JP2017531426A - Lox1特異的結合タンパク質及びその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
本特許出願は、2014年10月1日に出願された米国仮特許出願第62/058,254号明細書の利益を主張するものであり、この仮特許出願は全体として参照により本明細書に援用される。
本願の出願と共にASCIIテキストファイル(名称:LOX1−100WO1_SequenceListing_ascii.txt;サイズ:50,926バイト;及び作成日:2015年9月30日)で電子的に提出された配列表の内容は、全体として参照により本明細書に援用される。
本明細書及び添付の特許請求の範囲で使用されるとき、単数形「a」、「an」及び「the」は、文脈上特に明確に指示されない限り、複数の指示対象を含む。用語「a」(又は「an」)、並びに用語「1つ以上」、及び「少なくとも1つ」は、本明細書では同義的に用いられ得る。
本開示は、LOX1と特異的に結合するLOX1結合タンパク質を提供する。一部の態様において、LOX1結合タンパク質は抗体(例えば、完全長LOX1抗体、抗原結合抗体断片、並びにその変異体及び誘導体)である。更なる態様において、抗体は、モノクローナル抗体、組換え抗体、ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、二重特異性抗体、多重特異性抗体、又はその抗体断片である。特定の態様において、LOX1抗体は完全長抗体である。
特定の態様において、本開示は、本明細書に開示される1つ以上のLOX1結合タンパク質(例えば、表1、図4又は図5を参照)と同じエピトープに結合するLOX1結合タンパク質(例えば、完全長抗LOX1抗体、LOX1結合抗体断片、並びにその変異体及び誘導体などの抗LOX1抗体)を提供する。用語「エピトープ」は、本明細書で使用されるとき、本開示の抗体との結合能を有する標的タンパク質決定基を指す。エピトープは、通常、アミノ酸又は糖側鎖などの分子の化学的に活性な表面基からなり、通常、特定の三次元構造特性、並びに特定の電荷特性を有する。立体エピトープと非立体エピトープとは、変性溶媒の存在下で前者に対する結合は失われるが、後者に対する結合は失われない点で区別される。かかる抗体は、標準的な抗原結合又は活性アッセイにおいて、配列番号4のVH配列及び配列番号33のVL配列を含む抗体、及び/又は配列番号41のVH配列及び配列番号58のVL配列を含む抗体と交差競合する能力(例えば、その結合を統計的に有意な形で競合的に阻害する能力)に基づき同定することができる。
一部の態様において、LOX1結合タンパク質(例えば、完全長LOX1抗体、LOX1結合抗体断片、並びにその変異体及び誘導体などの抗LOX1抗体)は、以下からなる群から選択される少なくとも1つの特性を有する:(a)本明細書に開示されるアッセイ(例えば、実施例10、アッセイ1、2及び/又は3又は実施例11を参照)を含めた任意の好適なアッセイによって決定するとき、LOX1に対するoxLDL、C反応性タンパク質(CRP)及び/又は終末糖化産物(AGE)の結合を低減し、又は阻害する;(b)本明細書に開示されるアッセイ(例えば、実施例11を参照)を含めた任意の好適なアッセイによって決定するとき、細胞表面LOX1を発現する内皮細胞のRhoA/Rac1、一酸化窒素(NO)、p38MAPK、プロテインキナーゼB及びC、ERK1/2、及び/又はNFκBシグナル伝達を低下させ、又は阻害する;(c)本明細書に開示されるアッセイを含めた任意の好適なアッセイによって決定するとき、細胞表面LOX1を発現する内皮細胞のカスパーゼ−8、カスパーゼ−9、及び/又はBAX活性を低下させ、又は阻害する;(d)本明細書に開示されるアッセイ(例えば、実施例10、アッセイ1、2及び/又は3又は実施例11を参照)を含めた任意の好適なアッセイによって決定するとき、一塩基多型K167Nを有するLOX1に結合する;(e)本明細書に開示されるアッセイ(例えば、実施例10、アッセイ4