JP7162897B2 - 融合タンパク質 - Google Patents

Description

本発明は細胞内環境で発現する抗原結合性の機能を有する融合タンパク質に関する。

細胞内で機能する抗体すなわちイントラボディ（細胞内抗体）は、高等生物の細胞内で抗原（標的分子）を認識して結合することで細胞の機能に影響を及ぼすことができる。これらの抗原は、細胞内抗体に結合することにより不活化され得る重要な細胞内治療標的にもなり得る。また、研究手法として、細胞内抗体の使用は細胞の内部で抗体に結合することにより直接タンパク質の機能を特異的に阻害するための手段として着目されている。

細胞内抗体の場合、まず標準的な方法で抗原を認識するモノクローナル抗体産生ハイブリドーマを作成した後、そのcDNAから一本鎖抗体（single chain Fv：scFv）をコードするＤＮＡを含む細胞内発現ベクターを構築し、重鎖（VH）と軽鎖（VL）との複合体を細胞内抗体とすることが一般的である。

抗体は通常、血液等の体内の細胞外空間を巡回して細胞外抗原を認識して機能するものであり、細胞外環境での作用が前提である。従って、抗体が細胞質で発現される場合、発現レベルの低下および抗体ドメインの半減期の制限に至るフォールディングおよび安定性の問題が生じるため、どのような抗体でも細胞内抗体として機能すると期待できるものではない。また、scFvは、その重鎖と軽鎖とをフレキシブルなペプチドリンカーで繋いだものであるから、その立体構造は必ずしもオリジナルの抗体ほどに安定ではない。加えて、試験管内で機能するscFvを同定したとしても、試験管内は細胞内部の環境を反映していない部分が多いため、細胞内でscFvを発現させた場合に期待通りの機能を発揮できるとも限らない。

従って、細胞内抗体として機能する抗体のスクリーニングするため、これまでに細胞質条件に耐える抗体の規則性または予測のための手法が検討されてきた。これらの方法は、細胞内でも機能し得る抗体の選定方法であるが、実際に細胞内で安定な抗体を得ることが困難であり、既存の抗体や新しく単離した抗体を細胞内抗体として利用する技術は確立されていない。

国際公開第０３／０１４９６０号

本発明は、任意の抗原結合性ペプチドを、細胞内で安定して機能する細胞内抗体として利用する技術を提供することを目的とする。

本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討を行った。その結果、ペプチドタグを融合させた抗原結合性ペプチドを細胞内で発現させた際に、当該ペプチドタグによる抗原結合性ペプチドの正味の電荷および等電点（ｐＩ）の値の変化によって細胞内抗体としての機能の安定性が変動することを見出した。特に、細胞質のｐＨ環境よりもエンドソームの細胞質側表面のｐＨ環境を基準として電荷値とｐＩ値が十分に低くなるようペプチドタグを設計することで、当該ペプチドタグを融合させた抗原結合性ペプチドが細胞内抗体として細胞内で安定して機能させることに成功した。

本発明者らは、上記知見に基づき更に検討を加え、本発明を完成するに至った。

即ち、本発明は下記の通りである：
１）細胞内安定化ペプチドと、抗原結合性ペプチドとを含む融合タンパク質であって、
上記細胞内安定化ペプチドは、１０～３９個のアミノ酸からなり、かつ、当該アミノ酸の少なくとも４５％が酸性アミノ酸であり、
上記抗原結合性ペプチドは、重鎖ＣＤＲ１、重鎖ＣＤＲ２、重鎖ＣＤＲ３、軽鎖ＣＤＲ１、軽鎖ＣＤＲ２、および軽鎖ＣＤＲ３のうちの少なくとも１つを含む、
融合タンパク質。
２）上記細胞内安定化ペプチドは、上記アミノ酸の２８％以下が塩基性アミノ酸であるか、塩基性アミノ酸を含まない、１）に記載の融合タンパク質。
３）上記細胞内安定化ペプチドは、上記塩基性アミノ酸を含まない、２）に記載の融合タンパク質。
４）上記細胞内安定化ペプチドは、上記塩基性アミノ酸として少なくとも１個のヒスチジンを含む、２）に記載の融合タンパク質。
５）上記細胞内安定化ペプチドは、１４～２５個のアミノ酸からなり、当該アミノ酸の少なくとも５０％が酸性アミノ酸であり、
上記細胞内安定化ペプチドにおいて、上記酸性アミノ酸が８個以上連続した部分、および、酸性アミノ酸以外のアミノ酸が４個以上連続した部分が存在しない、１）～４）の何れか１つに記載の融合タンパク質。
６）上記細胞内安定化ペプチドにおいて、上記酸性アミノ酸が３個以上連続した部分、および、酸性アミノ酸以外のアミノ酸が３個以上連続した部分が存在しない、５）に記載の融合タンパク質。
７）上記細胞内安定化ペプチドは、上記酸性アミノ酸をＸ_Ａ、酸性アミノ酸以外のアミノ酸をＸ_ｎとしたときに、
以下のアミノ酸配列（１）または（２）：
－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－Ｘ_Ａ－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－（Ｘ_ＡまたはＸ_ｎ）－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－（Ｘ_ＡまたはＸ_ｎ）－Ｘ_ｎ－（Ｘ_ＡまたはＸ_ｎ）－Ｘ_Ａ－ ・・・・・・（１）、
－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－Ｘ_Ａ－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－Ｘ_ｎ－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－Ｘ_Ａ－Ｘ_ｎ－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－ ・・・・・・（２）、
を含んでなる、１）～６）の何れか１つに記載の融合タンパク質。
８）Ｘ_Ａはアスパラギン酸またはグルタミン酸であり、Ｘ_ｎはアスパラギン、グルタミン、プロリン、チロシンおよびバリンからなる群より選択される何れかのアミノ酸である、７）に記載の融合タンパク質。
９）上記１）～８）の何れか１つに記載の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド。
１０）上記９）に記載のポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
１１）細胞内において抗原結合性ペプチドを発現させる細胞を製造する方法であって、９）に記載のポリヌクレオチドまたは１０）に記載の発現ベクターを細胞に導入する工程を含む、製造方法。
１２）上記１）～８）の何れか１つに記載の融合タンパク質を発現する細胞。

図１は、ｓｃＦｖ－Ａ３６の発現および結合能の評価した結果を示す図である。 図２は、ｓｃＦｖ－Ａ３６のV_H領域のＣＤＲのアミノ酸配列情報を示す図である。 図３は、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６およびｓｃＦｖ－ＧＦＰＭ４の培養神経細胞内の発現と標的分子の機能阻害活性について評価した結果を示す図である。 図４は、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６がマウス脳神経の細胞内において凝集を形成することを確認した図である。 図５は、ｓｃＦｖ－Ａ３６およびｓｃＦｖ－Ｍ４のｐＩおよび正味の電荷並びに細胞内の凝集性を評価した結果を示す図である。 図６は、ｓｃＦｖ－Ａ３６タンパク質配列を用いたＮＣＢＩ ｂｌａｓｔ検索により得られた他の９４種類のｓｃＦｖタンパク質配列を用いて、ｓ３ＦｌａｇおよびＨＡペプチドタグの付加による低ｐＨ環境下での細胞内抗体の正味の負電荷の増加効果の一般性について調べた結果を示す図である。 図７は、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖＡ－３６－ＨＡ構築物の生化学的な性質を調べた結果を示す図である。 図８は、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡおよびｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡに関して、マウス脳の神経の細胞内における発現を調べた結果を示す図である。 図９は、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡおよびｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡの黒質領域における発現パターンを調べた図である。 図１０は、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡおよびｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡの両方における、ドーパミン神経での長期間（６ヶ月）の発現について観察した図である。 図１１は、ドーパミン神経において、ｉｎ ｖｉｖｏでｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡがＳｙｔ Ｉに対し機能活性を有することを調べた結果を示す図である。 図１２は、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡを発現しているマウスおよびｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡを発現しているマウスの運動行動テストおよび免疫組織染色の結果を示す図である。 図１３は、ＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９の発現および抗腫瘍活性について調べた結果を示す図である。 図１４は、ＤＥ２．０－Ｙ１３－２５９－ＨＡの発現および抗腫瘍活性について調べた結果を示す図である。 図１５は、ｓｃＦｖ‐６Ｅとタグとの融合によってｓｃＦｖ‐６Ｅの正味の負電荷が変化することを調べた結果を示す図である。 図１６は、ＳＴＡＮＤ-６Ｅ‐ＬＹＳ、及びＤＥ５．０‐６Ｅの細胞内での発現を観察した結果を示す図である。 図１７は、α－ｓｙｎｕｃｌｅｉｎ凝集アッセイの結果を示す図である。 図１８は、α－ｓｙｎｕｃｌｅｉｎ凝集化を評価した結果を示す図である。

＜０．定義＞
（ペプチド）
本明細書において、「ペプチド」は、「ポリペプチド」または「タンパク質」とも換言し得る。「ペプチド」は、アミノ酸がペプチド結合してなる構造を含むが、さらに、例えば、糖鎖、またはイソプレノイド基などの構造を含んでいてもよい。「ペプチド」は、特に明記しない場合は、天然に存在するアミノ酸と同様に機能することができる、天然に存在するアミノ酸の既知の類似体を含有するペプチドを包含する。

（酸性アミノ酸）
本明細書において、「酸性アミノ酸」とはその等電点が３．９９以下のアミノ酸を指す。アミノ酸は天然に存在するものであっても、天然に存在するアミノ酸の類似体であってもよい。天然に存在する酸性アミノ酸としては、アスパラギン酸とグルタミン酸とが挙げられる。

（塩基性アミノ酸）
本明細書において、「塩基性アミノ酸」とはその等電点が７．４０以上のアミノ酸を指す。アミノ酸は天然に存在するものであっても、天然に存在するアミノ酸の類似体であってもよい。天然に存在する塩基性アミノ酸としては、ヒスチジン、リジン、およびアルギニンが挙げられる。

（酸性アミノ酸および塩基性アミノ酸以外のアミノ酸）
本明細書において、アミノ酸自体のｐＨに着目した場合に、上記の酸性アミノ酸の定義にも、塩基性アミノ酸の定義にも当てはまらないアミノ酸を、「酸性アミノ酸および塩基性アミノ酸以外のアミノ酸」または「略中性アミノ酸」と総称する。すなわち、これらのアミノ酸の等電点は３．９９を超え７．４０未満である。アミノ酸は天然に存在するものであっても、天然に存在するアミノ酸の類似体であってもよい。

（Ａおよび／またはＢ）
本明細書において、「Ａおよび／またはＢ」は、ＡおよびＢとＡまたはＢとの双方を含む概念であり、「ＡおよびＢの少なくとも一方」とも換言できる。

＜１．融合タンパク質＞
本発明の融合タンパク質は、細胞内安定化ペプチドと、抗原結合性ペプチドとを含む融合タンパク質であって、
上記細胞内安定化ペプチドは、１０～３９個のアミノ酸からなり、かつ、当該アミノ酸の少なくとも４５％が酸性アミノ酸であり、
上記抗原結合性ペプチドは、重鎖ＣＤＲ１、重鎖ＣＤＲ２、重鎖ＣＤＲ３、軽鎖ＣＤＲ１、軽鎖ＣＤＲ２、および軽鎖ＣＤＲ３のうちの少なくとも１つを含む。

本発明の融合タンパク質は、任意の細胞において発現させることで細胞内抗体としての機能を有する。

〔細胞内安定化ペプチド〕
（ペプチドの長さと酸性アミノ酸の含有）
細胞内安定化ペプチドは、構成されるアミノ酸数は特に限定されないが、好ましくは５０個までのアミノ酸からなるペプチドであり、より好ましくは１０～３９個のアミノ酸からなるペプチドである。ここで、細胞内安定化ペプチドを構成する全アミノ酸の少なくとも４５％が、酸性アミノ酸である。

細胞内安定化ペプチドを構成する全アミノ酸に占める酸性アミノ酸の割合は特に限定されないが、５０％以上であることが好ましい。細胞内安定化ペプチドを構成する全アミノ酸に占める酸性アミノ酸の割合は、例えば、５３％以上または５５％以上であってもよく、６０％以上であることが好ましい場合があり、６５％以上または７０％以上であることが好ましい場合がある。酸性アミノ酸の割合が高まると、一般に、当該酸性アミノ酸を含んでなるポリペプチドの等電点は低下する。

細胞内安定化ペプチドを構成する酸性アミノ酸の個数は、細胞内安定化ペプチドを構成する全アミノ酸に占める酸性アミノ酸の上記割合の何れかを満たす限りにおいて特に限定されないが、例えば、６個または７個以上であり、８個または９個以上であることが好ましく、１０個またはそれ以上であることがより好ましく、１１個またはそれ以上であることがさらに好ましく、１２個またはそれ以上であることが特に好ましい。

細胞内安定化ペプチドを構成する酸性アミノ酸は、アスパラギン酸およびグルタミン酸からなる群から選択されることが好ましい。

融合タンパク質における細胞内安定化ペプチドの寄与を高めるという観点からは、細胞内安定化ペプチドを構成するアミノ酸の数は、１４個またはそれ以上であることが好ましく、１５個またはそれ以上であることがより好ましく、１８個またはそれ以上であることがさらに好ましく、２０個またはそれ以上であることが特に好ましい。また、融合タンパク質のサイズを抑制する観点からは、細胞内安定化ペプチドを構成するアミノ酸の数は、３５個以下であることが好ましく、３０個以下であることがより好ましく、２５個以下であることがさらに好ましい。なお、細胞内安定化ペプチドの長さ（構成するアミノ酸の個数）が９アミノ酸以下となれば、融合タンパク質における細胞内安定化ペプチドの寄与の観点で不十分となる場合がある。細胞安定化ペプチドを認識する抗体を作製する等、必要に応じて所望される細胞内安定化ペプチドの特異抗原性の観点でも不十分となる場合がある。また、細胞内安定化ペプチドの長さが４０アミノ酸以上となれば、融合タンパク質のサイズが必要以上に大きくなり、後述する抗原結合性ペプチドによる抗原認識において立体障害となり得る。ただし、細胞内安定化ペプチドと抗原結合性ペプチドの間に、抗原認識の妨げにならないようリンカーとなるペプチドを連結した場合には、４０アミノ酸以上の細胞内安定化ペプチドも使用することができる。その場合には複数の細胞内安定化ペプチド（同じ細胞内安定化ペプチドが複数もあってもよく、異なる細胞内安定化ペプチドの組み合わせであってもよい）を、それぞれの細胞内安定化ペプチドの間にスペーサーを介して連結することで使用することもできる。

（塩基性アミノ酸を含有する場合）
細胞内安定化ペプチドを構成する全アミノ酸に占める塩基性アミノ酸の割合は特に限定されないが、２８％以下であることが好ましく、２７％以下または２６．５％以下であることがより好ましく、２５％以下、２０％以下、１５％以下、または１０％以下であることがさらに好ましく、９％以下、８％以下、７％以下、６％以下、５％以下、４％以下または３％以下であることが特に好ましい。特に好ましい一形態では、細胞内安定化ペプチドは、塩基性アミノ酸を含まない。

細胞内安定化ペプチドを構成する塩基性アミノ酸の個数の好ましい範囲は、細胞内安定化ペプチドを構成する全アミノ酸に占める塩基性アミノ酸の上記割合の何れかを満たす限りにおいて特に限定されないが、例えば、６個以下であり、５個または４個以下であることが好ましく、３個以下であることがより好ましく、２個以下であることがさらに好ましく、１個以下であることが特に好ましい。

細胞内安定化ペプチドが塩基性アミノ酸を含む場合において、当該塩基性アミノ酸はリジンおよびヒスチジンからなる群から選択されることが好ましく、当該塩基性アミノ酸として少なくとも１個のヒスチジンを含むことがより好ましい。ヒスチジンは天然に存在する塩基性アミノ酸の中で最も等電点が低いという特性を有する。細胞内安定化ペプチドが複数の塩基性アミノ酸を含む場合において、当該塩基性アミノ酸に占めるヒスチジンの割合は３０％以上であることが好ましく、５０％以上であることがより好ましく、６０％以上であることがさらに好ましく、１００％であることが特に好ましい。細胞内安定化ペプチドに含まれるヒスチジンの個数は、例えば、６個、５個、４個、３個、２個または１個である。

（酸性アミノ酸および塩基性アミノ酸以外のアミノ酸）
細胞内安定化ペプチドは、上記の酸性アミノ酸および塩基性アミノ酸以外のアミノ酸（「略中性アミノ酸」と総称する）を含んでいてもよい。

細胞内安定化ペプチドを構成する全アミノ酸に占める略中性アミノ酸の割合は５５％以下であり、５０％以下であることが好ましく、４５％以下であることがより好ましい。細胞内安定化ペプチドが略中性アミノ酸を含む場合、当該ペプチドを構成する全アミノ酸に占める略中性アミノ酸の割合の下限は特に限定されないが、一態様において、１５％以上であり、２０％以上であり、または、２５％以上である。

