наблюдения.Also, the completeness of inactivation was assessed by the safety of the obtained antigens in a bioassay on laboratory mice weighing 16-18 grams. The bacterial suspension of each strain was diluted 1:10 with water for injection, mixed thoroughly and injected subcutaneously in mice in a volume of 0.5 cm, using four experimental mice for each antigen. All antigens used for the composition of the three series of vaccines were sterile and did not cause death of laboratory animals within 14 days of observation.
Пример №5. Составление серии инактивированной вакцины против стрептококкозов свиней проводили по следующей методике.Example No. 5. Compilation of a series of inactivated vaccine against swine streptococcosis was carried out according to the following method.
При составлении серии вакцины в стерильной емкости проводили смешивание четырех инактивированных бактериальных антигенов производственных культур с фосфатно-буферным раствором в качестве разбавителя, карбополом 971 в качестве адъюванта, и мертиолятом натрия в качестве консерванта, устанавливая концентрацию бактериальных антигенов 14 млрд. мкр. кл./см3 (по 3,5 млрд. мкр. кл./см3 каждого штамма). Компоненты перемешивали до получения однородной суспензии, после чего устанавливали рН серии вакцины на уровне 6,2-7,8. Пропись состава вакцины при использовании данного варианта компоновки, приведена в таблице №2. Состав приведен из расчета объема выпускаемой серии 10 тысяч доз - 20 литров препарата.When composing a series of vaccines in a sterile container, four inactivated bacterial antigens of industrial cultures were mixed with phosphate buffered saline as a diluent, carbopol 971 as an adjuvant, and sodium merthiolate as a preservative, setting the concentration of bacterial antigens to 14 billion μR. cells / cm 3 (3.5 billion microns cells / cm 3 of each strain). The components were mixed until a homogeneous suspension was obtained, after which the pH of the vaccine batch was set at 6.2-7.8. The recipe for the composition of the vaccine when using this layout option is shown in Table 2. The composition is given on the basis of the volume of the produced batch of 10 thousand doses - 20 liters of the drug.
Полученная таким образом вакцина по внешнему виду представляет собой суспензию светло-серого цвета с серо-белым осадком, легко разбивающимся при взбалтывании в гомогенную взвесь.The vaccine thus obtained in appearance is a suspension of light gray color with a gray-white precipitate, which easily breaks down when shaken into a homogeneous suspension.
Пример №6. Определение стерильности вакциныExample No. 6. Determination of vaccine sterility
Контроль стерильности вакцины проводили согласно ГОСТ 28085-2013 «Средства лекарственные биологические для ветеринарного применения. Метод бактериологического контроля стерильности». Так, из каждого флакона (каждой серии) с лекарственным средством проводили посев на жидкие питательные среды - МПБ, МППБ (среда Китт-Тароцци), Сабуро, и на твердые питательные среды - МП А и Сабуро. Посев из каждого флакона проводили на три пробирки и две чашки с питательной средой. При посеве в среду Китт-Тароцци высев делали на две пробирки и два флакона. Для выявления аэробных микроорганизмов и факультативно-анаэробных микроорганизмов высевали по 0,5 см3 посевного материала в одну пробирку и 1-2 см3 в один флакон, а для выявления анаэробных микроорганизмов - соответственно по 1 и 5 см3. Пробирки и флаконы с посевами на всех средах, кроме среды Сабуро, культивировали в термостате при температуре (37±1)°С, на среде Сабуро - при температуре (22,5±2,5)°С, в течение 7 сут (для анаэробов - 14 сут). По истечении указанного срока делали пересев, за исключением посевов на МПА. Пересевали пробы на те же питательные среды и в тех же объемах, что и при посеве. Вторичные посевы также выдерживали 7 сут (для анаэробов - 14 сут). В результате проведенного контроля трех серий препарата была установлена их стерильность.The control of the sterility of the vaccine was carried out in accordance with GOST 28085-2013 “Biological medicinal products for veterinary use. Method of bacteriological control of sterility ". So, from each vial (each series) with the drug, inoculation was carried out on liquid nutrient media - MPB, MPPB (Kitt-Tarozzi medium), Saburo, and on solid nutrient media - MP A and Saburo. Inoculation from each vial was carried out on three tubes and two dishes with a nutrient medium. When sowing on Wednesday Kitt-Tarozzi, sowing was done in two test tubes and two bottles. To identify aerobic microorganisms and facultative anaerobic microorganisms, 0.5 cm 3 of inoculum was sown in one tube and 1-2 cm 3 in one bottle, and to identify anaerobic microorganisms - 1 and 5 cm 3 , respectively. Tubes and flasks with inoculations on all media except Sabouraud's medium were cultured in a thermostat at a temperature of (37 ± 1) ° С, in Sabouraud's medium - at a temperature of (22.5 ± 2.5) ° С, for 7 days (for anaerobes - 14 days). After the expiration of the specified period, reseeding was done, with the exception of crops on MPA. Samples were subcultured on the same nutrient media and in the same volumes as at inoculation. Secondary crops were also kept for 7 days (for anaerobes - 14 days). As a result of the control carried out on three batches of the preparation, their sterility was established.