又は実施例11を参照)を含めた任意の好適なアッセイによって決定するとき、oxLDLインターナリゼーションを低減し、又は阻害する;(f)本明細書に開示されるアッセイ(例えば、実施例10、アッセイ5又は実施例11を参照)を含めた任意の好適なアッセイによって決定するとき、oxLDL誘導性LOX1シグナル伝達を低減し、又は阻害する;(g)BIACORE又はKinExAによって決定するとき約150pM〜約600pM(例えば約400pM)の解離定数(KD)でLOX1に結合する;(h)BIACOREによって決定するとき約1×105M-1s-1〜約6×106M-1s-1(例えば約5×105M-1s-1)のKon速度でLOX1に結合する;及び(i)BIACOREによって決定するとき約1×10-4s-1〜約3×10-4s-1(例えば約2.3×10-4s-1)のKoff速度でLOX1に結合する。
特定の態様において、LOX1結合タンパク質は、完全長抗LOX1抗体、LOX1結合抗体断片、並びにその変異体、及び誘導体などの抗LOX1抗体である。
本開示は、完全長抗LOX1抗体、LOX1結合抗体断片、並びにその変異体及び誘導体などの抗LOX1抗体を含めたLOX1結合タンパク質(例えば、表1、図4又は図5に記載されるものを参照)をコードする核酸分子を提供する。本明細書に開示される核酸分子は、RNAの形態であっても、又はDNAの形態であってもよい。DNAには、cDNA、ゲノムDNA、及び合成DNAが含まれ;二本鎖又は一本鎖であってもよく、一本鎖の場合にはコード鎖又は非コード鎖(アンチセンス鎖)であってもよい。特定の態様において、核酸分子は単離されている。更なる態様において、核酸分子は実質的に純粋である。一部の態様において、核酸はcDNAであるか、又はcDNAに由来する。一部の態様において、核酸は組換え産生される。
LOX1、LOX1活性、及び/又はLOX1発現に関連する疾患を有する対象を治療するためのLOX1結合タンパク質(例えば、完全長LOX1抗体、LOX1結合抗体断片、並びにその変異体及び誘導体などの抗LOX1抗体)の使用方法が提供される。LOX1発現の検出方法は当該技術分野において公知であり、限定はされないが、PCR法、免疫組織化学、フローサイトメトリー、ウエスタンブロット、ELISAなどが挙げられる。
本明細書に提供されるLOX1結合タンパク質を調製して、それを必要としている対象に投与する方法は当業者に公知であり、又は当業者によって容易に決定される。LOX1結合タンパク質の投与経路は、例えば、経口、非経口、吸入によるもの又は局所であり得る。用語の非経口は、本明細書で使用されるとき、例えば、静脈内、動脈内、腹腔内、筋肉内、皮下、直腸、又は腟内投与を含む。これらの投与形式の全てが、明らかに本開示の範囲内にあるものとして企図されるが、投与形式の別の例を挙げれば、注射用、詳細には静脈内若しくは動脈内注射又は点滴用の溶液であり得る。通常、好適な医薬組成物は、緩衝液(例えば酢酸塩、リン酸塩又はクエン酸塩緩衝液)、界面活性剤(例えばポリソルベート)、任意選択で安定剤(例えばヒトアルブミン)等を含み得る。本明細書の教示と適合性のある他の方法では、本明細書に提供されるとおりのLOX1結合タンパク質は、アテローム性動脈硬化症(atheroslerosis)又は腫瘍の臓器及び/又は部位に直接送達し、それにより治療剤への罹患組織の曝露を増加させることができる。一態様において、投与は、例えば吸入又は鼻腔内投与によって気道に直接である。
一部の態様において、LOX1結合タンパク質(例えば、完全長LOX1抗体及びLOX1結合抗体断片、並びにその変異体及び誘導体などの抗LOX1抗体)は、1つ以上の他の療法と併用して投与される。かかる療法には、更なる治療剤並びに他の医学的介入が含まれる。本明細書に提供されるLOX1結合タンパク質と併用して投与することのできる例示的治療剤としては、限定はされないが、血小板阻害薬、抗凝固薬、降圧薬、糖タンパク質IIb/IIIa受容体阻害薬、β遮断薬、カルシウムチャネル遮断薬、HMG CoAレダクターゼ阻害薬(スタチン)、エゼチミブ、フィブラート系薬(例えば、ゲムフィブロジル(Gemifibrozil)及びフェノフィブラート)、Zetia、胆汁酸捕捉剤、硝酸塩、及び血栓溶解剤が挙げられる。