細胞内安定化ペプチドの抗原としての特性を考慮する場合、細胞内安定化ペプチドを構成する全アミノ酸に占める疎水性アミノ酸（すなわち、極性の無い略中性アミノ酸）の割合は２５％以下であることが好ましく、２０％以下であることがより好ましく、１５％以下であることがさらに好ましい。しかし、細胞内安定化ペプチドにおける親水性アミノ酸と疎水性アミノ酸とのバランスを考慮した場合に、前記の疎水性アミノ酸の割合を満たすことを前提として、疎水性アミノ酸が１個以上含まれることが好ましい場合もある。細胞内安定化ペプチドが疎水性アミノ酸を含んでいる場合、その個数は、例えば、１個、２個、３個、または４個である。なお、疎水性アミノ酸同士の連続は３個までが好ましい場合があり、２個までがより好ましい場合がある。

細胞内安定化ペプチドが天然に存在する略中性アミノ酸を含む場合において、当該略中性アミノ酸は、アスパラギン、フェニルアラニン（疎水性アミノ酸）、グルタミン、チロシン、セリン、メチオニン（疎水性アミノ酸）、トリプトファン（疎水性アミノ酸）、バリン（疎水性アミノ酸）、グリシン（疎水性アミノ酸）、ロイシン（疎水性アミノ酸）、イソロイシン（疎水性アミノ酸）、およびプロリン（疎水性アミノ酸）からなる群より選択されることが好ましく、アスパラギン、グルタミン、チロシン、メチオニン、バリン、グリシン、ロイシン、イソロイシン、およびプロリンからなる群より選択されることがより好ましく、アスパラギン、グルタミン、チロシン、バリン、およびプロリンからなる群から選択されることがさらに好ましい。ある態様では、細胞内安定化ペプチドはプロリンを少なくとも１個（好ましくは１個または２個）と、アスパラギン、グルタミンおよびチロシンから選択されるアミノ酸を少なくとも１個（好ましくは８個以下であり、７個、６個、５個、４個、３個、または２個である）と、プロリン以外の疎水性アミノ酸を少なくとも１個（好ましくは１個または２個）とを含んでいる。

なお、好ましい略中性アミノ酸の種類およびその配置は、例えば、形成される細胞内安定化ペプチドの安定性（酸化や加水分解等への耐性）、分子内Ｓ－Ｓ結合の形成の有無、分子内水素結合の形成の有無、不所望なモチーフの形成の有無等を考慮して決定すればよい。

（等電点）
細胞内安定化ペプチドの等電点は、当該細胞内安定化ペプチドを構成するアミノ酸の種類から算出することができる。細胞内安定化ペプチドの等電点の算出は、例えば、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｃａｌｕｃｕｌａｔｏｒ（https://protcalc.sourceforge.net）等の記載に従って行うことができる。

（細胞内安定化ペプチドのより具体的な例示）
以下、細胞内安定化ペプチドのより具体的な例示について説明を行う。なお、以下の説明において、Ｘ_Ａとは酸性アミノ酸を指し、Ｘ_ｎとは酸性アミノ酸でないアミノ酸、すなわち、上記した塩基性アミノ酸と略中性アミノ酸とを指す。

なお、ここで具体的に例示する細胞内安定化ペプチドには、〔細胞内安定化ペプチド〕欄で記載した事項の全てを当てはめることができる。例えば、Ｘ_Ａには上記酸性アミノ酸として記載した事項の全てが当てはまり、Ｘ_ｎには上記塩基性アミノ酸と略中性アミノ酸として記載した事項の全てが当てはまる。また、細胞内安定化ペプチドの長さ等も上記した事項の全てを当てはめることができる。具体的には、例えば、ここで例示する細胞内安定化ペプチドは、上記アミノ酸の２８％以下が塩基性アミノ酸であるか、塩基性アミノ酸を含まない（すなわち全てのＸ_ｎが略中性アミノ酸である）ものであってもよい。また、上記細胞内安定化ペプチドは、塩基性アミノ酸として少なくとも１個のヒスチジンを含むものであってもよい。

（１）第一の態様
以下に箇条書きをした条件を全て満たす細胞内安定化ペプチド。
・細胞内安定化ペプチドは、１０～３９個のアミノ酸からなり、１４～２５個のアミノ酸からなることが好ましい。
・細胞内安定化ペプチドを構成するアミノ酸の少なくとも４５％が酸性アミノ酸であり、少なくとも５０％が酸性アミノ酸であることが好ましい。
・細胞内安定化ペプチドにおいて、Ｘ_Ａが８個以上連続した部分、および、Ｘ_ｎが４個以上連続した部分が存在しない。すなわち、細胞内安定化ペプチドにおいて、Ｘ_Ａの連続は７個までであり、Ｘ_ｎの連続は３個までである。

（２）第二の態様
上記の第一の態様の条件を満たし、かつ、以下に箇条書きをした条件を満たす細胞内安定化ペプチド。
・細胞内安定化ペプチドにおいて、Ｘ_Ａが６個以上連続した部分、および、Ｘ_ｎが４個以上連続した部分が存在しない。すなわち、細胞内安定化ペプチドにおいて、Ｘ_Ａの連続は５個までであり、Ｘ_ｎの連続は３個までである。

（３）第三の態様
上記の第一の態様の条件を満たし、かつ、以下に箇条書きをした条件を満たす細胞内安定化ペプチド。
・細胞内安定化ペプチドにおいて、Ｘ_Ａが６個以上連続した部分、および、Ｘ_ｎが３個以上連続した部分が存在しない。すなわち、細胞内安定化ペプチドにおいて、Ｘ_Ａの連続は５個までであり、Ｘ_ｎの連続は２個までである。

（４）第四の態様
上記の第一の態様の条件を満たし、かつ、以下に箇条書きをした条件を満たす細胞内安定化ペプチド。
・細胞内安定化ペプチドにおいて、Ｘ_Ａが３個以上連続した部分、および、Ｘ_ｎが３個以上連続した部分が存在しない。すなわち、細胞内安定化ペプチドにおいて、Ｘ_Ａの連続は２個までであり、Ｘ_ｎの連続は２個までである。

（５）第五の態様
以下に箇条書きをした条件を全て満たす細胞内安定化ペプチド。なお、第五の態様は、第一～第四の態様の何れかに当てはまるものであっても、当てはまらないものであってもよい。
・細胞内安定化ペプチドは、１０～３９個のアミノ酸からなり、１４～２５個のアミノ酸からなることが好ましい。
・細胞内安定化ペプチドを構成するアミノ酸の少なくとも４５％が酸性アミノ酸であり、少なくとも５０％が酸性アミノ酸であることが好ましい。
・以下に示すアミノ酸配列：
－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－Ｘ_Ａ－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－（Ｘ_ＡまたはＸ_ｎ）－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－（Ｘ_ＡまたはＸ_ｎ）－Ｘ_ｎ－（Ｘ_ＡまたはＸ_ｎ）－Ｘ_Ａ－・・・・・（１）
を含んでいる。

（６）第六の態様
上記の第五の態様の条件を満たし、第五の態様で示したアミノ酸配列（１）の左側にさらに３個～７個のＸ_ＡまたはＸ_ｎを有し、右側にさらに０個～６個のＸ_ＡまたはＸ_ｎを有する。

（７）第七の態様
以下に箇条書きをした条件を全て満たす細胞内安定化ペプチド。なお、第七の態様は、第一～第四の態様の何れかに当てはまるものであっても、当てはまらないものであってもよい。
・細胞内安定化ペプチドは、１０～３９個のアミノ酸からなり、１４～２５個のアミノ酸からなることが好ましい。
・細胞内安定化ペプチドを構成するアミノ酸の少なくとも４５％が酸性アミノ酸であり、少なくとも５０％が酸性アミノ酸であることが好ましい。
・以下に示すアミノ酸配列：
－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－Ｘ_Ａ－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－Ｘ_ｎ－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－Ｘ_Ａ－Ｘ_ｎ－Ｘ_ｎ－Ｘ_Ａ－・・・・・・・（２）
を含んでいる。

（８）第八の態様
上記の第七の態様の条件を満たし、第七の態様で示したアミノ酸配列（２）の左側にさらに０個～９個のＸ_ＡまたはＸ_ｎを有し、右側にさらに０個～９個のＸ_ＡまたはＸ_ｎを有する。但し、アミノ酸配列（２）の左側と右側とにあるアミノ酸の個数の合計は１０個以下であることが好ましく、９個以下であることがより好ましく、６個または５個以下であることがさらに好ましい場合がある。

（９）第九の態様
上記第一～第八の態様の何れかに当てはまるものであって、Ｘ_Ａはアスパラギン酸、またはグルタミン酸であり、Ｘ_ｎはアスパラギン、グルタミン、プロリン、チロシン、およびバリンからなる群より選択される何れかのアミノ酸である。

（１０）第十の態様
上記第五～第六の態様の何れかに当てはまるものであって、Ｘ_Ａはアスパラギン酸、またはグルタミン酸であり、Ｘ_ｎのうちアミノ酸配列（１）の左側から２～６番目（好ましくは２～４番目、より好ましくは２～３番目）のＸ_ｎの一つまたはそれ以上がプロリンであり、プロリンでないＸ_ｎは、アスパラギン、グルタミン、チロシン、およびバリンからなる群より選択される何れかのアミノ酸である。例えば、アミノ酸配列（１）の左側から２～３番目のＸ_ｎの一つがプロリンであり、アミノ酸配列（１）に含まれるその他のＸ_ｎが、アスパラギン、グルタミン、バリン、およびチロシンからなる群より選択される何れかのアミノ酸であるもの。さらには例えば、アミノ酸配列（１）の左側から２～３番目のＸ_ｎの一つがプロリンであり、アミノ酸配列（１）に含まれるその他のＸ_ｎが、アスパラギン、グルタミン、およびチロシンからなる群より選択される何れかのアミノ酸であるもの。

（１１）第十一の態様
上記第七～第八の態様の何れかに当てはまるものであって、Ｘ_Ａはアスパラギン酸、またはグルタミン酸であり、Ｘ_ｎのうちアミノ酸配列（２）の左側から３～６番目（好ましくは３～５番目、より好ましくは４～５番目）のＸ_ｎの一つまたはそれ以上がプロリンであり、プロリンでないＸ_ｎは、アスパラギン、グルタミン、チロシン、およびバリンからなる群より選択される何れかのアミノ酸である。例えば、アミノ酸配列（２）の左側から４～５番目のＸ_ｎの一つがプロリン、Ｘ_ｎの他の一つがバリンであり、アミノ酸配列（２）に含まれるその他のＸ_ｎが、アスパラギン、グルタミン、およびチロシンからなる群より選択される何れかのアミノ酸であるもの。

（１２）第十二の態様
細胞内安定化ペプチドは、以下のアミノ酸配列の何れかからなる。

ＭＤＹＫＤＨＤＧＤＹＫＤＨＤＩＤＹＫＤＤＤＤＫ（配列番号１）；
ＥＥＤＱＤＤＥＤＤＥＤＱＤＤ（配列番号２）；
ＮＤＥＹＥＤＰＤＥＱＤＤＥＮＤ（配列番号３）；
ＱＤＥＶＤＥＰＥＤＥＥＤＮＤＤ（配列番号４）；
ＱＤＥＶＤＥＰＥＤＥＤＥＮＤＤ（配列番号５）；
ＱＤＥＶＤＥＰＥＤＥＤＥＮＱＤ（配列番号６）；
ＱＤＮＶＤＥＰＥＤＮＤＥＮＱＤ（配列番号７）；
ＱＤＮＹＤＥＰＥＤＮＤＥＮＱＤ（配列番号８）；
ＥＤＮＹＤＥＰＥＤＮＤＥＮＱＤ（配列番号９）；
ＤＮＮＹＤＥＱＤＥＮＥＱＰＥＤ（配列番号１０）；
ＱＥＮＤＹＤＥＰＥＶＮＤＥＮＱＤ（配列番号１１）；
ＤＥＱＥＮＤＹＤＥＰＥＶＮＤＥＮＱＤ（配列番号１２）；
ＤＥＱＥＮＤＹＤＥＰＥＶＮＤＥＮＱＤＹＤＥ（配列番号１３）；。

（１３）第十三の態様
以下に箇条書きをした条件を全て満たす細胞内安定化ペプチド。
・細胞内安定化ペプチドは、１０～３９個のアミノ酸からなり、１４～２５個のアミノ酸からなることが好ましい。
・細胞内安定化ペプチドを構成するアミノ酸のすべてが酸性アミノ酸である。

〔抗原結合性ペプチド〕
（構造）
典型的な抗体構築物ユニットは、テトラマーを含むことが知られている。各々のテトラマーは、同一の２対のポリペプチド鎖から構成され、各々の対が１本の軽鎖（一例では、約２５ｋＤａ）および１本の重鎖（一例では、約５０～７０ｋＤａ）を有する。各々の鎖のアミノ末端部分は約１００アミノ酸以上の可変領域を有し、該可変領域は主に抗原（標的分子）認識の役割を担う。各々の鎖のカルボキシル末端部分は、主にエフェクター機能の役割を担う定常領域を規定する。軽鎖は、カッパまたはラムダの何れかに分類される。重鎖は、ガンマ、ミュー、アルファ、デルタまたはエプシロンとして分類され、抗体のアイソタイプをそれぞれＩｇＧ、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ＩｇＤ、およびＩｇＥを規定する。軽鎖および重鎖内で、可変領域および可変領域が約１２アミノ酸以上のＪ領域によって連結されており、重鎖はまた、約１０アミノ酸以上のＤ領域を含む。各々の軽鎖／重鎖対の可変領域は、抗体結合部位を形成する。これらの鎖はすべて、３つの超可変領域（相補性決定領域またはＣＤＲとも呼ばれる）によって連結される相対的に保存されたフレームワーク領域（ＦＲ）の同一の一般構造を示す。各対の２本の鎖由来のＣＤＲをフレームワーク領域によって並べることで、特定のエピトープへの結合を可能とする。

「抗原結合性ペプチド」とは、任意のモノクローナル抗体またはモノクローナル抗体と同様に抗原（標的分子）に対して特異的に結合するペプチドにおいて抗原と結合に寄与するペプチドであって、当該抗体の抗原結合能を有する領域のすべてまたは一部分の領域を有しているものを指す。本発明において「抗原結合性ペプチド」は、例えば、任意のモノクローナル抗体の重鎖ＣＤＲ１、重鎖ＣＤＲ２、重鎖ＣＤＲ３、軽鎖ＣＤＲ１、軽鎖ＣＤＲ２、および軽鎖ＣＤＲ３のうちの少なくとも１つを含む。好ましくは、これらのうちの少なくとも２つ、少なくとも３つ、少なくとも４つ、少なくとも５つ、またはこれら全てを含む。

本発明の抗原結合性ペプチドのもとになるモノクローナル抗体は、天然型抗または遺伝子組換え技術を用いて製造される抗体であってよい。天然型抗体は、特に限定はされないが、ヒト、マウス、ラット、サル、ヤギ、ウサギ、ラクダ、ラマ、ウシおよびニワトリなどを含む、生物種に由来し得る。遺伝子組換え技術を用いて製造される抗体としては、特に限定はされないが、天然型抗体をもとに作製される合成抗体、組換え抗体、および変異導入抗体等が挙げられる。既に遺伝子組換え技術を用いて製造された抗体に対して、上述のように天然型抗体を遺伝子改変する場合と同様の改変を施した抗体も含まれる。本発明の抗原結合性ペプチドは、これらの抗体を由来とするＦ（ａｂ’）_２、Ｆ（ａｂ’）、Ｆａｂ’、Ｆａｂ、Ｆｖ（variable fragment of antibody）、ｓｃＦｖ、ｄｓＦｖ（disulphide stabilized Fv）、ｄＡｂ（single domain antibody）、ダイアボディ、ミニボディまたはＶＨＨの全長またはその一部を含むペプチドである。「モノクローナル抗体と同様に抗原に対して特異的に結合するペプチド」としては、抗原への結合特異性が高いペプチドアプタマー、標的分子との結合特異性を持つ生体由来のタンパク質（例えばフィブロネクチン）の結合ドメインなどが挙げられる。

〔さらなる機能ペプチド〕
本発明の融合タンパク質は、細胞内安定化ペプチドおよび抗原結合性ペプチド以外の機能ペプチドを１つ以上さらに含んでいてもよい。そのような機能ペプチドとしては、精製タグペプチド、検出用ペプチド、分解促進ペプチド（例えばＨＳＣ７０結合ペプチド、ＸＩＡＰ ＲＩＮＧドメインペプチド）、Ｎｅｈ２ドメインペプチド（Ｎｒｆ２由来のペプチド）、酸素依存性分解ドメイン（Ｈｉｆ１α由来のペプチド）等のストレス応答性分解ペプチド、及び、薬剤結合性ペプチド等が挙げられる。

精製タグペプチドとしては、特に限定されないが、ＨＡタグ配列（ＹＰＹＤＶＰＤＹＡ（配列番号１４））、ＰＡタグ配列（ＧＶＡＭＰＧＡＥＤＤＶＶ（配列番号１５））、などの酸性アミノ酸を１５％以上含む精製タグペプチドが挙げられる。酸性アミノ酸を１５％以上含むタグ配列を含むことにより、低いｐＨにおいても、融合タンパク質の負電荷をより増加させる。精製タグペプチドは、酸性アミノ酸を２０％以上含むことがより好ましい。