Пример №7. Определение значения показателя Ld50 штаммов стрептококков.Example No. 7. Determination of the Ld value of 50 strains of streptococci.
Для определения вирулентности штаммов стрептококков использовали белых мышей массой 16-18 гр. Заражение мышей проводили путем внутрибрюшинного введения двукратных разведений суспензии бактериальных культур в концентрациях: 3,0*109 м.к., 3,0*108 м.к., 3,0*107 м.к., 3,0* 106 м.к. в объеме 0,5 см3. На каждую заражающую концентрацию использовали 10 мышей. Период наблюдения за животными составлял 10 суток с момента введения культур. Полученные результаты интерпретируют с использованием пробит-анализа при помощи программного обеспечения BioStat 2009.To determine the virulence of streptococcal strains, white mice weighing 16-18 g were used. Infection of mice was carried out by intraperitoneal injection of two-fold dilutions of a suspension of bacterial cultures at concentrations: 3.0 * 10 9 m.c., 3.0 * 10 8 m.c., 3.0 * 10 7 m.c., 3.0 * 10 6 m.c. in a volume of 0.5 cm 3 . For each challenge concentration, 10 mice were used. The observation period for the animals was 10 days from the moment of the introduction of the cultures. The results are interpreted using probit analysis using BioStat 2009 software.
Проведенные исследования позволили установить значение вирулентности контрольно-производственных штаммов стрептококков, используемых при оценке иммуногенной активности предложенной вакцины. В результате исследований получены следующие результаты значения Ld50 для контрольных штаммов: LD50 Streptococcus suis УР-4-ВБХ - 1,08*109 мкр. кл.; LD50 Streptococcus porcinus УР-3-ВБХ - 3,25*109 мкр. кл.; LD50 Streptococcus pyogenes ОБ-4-ВБХ - 2,95*108 мкр. кл.; LD50 Streptococcus dysgalactiae УР-16-ВБХ - 3,98×108 мкр. кл.The studies carried out made it possible to establish the value of the virulence of the control-production strains of streptococci used to assess the immunogenic activity of the proposed vaccine. As a result of the research, the following results were obtained for the Ld 50 value for the control strains: LD 50 Streptococcus suis UR-4-VBH - 1.08 * 10 9 μR. cl .; LD 50 Streptococcus porcinus UR-3-VBH - 3.25 * 10 9 md. cl .; LD 50 Streptococcus pyogenes OB-4-VBH - 2.95 * 10 8 md. cl .; LD 50 Streptococcus dysgalactiae UR-16-VBH - 3.98 × 10 8 μR. cl.
Пример №8. Определение иммуногенной активности вакцины в отношении S. suis, S. pyogenes, S. porcinus и S. dysgalactiae.Example No. 8. Determination of the immunogenic activity of the vaccine against S. suis, S. pyogenes, S. porcinus and S. dysgalactiae.