本開示は、アテローム性動脈硬化症、血栓症、冠動脈疾患(CAD)、虚血(例えば心筋虚血)、梗塞(例えば心筋梗塞)、急性冠症候群(ACS)、脳卒中、再灌流傷害、再狭窄、末梢血管疾患、高血圧、心不全、炎症、血管新生、子癇前症及び癌などのLOX1媒介性疾患及び病態の診断において有用な診断方法を更に提供し、これには、個体からの組織又は血清などの体液におけるLOX1(sLOX1を含む)タンパク質の発現レベルの計測、及び計測した発現レベルと正常組織又は体液における標準LOX1発現レベルとの比較が関わり、ここで標準と比較した発現レベルの増加が、本明細書に提供されるとおりの完全長抗LOX1抗体及び抗原結合抗体断片など、本明細書に提供されるLOX1結合タンパク質によって治療可能な障害の指標となる。
本開示は、好適な包装内にあるLOX1結合タンパク質(例えば、完全長LOX1抗体、LOX1結合抗体断片、並びにその変異体及び誘導体などの抗LOX1抗体)と、本明細書に記載される方法の実施に使用し得る文書とを含むキットを更に提供する。
LOX1結合タンパク質(例えば、抗LOX1抗体及びLOX1結合断片、その変異体、又は誘導体)は、当該技術分野において公知の任意の方法によって免疫特異的結合に関してアッセイすることができる。使用することのできるイムノアッセイとしては、限定はされないが、いくつか例を挙げれば、ウエスタンブロット、ラジオイムノアッセイ、ELISA(酵素結合免疫吸着アッセイ)、「サンドイッチ」イムノアッセイ、免疫沈降アッセイ、沈降反応、ゲル内拡散沈降反応、免疫拡散アッセイ、凝集アッセイ、補体結合アッセイ、イムノラジオメトリックアッセイ、蛍光イムノアッセイ、プロテインAイムノアッセイなどの技法を用いる競合及び非競合アッセイシステムが挙げられる。かかるアッセイは常法であり、当該技術分野において公知である(例えば、Ausubel et al.,eds,(1994)Current Protocols in Molecular Biology(John Wiley & Sons,Inc.,NY)Vol.1(参照により全体として本明細書に援用される)を参照のこと)。
成人未処置ドナーの骨髄に由来する、繊維状ファージM13ベースのファージミドベクターにクローニングした大規模単鎖Fv(scFv)ヒト抗体ライブラリを選択に使用した(Hutchings,C.,Generation of Naive Human Antibody Libraries,in Antibody Engineering,R.Kontermann and S.Dubel,Editors.2001,Springer Laboratory Manuals,Berlin.p.93)。本質的に以前記載があるとおり(Vaughan et al.,Nat.Biotechnol.14:309(1996))、このファージディスプレイライブラリから組換え哺乳類発現ヒトLOX1(R&D Systems)に対する一連の反復選択サイクルでLOX1特異的scFv抗体を単離した。このプロトコルの異なるバリエーションから幾つかの抗原特異的scFvを得た一方、親クローンLOX514(配列番号29(VH)及び配列番号33(VL);本明細書では「LOX10514」とも称される)及びLOX696(配列番号54(VH)及び配列番号70(VL);本明細書では「LOX10696」とも称される)を以下のとおり単離した:10μg/ml ヒトLOX1をMAXISORP(商標)プレート(Nunc)上に固定化し、ファージディスプレイライブラリと共にインキュベートした。一連の洗浄サイクルで未結合のファージを洗い落とした。抗原上に保持されているファージ粒子を溶出し、細菌に感染させて、次の選択ラウンド用にレスキューした。このようにして3ラウンドの選択を行った。ラウンド2及びラウンド3選択アウトプットからの代表的な複数の個別クローンを96ウェルプレートで成長させた。細菌ペリプラズムにおいてScFvを発現させて、実施例10、アッセイ1に記載するとおりのヒトLOX1:oxLDL結合アッセイにおいてそれらの阻害活性に関してスクリーニングした。