検出用ペプチドとしては、特に限定されないが、例えば、蛍光タンパク質、反応により光の放出や色の変化を生じる酵素等が挙げられる。蛍光タンパク質としては、ＢＦＰ、ＥＢＦＰ、ＣＦＰ、ＥＣＦＰ、Ｃｙｐｅｔ、ＡｍＣｙａｎ１、ＧＦＰ、ＥＧＦＰ，ＹＦＰ、Ｖｅｎｕｓ、ｍＫＯ、ｍＯｒａｎｇｅ、ＲＦＰ、ＤｓＲｅｄ、ｔｄＴｏｍａｔｏ、ｍｃｈｅｒｒｙ、ｍＳｔｒａｗｂｅｒｒｙ、Ａｚａｌｅａ、ｍＰｌｕｍ、ｍＡＧ、Ｋａｅｄｅ、Ｄｒｏｎｐａ、Ｋｅｉｍａ、ＫｉｋＧ、ＫｉｋＧＲ、ＵｎａＧ等が挙げられるが、これらに限定されない。反応により光の放出や色の変化を生じる酵素としては、ペルオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼ、β－Ｄ－ガラクトシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、グルコ－ス－６－ホスフェートデヒドロゲナーゼ、アルコール脱水素酵素、リンゴ酸脱水素酵素、ペニシリナーゼ、カタラーゼ、アポグルコースオキシダーゼ、ウレアーゼ、ルシフェラーゼおよびアセチルコリンエステラーゼ等などが挙げられるが、これらに限定されない。

〔融合タンパク質の構造〕
「融合タンパク質」とは、共有結合によって、直接またはリンカーを介して連結された少なくとも２種の異種ペプチドを有するタンパク質を指す。リンカーは、特に限定されないが、好ましくは、柔軟性を与えるために、例えば、グリシン、アラニン、およびセリンなどの低分子側鎖を有するアミノ酸を主に含有する。好ましくは、リンカー配列の８０％、９０％、またはそれ以上がグリシン残基、アラニン残基、またはセリン残基を含み、特にグリシン残基またはセリン残基を含有する。

融合タンパク質に含まれる細胞内安定化ペプチドおよび抗原結合性ペプチドの連結の順序は任意である。融合タンパク質のＮ末端側から、細胞内安定化ペプチド－抗原結合性ペプチドの順、または抗原結合性ペプチド－細胞内安定化ペプチドの順に配置されてよい。また、融合タンパク質のＮ末端－Ｃ末端の向きに対して、細胞内安定化ペプチドおよび／または抗原結合性ペプチド自体のＮ末端－Ｃ末端の向きが逆になるように配置されてもよい。また、抗原結合性ペプチドの両端に複数の細胞内安定化ペプチド（同じ細胞内安定化ペプチドが複数もあってもよく、異なる細胞内安定化ペプチドの組み合わせであってもよい）が配置されていてもよい。

さらなる機能ペプチドの配置も任意である。機能ペプチドが酸性アミノ酸を１５％以上含む精製タグペプチドの場合、抗原結合性ペプチドを細胞内安定化ペプチドと挟む位置（細胞内安定化ペプチド－抗原結合性ペプチド－精製タグペプチド、または、精製タグペプチド－抗原結合性ペプチド－細胞内安定化ペプチド）に配置されていることが好ましい。このように配置することにより、融合タンパク質の全体的な電荷の位置的なバランスが取れる。そのため、細胞内において融合タンパク質をより安定に維持することができる。検出用ペプチドの配置も任意であるが、検出感度の観点から、融合タンパク質の最もＮ末端側または最もＣ末端側に位置することが好ましい。

また、抗原結合性ペプチドのＮ末端側とＣ末端側との両方に、同一のまたは異なる細胞内安定化ペプチドが連結されていてもよい。この場合、より低いｐＨにおいても、融合タンパク質の負電荷が多くなるため、細胞内における凝集をより防ぐことができる。

本発明の融合タンパク質は、細胞内安定化ペプチドを含むことにより、等電点が、抗原結合性ペプチド単独で存在する場合よりも低下する。そのため、細胞内において、抗原結合性ペプチド単独で発現させた場合よりも凝集が抑制されて、安定的に細胞内抗体として機能し得る。
本発明の融合タンパク質は、一例において、ｐＨ７．４における正味の電荷が負であることが好ましく、ｐＨ６．６における正味の電荷が負であることがより好ましく、ｐＨ６．０における正味の電荷が負であることがより好ましく、ｐＨ５．０における正味の電荷が負であることがさらに好ましい。

「融合タンパク質」を構成するアミノ酸の数は特に限定されないが、例えば、１０００個以下であり、６００個以下であることが好ましく、５５０個以下であることがより好ましい。「融合タンパク質」を構成するアミノ酸の数は、例えば１００個以上であり、２５０個以上であり、または、３００個以上である。

＜２．ポリヌクレオチド＞
本発明のポリヌクレオチドは、本発明の融合タンパク質をコードする。「ポリヌクレオチド」は、ＤＮＡ分子、ＲＮＡ分子、およびＤＮＡとＲＮＡとのハイブリッド分子の何れであってもよい。また、「ポリヌクレオチド」は、一本鎖であってもよいし、二本鎖であってもよい。

本発明のポリヌクレオチドは、公知の遺伝子工学的手法または化学合成方法等によって調製され得る。本発明のポリヌクレオチドの具体的な塩基配列は、目的とする融合タンパク質のアミノ酸配列から、例えばコドン表を参照して、当業者は容易に設計することができる。

また、必要に応じて、プロモーター（ＳＶ４０プロモーター、ＭＭＴＶ－ＬＴＲプロモーター、ＥＦ１αプロモーター、ＣＭＶプロモーターなど）、エンハンサー、リボソーム結合部位、スプライスシグナル、およびターミネーター等の調節性配列、並びに選択マーカー配列等を含んでいてもよい。

また、必要に応じて、核やミトコンドリア、小胞体や形質膜直下に局在させるようなシグナルペプチド配列を付加することで、本発明の融合タンパク質の局在化により細胞内抗体として機能する細胞内の場所を制御することが可能である。

本発明のポリヌクレオチドは、ベクターに組み込まれ得る。「ベクター」とは、所望のポリヌクレオチドを宿主細胞に導入し、宿主細胞において発現させるためのビヒクルを指す。ベクターとしては、ウイルスベクター、並びに、プラスミドベクター、バクテリアベクター、ファージベクター、ファージミドベクター、およびコスミドベクター等の非ウイルスベクター系のベクターが挙げられる。ウイルスベクターとしては、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス（ＡＡＶ）、レトロウイルス（ＲＳＶ、ＭＭＴＶ、およびＭＯＭＬＶなど）、レンチウイルス、センダイウイルス、単純ヘルペスウイルスなどが挙げられる。インビボにおいて本発明のポリヌクレオチドを細胞へ導入する場合には、ウイルスベクターを用いることが好ましい。インビトロにおいて本発明のポリヌクレオチドを細胞へ導入する場合には、ウイルスベクターおよび非ウイルスベクター系のベクターの何れを用いてもよい。

ベクターは、発現されるＤＮＡの他に、例えば、プロモーター（ＳＶ４０プロモーター、ＭＭＴＶ－ＬＴＲプロモーター、ＥＦ１αプロモーター、ＣＭＶプロモーターなど）、エンハンサー、リボソーム結合部位、スプライスシグナル、およびターミネーター等の調節性配列、並びに必要に応じて選択マーカー配列（アンピシリン耐性遺伝子、カナマイシン耐性遺伝子、ストレプトマイシン耐性遺伝子、クロラムフェニコール耐性遺伝子など）等を含んでいてもよい。プロモーターは恒常的なものであってもよいし、誘導性のものであってもよい。

発現ベクターの構築は、例えば、公知の遺伝子工学的手法を用いて行うことができる。

＜３．利用方法＞
〔薬学的用途〕
（薬学的組成物）
本発明はまた、上述の融合タンパク質、ポリヌクレオチドまたはベクターを含む薬学的組成物を提供する。

本発明の薬学的組成物は、上述の融合タンパク質、ポリヌクレオチドまたはベクター以外の他の成分をさらに含んでいてもよい。当該他の成分は特に限定されないが、例えば、薬学的に許容される担体、潤滑剤、保存剤、安定剤、湿潤剤、乳化剤、浸透圧調整用の塩類、緩衝剤、安定剤、保存剤、賦形剤、抗酸化剤、粘度調整剤、着色剤、香味料、および甘味料等が挙げられる。薬学的組成物が水溶液として形成される場合、純水（滅菌水）、生理食塩液、またはリン酸緩衝生理食塩液等を担体として使用し得る。薬学的組成物が他の適切な溶液として形成される場合、生体内に導入されることができる有機エステル、例えばグリコール、グリセロール、またはオリーブ油等を担体として使用し得る。

薬学的組成物は、使用説明書と共に、容器、パック、またはディスペンサー等に収容されてもよい。

（疾患の治療および予防への利用）
上述の薬学的組成物は、例えば、抗原が関連する疾患を治療および／または予防するために用いることができる。

本発明の薬学的組成物の一態様としては、本発明のポリヌクレオチドまたはベクターを対象の細胞に導入し、対象の細胞内で本発明の融合タンパク質を発現させて、抗原結合性ペプチドにより疾患に関連する抗原の機能を制御し（すなわち、抑制または活性化する。好ましくは抑制する）、疾患を治療および／または予防する。

本発明の薬学的組成物の別態様としては、細胞外環境から細胞内へと抗体を運ぶための機構を利用することで、標的とする細胞内に本発明の融合タンパク質が侵入して細胞内抗体として機能し、疾患を治療および／または予防することができる。

本発明の薬学的組成物の別態様としては、細胞外環境から細胞内に移行し再び細胞外環境へと輸送される機構（リサイクル機構）において、標的とする細胞内における本発明の融合タンパク質の安定性を向上させ、細胞内および／または細胞外で抗体として機能させ、疾患を治療および／または予防することができる。

本発明の薬学的組成物の別態様としては、採取された細胞に本発明の融合タンパク質を発現させるように処置させた細胞であり、本発明の融合タンパク質を発現させた当該細胞を対象に投与することで、疾患を治療および／または予防することができる。前記態様において、採取された細胞は、投与対象となる個体から採取された同種同系の細胞（自家細胞）でもよく、投与対象とは異なる個体から採取された異種同系の細胞（他家細胞）でもよい。

いずれの態様においても、本発明の融合タンパク質を細胞内で発現させる際に、特定の細胞小器官に局在するように局在用の移行シグナルを付加してもよい。

「治療」の一側面には、対象となる疾患に関連する少なくとも１つの症状について、軽減若しくは緩和すること、進行を遅延すること、および治癒すること等が包含される。「予防」の一側面には、対象となる疾患に関連する少なくとも１つの症状について発症を防止すること等が包含される。

治療および／または予防の対象となる生物としては、例えば、ヒトおよび非ヒト動物が挙げられ、より具体的には、魚類、鳥類および哺乳類等の脊椎動物が挙げられる。哺乳類としては、マウス、ラット、ウサギ、モルモットおよびヒトを除く霊長類等の実験動物；イヌおよびネコ等の愛玩動物（ペット）；ブタ、ウシ、ヤギ、ヒツジおよびウマ等の家畜；またはヒトが挙げられる。

治療または予防される疾患としては、例えば、がん、腫瘍、神経系疾患（中枢神経系疾患、抹消神経系疾患）、感染（ウイルス感染、細菌感染等）性疾患、自己免疫疾患またはアレルギー疾患、および炎症性疾患などが挙げられる。

がんまたは腫瘍として、例えば、舌癌、歯肉癌、悪性リンパ腫、悪性黒色腫（メラノーマ）、上顎癌、鼻癌、鼻腔癌、喉頭癌、咽頭癌、神経膠腫、髄膜腫、神経膠腫、神経芽細胞腫、甲状乳頭腺癌、甲状腺濾胞癌、甲状腺髄様癌、原発性肺癌、扁平上皮癌、腺癌、肺胞上皮癌、大細胞性未分化癌、小細胞性未分化癌、カルチノイド、睾丸腫瘍、前立腺癌、乳癌（例えば、乳頭腺癌、面疱癌、粘液癌、髄様癌、小葉癌、硬癌肉腫、転移腫瘍）、乳房ペーシジェット病、乳房肉腫、骨腫瘍、甲状腺癌、胃癌、肝癌、急性骨髄性白血病、急性前髄性白血病、急性骨髄性単球白血病、急性単球性白血病、急性リンパ性白血病、急性未分化性白血病、慢性骨髄性白血病、慢性リンパ性白血病、成人型Ｔ細胞白血病、悪性リンパ腫（例えば、リンパ肉腫、細網肉腫、ホジキン病など）、多発性骨髄腫、原発性マクログロブリン血症、小児性白血病、食道癌、胃癌、胃・大腸平滑筋肉腫、胃・腸悪性リンパ腫、膵・胆嚢癌、十二指腸癌、大腸癌、原発性肝癌（例えば、肝細胞癌、胆管細胞癌など）、肝芽腫、子宮上皮内癌、子宮頸部扁平上皮癌、子宮腺癌、子宮腺扁平上皮癌、子宮体部腺類癌、子宮肉腫、子宮癌肉腫、子宮破壊性奇胎、子宮悪性絨毛上皮腫、子宮悪性黒色腫、卵巣癌、中胚葉性混合腫瘍、腎癌、腎盂移行上皮癌、尿管移行上皮癌、膀胱乳頭癌、膀胱移行上皮癌、尿道扁平上皮癌、尿道腺癌、ウィルムス腫瘍、横紋筋肉腫、線維肉腫、骨肉腫、軟骨肉腫、滑液膜肉腫、粘液肉腫、脂肪肉腫、ユーイング肉腫、皮膚扁平上皮癌、皮膚基底細胞癌、皮膚ボーエン病、皮膚ページェット病、皮膚悪性黒色腫、悪性中皮癌、転移性腺癌、転移性扁平上皮癌、転移性肉腫、中皮腫（例えば、胸膜中皮腫、腹膜中皮腫、心膜中皮腫など）などが挙げられるが、これらに限定されない。

中枢神経系疾患としては、パーキンソン病、アルツハイマー病、ハンチントン病、プリオン疾患、前頭側頭痴呆、筋萎縮性側索硬化症（ALS）、脊髄延髄筋萎縮症（SBMAまたはケネディ病）、歯状赤核淡蒼球萎縮症（DRPLA）、脊髄小脳運動失調（例えば、SCA-1～SCA-7）、認知症、統合失調症、鬱病、躁鬱病、神経症、心身症、脳梗塞、多発性硬化症、進行性各上性麻痺、多系統萎縮症、脊髄小脳変性症、小脳変性症、脳代謝異常、脳循環異常、自律神経失調症、中枢神経系が関与する各種内分泌系の異常、睡眠障害、神経症状（悪心、嘔吐、口渇、食欲不振、めまいなど）、運動障害、学習障害などが挙げられるが、これらに限定されない。

感染性疾患としては、例えば、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ）、ヒトＴ細胞白血病ウイルス（例、ＨＴＬＶ－Ｉ）、肝炎ウイルス（例、Ａ型、Ｂ型、Ｃ型、Ｄ型およびＥ型肝炎ウイルス）、インフルエンザウイルス、単純ヘルペスウイルス、西ナイル熱ウイルス、ヒトパピローマウィルス、脳炎ウイルス、エボラウイルス等の病原性ウイルスに感染して起こる疾患、クラミジア、ミコバクテリア、レジオネラ等の病原性細菌に感染して起こる疾患、アスペルギルス、カンジダ等の病原性酵母に感染して起こる疾患、マラリア原虫、トリパノソーマ原虫等の病原性原虫に感染して起こる疾患などが挙げられるが、これらに限定されない。

投与経路・方法は特に限定されず、対象とする疾患に応じて適宜選択することができる。患部に直接投与してもよいし、間接的に投与してもよい。また、本発明の融合タンパク質を発現させた細胞を投与することでもよい。一例において、投与経路としては、例えば、経口、静脈内、筋肉内、皮下、腫瘍内、直腸、動脈内、門脈内、心室内、経粘膜、経皮、鼻内、腹腔内、肺内および子宮内等の経路が挙げられ、局所投与、遺伝子銃を用いる方法等も挙げられる。

用量および投与回数は、症状の程度、年齢、性別、体重、投与形態、疾患の具体的な種類等に応じて適宜選択することができる。

〔研究ツールとしての用途〕
（研究用試薬）
本発明はまた、上述のポリヌクレオチドまたはベクターを含む研究用試薬を提供する。研究用試薬は、上述のポリヌクレオチドまたはベクター以外の他の成分をさらに含んでいてもよい。当該他の成分は、上述の（薬学的組成物）で説明したものを参照可能である。

研究用試薬は、使用説明書と共に、容器、パック、またはディスペンサー等に収容されてもよい。

（研究ツールとしての利用方法）
本発明の融合タンパク質は、細胞内における抗原（例えば、タンパク質またはポリペプチド等）の機能解析に用いることができる。一例において、機能解析の対象となる抗原に対する抗原結合性ペプチドを本発明の融合タンパク質として細胞内で発現させ、抗原の機能を制御する（好ましくは阻害する）ことにより、抗原の機能解析を行うことができる。