Для проведения испытаний формировали восемь групп белых мышей массой 16-20 г. по 10 голов в каждой (всего 4 опытные группы и 4 контрольные группы, по 1 опытной и контрольной группе на каждый штамм). Вакцину вводили белым мышам опытных групп двукратно с интервалом 21-24 дня подкожно в область холки в дозе по 0,5 мл. Контрольных мышей не иммунизировали. Через 14 дней после повторной вакцинации проводили заражение 10 вакцинированных и 10 контрольных мышей-аналогов каждым штаммом, входящим в состав препарата. А именно: 1 опытную и контрольную группу заражали штаммом Streptococcus suis УР-4-ВБХ; 2 опытную и контрольную группу заражали штаммом Streptococcus porcinus УР-3-ВБХ; 3 опытную и контрольную группу заражали штаммом Streptococcus pyogenes ОБ-4-ВБХ; 4 опытную и контрольную группу заражали штаммом Streptococcus dysgalactiae УР-16-ВБХ. Суспензию вводили белым мышам внутрибрюшинно в дозе 5 Ld50 в объеме 0,5 мл. Одновременно с заражением мышей проводили контроль метода введения, для чего дополнительно использовали 10 мышей, которым вводили стерильный физиологический раствор внутрибрюшинно в дозе 0,5 мл. Срок наблюдения за всеми животными составлял 10 суток.For testing, eight groups of white mice weighing 16-20 g were formed, 10 heads each (a total of 4 experimental groups and 4 control groups, 1 experimental and control group for each strain). The vaccine was administered to white mice of the experimental groups twice with an interval of 21-24 days subcutaneously in the area of the withers in a dose of 0.5 ml. Control mice were not immunized. 14 days after re-vaccination, 10 vaccinated and 10 control mice-analogs were infected with each strain included in the preparation. Namely: 1 experimental and control group were infected with the strain of Streptococcus suis UR-4-VBH; 2 experimental and control groups were infected with the strain of Streptococcus porcinus UR-3-VBH; 3 experimental and control groups were infected with the Streptococcus pyogenes OB-4-VBH strain; 4 experimental and control groups were infected with the Streptococcus dysgalactiae UR-16-VBH strain. The suspension was injected intraperitoneally to white mice at a dose of 5 Ld 50 in a volume of 0.5 ml. Simultaneously with the infection of the mice, the method of administration was monitored, for which 10 mice were additionally used, which were injected with a sterile saline solution intraperitoneally at a dose of 0.5 ml. The observation period for all animals was 10 days.
Результаты определения иммуногенной активности трех серий предлагаемой вакцины, приведены в таблице №3.The results of determining the immunogenic activity of three series of the proposed vaccine are shown in table No. 3.
Полученные результаты свидетельствуют о том, что выживаемость животных опытных групп вне зависимости от использованной серии препарата составила 90-100%, в то время как не менее 90% животных контрольных групп погибли в течение 4-9 суток после заражения (указано минимальное значение по трем сериям препарата), что говорит о высоком уровне иммуногенной активности вакцины.The results obtained indicate that the survival rate of the animals of the experimental groups, regardless of the batch of the drug used, was 90-100%, while at least 90% of the animals of the control groups died within 4-9 days after infection (the minimum value is indicated for three series preparation), which indicates a high level of immunogenic activity of the vaccine.
Пример №9. Определение антигенной активности вакцины по отношению к штаммам Streptococcus suis, Streptococcus dysgalactiae, Streptococcus porcinus, Streptococcus pyogenes в реакции агглютинации.Example No. 9. Determination of the antigenic activity of the vaccine against strains of Streptococcus suis, Streptococcus dysgalactiae, Streptococcus porcinus, Streptococcus pyogenes in the agglutination reaction.