精製したIgGについて、実施例10、アッセイ1、2及び3に記載されるとおり、LOX1に結合する酸化低密度リポタンパク質(「oxLDL」)、ウシ血清アルブミンの終末糖化産物(「AGE−BSA」)及びC反応性タンパク質(「CRP」)を特異的に阻害するそれらの能力を試験した。LOX10514及びLOX10696を含む幾つもの単離クローン、及び市販のマウス抗LOX1抗体(23C11)について、LOX1に対するoxLDL、AGE−BSA及びCRP結合を遮断するそれらの能力を試験した。図1A、図1B及び図1Cに代表的なプロットを示し、それぞれoxLDL、AGE−BSA及びCRP結合のLOX514及びLOX696による阻害が示される。これらの抗体が交差反応し、LOX1 SNP K167Nに対して機能活性を有したことを確認するため、LOX1 SNP K167Nに対するoxLDL結合を遮断するそれらの能力に関して抗体を試験した。LOX1 SNP K167N(GenBank受託番号AB102861)は、当初虚血性心疾患患者群に発見された天然に存在するヒトLOX1変異体であり、心筋梗塞リスクの増加に関連すると考えられている。例えば、Tatsuguchi et al.,Biochem Biophys Res Commun.28;303(1):247−50(2003)を参照のこと。代表的なプロットを図1Dに示し、LOX514及びLOX696が両方ともにLOX1 SNP K167N変異体に対するoxLDL結合を遮断することが示される。結合の阻害に加え、LOX10514及びLOX10696を含めた幾つもの単離クローンについて、LOX1発現細胞に対するoxLDLインターナリゼーション(実施例10、アッセイ4に記載されるとおり)及びoxLDL誘導性LOX1シグナル伝達(実施例10、アッセイ5に記載されるとおり)を遮断するそれらの能力を試験した。図2A及び図2Bに代表的なプロットを示し、それぞれoxLDLインターナリゼーション及びシグナル伝達の阻害が示される。これらの試験の結果を表2に要約する。
様々なLOX1種オルソログとの抗ヒトLOX1抗体の交差反応性をscFv結合ELISAによって評価した。N末端又はC末端Flagタグ及びヒスチジンタグを有するヒト(Uniprot:P78380)、マウス(Uniprot:Q9EQ09)、ラット(Uniprot:O70156)、ウサギ(Uniprot:Q9XTA8)及びカニクイザルLOX1の細胞外ドメインコンストラクトを設計し、Gatewayデスティネーションベクター(Invitrogen)にクローニングした。次にコンストラクトをタンパク質発現用の哺乳類HEK293 EBNA細胞にトランスフェクトした。次にタンパク質を標準的なアフィニティー及びサイズ排除クロマトグラフィー精製にかけた。簡潔に言えば、ヒト(HisFlag)−LOX1、カニクイザルLOX1−(FlagHis)、マウスLOX1−(FlagHis)、ラットLOX1−(FlagHis)及びウサギLOX1−(FlagHis)を、それぞれPBS緩衝液中10、10、5、5及び5μg/mLでMAXISORP(商標)プレートにコーティングした。かかる濃度を用いた効率的な抗原コーティングは、初めに市販の抗ヒトLOX1抗体(Hycultからの23C11)又は抗His抗体(Perkin Elmerからのユウロピウム標識されたもの)を使用したELISAによって確かめた。3%粉乳を含有するPBSでウェルをブロックした後、PBS+3%粉乳中の精製抗LOX1 scFvを、コーティングされた種々の抗原と共に1時間インキュベートした。結合したscFv分子を、100ng/mLの二次ユウロピウム標識抗Mycタグ抗体(Perkin Elmer)を使用して検出した。340nm励起及び615nm発光を使用してプレートの蛍光を読み取った。10μg/mLでコーティングしたウシ血清アルブミン(New England Biolabs)に関して非特異的結合を決定した。