対象となる細胞は、特に限定されない。対象となる細胞としては、例えば、ヒト細胞および非ヒト動物細胞が挙げられ、より具体的には、魚類細胞、鳥類細胞および哺乳類細胞等の脊椎動物細胞が挙げられる。哺乳類細胞としては、マウス、ラット、ウサギ、モルモットおよびヒトを除く霊長類等の実験動物；イヌおよびネコ等の愛玩動物（ペット）；ブタ、ウシ、ヤギ、ヒツジおよびウマ等の家畜；またはヒトの細胞が挙げられる。また、細胞は、培養細胞でもよいし、生体細胞（生体内にある単離されていない細胞）でもよい。細胞の好ましい一例は、ヒトの培養細胞、ヒトの生体細胞、非ヒト病態モデル動物の培養細胞、非ヒト病態モデル動物の生体細胞である。

ウイルスベクターを標的細胞へ導入する場合は、細胞培養液中にウイルスベクターを懸濁する方法が挙げられる。非ウイルスベクター系のベクターを標的細胞へ導入する場合は、例えば、エレクトロポーレーション法、マイクロインジェクション法、リポフェクション法、リン酸カルシウム法、ＤＥＡＥデキストラン法などの方法で行うことができる。

抗原の機能を阻害した結果の指標としては、細胞、組織、または個体に現れる表現型の変化が挙げられ、これらの指標に基づき抗原の機能解析を行うことができる。細胞の変化の指標としては、細胞の表現型の変化、例えば、産生物質の量的および／または質的変化、増殖活性の変化、細胞数の変化、形態の変化、特性の変化、アポトーシスの誘導等が挙げられる。産生物質としては、分泌タンパク質、表面抗原、細胞内タンパク質、ｍＲＮＡ等を用いることができる。形態の変化としては、突起形成および／または突起の数の変化、偏平度の変化、伸長度／縦横比の変化、細胞の大きさの変化、内部構造の変化、細胞集団としての異形性／均一性、細胞密度の変化等を用いることができる。これらの形態の変化は検鏡下での観察により確認することができる。特性の変化としては、足場依存性、サイトカイン依存応答性、ホルモン依存性、薬剤耐性、細胞運動性、細胞遊走活性、拍動性、細胞内物質の変化等を用いることができる。細胞運動性としては、細胞浸潤活性、細胞遊走活性が挙げられる。また、細胞内物質の変化としては、酵素活性、ｍＲＮＡ量、Ｃａ^２＋またはｃＡＭＰ等の細胞内情報伝達物質量、細胞内タンパク質量等を用いることができる。組織系の指標としては、使用する組織に応じた機能変化を検出指標とすることができる。生体系の指標としては、組織重量変化、血液系の変化、例えば血球細胞数の変化、タンパク質量や、酵素活性、電解質量の変化、また、循環器系の変化、例えば、血圧、心拍数の変化等を用いることができる。

これらの検出指標を測定する方法としては、特に制限はなく、吸光、発光、発色、蛍光、放射活性、蛍光偏光度、表面プラズモン共鳴シグナル、時間分解蛍光度、質量、吸収スペクトル、光散乱、蛍光共鳴エネルギー移動等を用いることができる。これらの測定方法は当業者にとっては周知であり、目的に応じて、適宜選択することができる。例えば、吸収スペクトルは一般的に用いられるフォトメータやプレートリーダ等、発光はルミノメータ等、蛍光はフルオロメータ等で測定することができる。質量は、質量分析計を用いて測定することができる。放射活性は、放射線の種類に応じてガンマカウンターなどの測定機器を用いて、蛍光偏光度はＢＥＡＣＯＮ（宝酒造）、表面プラズモン共鳴シグナルはＢＩＡＣＯＲＥ、時間分解蛍光、蛍光共鳴エネルギー移動などはＡＲＶＯなどにより測定できる。さらに、フローサイトメータなども測定に用いることができる。これらの測定方法は、一つの測定方法で２種以上の検出指標を測定しても良く、簡便であれば、２種以上の測定を同時および／または連続して測定することによりさらに多数の検出指標を測定することも可能である。例えば、蛍光と蛍光共鳴エネルギー移動を同時にフルオロメータで測定することができる。

本発明の融合タンパク質は、細胞内における抗原（例えば、タンパク質またはポリペプチド等）の動態観察に用いることもできる。一例において、動態観察の対象となる抗原に対する抗原結合性ペプチドを本発明の融合タンパク質として細胞内で発現させ、抗原と融合タンパク質との反応を検出することにより、抗原の動態観察を行うことができる。抗原の動態観察には、抗原の発現、抗原の局在等を、ある時間において、または経時的に観察することが包含される。

抗原と融合タンパク質との反応の検出は、例えば、融合タンパク質に含まれる検出用ペプチドによる蛍光、発光、発色等を利用して行うことができる。

＜４．細胞内において抗原結合性ペプチドを発現させる方法＞
本発明はまた、細胞内において抗原結合性ペプチドを発現させる方法を提供する。当該発現方法は、上述のポリヌクレオチド（すなわち、本発明の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド）を細胞内において発現させる工程を含む。

発現は、恒常的なものであってもよく、一過性のものでもよい。また、誘導性のものであってもよい。恒常的に発現させる場合には、恒常的な発現を行うプロモーターが融合タンパク質の遺伝子上流に連結したポリヌクレオチドを用いればよい。一過性に発現させる場合には、例えばＤＮＡではなくＲＮＡを細胞に導入して発現させればよい。誘導により発現させる場合には、誘導性のプロモーターが融合タンパク質の遺伝子上流に連結したポリヌクレオチドを用いればよい。そして、抗原結合性ペプチドを発現させる際に、誘導因子（例えば、ＩＰＴＧ等）を細胞に取り込ませればよい。

対象となる細胞としては、＜３．利用方法＞で列挙された細胞が挙げられる。

本発明の発現方法では、抗原結合性ペプチドを、細胞内安定化ペプチドと融合した状態で（すなわち、融合タンパク質として）発現させる。本発明の融合タンパク質は、細胞内安定化ペプチドを含むことにより、等電点が、抗原結合性ペプチド単独で存在する場合よりも低下する。そのため、細胞内において、抗原結合性ペプチド単独で発現させた場合よりも凝集が抑制されて、安定的に細胞内抗体として機能し得る。

一実施形態において、本発明の発現方法は、上述のポリヌクレオチドを細胞に導入する工程をさらに含む。上述のポリヌクレオチドは、ベクターの形態で導入されてもよい。具体的な導入方法は、＜３．利用方法＞で記載された方法が挙げられる。それゆえ、本発明はさらに、細胞内において抗原結合性ペプチドを発現させる細胞を製造する方法を提供する。該製造方法は、上述のポリヌクレオチド（すなわち、本発明の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド）または上述の発現ベクターを細胞に導入する工程を含む。また、本発明はさらに、本発明の融合タンパク質を発現する細胞も提供する。

＜５．キット＞
本発明はまた、上述の細胞内安定化ペプチドと抗原結合性ペプチドとを含む融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを作製するためのキットであって、当該細胞内安定化ペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む、キットを提供する。

本発明のキットは、所望の抗原結合性ペプチドについて、融合タンパク質をコードするポリヌクレオチドを容易に作製することができる汎用的なキットであり得る。

本発明の細胞内安定化ペプチドをコードするポリヌクレオチドは、上述のようなベクターに組み込まれていてもよい。また、当該ポリヌクレオチドは、タンパク質の発現に必要な因子（例えば、プロモーター、リボソーム結合部位、およびターミネーター等）、選択マーカー、または制限酵素認識部位等を含んでいてもよい。

さらに、本発明のキットは、バッファー、制限酵素、その他必要な試薬、器具、および使用説明書等のうちの少なくとも１つをさらに含んでいてもよい。

以下に実施例を示し、本発明の実施の形態についてさらに詳しく説明する。もちろん、本発明は以下の実施例に限定されるものではなく、細部については様々な態様が可能であることはいうまでもない。さらに、本発明は上述した実施形態に限定されるものではなく、請求項に示した範囲で種々の変更が可能であり、それぞれ開示された技術的手段を適宜組み合わせて得られる実施形態についても本発明の技術的範囲に含まれる。また、本明細書中に記載された文献の全てが参考として援用される。

〔実験動物〕
理化学研究所の動物実験委員会のガイドラインに従って、すべての実験手順を行った。使用マウスを、１２時間毎の明暗サイクルに置き、暗サイクルは２０：００から８：００に起こるようにした。

〔抗体〕
この研究で用いた抗体を表Ｓ１に載せた。

〔抗体反応性ファージの単離〕
組換えファージ抗体システム（ＲＰＡＳ）（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いてｓｃＦｖ遺伝子を単離した。ｓｃＦｖ－Ａ３６のＤＮＡ配列は、日本ＤＮＡデータバンク（ＤＤＢＪ）にアクセッション番号ＡＢ４７２３７６で登録されている。

〔発現ベクターの構築〕
特定のプライマーを用いたＰＣＲを基にして構築した発現ベクターは、下記に記載した。

〔組換えウイルスベクターの作製〕
ＳｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６およびｓｃＦｖ－ＧＦＰＭ４をＡＡＶ１血清型を用いて作製した；ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡおよびｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡは、ＡＡＶ９血清型を用いて作製した。ＡＡＶベクタープラスミド、およびその作製の詳細は、下記に記載した。

〔ＡＡＶベクターの定位注入〕
オスの野生型Ｂ６マウス、もしくはオスのＤＡＴ－ｃｒｅ（＋／－）マウス（８週齢）に麻酔器（ＭＫ－Ａ１１０；Ｍｕｒｏｍａｃｈｉ）を用いてイソフルレン（Ｅｓｃａｉｎ； Ｍｙｌａｎ）で麻酔をかけ、定位フレーム（Ｓｔｅｒｅｏｔａｘｉｃ Ｊｕｓｔ ｆｏｒ Ｍｏｕｓｅ，Ｍｕｒｏｍａｃｈｉ）に配置した。ＡＡＶベクターは、右半球の黒質に注入した（ブレグマに対するミリメートル単位で表された座標、ＡＰ；－３．０８，ＬＲ；－１．２５，ＤＶ；－４．５）。

〔組換えｓｃＦｖ抗体の精製〕
組換え抗体ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６をＥ． ｃｏｌｉ系統ＢＬ２１で発現し、変性もしくは非変性の条件下で、Ｎｉ－ＮＴＡアガロースクロマトグラフィーを用いて精製した。外来タンパク質の可溶な状態での発現を向上するため（Ｙａｓｕｋａｗａ ｅｔ ａｌ．，１９９５）、チオレドキシン（Ｔｒｘ）を発現しているｐＴ－Ｔｒｘベクターによって共形質転換されたＥ． ｃｏｌｉ系統ＢＬ２１から、非変性の条件下で、抗－Ｆｌａｇ（Ｍ２）抗体結合アフィニティービーズ（Ｓｉｇｍａ）を用いて、組換え抗体ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡを精製した。

〔免疫蛍光染色〕
免疫染色を標準的な手法で行った。免疫蛍光シグナルは、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ４８８もしくはＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ５９４でラベルされた二次抗体（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）により視覚化した。蛍光ラベルされた試料は、Ｆｌｕｏｖｉｅｗ ＦＶ１０００共焦点顕微鏡（Ｏｌｙｍｐｕｓ）もしくはＢＺ－９０００蛍光顕微鏡（Ｋｅｙｅｎｃｅ）により画像表示した。

〔ＥＬＩＳＡによる抗体のアフィニティーの計測〕
ＧＳＴ－Ｓｙｔ Ｉ－Ｃ２Ａの抗体結合アフィニティーを、下記に記載された通りにＥＬＩＳＡにより計測した。

〔行動テスト〕
以前に報告されたロータロッド試験（Ｓｈｉｏｔｓｕｋｉ ｅｔ ａｌ．，２０１０）を改変し、改変ロータロッド試験を実施した。本研究では、マウス用のロータロッド（ＭＫ－６１０Ａ，Ｍｕｒｏｍａｃｈｉ）に、滑り止めテープ（Ｎｉｔｏｆｌｏｎ粘着テープ，Ｎｏ．９０３ＵＬ，０．１３ｍｍ厚，Ｎｉｔｔｏ ｄｅｎｋｏ）で覆われた大きなロッド（直径９ｃｍ）を装備した。

〔ｓｃＦｖ－Ａ３６とアラインメントしたＳｃＦｖタンパク質〕
ｓｃＦｖ－Ａ３６とアラインメントしたｓｃＦｖタンパク質のアクセッション番号およびアミノ酸残基を、表Ｓ２に載せた。

〔実験動物〕
Ｄａｔ＋／ＩＲＥＳ－ｃｒｅ マウス（Ｂａｃｋｍａｎ ｅｔ ａｌ．，２００６）はＪａｃｋｓｏｎ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙより購入した。ｓｃＦｖ遺伝子を発現しているＡＡＶウイルスベクターを、ＤＡＴ－Ｃｒｅマウス系統とともに、黒質のドーパミン神経において抗体遺伝子を選択的に発現させるために用いた。マイクロダイアリシスおよび行動テストで用いた、ウイルスベクターを有するすべてのマウスは、一対のヘテロ接合体から生まれたオスの同腹子であった。Ｃｈａｒｌｅｓ Ｌｉｖｅｒ Ｊａｐａｎより購入したＢａｌｂ／ｃ、Ｂａｌｂ／ｃ－ｎｕおよび野生型のＣ５７Ｂ６／Ｊマウスは、抗体産生、もしくはレンチウイルスベクターおよびＡＡＶベクターを用いた実験、ならびに初代ドーパミン神経培養に使用した。

〔抗体反応性ファージの単離〕
ｓｃＦｖにおいて、上記抗体の軽鎖および重鎖の可変部は、ひとつの遺伝子にコードされたグリシンリンカーによって融合している。ＲＰＡＳ（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）により、ｓｃＦｖの多様なレパートリーをＭ１３ファージの表面上で提示することが可能になる。ＧＳＴ－Ｓｙｔ ＩＩ－Ｃ２Ａにより免疫性を与えられたマウス（Ｂａｌｂ／ｃ）脾臓からトータルＲＮＡを単離した（Ｆｕｋｕｄａ ｅｔ ａｌ．，１９９４； Ｆｕｋｕｄａ ｅｔ ａｌ．，１９９９）。上記軽鎖および重鎖の可変部（それぞれＶＨおよびＶＬ）を、縮重プライマー（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いて、２つの独立した反応により増幅した。結果得られたＰＣＲ産物を、フレキシブルな（Ｇｌｙ４－Ｓｅｒ）３の１５アミノ酸鎖をコードするリンカーと結合した。ＶＨ－グリシンリンカー－ＶＬ複合体（ｓｃＦｖ）を、ｐＣＡＮＴＡＢ ５Ｅベクター（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）のＳｆｉ ＩおよびＮｏｔ Ｉ部位にサブクローニングした。Ｅ． ｃｏｌｉ ＴＧ－１細胞をｓｃＦｖ ｃＤＮＡを含むプラスミドベクターおよびＭ１３－ＫＯ７ヘルパーファージの感染によって形質転換することにより、組換えファージ抗体を産生した。抗体反応性ファージの単離は、製造元の使用説明書に従ってバイオパニングすることにより行った。対数期ＴＧ－１細胞を抗体反応性ファージに感染させた。別個の抗体を提示するファージを、マイクロタイターウェルに結合した組換えＧＳＴ－Ｓｙｔ ＩＩ－Ｃ２Ａを用いたＥＬＩＳＡにより、ファージライブラリーからスクリーニングした。抗体反応性ファージを、セイヨウワサビペルオシキダーゼ（ＨＲＰ）結合抗Ｍ１３抗体を用いて視覚化した。抗体反応性ｓｃＦｖクローン（ｓｃＦｖ－Ａ３６と名付けた）の配列決定は、自動ＤＮＡシークエンサーを用いて行った。

〔発現ベクターの構築〕
ｓｃＦｖ－Ａ３６のｃＤＮＡ配列に基づいて、２つのリンカープライマーをＰＣＲ増幅に合わせて設計し、それにより、コザック配列、Ｔ７ペプチド、およびＢａｍＨＩ制限酵素認識部位をＡ３６の５’フランキング領域に導入し、ＭｕｎＩ部位、ヘキサヒスチジン残基、およびＮｏｔ Ｉ部位をＡ３６の３’フランキング領域に導入した（表１）。

次いで、ＰＣＲ産物を、直接ｐＧＥＭ－Ｔ－ｅａｓｙクローニングベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ，Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）に連結した（ｐＧＥＭ－ｓｃＦｖ－Ａ３６と命名した；図８のＡ）。高感度緑色蛍光タンパク質（ＥＧＦＰ）断片を、ｐＥＧＦＰ－Ｃ１ベクター（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）から、下記のプライマーを用いたＰＣＲによって得た（表２）。