Проведение испытанияTesting
Определение антигенной активности предлагаемой вакцины проводили с использованием белых мышей. Вакцину вводили 40 белым мышам массой 16-18 г двукратно подкожно с интервалом 21 день в область холки в объеме 0,5 мл. Через 14 дней после повторного введения у вакцинированных и контрольных мышей-аналогов проводили взятие крови для получения сывороток. Всю полученную сыворотку крови от мышей каждой группы объединяли в общий пул и использовали для постановки реакции агглютинации с целью определения титра антител к S. suis, S. dysgalactiae, S. porcinus, S. pyogenes. Полученные сыворотки перед использованием прогревали на водяной бане при 56°С в течение 30 мин. Полученную сыворотку подвергали двукратному разведению: 1:2, 1:4, 1:8, 1:16, 1:32 стерильным физиологическим раствором. Антиген для опыта получали путем культивирования контрольно-производственных штаммов на агаре МПА. В последующем культуру смывали стерильным физиологическим раствором. Прогревали при 56°С в течение 30 мин, и доводили до концентрации 2 млрд. мкр. кл. см3. В последующем производили смешивание сыворотки и антигена соответствующего штамма в равных объемах (по 0,5 см3). Контролем служила испытуемая культура, смешанная с физиологическим раствором (рН 7,2) и с нормальной кроличьей сывороткой, разведенной 1:10 (для исключения самоагглютинации культуры). Помимо этого, в контроле также исследовалась сыворотка, полученная от невакцинированных мышей. Смешанные сыворотки с антигеном инкубировали при 37°С в течение 18 часов.Determination of antigenic activity of the proposed vaccine was carried out using white mice. The vaccine was administered to 40 white mice weighing 16-18 g twice subcutaneously with an interval of 21 days in the area of the withers in a volume of 0.5 ml. 14 days after re-administration, the vaccinated and control analog mice were bled to obtain sera. All the obtained blood serum from mice of each group was combined into a common pool and used for staging an agglutination reaction in order to determine the titer of antibodies to S. suis, S. dysgalactiae, S. porcinus, S. pyogenes. The obtained sera were heated in a water bath at 56 ° C for 30 min before use. The resulting serum was subjected to a two-fold dilution: 1: 2, 1: 4, 1: 8, 1:16, 1:32 with sterile saline. The antigen for the experiment was obtained by culturing control-production strains on MPA agar. Subsequently, the culture was washed off with sterile saline. The mixture was heated at 56 ° C for 30 min and brought to a concentration of 2 billion μR. cl. cm 3 . Subsequently, the serum and antigen of the corresponding strain were mixed in equal volumes (0.5 cm 3 ). A test culture mixed with saline (pH 7.2) and with normal rabbit serum diluted 1:10 (to exclude self-agglutination of the culture) served as a control. In addition, serum obtained from unvaccinated mice was also studied in the control. The mixed sera with antigen were incubated at 37 ° C for 18 hours.
При испытании предложенным образом трех серий вакцины были получены результаты, свидетельствующие о том, что спустя 14 дней после второй вакцинации лабораторных животных, уровень антител находился в диапазоне 1:8-1:16 выраженные не менее чем на 3 креста. При этом у невакцинированных животных титры антител отсутствовали. Самоагглютинация с физиологическим раствором и нормальными кроличьими сыворотками отсутствовала во всех случаях. Таким образом было доказано, что вакцина обладает необходимым уровнем антигенной активности.When testing the proposed way of three batches of vaccine, the results were obtained indicating that 14 days after the second vaccination of laboratory animals, the level of antibodies was in the range of 1: 8-1: 16 expressed by at least 3 crosses. At the same time, antibody titers were absent in unvaccinated animals. Self-agglutination with saline and normal rabbit sera was absent in all cases. Thus, it was proved that the vaccine has the required level of antigenic activity.
Пример №10. Оценка протективной эффективности вакцины при вакцинации супоросных свиноматок.Example No. 10. Evaluation of the protective efficacy of the vaccine in the vaccination of pregnant sows.