次いで、消化ＥＧＦＰ断片を、ｐＧＥＭ－ｓｃＦｖ－Ａ３６のＢａｍＨＩサイトに連結し、ｐＧＥＭ－ｓｃＦｖ－ＧＦＰ Ａ３６ベクターを作製した。ｐＥＴ－ｓｃＦｖ－ＧＦＰ Ａ３６を構築するために、ｐＧＥＭ－ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６のＢａｍＨＩ－ＮｏｔＩ消化断片を、変更したｐＥＴ３ａ（Ｍ． Ｆｕｋｕｄａ，未発表データ）Ｅ． ｃｏｌｉ発現ベクター（Ｎｏｖａｇｅｎ）のＢａｍＨＩおよびＮｏｔＩ部位に連結した。哺乳類細胞において、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）プロモーターによりドライブして、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６を一過性発現するために、ｐＧＥＭ－ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６のＮｏｔＩ断片を、ｐＩＲＥＳベクター（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）に連結し、ベクターｐＩＲＥＳ－ｓｃＦｖ－ＧＦＰ Ａ３６を作成した。ｓｃＦｖ－Ａ３６変異体の構築のために、Ａ３６の重鎖のＣＤＲ１およびＣＤＲ３領域を含むＤＮＡ断片を、下記の２つの縮重プライマーを用いたＰＣＲにより増幅した（表３）。なお、ＮはＡ、Ｃ、Ｇ、もしくはＴである（等モル）。

次いで、ＣＤＲ１およびＣＤＲ３変異体断片を、ＨｉｎｄＩＩＩおよびＢｓｔＥＩＩを用いて消化し、元のＡ３６のＨｉｎｄＩＩＩおよびＢｓｔ ＥＩＩ部位に連結した。これらのＤＮＡ断片から、変異体ｓｃＦｖを提示するファージライブラリーを、上記の方法で産生した。ｓｃＦｖｓのアミノ酸配列のマルチプルアラインメントは、ＣＬＵＳＴＡＬＷ（ｖｅｒｓｉｏｎ． ２．１： ｈｔｔｐ：／／ｃｌｕｓｔａｌｗ．ｄｄｂｊ．ｎｉｇ．ａｃ．ｊｐ／ｉｎｄｅｘ．ｐｈｐ？ｌａｎｇ＝ｊａ）（Ｔｈｏｍｐｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，１９９４）により行った。３×Ｆｌａｇタグ（ＭＤＹＫＤＨＤＧＤＹＫＤＨＤＩＤＹＫＤＤＤＤＫ（配列番号１））およびＨＡタグ（ＹＰＹＤＶＰＤＹＡ（配列番号１４））融合ｓｃＦｖ構築物（ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－ＨＡ）を合成し、マウスにおける発現のためにコドン最適化した。哺乳類細胞における一過性発現のために、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－ＨＡ断片を、ｐＥＦ－ＢＯＳベクター（Ｍｉｚｕｓｈｉｍａ ａｎｄ Ｎａｇａｔａ，１９９０）にクローニングした。Ｅ．ｃｏｌｉ ＢＬ２１細胞におけるｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－ＨＡタンパク質の発現および精製のために、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－ＨＡ断片を、ｐＥＴ３ａベクターにクローニングした。

〔細胞培養およびトランスフェクション〕
初代ドーパミン神経培養を、胚日１３～１４日のオスおよびメスのマウス胚の腹側中脳から準備した。簡潔に言えば、腹側中脳をトリプシン処理により解離し（０．２５％ ２０分、３７℃）、ＤＮａｓｅ Ｉを含む１０％ＦＢＳを添加したｎｅｕｒｏｂａｓａｌ培地中で、火で仕上げたパスツールピペットで粉砕した。解離した細胞（６×１０^４）を、２４ウェルプレート（Ｉｗａｋｉ）中で、ポリ－Ｌ－リシン（１μｇ／ｍＬ）コートカバーガラス（Ｆｉｓｈｅｒｂｒａｎｄ，直径；１２ｍｍ）上にまき、それからＢ２７（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を添加したｎｅｕｒｏｂａｓａｌ培地５００μＬ中で培養した。それぞれのウェル内の７日目のｉｎ ｖｉｔｒｏの細胞（ＤＩＶ）を、ＡＡＶベクター（タイター：１×１０^１１マイクロｇ／ｍＬ）５μＬで感染させ、ＧＦＰ－タグ付きｓｃＦｖタンパク質を発現させ、感染から７日後に、免疫細胞化学もしくはドーパミン放出アッセイを行った。理研バイオリソースセンターセルバンク（Ｔｓｕｋｕｂａ，Ｊａｐａｎ）から入手した２９３ＴおよびＣＯＳ－７細胞を、１０％ＦＢＳを添加したＤＭＥＭで培養した。これらの細胞を、Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ２０００を製造元の使用説明書（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）に従って用いて、発現ベクターによりトランスフェクションし、トランスフェクションから１日後に、免疫化学的分析に用いた。

〔組換えｓｃＦｖ抗体の精製〕
Ｅ． ｃｏｌｉ系統ＢＬ２１（ＤＥ３）（Ｎｏｖａｇｅｎ）を、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６の発現に用いた。ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６の発現を、１ｍＭのイロプロピル－１－チオ－β－Ｄ－ガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）により、３０℃で３時間誘導した。ＳｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６タンパク質を、バッファー（８Ｍ 尿素，０．１Ｍ ＮａＨ_２ＰＯ_４，１０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ［ｐＨ８．０］）で可溶化し、Ｎｉ－ＮＴＡアガロースクロマトグラフィー（Ｑｉａｇｅｎ）で製造元の推奨に従って精製した。変性条件下で、４ｍＬのバッファー（８Ｍ 尿素，０．１Ｍ ＮａＨ_２ＰＯ_４，１０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ［ｐＨ６．３］）でカラムを洗浄した。その後ＳｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６を、１ｍＬのバッファー（８Ｍ 尿素，０．１Ｍ ＮａＨ_２ＰＯ_４，０．０１Ｍ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ［ｐＨ ４．５］）でカラムから溶出した。溶出したｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６タンパク質を、バッファー（１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ；ｐＨ７．２）で透析した。非変性条件下でｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６を精製するために、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６を発現している細胞を、プロテアーゼインヒビターカクテルを含むＰＢＳバッファーに再度懸濁し、氷上でソニケートし、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００（１％）を加えて４℃で１時間可溶化した。遠心分離の後、上清をＮｉ－ＮＴＡ（ニッケル－ニトリロ三酢酸、ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）クロマトグラフィーにかけた。発現させたｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６を、５ｍＭヒスチジンを含むバッファー（１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ；ｐＨ７．２）を用いてカラムから溶出し、その後バッファー（１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ；ｐＨ７．２，１５０ｍＭ ＮａＣｌ）で透析した。

ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡを非変性条件下で精製するために、Ｅ．ｃｏｌｉ ＢＬ２１（ＤＥ３）コンピテントセル（Ｎｏｖａｇｅｎ）を、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡを発現しているｐＥＴ３ａベクター（Ｎｏｖａｇｅｎ）およびチオレドキシン（Ｔｒｘ）を発現しているｐＴ－Ｔｒｘベクターで共形質転換し、外来タンパク質の可溶な状態での発現を向上させた（Ｙａｓｕｋａｗａ ｅｔ ａｌ．，１９９５）。対数期の形質転換された細胞を、１ｍＭ ＩＰＴＧの添加で誘導した。誘導から３時間後に遠心分離によって細胞を回収した。プロテアーゼインヒビターカクテルを含むＰＢＳバッファーに細胞を再度懸濁した。懸濁された細胞を氷上でソニケートし、Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００（１％）を添加して４℃で１時間可溶化した。遠心分離し、０．４５μｍポアフィルターを用いて濾過した後、上清を抗Ｆｌａｇ（Ｍ２）抗体結合アフィニティービーズ（Ｓｉｇｍａ）を用いた精製クロマトグラフィーにかけた。発現させたｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡを、製造元の推奨に従って精製した。ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡを、３×Ｆｌａｇペプチド（１ｍｇ／ｍＬ）を含むバッファー（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ，ｐＨ７．４，１５０ｍＭ ＮａＣｌ）を用いてカラムから溶出し、バッファー（２０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ－ＫＯＨ，ｐＨ７．２，５０ｍＭ ＮａＣｌ）で透析した。

〔ＥＬＩＳＡによる抗体アフィニティーの計測〕
バッファー中の精製されたＧＳＴ－Ｓｙｔ Ｉ－Ｃ２Ａ（０．２５ｐｍｏｌ）を、室温で１６時間９６ウェルプレートにコートした。それぞれのウェルを、５％スキムミルクを含むＰＢＳバッファーで２時間室温でブロッキングし、０．２２～３６ｎＭの精製されたｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡとともにインキュベートした。マウスの抗体Ｆｌａｇ（Ｍ２）一次抗体、およびＨＲＰ結合抗マウス二次抗体とともにインキュベートすることにより、結合を定量した。特異的な結合は、０．２５ｐｍｏｌのＧＳＴでコートしたウェルに対するｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡの結合を差し引くことにより計算した。ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡ結合データの非線形回帰は、ヒル－ラングミュアの式により行った。

上式で、ＢはＧＳＴ－Ｓｙｔ Ｉ－Ｃ２Ａに結合したｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡの濃度を表し、Ｂ_ｍａｘは全結合部位の濃度を表し、［ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡ］は遊離ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡ濃度を表し、Ｋｄは解離定数を表す。

〔免疫蛍光染色〕
免疫細胞化学および免疫組織化学は、下記の標準的な方法で実施した。細胞を４％ ＰＦＡで室温、２分間固定し、０．３％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００を含むＰＢＳで室温、２分間透過処理した。細胞をすぐにブロッキング溶液（１％ ＢＳＡおよび０．１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００を含むＰＢＳ）で３回洗浄し、ブロッキング溶液とともに室温で１時間インキュベートし、その後２時間室温で一次抗体とともにインキュベートした。免疫蛍光シグナルは、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ４８８もしくはＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ５９４でラベルされた二次抗体（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）とともにインキュベートすることにより視覚化した。Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ色素と結合した一次抗体および二次抗体は、表Ｓ１に載せた。細胞内抗体により形成された凝集体を有する細胞の割合を定量する実験において、各実験で１つのディッシュ内の少なくとも１００個の細胞を、凝集体を有する細胞の割合を定量するために数えた。データは３回の独立した実験により得た。免疫組織化学において、マウスは４％パラホルムアルデヒドで固定した。マウス脳の低温切片（１６μｍ厚）を、０．３％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００を含むＰＢＳ中で室温で２時間透過処理し、一次抗体を含むブロッキング溶液（１％ ＢＳＡ,０．１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００）とともに４℃で１６時間インキュベートした。免疫蛍光シグナルを、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ４８８もしくはＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ５９４でラベルされた二次抗体（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を用いて視覚化した。蛍光ラベルした試料は、Ｆｌｕｏｖｉｅｗ ＦＶ１０００共焦点顕微鏡（Ｏｌｙｍｐｕｓ）もしくはＢＺ－９０００蛍光顕微鏡（Ｋｅｙｅｎｃｅ）のもとで画像化した。

〔免疫ブロット分析〕
Ｆｌａｇタグつき全長マウスＳｙｔ Ｉ－ＸＩを、以前に記載されたように調製した（Ｆｕｋｕｄａ ｅｔ ａｌ．，１９９９）。ＣＯＳ－７細胞の中で一過性発現させたＦｌａｇタグつきＳｙｔ Ｉ－ＸＩの全ホモジネートを、１０％ドデシル硫酸ナトリウム－ポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ－ＰＡＧＥ）にかけ、ポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）膜に転写した。精製したｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６（１．６μｇ／ｍＬ）を一次抗体として用いた。ＨＲＰラベル抗Ｔ７モノクローナル抗体（１／５０００希釈， Ｍｅｒｃｋ Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）を二次抗体として用いた。免疫反応性のあるバンドを、高感度ケミルミネセンス（ＥＣＬ）検出システム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いて視覚化した。等量のＦｌａｇタグつきＳｙｔｓがロードされたことを保証するため、ブロットを抗Ｆｌａｇ抗体でリプローブした。精製したｓ３Ｆｌａｇ－Ａ３６－ＨＡが、脳でマウスＳｙｔ Ｉ／ＩＩを認識したかを調べるために、マウス脳組織を単離し、ホモジナイゼーションバッファー（２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ，ｐＨ７．２，１５０ｍＭ ＮａＣｌ，０．５％ ＴｒｉｎｔｏｎＸ－１００，コンプリートプロテアーゼインヒビターカクテル；Ｒｏｃｈｅ）でホモジナイズし、４℃で１時間アジテートした。全ホモジネートの２．５μｇのタンパク質を、精製したｓ３Ｆｌａｇ－Ａ３６－ＨＡを一次抗体として用いてウエスタンブロットした。免疫反応性のあるバンドを、抗Ｆｌａｇ抗体（二次抗体）およびＨＲＰラベル抗マウス抗体を用いたＥＣＬにより視覚化した。ＡＡＶベクターを注入したマウス脳を用いた実験では、マウス脳組織を単離し、バッファー（ＰＢＳ，０．５％ ＮＰ４０，１ｍＭ ２ＭＥ，２ｍＭ ＥＤＴＡ，およびコンプリートプロテアーゼインヒビターカクテル）内でホモジナイズし、２７Ｇニードルシリンジでせん断し、４℃で１時間アジテートした。全ホモジネートを、抗ＴＨ、抗チューブリン、抗Ｓｙｔ Ｉ抗体を一次抗体として用いてウエスタンブロットした。

〔免疫沈降〕
ＣＯＳ－７細胞を、ｐＩＲＥＳ－ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６もしくはｐＩＲＥＳ－ｓｃＦｖ－ＧＦＰＭ４、およびｐＥＦ－ＢＯＳ－Ｆｌａｇ－Ｓｙｔ Ｉもしくはコントロールベクター（ｐＥＦ－ＢＯＳ）で共トランスフェクションした。プラスミドＤＮＡのトランスフェクションは、ＬｉｐｏｆｅｃｔＡＭＩＮＥ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）により製造元の推奨に従って行った。トランスフェクションの２日後、細胞をばらばらにし、バッファー（１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ［ｐＨ７．２］，１００ｍＭ ＮａＣｌ，１ｍＭ β－メルカプトエタノール）中でホモジナイズした。ホモジネートを、１，２００×ｇ、４℃で５分間遠心分離し、上清を溶解バッファー（１０ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＫＯＨ［ｐＨ７．２］，０．１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００，１００ｍＭ ＮａＣｌ，１ｍＭ β－メルカプトエタノール）で４℃で１時間可溶化した。２０，４００×ｇ、４℃で１５分間遠心分離した後、上清を新しいチューブに移し、Ｆｌａｇ－Ｓｙｔ ＩもしくはＩＩを、抗Ｆｌａｇ抗体（Ｓｉｇｍａ）およびプロテインＡセファロース（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）により免疫沈降した。溶解バッファーでビーズを洗浄した後、ビーズを１×ＳＤＳサンプルバッファー（６２．５ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ［ｐＨ６．８］，２％ ＳＤＳ，２％ β－メルカプトエタノール，０．００１％ ブロモフェノールブルー［ＢＰＢ］，１０％ グリセロール）中で煮沸した。１３，０００×ｇで５分間遠心分離した後、上清をウエスタンブロット分析に用いた。共免疫沈降したｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６を、はじめにＨＲＰラベル抗Ｔ７抗体により検出した。Ｆｌａｇ－Ｓｙｔ Ｉが沈降したことを保証するため、抗Ｓｙｔ Ｉ抗体（Ｓｔｒｅｓｓｇｅｎ）によりブロットをリプローブした。Ｓｙｔ Ｉと細胞内ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡとの相互作用を調べるため、２９３Ｔ細胞を、Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅ２０００を用いてｐＥＦ－ＢＯＳ－Ｓｙｔ ＩおよびｐＥＦ－ＢＯＳ－ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡもしくはｐＥＦ－ＢＯＳ－ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡベクターにより共トランスフェクションした。トランスフェクションの２８時間後、細胞をばらばらにし、バッファー（２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＮａＯＨ［ｐＨ７．４］，１５０ｍＭ ＮａＣｌ，０．５％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００，プロテアーゼインヒビター（ＥＧＴＡ－ｆｒｅｅ，Ｒｏｃｈｅ））中で１時間溶解し、その後、２７ゲージニードルシリンジでせん断した。ホモジネートを１，５０００ｒｐｍ、４℃で１０分間遠心分離し、上清をＣａＣｌ_２（５００μＭ）を含む新しいチューブに移し、抗ＨＡアガロース（Ｓｉｇｍａ）により免疫沈降した。５００μＭ ＣａＣｌ_２を含む溶解バッファーでビーズを洗浄した後、ビーズを１×ＳＤＳサンプルバッファー中で３分間煮沸した。１２，０００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、上清をウエスタンブロット分析に用いた。共免疫沈降したＳｙｔ Ｉを、一次抗Ｓｙｔ Ｉ（Ｓｔｒｅｓｓｇｅｎ）抗体および二次ＨＲＰラベル抗マウスＩｇＧ軽鎖特異的抗体で検出した。ｓｃＦｖタンパク質の沈降を保証するために、抗Ｆｌａｇ（Ｍ２）一次抗体（Ｓｉｇｍａ）および抗ＨＲＰラベル抗マウスＩｇＧ軽鎖特異的二次抗体でブロットをプローブした。