Для оценки протективной эффективности предложенной вакцины проведены полевые испытания в свиноводческом комплексе Смоленской области, неблагополучном по стрептококкозам, вызванным S. suis, S. dysgalactiae, S. porcinus и S. pyogenes. Свиньи для опыта подбирались по принципу аналогов, то есть у всех животных в опытной и контрольной группах были идентичные параметры массы тела, возраст, состояние здоровья. Животных содержали в помещениях свинокомплексов раздельно по группам. Кормление осуществлялось специальными концентрированными комбикормами, предназначенными для данных возрастных групп животных.To assess the protective efficacy of the proposed vaccine, field trials were carried out in a pig-breeding complex in the Smolensk region, which is unfavorable for streptococcosis caused by S. suis, S. dysgalactiae, S. porcinus and S. pyogenes. The pigs for the experiment were selected according to the principle of analogs, that is, all animals in the experimental and control groups had identical parameters of body weight, age, and state of health. The animals were kept in the premises of pig farms separately in groups. Feeding was carried out with special concentrated feed intended for these age groups of animals.
Оценку эффективности препарата проводили на супоросных свиноматках, которых вакцинировали двукратно с интервалом 24 дня. Наблюдение за вакцинированными животными, а также за поросятами, полученными от вакцинированных и интактных (контрольных) свиноматок, проводили до наступления отъема поросят и перевода их на доращивание в возрасте 24 дня. Оценка эффективности предложенного препарата проводилась по следующим параметрам: сохранность полученных поросят, средний вес поросят при отъеме, среднесуточный привес. Результаты испытания отражены в таблице №4.Evaluation of the effectiveness of the drug was carried out on pregnant sows, which were vaccinated twice with an interval of 24 days. Observation of vaccinated animals, as well as piglets obtained from vaccinated and intact (control) sows, was carried out before the onset of weaning of piglets and their transfer to growing at the age of 24 days. Evaluation of the effectiveness of the proposed drug was carried out according to the following parameters: the safety of the obtained piglets, the average weight of the pigs at weaning, the average daily weight gain. The test results are shown in table No. 4.
Полученные результаты показывают, что применение вакцины обеспечивает 94,14% сохранности поросят, полученных от вакцинированных свиноматок, тогда как в контрольной группе (поросята от неиммунных свиноматок) сохранность составила 89,22%. При этом у заболевших и павших поросят отмечены признаки стрептококковой инфекции с поражением суставов и менингитной формой инфекции. В группе поросят, полученных от вакцинированных свиноматок, не зафиксировано заболеваний с признаками, характерными для стрептококковой инфекции.The results show that the use of the vaccine provides 94.14% of the safety of piglets obtained from vaccinated sows, while in the control group (piglets from non-immune sows) the safety was 89.22%. At the same time, the sick and dead piglets showed signs of streptococcal infection with joint damage and a meningitis form of infection. In the group of piglets obtained from vaccinated sows, no diseases with signs characteristic of streptococcal infection were recorded.
Также, полученные от вакцинированных свиноматок поросята имели больший вес при переводе на доращивание в среднем на 0,48 кг. Четко выраженное положительное влияние вакцинации установлено и на среднесуточные привесы поросят: в опытной группе они составляли 239 гр/сутки, а у поросят в контрольной группе 218 гр/сутки, что меньше на 8,78%.Also, piglets obtained from vaccinated sows had a greater weight when transferred to growing up on average by 0.48 kg. A clearly pronounced positive effect of vaccination was also established on the average daily weight gain of piglets: in the experimental group, they were 239 g / day, and in piglets in the control group, 218 g / day, which is 8.78% less.
Пример №11. Оценка протективной эффективности вакцины при вакцинации поросят.Example No. 11. Evaluation of the protective efficacy of the vaccine in the vaccination of piglets.
Для оценки протективной эффективности предложенной вакцины проведены испытания на свиноводческом комплексе Тюменской области, неблагополучном по стрептококкозам, вызванным S. suis, S. dysgalactiae, S. porcinus и S. pyogenes. При проведении клинических исследований свиньи различных возрастных групп подбирались по принципу аналогов, то есть у всех животных в опытной и контрольной группах были идентичные параметры массы тела, возраст, состояние здоровья. Животных содержали в помещениях свинокомплексов раздельно по группам. Кормление осуществлялось специальными концентрированными комбикормами, предназначенными для данных возрастных групп животных.To assess the protective efficacy of the proposed vaccine, tests were carried out on a pig-breeding complex in the Tyumen region, which is unfavorable for streptococcosis caused by S. suis, S. dysgalactiae, S. porcinus and S. pyogenes. When conducting clinical studies, pigs of different age groups were selected according to the principle of analogues, that is, all animals in the experimental and control groups had identical parameters of body weight, age, and health status. The animals were kept in the premises of pig farms separately in groups. Feeding was carried out with special concentrated feed intended for these age groups of animals.
Оценку эффективности препарата проводили на поросятах отъемышах, которых вакцинировали двукратно с интервалом 21 день в возрасте 14 и 25 дней. Наблюдение за вакцинированными и контрольными поросятами проводили в течение периода доращивания до перевода на откорм с 27 по 85 день жизни (период доращивания - 58 дней). Оценка эффективности предложенного препарата проводилась по параметрам сохранность полученных поросят, средний вес поросят при переводе на откорм, среднесуточный привес. Результаты испытания отражены в таблице №5.Evaluation of the effectiveness of the drug was carried out on weaned piglets, which were vaccinated twice with an interval of 21 days at the age of 14 and 25 days. Observation of vaccinated and control piglets was carried out during the period of growing up to transfer to fattening from 27 to 85 days of life (growing period - 58 days). Evaluation of the effectiveness of the proposed drug was carried out according to the parameters of the safety of the obtained pigs, the average weight of the pigs when transferring to fattening, the average daily weight gain. The test results are shown in table 5.
Применение вакцины обеспечивает 96,50% сохранности вакцинированных поросят, тогда как в контрольной группе сохранность составила 87%, при этом у заболевших и павших поросят отмечены признаки стрептококковой инфекции: септицемия, поражение суставов, менингиты. В группе вакцинированных поросят не зафиксировано заболевания поросят с признаками, характерными для стрептококковой инфекции.The use of the vaccine provides 96.50% of the safety of vaccinated pigs, while in the control group the safety was 87%, while the sick and dead pigs showed signs of streptococcal infection: septicemia, joint damage, meningitis. In the group of vaccinated pigs, no disease of piglets with signs characteristic of streptococcal infection was recorded.
У вакцинированных поросят средний вес при переводе на откорм был в среднем на 1,49 кг выше, чем у животных контрольной группы. Четко выраженное положительное влияние вакцинации установлено и на среднесуточные привесы поросят: в опытной группе они составляли 363 гр/сутки, у поросят в контрольной группе 335 гр/сутки, что меньше на 7,71%.In vaccinated piglets, the average weight when transferred to fattening was on average 1.49 kg higher than in animals of the control group. A clearly pronounced positive effect of vaccination was also established on the average daily weight gain of piglets: in the experimental group, they were 363 g / day, in piglets in the control group, 335 g / day, which is 7.71% less.
Как видно из представленных данных, поливалентная инактивированная вакцина против стрептококкозов свиней является безопасным и эффективным иммунобиологическим препаратом и может быть рекомендована для использования в свиноводческих хозяйствах для профилактики стрептококкоза свиней.As can be seen from the presented data, the polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis is a safe and effective immunobiological preparation and can be recommended for use in pig farms for the prevention of swine streptococcosis.