〔ＡＡＶベクターの作製〕
ＡＡＶ９／３ベクタープラスミドは、ヒトシナプシンＩプロモーター（ｈＳｙｎＩｐ）を含み、その後ろに、ｐＡＡＶ－ＤＩＯ－ｅＮｐＨＲ－ＹＦＰベクター（ａｄｄｇｅｎｅ： ＃２６９６６）に由来するダブルｌｏｘＰ配列（ｌｏｘＰ－ｌｏｘ２７２２）の間に目的の逆向きｃＤＮＡを含み、ラットのｔａｕ ３’－ＵＴＲ（Ｂｒｕｎ ｅｔ ａｌ．，２００３）に由来するヌクレオチド２５１９－２７６０を含む２４１ｂｐ断片（ＦｒｇＨ）、ウッドチャック肝炎ウイルス転写後調節エレメント（ＷＰＲＥ）、およびシミアンウイルス４０ポリアデニレーションシグナル配列（ＳＶ４０ｐＡ）を、ＡＡＶ３ゲノムの逆方向末端反復の間に含む。変異を有するＡＡＶ９ ｖｐ ｃＤＮＡ（Ｔ４６６Ｆ）（Ｇａｏ ｅｔ ａｌ．，２００４）を、以前に記載された方法（Ｐｅｔｒｓ－Ｓｉｌｖａ ｅｔ ａｌ．，２０１１）で合成した。組換えＡＡＶ９／３ベクターを、ベクタープラスミド、ＡＡＶ３ ｒｅｐおよびＡＡＶ９ ｖｐ発現プラスミド、ならびにアデノウイルスヘルパープラスミドｐＨｅｌｐｅｒ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を用いたＨＥＫ２９３細胞の一過性トランスフェクションにより、以前に記述された方法で作製し（Ｌｉ ｅｔ ａｌ．，２００６）、ベクターＡＡＶ９／３－ｈＳｙｎＩｐ－ＤＩＯ－ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６もしくは－Ｍ４－ＨＡを得た。組換えウイルスを２つの一連の連続的なＣｓＣｌ勾配からの単離により精製し、ウイルスタイターをｑＲＴ－ＰＣＲにより決定した。

ＡＡＶ１ベクタープラスミドは、ｈＳｙｎＩｐを含み、その後ろに目的のｃＤＮＡ、ＦｒｇＨ、ＷＰＲＥ、およびＳＶ４０ｐＡをＡＡＶ１ゲノムの逆向き末端配列の間に含んでいた。組換えＡＡＶ１ベクターを上記のとおりに作製し、ベクターＡＡＶ１－ｈＳｙｎＩｐ－ｓｃＦｖＧＦＰＡ３６もしくはＭ４を得た。

〔ＡＡＶベクターの定位注入〕
オスの野生型マウスもしくはメスのＤＡＴ－ｃｒｅ（＋／－）マウス（８週齢）をイソフルレン（Ｅｓｃａｉｎ；Ｍｙｌａｎ）により麻酔した。注入部位の頭蓋骨は、ドリル（Ｍｏｄｅｌ １４７４ Ｓｔｅｒｅｏｔａｘｉｃ ｄｒｉｌｌ，Ｍｕｒｏｍａｃｈｉ）でカットした。ＡＡＶベクターを右半球の黒質（ブレグマに対するミリメートル座標， ＡＰ；－３．０８，ＬＲ；－１．２５，ＤＶ；－４．５）に、注入ポンプ（Ｌｅｇａｔｏ １３０，Ｍｕｒｏｍａｃｈｉ）により制御される３３ゲージニードルおよび５μＬシリンジ（Ｍｏｄｅｌ ７５ ＲＮ ＳＹＲ，Ｈａｍｉｌｔｏｎ）を用いて、分速０．２μＬで２μＬ注入した。ニードルは、注入後、１０分間その位置に放置した。注入の少なくとも３３日後のマウスを、マイクロダイアリシス、行動テスト、もしくは免疫化学分析に用いた。

〔初代培養ドーパミン神経を用いたドーパミン放出の測定〕
ＡＡＶベクターの注入７日後の初代ドーパミン神経を、５００μＬの予熱したＰＳＳ－ＬＫバッファー（２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＮａＯＨ，ｐＨ７．４，１４０ｍＭ ＮａＣｌ，４．７ｍＭ ＫＣｌ，２．５ｍＭ ＣａＣｌ_２，１．２ ｍＭ ＭｇＳＯ_４，１．２ｍＭ ＫＨ_２ＰＯ_４，１１ｍＭ グルコース）で２回洗浄し、細胞を２００μＬのＰＳＳ－ＬＫバッファー中で、３７℃で５分間インキュベートした。ＰＳＳ－ＬＫバッファーを回収した後、細胞を２００μＬのＰＳＳ－ＨＫバッファー（２０ｍＭ ＨＥＰＥＳ－ＮａＯＨ，ｐＨ７．４，８５ｍＭ ＮａＣｌ，６０ｍＭ ＫＣｌ，２．５ｍＭ ＣａＣｌ_２，１．２ｍＭ ＭｇＳＯ_４，１．２ｍＭ ＫＨ_２ＰＯ_４，１１ｍＭ グルコース）で３７℃、５分間刺激した。回収された上清を、すぐに５０μＭ ＥＤＴＡ－２Ｎａを含む１０μＬの０．１Ｍ過塩素酸（ＰＣＡ）と混合し、３０秒ソニケートし、その後２０，０００Ｇ、０℃で１５分間遠心分離した。上清（１９０μＬ）を新しいチューブに移し、ｐＨを３．０あたりに調整するために１．７μＬの５Ｍ ＣＨ_３ＣＯＯＮａと混ぜた。ＰＳＳ－ＨＫバッファーを回収した後、細胞を２．５μＭ ＥＤＴＡ－２Ｎａを含む２００μＬの５ ｍＭ ＰＣＡに溶解した。サンプル（２００μＬ）をソニケートし、２．４μＬの５Ｍ ＣＨ_３ＣＯＯＮａと混合した。すべてのサンプルを、０．４５μｍポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）マイクロポアフィルター（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）で濾過し、濾過物を、電気化学検出システム（ＥＣＤ３００，Ｅｉｃｏｍ）と連結した高圧液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）で、以前の報告（Ｋａｂａｙａｍａ ｅｔ ａｌ．，２０１３）に従って分析した。高濃度ＫＣｌにさらされた初代培養ドーパミン神経から放出されたドーパミンの量を、細胞に含まれた全ドーパミンの割合で表す。

〔自由行動マウスのｉｎ ｖｉｖｏマイクロダイアリシス〕
マウスをイソフルレン（Ｅｓｃａｉｎ；Ｍｙｌａｎ）で小動物麻酔器（ＭＫ－Ａ１１０；Ｍｕｒｏｍａｃｈｉ）を用いて麻酔し、定位フレーム（Ｓｔｅｒｅｏｔａｘｉｃ Ｊｕｓｔ ｆｏｒ Ｍｏｕｓｅ，Ｍｕｒｏｍａｃｈｉ）に配置した。スチールガイドカニューレ（ＡＧ－４；Ｅｉｃｏｍ）の移植のために、右半球の線条体上（ブレグマに対する座標，ＡＰ；＋０．６ ｍｍ，ＬＲ；－２．０ｍｍ，ＤＶ；－２．０ｍｍ）に穴をあけ、固定するためのネジをしっかりと固定するためにもう一つの穴を設けた。ガイドカニューレおよび固定するためのネジを、歯科用セメント（Ｕｎｉｆａｓｔ３；ＧＣ）によって固定した。歯科用セメントが完全に乾いた後、マイクロダイアリシスプローブ（Ａ－Ｉ－４－０２；Ｅｉｃｏｍ）をガイドに沿って線条体に挿入した。マイクロダイアリシスプローブの移植は、マウスの麻酔の開始後、３．５時間から４．５時間の間に終了した。マイクロダイアリシスプローブを挿入したマウスを、水と飼料を備えた透明のマイクロダイアリシスケージ（２０ｃｍ長さ×２０ｃｍ幅×２１ｃｍ高さ）内のペーパータオル（キムタオル，Ｎｉｐｐｏｎ Ｐａｐｅｒ Ｃｒｅｃｉａ）の上に配置した。移植手術の次の日、マウスを、水と飼料を備えていない透明のマイクロダイアリシスケージ内の新しいペーパータオル（Ｃｏｍｆｏｒｔ２００，Ｎｉｐｐｏｎ Ｐａｐｅｒ Ｃｒｅｃｉａ）上に配置した。基底ドーパミン放出を測定するため、透析液の回収を、プローブ移植手術の次の日の１０：００から１１：００の間に行った。マイクロダイアリシスプローブは、１４７ｍＭ ＮａＣｌ、４．０２ｍＭ ＫＣｌ、２．２５ｍＭ ＣａＣｌ_２を含むリンガー溶液によって、シリンジポンプ（ＥＳＰ－３２，Ｅｉｃｏｍ）を用いて分速１μＬで連続的に潅流された。透析液は、冷蔵したフラクションコレクター（Ｒｅｆｒｉｇｅｒａｔｅｄ ｃｏｌｌｅｃｔｏｒ ８２０，Ｕｎｉｖｅｎｔｏｒ）を用いて４℃で１０分の間隔で自動的に、事前に５μＬの０．１Ｍ ＣＨ_３ＣＯＯＨ／２５０μＭ ＥＤＴＡ－２Ｎａをいれたプラスチックのマイクロチューブに回収した。透析液の回収は、マイクロダイアリシスプローブの移植後１６．５時間から１７．５時間後に行った。すべての透析液サンプルを４℃で保存し、次の日ＨＰＬＣで分析した。

〔脳切片の生体組織検査〕
脳を骨頭切除の直後に回収し、５０μｍ厚の凍結王冠切片を調製した。１２ピースの黒質切片、および８ピースの線条体切片（４ピースの前部切片が以下の座標から得られた，ＡＰ；＋０．６ｍｍ，および４ピースの後部切片が以下の座標から得られた，ＡＰ；＋０．６ｍｍ）から、直径１．５ｍｍのディスポーザブルバイオプシーニードル（Ｂｉｏｐｓｙ Ｐｕｎｃｈ；Ｋａｉ Ｍｅｄｉｃａｌ）を用いて、円形の組織パンチを回収した。サンプルを０．１ｍＭ ＥＤＴＡを含む０．１Ｍ過塩素酸内でホモジナイズし、２０，０００×ｇ、４℃で１５分間遠心分離した。上清を０．２２μｍポリフッ化ビニリデン（ＰＶＤＦ）フィルター（ＧＶ Ｄｕｒａｐｏｒｅ，Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）に通して濾過し、濾過したサンプルをＨＰＬＣにより分析した。

〔ＨＰＬＣ〕
初代培養神経に由来するサンプルおよび脳切片のバイオプシーを、ＨＰＬＣ（ＥＣＤ３００，Ｅｉｃｏｍ）により、以前に報告されたプロトコル（Ｋａｂａｙａｍａ ｅｔ ａｌ．，２０１３）に従って分析した。マイクロダイアリシスサンプルを、製造元の文書に従ってＨＰＬＣ（ＥＣＤ５００，Ｅｉｃｏｍ）により分析した。

〔行動テスト〕
ロッド（直径３ｃｍ）を用いたロータロッド試験が、一般的にマウスの運動技能学習のために用いられてきた。以前の研究におけるマウスの改変ロータロッド試験では、大きなドラムおよび遅い回転（直径９ｃｍおよび１０ｒｐｍ）を組み合わせたロータロッド試験において、急勾配の学習曲線が得られることが実証された（Ｓｈｉｏｔｓｕｋｉ ｅｔ ａｌ．，２０１０）。本研究では、マウス用ロータロッド（ＭＫ－６１０Ａ，Ｍｕｒｏｍａｃｈｉ）に、滑り止めテープ（Ｎｉｔｏｆｌｏｎ粘着テープ，Ｎｏ．９０３ＵＬ，０．１３ｍｍ厚，Ｎｉｔｔｏ ｄｅｎｋｏ）で覆われた大きなロッド（直径９ｃｍ）を装備した。訓練セッションの前に、１日目にマウスを定位ドラムの上に３分間留まらせることにより馴化を行った。馴化は、毎日１分間、セッションの直前に繰り返した。回転は、遅い速度（５ｒｐｍ，表面速度２．８ｍ／ｍｉｎ）に設定した。マウスは、落下後すぐに、一回のセッションにつき５回までドラムの上に戻した。テストは、１日１セッションで５日間繰り返した。落下による待ち時間を手動で記録し、訓練の（Ｄａｙ１）の前、および（Ｄａｙ５）の後のロッド上での合計の待ち時間を、二元反復測定ＡＮＯＶＡで分析した。

〔タンパク質配列分析〕
等電点および細胞内ｐＨ（７．４，７．０３，６．６０）における正味の電荷を、ペプチドタグを含むそれぞれの細胞内抗体のアミノ酸配列から、Ｃｈｒｉｓ Ｐｕｔｎａｍ ａｎｔ ｔｈｅ Ｓｃｒｉｐｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ（ｈｔｔｐ：／／ｐｒｏｔｃａｌｃ．ｓｏｕｒｃｅｆｏｒｇｅ．ｎｅｔ／）により開発されたＰｒｏｔｅｉｎ ｃａｌｃｕｌａｔｏｒ ｖ３．４を用いて計算した。

〔統計分析〕
すべてのデータは、少なくとも３回の独立した実験の代表値である。結果は、平均±標準誤差で表している。データはＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ ４．０ ｐｒｏｇｒａｍ（ＧｒａｐｈＰａｄ Ｓｏｆｔｗａｒｅ）を用いて、両側独立ｔ－検定、両側非反復ＡＮＯＶＡの後にニューマン・コイルス事後多重比較検定を行って、もしくは二元反復測定ＡＮＯＶＡの後にボンフェローニ事後多重比較検定を行って分析した。Ｐ＜０．０５は、統計学的に有意であるとみなした。
＜実施例１：Ｓｙｔ Ｉ／ＩＩのＣ２Ａドメインに対する抗体特異的結合の単離＞
まず、ファージディスプレイシステムを用いて、Ｓｙｔ Ｉ／ＩＩのＣ２Ａドメイン（Ｓｙｔ Ｉ／ＩＩ－Ｃ２Ａ）に対する特異的抗体をコードするＳｃＦｖ遺伝子を単離した。単離されたＳｃＦｖを提示するファージの特異性を調べるために、Ｓｙｔ Ｉ／ＩＩのＣ２Ｂドメイン（Ｓｙｔ Ｉ／ＩＩ－Ｃ２Ｂ）をネガティブコントロールとして用いた。酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）により、単離されたＳｃＦｖ提示ファージのうちの一つ（ｓｃＦｖ－Ａ３６と呼ぶ）がグルタチオンＳ－トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）－Ｓｙｔ ＩＩ－Ｃ２Ａに結合し、ＧＳＴ－Ｓｙｔ ＩＩ－Ｃ２ＢもしくはＧＳＴには結合しなかった（図１のＡ）。ｃＤＮＡ配列から、重鎖および軽鎖が互いにグリシンリンカーで融合された、７２３ヌクレオチドを含むオープンリーディングフレーム（３６１アミノ酸；アクセッションｎｏ．ＡＢ４７２３７６）が明らかになった（図１のＢ、上パネル）。発現したｓｃＦｖ－Ａ３６を視覚化および精製するために、Ｔ７、ＥＧＦＰ、およびＨｉｓタグを、Ａ３６のアミノ末端、もしくはカルボキシ末端に融合した（ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６と呼ぶ；図１のＢ、下パネル）。ＳｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６をＥ． ｃｏｌｉで発現し、Ｎｉ－ＮＴＡカラムに通して精製した。ウエスタンブロット分析により、精製されたＳｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６タンパク質が全長Ｓｙｔ Ｉ／ＩＩのみを認識し、ＣＯＳ－７細胞において外来的に発現させた他の９つのアイソフォームは認識しないことが確認された（図１のＣ）。これらの結果から、ｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６がＳｙｔ Ｉ／ＩＩ－Ｃ２Ａドメインに対する特異的抗体であることが示された。ｓｃＦｖ－Ａ３６の軽鎖の可変領域の３つのＣＤＲのアミノ酸配列は、ＣＲＡ５をコードしているｓｃＦｖのそれらと同一であり、ＣＲＡ５は免疫グロブリンＥ（ＩｇＥ）受容体（アクセッションｎｏ．ＢＡＢ８２４５８、データは示されていない）に対する抗体であったことから、ｓｃＦｖ－Ａ３６の軽鎖のＣＤＲがＳｙｔ Ｉ／ＩＩとの結合特異性の決定において重要な役割を持たないことが示唆された。一方、重鎖ＣＤＲ３は抗体中で最も超可変な領域であり、ヒトにおいて約１０^１４の多様性を生み出す可能性を有し（Ｓａｎｚ，１９９１）、それにより抗体の相互作用に貢献している（Ｃｈｏｔｈｉａ ａｎｄ Ｌｅｓｋ，１９８７）ことが知られている。実際、ｓｃＦｖ－Ａ３６の重鎖ＣＤＲ３のアミノ酸配列と、国立生物工学情報センター（ＮＣＢＩ）ＤＮＡデータベースに蓄積されている他の４つのｓｃＦｖの重鎖ＣＤＲ３のアミノ酸配列（図２）との間に大きな多様性があることが見出され、ｓｃＦｖ－Ａ３６の重鎖ＣＤＲ３が結合特異性に重要であることが示唆された。次に、ＰＣＲを用いた突然変異誘発により、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６からネガティブコントロールの抗体の構築を試みた。Ａ３６の重鎖ＣＤＲ１（８アミノ酸）およびＣＤＲ３（８アミノ酸）の計１６アミノ酸が縮重プライマーにより変異した。ＥＬＩＳＡにおいて、単離された変異型ＳｃＦｖファージクローン（ｓｃＦｖ－Ｍ４と呼ぶ）がＧＳＴ－Ｓｙｔ ＩＩ－Ｃ２Ａタンパク質に結合しなかったことを確認し（図１のＤ）、ｓｃＦｖ－Ｍ４のＣＤＲ１およびＣＤＲ３のヌクレオチド配列を決定した（図２）。以上より、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６のさらなる機能分析においてＭ４遺伝子をネガティブコントロール（ｓｃＦｖ－ＧＦＰＭ４と呼ぶ）として用いることにした。次に、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６を哺乳類細胞の細胞内で発現することができるか、また細胞内抗体と結合することができるのかを調べた。ＳｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６は、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６とＦｌａｇ－Ｓｙｔ Ｉの両方がＣＯＳ－７細胞内で共発現されたときのみ、抗Ｆｌａｇ抗体とともに共免疫沈降したが、ｓｃＦｖ－Ｍ４は抗Ｆｌａｇ抗体とともに共免疫沈降しなかったことから（図１のＥ）、細胞内で発現したｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６が、発現したＳｙｔ Ｉと結合できることが示された。
＜実施例２：インビトロおよびインビボにおける細胞内ｓｃＦｖ－Ａ３６の特徴付け＞
Ｓｙｔ Ｉ／ＩＩが、脳における神経伝達物質の速い放出に対する主要なＣａ^２＋センサーとして働くことから、次にドーパミン放出におけるｓｃＦｖ－Ａ３６の阻害効果を調べた。ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６およびｓｃＦｖ－ＧＦＰＭ４を発現するためにＡＡＶベクターを構築した（それぞれ、ＡＡＶ－ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６およびＡＡＶ－ｓｃＦｖ－ＧＦＰＭ４と呼ぶ）。マウス胚の黒質から調製したＤＩＶ７における初代培養ドーパミン神経に、ＡＡＶベクターを感染させた。ＡＡＶによる感染から７日後に細胞を固定し、分析した。ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６およびｓｃＦｖ－ＧＦＰＭ４の両方が、神経の細胞内において凝集なしに広がって発現した（図３，Ａ～Ｃ；ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６，Ｄ～Ｆ；ｓｃＦｖ－ＧＦＰＭ４）。ＳｃＦｖ発現はまた、ウエスタンブロット分析により確認した（図３のＧ，上；ＧＦＰ，中；Ｓｙｔ Ｉ，下；アクチン）。次に脱分極により誘導されたドーパミン放出を比較した。初代培養細胞において、脱分極により誘導されたドーパミン放出は、細胞外Ｃａ^２＋に依存していた（図３のＨ、右列）。このＣａ^２＋依存性は、以前の報告（Ｒｏｕｇｅ－Ｐｏｎｔ ｅｔ ａｌ．，１９９９）と矛盾しなかった。ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６を発現している細胞において、脱分極により誘導されたドーパミン放出は、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＭ４を発現している細胞、もしくは感染されていないコントロール細胞に比べて、有意に減少した（図３のＨ）。これらの結果から、細胞内抗体が初代培養神経の細胞内で発現することができ、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６がＳｙｔ Ｉ／ＩＩのＣ２Ａドメインの機能を阻害することが示された。次に、これらの細胞内抗体が、マウス脳神経の細胞内において安定に発現されているのかを調べた。成体マウス（Ｐ５６）の黒質に対し、片側だけにＡＡＶ－ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６（１．６×１０^８ ｖｇ／ｍｏｕｓｅ）を注入した。注入の４週間後、ほとんどすべてのドーパミン神経において、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６の細胞内での発現が観察された。しかしながら、黒質緻密部（ＳＮｃ）のいくつかの神経において、激しい凝集が観察された（図４のＡ～Ｃ，矢印）。これらの蛍光シグナルは、ＡＡＶを注入しなかった左半球のＳＮｃでは観察されなかった（図４のＤ～Ｆ）。これらの結果から、インビトロでの培養細胞の細胞内において安定に発現する細胞内抗体が、インビボで常に安定に発現するわけではないことが示された。
＜実施例３：強い負電荷を有する３ｘＦｌａｇペプチドタグ、および中程度の負電荷を有するＨＡペプチドタグの付加による細胞内抗体の安定性の向上＞
細胞質内ｐＨ７．４における細胞内抗体の正味の負電荷と、哺乳類細胞の細胞質内の細胞内抗体の安定性との間には正の相関がある（Ｋｖａｍ ｅｔ ａｌ．，２０１０）。例えば、ｐＨ７．４において高い正味の負電荷（－５．０）を有するＶ_ＨＨ－Ｈ７細胞内抗体が、哺乳類の細胞質内であまり凝集することなく、うまく発現する（Ｋｖａｍ ｅｔ ａｌ．，２０１０）。これは、ｐＨ７．４における正味の負電荷値が－5.0よりも小さいと、細胞内抗体の細胞内における安定な発現を予測できることを示唆している。事実、ｐＨ７．４において同じ正味の負電荷（－５．０）を有するｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６およびｓｃＦｖ－ＧＦＰＭ４は、初代培養ドーパミン神経の細胞内において７日間安定に発現された（図３）。しかしながら、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６およびｓｃＦｖ－ＧＦＰＭ４は、マウス脳のドーパミン神経において細胞内凝集物を形成する（図４）。これらの状況より、インビボにおける安定な細胞内抗体を設計するためにインシリコ解析を行った。海馬神経の非興奮時の細胞内ｐＨは～７．０３－７．３５であることが報告されており（Ｒｕｆｆｉｎ ｅｔ ａｌ．，２０１４）、エンドソームを標的としたｐＨ感受性蛍光タンパク質ｐＨｌｕｏｒｉｎを用いた以前の研究から、エンドソームの局所的な細胞質側表面ｐＨが６．７３±０．０８であることが明らかになっている（Ｍｉｔｓｕｉ ｅｔ ａｌ．，２０１１）。そこで、細胞質内ｐＨ６．６０、７．０３、および７．４０それぞれにおけるｓｃＦｖ－Ａ３６およびｓｃＦｖ－Ｍ４のｐＩおよび正味の電荷を、他のペプチドタグと比較した（図５のＡ）。ｓｃＦｖ－Ａ３６もしくはｓｃＦｖ－Ｍ４へのＴ７タグ、ＥＧＦＰタグ、およびＨｉｓタグの融合により、ｐＨ７．４における正味の負電荷が増加した。しかしながら、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６およびｓｃＦｖＧＦＰＭ４正味の負電荷は、より低いｐＨ７．０３およびｐＨ６．６において劇的に減少した。これは、細胞質内ｐＨ７．０３および６．６において、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６およびｓＦｖ－ＧＦＰＭ４の安定性が減少することを示唆していた。細胞内抗体の正味の電荷をより低いｐＨにおいても向上させるため、２つの短いペプチドタグ、３×Ｆｌａｇタグ（ＭＤＹＫＤＨＤＧＤＹＫＤＨＤＩＤＹＫＤＤＤＤＫ（配列番号１）；ｓ３Ｆｌａｇと呼ぶ）およびＨＡタグを検証した。これらのタグ自身はそれぞれ強い正味の負電荷（ｓ３Ｆｌａｇ；－７．０）および中程度の正味の負電荷（ＨＡ；－２．２）を有する。ｉｎ ｓｉｌｉｃｏの解析の結果、ｓｃＦｖ－Ａ３６／Ｍ４タンパク質へのｓ３ＦｌａｇタグおよびＨＡタグの融合（ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－ＨＡと呼ぶ）により、その正味の負電荷が、ｐＨ６．６においても劇的に増加することが実証された（図５のＡ）。次に、ｓｃＦｖ－Ａ３６タンパク質配列を用いたＮＣＢＩ ｂｌａｓｔ検索により得られた他の９４種類のｓｃＦｖタンパク質配列（表Ｓ２）を用いて、ｓ３ＦｌａｇおよびＨＡペプチドタグの付加による低ｐＨ環境下での細胞内抗体の正味の負電荷の増加効果の一般性について調べた（図６）。異なるペプチドタグと融合した９４種類のｓｃＦｖタンパク質のｐＨ７．４（図６のＡ，上パネル）、およびｐＨ６．６（図６のＡ，下パネル）における正味の電荷を比較した。Ｔ７タグ、ＥＧＦＰタグ、およびＨｉｓタグと融合したｓｃＦｖタンパク質の正味の負電荷の平均は、ペプチドタグを持たないｓｃＦｖタンパク質と比較して、ｐＨ７．４において統計学的に増加した（上パネル）が、ｐＨ６．６においては増加しなかった（下パネル）。反対に、ｐＨ７．４とｐＨ６．６の両方において、ｓ３ＦｌａｇおよびＨＡタグと融合したｓｃＦｖタンパク質の正味の負電荷の平均は、他のペプチドタグを付加した、もしくはペプチドタグを付加しなかったｓｃＦｖタンパク質の正味の負電荷の平均と比較して統計学的に増加した。タンパク質は、そのｐＩより低いｐＨ下で正の正味の電荷を持ち、そのｐＩより高いｐＨ下で負の正味の電荷を有する。ｓ３ＦｌａｇタグおよびＨＡタグと融合したｓｃＦｖタンパク質の推定されたｐＩの平均は、Ｔ７タグ、ＥＧＦＰタグ、およびＨｉｓタグと融合したｓｃＦｖタンパク質、もしくはタグを付加しなかったｓｃＦｖタンパク質の推定されたｐＩの平均と比べて有意に低かった（図５のＡ，図６のＢ）。これらのことから、ｓ３ＦｌａｇタグおよびＨＡタグの付加によるｐＨ６．６でのｓｃＦｖタンパク質の正味の負電荷を増加効果は、ｓｃＦｖタンパク質のｐＩを減少させることによりもたらされたことが示唆された。また、ｓｃＦｖタンパク質のｓｃＦｖ－Ａ３６とのアミノ酸同一性と、ｓ３ＦｌａｇタグおよびＨＡタグと融合したｓｃＦｖタンパク質のｐＨ７．４における正味の電荷との間の相関を調べたところ（図６のＣ）、それらの間に統計学的相関がないことが明らかになった。このことは、ｓｃＦｖタンパク質のｓｃＦｖ－Ａ３６に対する構造的な同一性そのものは、ｓ３ＦｌａｇタグおよびＨＡタグとの融合による他のｓｃＦｖタンパク質の正味の負電荷を増加する効果に影響しないことを示している。以上より、これらの結果は、ｓｃＦｖタンパク質にｓ３ＦｌａｇペプチドタグもしくはＨＡペプチドタグを融合することで、これらのタグの強い負電荷により、およびｓｃＦｖタンパク質のｐＩが低下することにより、細胞質内ｐＨ６．６～７．４におけるｓｃＦｖタンパク質の正味の負電荷が一般的に増加することを示している。

次に、これらのペプチドタグと融合したｓｃＦｖ－Ａ３６およびｓｃＦｖ－Ｍ４細胞内抗体の、哺乳類細胞内における安定性を調べた。免疫細胞化学分析により、ＨｅＬａ細胞の細胞内において、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡおよびｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡが殆ど凝集せず広がって発現し（図５のＢ，下パネル）、一方で細胞内ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６およびｓｃＦｖ－ＧＦＰＭ４はＨｅＬａ細胞の細胞内において凝集体を形成することが明らかになった（図５のＢ，上パネル）。ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡもしくはｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡを発現している凝集体を有する細胞の平均は、ｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６もしくはｓｃＦｖ－ＧＦＰＭ４を発現している凝集体を有する細胞の平均と比べて有意に減少した（図５のＣ）。これらの結果は、ｓ３ＦｌａｇタグおよびＨＡタグが、培養細胞の細胞内において細胞内抗体の安定性を改善することを示す。
＜実施例４：ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡはＳｙｔ Ｉ－Ｃ２Ａドメインと相互作用し、Ｓｙｔ ＩとＳｙｎｔａｘｉｎ１－ＳＮＡＲＥドメインとの間のＣａ^２＋依存的な相互作用を抑制する＞
次に、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖＡ－３６－ＨＡ構築物の生化学的な性質を調べた。精製されたｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡのＧＳＴ－Ｓｙｔ Ｉ－Ｃ２Ａとの結合アフィニティーを計測した。ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡを、抗Ｆｌａｇ抗体結合アフィニティービーズを用いてＥ．ｃｏｌｉから精製した。ＥＬＩＳＡ実験により、精製されたｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡはＳｙｔ Ｉ－Ｃ２Ａと相互作用するが、Ｓｙｔ Ｉ－Ｃ２Ｂとは相互作用しないことが明らかになった（図７のＡ）。このｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡの特異性は、図１に示されたｓｃＦｖ－ＧＦＰＡ３６の結果と矛盾しなかった。異なる濃度のｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡを用いたＥＬＩＳＡ実験により、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡのＳｙｔＩ－Ｃ２Ａに対するＫｄ値が、約１１．９７ｎＭであることが明らかになった（図７のＢ）。加えて、ウエスタンブロット分析により、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡがマウス脳のＳｙｔ Ｉ／ＩＩを特異的に認識することが明らかになった（図７のＣ）。これらの結果は、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡが高いアフィニティーを有する高度に特異的な細胞内抗体であることを示している。次に、細胞内ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡが細胞内においてＳｙｔ Ｉと結合できるかを２９３Ｔ細胞を用いて調べた。Ｓｙｔ Ｉはｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡと共免疫沈降したが、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡとは共免疫沈降しなかった（図７のＤ）。このことは、哺乳類細胞の細胞内において、細胞内ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡがＳｙｔ Ｉと結合できることを示す。これらのことから、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡがその相互作用を阻害する可能性が考えられた。このことを調べるため、図７のＤで示された細胞溶解物を用いてＧＳＴプルダウンアッセイを行った。精製されたＧＳＴ－ｓｙｎｔａｘｉｎ１－ＳＮＡＲＥを用いて５００μＭ Ｃａ^２＋の存在下で沈降を行い、沈降物をウエスタンブロットにより分析した。ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡを発現している細胞内におけるＳｙｔ ＩおよびＧＳＴ－ｓｙｎｔａｘｉｎ１－ＳＮＡＲＥの共沈降は、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡを発現している細胞と比較して約４６．５％減少した（図７のＥ，Ｆ）。このことは、細胞内ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡが、Ｓｙｔ ＩのＣ２Ａドメインとの相互作用によって、細胞内におけるＳｙｔ ＩとＳｙｎｔａｘｉｎ Ｉとの間の相互作用に干渉することを示す。
＜実施例５：インビボにおけるｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－ＨＡの安定した細胞内発現＞
次に、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－ＨＡが、マウス脳の神経の細胞内において安定に発現するかを調べた。ＡＡＶ９／３－ｈＳｙｎＩｐ－ＤＩＯ－ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６（もしくはＭ４）－ＨＡを、ＤＡＴ－ｃｒｅマウスの右半球の黒質に注入した。免疫組織化学的解析により、ＡＡＶ９／３ベクターの注入から３３日後、右半球のＳＮｃおよびＶＴＡのドーパミン神経の細胞内において、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡおよびｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡが、安定に発現することが明らかになった（図８のＡ～Ｌ，矢印）。これらの発現パターンは、黒質領域のほとんどすべての広範囲（～７６８μｍ）において観察された（図９のＡ～Ｊ）。また、ウエスタンブロット分析を用いて、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡおよびｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡの両方のＳＮにおける発現を確認した（図９のＫ，上パネル）。線条体ニューロンが中脳ドーパミン神経から長い求心的な入力を受け取る線条体では、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡの発現レベルは、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡの発現レベルより高かった（図９のＫ，上パネル）。このことは、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡが内生的なＳｙｔ Ｉと結合し、線条体においてＳｙｔ Ｉとともに細胞体から軸索末端に向かって輸送されることを示唆している。加えて、ＡＡＶ９／３注入の６か月後に、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡおよびｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡ両方が、ドーパミン神経を傷つけることなく安定して発現することが観察された（図１０）。ＳＮのドーパミン神経において、ｉｎ ｖｉｖｏでｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡがＳｙｔ Ｉに対し機能活性を有することを確認するため、ＡＡＶ９／３注入から３３日後の覚醒時のマウスの線条体における基底ドーパミン放出を、マイクロダイアリシスにより測定した。線条体におけるドーパミン放出は、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡを発現しているマウス、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡを発現しているマウス、およびＡＡＶを注入していないマウスの３つのグループで比較した。ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡを発現しているマウスの線条体からのドーパミン放出は、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡを発現しているマウスと比べて５５．３％、およびＡＡＶ９／３を注入されていないマウスに比べて５２．７％と、有意に減少することがわかった（図１１のＢ、Ｃ）。しかしながら、線条体および黒質におけるドーパミンの総量は、すべての３つのグループの間で統計学的に変わらなかった（図１１のＤ）。以上より、これらの結果は、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡが神経活性とドーパミン神経の軸索末端からの細胞外Ｃａ^２＋とに依存的なドーパミン放出を阻害することを示された。
＜実施例６：ドーパミン神経におけるｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡの細胞内発現による 運動学習の阻害＞
パーキンソン病（ＰＤ）は、神経変性疾患であり、震え、硬直、動きの遅さ、および姿勢の不安定を含む運動欠損を伴う。患者の最も特徴的な点は、主にＳＮｃにおけるドーパミン神経の喪失および線条体におけるドーパミン濃度の減少である。そこで、線条体のドーパミン放出の運動行動における直接的な役割を調べるために、オープンフィールドテストおよび改変ロータロッド試験を行った。ＡＡＶ９／３－ｈＳｙｎＩｐ－ＤＩＯ－ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６（もしくはＭ４）－ＨＡをＤＡＴ－ｃｒｅマウスの黒質の両側に注入した。ＡＡＶ注入の４週間後、マウスをオープンフィールドテストに用い、５または６日後に、改変ロータロッド試験に用いた。ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡを発現しているマウスとｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡを発現しているマウスとの間で、合計の移動距離、動きの速さ、ｃｅｎｔｅｒ ｏｆ ｔｉｍｅ、および立ち上がりの合計数に違いはなかった（図１２のＡ～Ｄ）。次に、以前に報告されたロータロッド試験（Ｓｈｉｏｔｓｕｋｉ ｅｔ ａｌ．，２０１０）を改変し、運動学習を調べた（実験手順の欄を参照）。訓練の５日後、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡを発現しているマウスは、ｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡを発現しているマウスに比べて、ロッドの上に長くとどまった（図１２のＥ，Ｐ＝０．０１３２）。運動行動テストの後、免疫組織化学によりマウス脳を分析した。黒質のＤＡ神経における３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｍ４－ＨＡおよびｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ａ３６－ＨＡタンパク質の両側における発現を確認することができた（図１２のＦ，矢印）。
＜実施例７：抗腫瘍活性の評価＞
次に、抗Ｋｒａｓモノクローナル抗体（Ｙ１３－２５９；配列番号２２）について、前述の実施例と同様にｓ３ＦｌａｇおよびＨＡを融合させたｓ３Ｆｌａｇ－ｓｃＦｖ－Ｙ１３－２５９－ＨＡ（ＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９；配列番号２３）を作製し、抗腫瘍活性の有無を評価することにした。なお、Ｙ１３－２５９のＤＮＡ配列は、データベースに登録されていなかったため、アミノ酸配列に基づき、マウスのコドンに最適化した配列を設計した。ＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９のＤＮＡ配列を配列番号２４に示す。ｍｙｃ－Ｙ１３－２５９のＤＮＡ配列を配列番号２５に示す。ＤＮＡ合成はGenescript社に委託した。