Claims (8)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2021111697A RU2761379C1 (en) | 2021-04-23 | 2021-04-23 | Polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis, method for its production and use |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2021111697A RU2761379C1 (en) | 2021-04-23 | 2021-04-23 | Polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis, method for its production and use |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2761379C1 true RU2761379C1 (en) | 2021-12-07 |
Family
ID=79174384
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2021111697A RU2761379C1 (en) | 2021-04-23 | 2021-04-23 | Polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis, method for its production and use |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2761379C1 (en) |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2118169C1 (en) * | 1996-09-02 | 1998-08-27 | Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности | Method of preparing hyperimmune serum against hemophilosis, streptococcosis and pasteurellosis in pigs |
RU2179861C2 (en) * | 1998-04-09 | 2002-02-27 | Есепенок Виктор Арсеньевич | Vaccine against streptococcosis in cattle |
-
2021
- 2021-04-23 RU RU2021111697A patent/RU2761379C1/en active
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2118169C1 (en) * | 1996-09-02 | 1998-08-27 | Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности | Method of preparing hyperimmune serum against hemophilosis, streptococcosis and pasteurellosis in pigs |
RU2179861C2 (en) * | 1998-04-09 | 2002-02-27 | Есепенок Виктор Арсеньевич | Vaccine against streptococcosis in cattle |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Инструкция против сальмонеллеза, пастереллеза, стрептококкоза поросят "ВЕРРЕС-СПС", - ООО "Ветбиохим", стр. 1-3; 29.02.2016., найдено в интернет 22.09.2021, адрес сайта: https://www.vidal.ru/veterinar/verres-sps-29780#composition. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2429012C1 (en) | Method of manufacturing associated vaccine against colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets | |
Rahman et al. | Development of experimental oil based inactivated HS vaccine from field Isolates of Pasteurella multocida from Cattle in Bangladesh | |
RU2761379C1 (en) | Polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis, method for its production and use | |
CN104250623A (en) | Mycoplasma hyorhinis strain, vaccine composition, preparation method and application thereof | |
KR101209964B1 (en) | Vaccine composition for swine polyserositis and manufacturing method thereof | |
KR101210082B1 (en) | Vaccine composition for swine polyserositis and manufacturing method thereof | |
RU2744744C1 (en) | Vaccine against manchemiosis, bibershteiniosis and pasterelosis of large and small cattle associated inactivated, method for its preparation | |
RU2377015C1 (en) | Vaccine inactivated against salmonellosis of doves and method of its application | |
US4002736A (en) | Porcine bacterin | |
RU2824493C1 (en) | Strain of bacteria actinobacillus pleuropneumoniae serotype 8, intended for production of mono- and polyvalent immunogenic compositions aimed at specific prevention of porcine actinobacillus pleuropneumoniae | |
CN103937706A (en) | Mycoplasma hyorhinis strain and inactivated vaccine and application thereof | |
RU2827226C1 (en) | Actinobacillus pleuropneumoniae serotype 2 bacterial strain, intended for production of mono- and polyvalent immunogenic compositions aimed at specific prevention of porcine actinobacillus pleuropneumoniae | |
RU2521651C1 (en) | STRAINS OF BACTERIA Moraxella bovoculi "SH-CH6 N-DEP" USED TO MANUFACTURE DIAGNOSTIC PREPARATIONS AND VACCINES AGAINST INFECTIOUS KERATOCONJUNCTIVITIS OF CATTLE | |
RU2233174C2 (en) | Cultural inactivated vaccine against chlamydiosis in cattle and sheep and goats | |
RU2406532C1 (en) | Method of producing associated vaccine against streptococcosis and staphylococcosis of cattle | |
RU2763991C1 (en) | Vaccine against infectious atrophic rhinitis and pasterellosis in pigs inactivated, method for its preparation | |
KR102336245B1 (en) | Vaccine composition of novel inactivated Actinobacillus pleuroneumoniae bacteria | |
CN113832068B (en) | Streptococcus strain and vaccine for preventing and treating swine streptococcosis | |
KR102464115B1 (en) | Vaccine composition of novel inactivated Actinobacillus pleuroneumoniae bacteria (serotypes 1, 2, 5, 7, 10, 12 and 15) | |
RU2043771C1 (en) | Vaccine against escherichiosis in animals | |
RU2316344C1 (en) | Associated vaccine against colibacteriosis, salmonellosis, streptococcosis and enterococcal infection in nutrias | |
Belyaeva et al. | Development and testing of a vaccine against infectious atrophic rhinitis and pasteurellosis in pigs | |
UA117089U (en) | SITC Vaccine Inactivated for Specific Prevention of Streptococcal, Enterococcal and Staphylococcal Etiology | |
RU2163142C2 (en) | Inactivated emulsin-vaccine against salmonellosis in piglets | |
EA029938B1 (en) | Vaccine against strangles in horses |