（１）Ｉｎ ｓｉｌｉｃｏの解析
ＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９の設計にあたり、Ｉｎ ｓｉｌｉｃｏの解析を行った結果、ｓ３ＦｌａｇタグおよびＨＡタグの融合により、ｓｃＦｖ－Ｙ１３－２５９の正味の負電荷が、ｐＨ６．６においても劇的に増加することが実証された（図１３のＡ）。

（２）ＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９の結合能の評価
次に、ＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９とＧＳＴ－Ｋｒａｓとの結合アフィニティーを、前述の実施例の通りにＥＬＩＳＡにより計測した。その結果、ＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９もＫｒａｓとの高い結合活性が維持されていることが確認された（図１３のＢ）。続いて、レンチウイルスにＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９、ｍｙｃ－Ｙ１３－２５９（配列番号２６）またはｓｃＦｖ－Ｙ１３－２５９のみを組み込んだベクターをＭＩＡ ＰａＣａ２細胞に感染させ、免疫細胞染色を行った。その結果、従来のｍｙｃ－Ｙ１３－２５９は不安定で発現しないか、発現しても細胞内で凝集するのに対し、ＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９が安定して発現していることが確認された（図１３のＣ）。さらに、細胞内在性のＫｒａｓ細胞内相互作用を確認するために、抗ＨＡ抗体を用いて共免疫沈降を行ったところ、ＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９を感染させたＭＩＡ ＰａＣａ２細胞由来の試料において、内在性ＫｒａｓとＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９との結合が確認された（図１３のＤ）。

（３）抗腫瘍活性の評価
次に、前述と同様にレンチウイルスベクターを用いて感染させたＭＩＡ ＰａＣａ２細胞の生存率を、感染から４日後にＭＴＳ解析によって測定した。その結果、ＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９の発現によって生存率が顕著に低下することが示された（図１３のＥ）。続いて、膵臓癌細胞を皮下に移植したマウス異種移植モデルにおいて、ＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９の細胞内発現によって癌の成長が抑制されるかを評価した。ヌードマウスの皮下で形成された腫瘍部分に対し、週に一度、４週に亘って前述のＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９を発現するレンチウイルスベクターを投与した結果、癌を強力に阻害することが示された（図１３のＦ、Ｇ）。最初の感染から２５日後に摘出された腫瘍においてＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９が発現していることも確認された（図１３のＨ）。
＜実施例８：他のペプチドタグの評価＞
他のペプチドタグの性能評価を行うためＤＥ２．０タグ及びＤＥ５．０タグを作製し、その安定化の効果を検討した。実施例７と同様に、ＤＥ２．０タグ（ＤＥＱＥＮＤＹＤＥＰＥＶＮＤＥＮＱＤＹＤＥ（配列番号１３））を用いた融合タンパク質としては、抗Ｋｒａｓモノクローナル抗体由来のペプチド（Ｙ１３－２５９；配列番号２２）のＮ末端側にＤＥ２．０タグを融合させたＤＥ２．０－Ｙ１３－２５９（配列番号２７）；ＤＥ２．０－Ｙ１３－２５９のＣ末端側にさらにＨＡペプチドを融合させたＤＥ２．０－Ｙ１３－２５９－ＨＡ（配列番号２８）；ＤＥ２．０－Ｙ１３－２５９のＣ末端側にさらにＰＡペプチドを融合させたＤＥ２．０－Ｙ１３－２５９－ＰＡ（配列番号２９）；並びに、凝集繊維化したｈｕｍａｎ α‐ｓｙｎｕｃｌｅｉｎに特異的に結合する抗体（Barkhordarian et al., 2006：Protein Engineering, Design and Selection, Volume 19, Issue 11, 1 November 2006, Pages 497-502）のｓｃＦＶ配列（ｓｃＦｖ‐６Ｅ）のＮ、Ｃ両末端にＤＥ２．０タグを融合させたタンパク質ＳＴＡＮＤ－６Ｅ－ＬＹＳ；を作製した。ＳＴＡＮＤ－６Ｅ－ＬＹＳには、さらに機能ペプチドとしてＨｅａｔ ｓｈｏｃｋ ｃｏｇｎａｔｅ ｐｒｏｔｅｉｎ ７０ （ＨＳＣ７０）結合ペプチド（ＭＡＲＶＫＫＤＱＡＥＰＬＨＲＫＦＥＲＱＰＰＧ（配列番号３１））（Bauer et al., Nature Biotech (2010)：Nature Biotechnology volume 28, pages 256-263 (2010)）をＣ末端側のＤＥ２．０タグの下流に融合させ、さらにＨＳＣ７０結合ペプチドの下流にはＨＡペプチドも付した。作成したＳＴＡＮＤ－６Ｅ－ＬＹＳのアミノ酸配列の全長は、配列番号３２に示す。

ＤＥ５．０タグ（ＤＤＤＥＤＥＤＤＥＤＥＤＥＤＥＤＥＤＥＤＥＤ（配列番号３３））を用いた融合タンパク質としては、ｓｃＦｖ‐６ＥのＮ末端にＤＥ５．０タグを融合させてさらにＣ末端にＴ７タグ（配列番号３４：ＭＡＳＭＴＧＧＱＱＭＧ）を融合させたＤＥ５．０‐６Ｅ（アミノ酸配列：配列番号３５、塩基配列：配列番号３６）を作製した。これらの融合タンパク質をコードするＤＮＡはすべてヒトのコドンに最適化し、ＧｅｎＳｃｒｉｐｔ社によって合成された。

なお、ＤＥ２．０－Ｙ１３－２５９－ＨＡ及びＳＴＡＮＤ－６Ｅ－ＬＹＳのＤＮＡ配列をそれぞれ配列番号３０、及び配列番号３７に示す。

Ｉｎ ｓｉｌｉｃｏの解析を行った結果、ＤＥ２．０タグのみの融合でも、ｓｃＦｖ－Ｙ１３－２５９の正味の負電荷が劇的に増加することが判明した（図１３のＡ）。また、ＨＡまたはＰＡも融合させると、さらに増加することが判明した（図１３のＡ）。ｓｃＦｖ‐６Ｅについても同様にＩｎ ｓｉｌｉｃｏの解析を行った結果、ＤＥ２．０タグとＤＥ２．０タグとＨＡタグとの融合や、ＤＥ５．０タグとの融合により、ｓｃＦｖ‐６Ｅの正味の負電荷が、ｐＨ６．６においても劇的に増加することが実証された（図１５）。

レンチウイルスベクターを用いてＤＥ２．０－Ｙ１３－２５９－ＨＡをコードするＤＮＡを、ＭＩＡ ＰａＣａ２細胞に導入したところ、細胞内でＤＥ２．０－Ｙ１３－２５９－ＨＡが凝集することなく発現し、ＳＴＡＮＤ－Ｙ１３－２５９よりも強く内在性Ｋｒａｓと細胞内で結合していることが確認された（図１４のＡ）。このＤＥ２．０－Ｙ１３－２５９－ＨＡを発現するレンチウイルスベクターの癌の成長抑制効果を、膵臓癌細胞を皮下に移植したマウスの異種移植モデルを用いて評価した結果、癌を強力に阻害することが示された（図１４のＢ）。これらの結果は、本発明が、抗体を細胞内で安定に発現させるペプチドタグの開発に極めて有効であることを示した。

ＳＴＡＮＤ－６Ｅ－ＬＹＳ及びＤＥ５．０‐６ＥをコードするＤＮＡは、哺乳類発現ベクターであるｐＥＦ－ＢＯＳベクターにクローニングして発現ベクター（ＳＴＡＮＤ-６Ｅ‐ＬＹＳ発現ベクター；ｐＥＦ－ＢＯＳ－ＳＴＡＮＤ－６Ｅ‐ＬＹＳ、ＤＥ５．０‐６Ｅ発現ベクター；ｐＥＦ－ＢＯＳ－ＤＥ５．０‐６Ｅ）を作製した。ＳＴＡＮＤ-６Ｅ‐ＬＹＳ発現ベクター及びＤＥ５．０‐６Ｅ発現ベクターをＬｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎ２０００によりＨｅＬａ細胞に導入し、１８時間培養後に４％ＰＦＡにて固定した。ＳＴＡＮＤ-６Ｅ‐ＬＹＳはＨＡ抗体、ＤＥ５．０‐６ＥはＴ７抗体によって染色を行った。ＳＴＡＮＤ-６Ｅ‐ＬＹＳ、ＤＥ５．０‐６Ｅともに細胞内で凝集することなく発現していることが確認された（図１６）。

続いて、α－ｓｙｎｕｃｌｅｉｎ凝集に対するＳＴＡＮＤ-６Ｅ‐ＬＹＳの効果についてＳＨＳＹ５Ｙ細胞を用いて検証した。α－ｓｙｎｕｃｌｅｉｎの凝集アッセイは、大腸菌から精製したヒトリコンビナントα －ｓｙｎｕｃｌｅｉｎを超音波処理により、繊維化、凝集化したα－ｓｙｎｕｃｌｅｉｎ Ｆｉｂｒｉｌを用いた（Tarutani et al., 2018：Acta Neuropathol Commun. 2018 Apr 18;6(1):29.）。本アッセイではヒト由来ＳＨＳＹ５Ｙ細胞を用いた。ＳＴＡＮＤ-６Ｅ‐ＬＹＳに組み込まれたＨＳＣ７０結合ペプチドは、α‐ｓｙｎｕｃｌｅｉｎのＨＳＣ７０結合モチーフ(ＶＫＫＤＱ（配列番号３８）)と、ＨＳＣ７０結合コンセンサスモチーフ(ＫＦＥＲＱ（配列番号３９）)からなる。Ｍｕｔａｎｔ ｈｕｎｔｉｎｇｔｉｎ ｐｒｏｔｅｉｎと結合するペプチドとＨＳＣ７０結合ペプチドを融合することで、Ｃｈａｐｅｒｏｎ－ｍｅｄｉａｔｅｄ ａｕｔｏｐｈａｇｙ（ＣＭＡ）によるｍｕｔａｎｔ ｈｕｎｔｉｎｇｔｉｎ ｐｒｏｔｅｉｎの分解を促進できることがｉｎ ｖｉｔｒｏ及びｉｎ ｖｉｖｏで示されており、標的タンパク質分子に特異的に結合できるペプチド（ｓｃＦｖも含む）さえあれば、標的タンパク質分子をＣＭＡ依存的に分解することが可能になる。ヒトα－ｓｙｎｕｃｌｅｉｎの全長を緑色蛍光タンパク質ＥＧＦＰに融合したタンパク質（ＥＧＦＰ－ｓｙｎｕｃｌｅｉｎ）を発現するｐＥＧＦＰ－α－ｓｙｎｕｃｌｅｉｎベクターを構築し、ＳＴＡＮＤ－６Ｅ－ＬＹＳ発現ベクターとともにＳＨＳＹ５Ｙ細胞へＸｔｒｅｍＧＥＮＥ９（Ｓｉｇｍａ）を用いて遺伝子導入した。６時間後にＭｕｌｔｉＦｅｃｔａｍ（Ｐｒｏｍｅｇａ）を用いて、Ｆｉｂｒｉｌタンパク質を細胞へ導入し、３日間培養したのち、４％ＰＦＡにより固定した。その後、抗ＨＡ抗体によりＳＴＡＮＤ－６Ｅ－ＬＹＳを検出し、抗リン酸化α－ｓｙｎｕｃｌｅｉｎ抗体（Ｍｏｕｓｅ、ＷＡＫＯ）により染色を行った。ＸｔｒｅｍｅＧＥＮＥ９及びＭｕｌｔｉＦｅｃｔａｍによる遺伝子導入、タンパク導入は、製造メーカーの標準プロトコールに従った。ＧＦＰ－ｓｙｎｕｃｌｅｉｎがドット状に凝集している細胞数の出現率、リン酸化ｓｙｎｕｃｌｅｉｎ陽性細胞の出現率を測定することにより、Ｆｉｂｒｉｌによる凝集を定量化した。

Ｃｏｎｔｒｏｌベクターを導入した細胞において、Ｆｉｂｒｉｌにより、約１４％の細胞のＥＧＦＰ－ｓｙｎｕｃｌｅｉｎがドッド状に局在変化した。これらドット状のｓｙｎｕｃｌｅｉｎは、パーキンソン患者脳のマーカーであるα－ｓｙｎｕｃｌｅｉｎのアミノ酸１２９位のリン酸化を検出するａｎｔｉ－ＰＳｅｒ１２９－ｓｙｎｕｃｌｅｉｎ抗体によって共染色されることがわかった（図１７）。これは、細胞外から侵入した凝集ｓｙｎｕｃｌｅｉｎが、細胞内で発現する正常な構造をしていたＥＧＦＰ－ｓｙｎｕｃｌｅｉｎを凝集化したことを示している。一方、ＳＴＡＮＤ－６Ｅ－ＬＹＳを発現する細胞では、凝集化が２％まで抑えられていた（図１８）。

以上の結果は、本発明が、抗原結合性ペプチドが細胞内で凝集することなく機能を保持させて発現させることに極めて有効であることを示した。

本発明は、例えば、各種の研究用途、並びに、診断および治療等の医学用途において利用することができる。

Claims (6)

1. 細胞内安定化ペプチドと、抗原結合性ペプチドとを含む融合タンパク質であって、
   上記細胞内安定化ペプチドは、３９個以下のアミノ酸からなり、かつ、当該アミノ酸の少なくとも４５％が酸性アミノ酸であり、
   上記抗原結合性ペプチドは、重鎖ＣＤＲ３を含み、
   前記細胞内安定化ペプチドは、配列番号１、１３または３３によって示されるアミノ酸配列を含んでいる、
   融合タンパク質。
2. 上記細胞内安定化ペプチドは、配列番号１３または３３によって示されるアミノ酸配列を含んでおり、塩基性アミノ酸を含まない、請求項１に記載の融合タンパク質。
3. 請求項１又は２に記載の融合タンパク質をコードするポリヌクレオチド。
4. 請求項３に記載のポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
5. 細胞内において抗原結合性ペプチドを発現させる細胞を製造する方法であって、
   請求項３に記載のポリヌクレオチドまたは請求項４に記載の発現ベクターを細胞に導入する工程を含む、製造方法。
6. 請求項１又は２に記載の融合タンパク質を発現する細胞。

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