親和性ベースのファージ選択を用いてLOX514を最適化した。記載されるとおりの標準的な分子生物学的技術を用いた可変重鎖(VH)相補性決定領域2又は3(VH−CDR2又はVH−CDR3)又は可変軽鎖(VL)相補性決定領域3(VL−CDR3)のオリゴヌクレオチド特異的突然変異誘発により、LOX514 scFv配列に由来する大規模scFvライブラリを作成した(Clackson,T.and Lowman,H.B.Phage Display−A Practical Approach,2004.Oxford University Press)。これらのライブラリを親和性ベースのファージディスプレイ選択に供することにより、ヒトLOX1に対する親和性がより高い変異体を選択した。これらは、oxLDL及び他のLOX1リガンドに対するLOX1結合の阻害活性の向上を示すものと思われた。選択は、本質的に以前記載があるとおり実施した(Thompson et al.,J Mol Biol.256(1):77−88,(1996))。端的には、溶液中の組換えビオチン化ヒトLOX1(EZ LINK(商標)スルホ−NHS−LC−ビオチン(Thermo/Pierce、製品:21335)を使用した遊離アミンを介したビオチン化)と共にscFv−ファージ粒子をインキュベートした。次に抗原に結合したScFvを、製造者の推奨に従い、ストレプトアビジンでコーティングされた常磁性ビーズ(DYNABEADS(登録商標)M−280)上に捕捉した。次に選択されたscFv−ファージ粒子を以前記載されたとおりレスキューし(Osbourn et al.,Immunotechnology,2(3):181−96,(1996))、漸減濃度のビオチン化ヒトLOX1(典型的な例は、4ラウンドで50nM〜20pMであり得る)の存在下でこの選択プロセスを繰り返した。
初めに、本質的に欧州特許第494955号明細書、米国特許第5658754号明細書及びHanes et al(Thompson et al.,J.Mol.Biol.256(1):77−88(1996))によって記載されるとおり、親和性ベースのリボソームディスプレイ選択を用いてLOX696を最適化した。
LOX514 VH及びVLのアミノ酸配列をVBASEデータベースの既知のヒト生殖系列配列とアラインメントし(Tomlinson,I.,VBASE.1997,MRC Centre of Protein Engineering,Cambridge,UK)、配列類似性によって最も近縁の生殖細胞系列を同定した。VHドメインについては、これはVH1−24(DP−5)及びJH6であり、VLドメインについては、これはVλ1−e(DPL−8)及びJL3であった。これらの2つのアラインメントにおける違いは1つのみで、重鎖のフレームワーク4に位置した。当該の単一の残基(R105−Kabat付番)は標準的な分子生物学によるIgG変換プロセスの間に生殖細胞系列残基(Q)に復帰しており、これはつまり、LOX514系統からの全ての最適化したIgGが事実上生殖細胞系列化されたフォーマットで産生されたことを意味する。加えて、重鎖N96D突然変異誘発(mutatagenesis)(Kabat付番)を実施して、LX5140092及びLX5140093の両方のCDR3における潜在的なN−アミド分解モチーフを取り除いた。変異体は、それぞれ、LX5140092_N>D及びLX5140093_N>Dと命名した(表1又は図4を参照)。LX5140092_N>D及びLX5140093_N>Dの重鎖及び軽鎖アミノ酸配列のアラインメントを、それぞれ図4A及び図4Bに提供する。
他のヒトC型レクチン及びスカベンジャー受容体関連分子に対するIgG1−TMとしての最適化抗ヒトLOX1抗体の特異性をIgG結合ELISA(実施例10、アッセイ7に記載されるとおり)によって評価した。関連分子のパネルには、ヒトCLEC−7A(デクチン−1)、ヒトCLEC−1A、ヒトCLEC−4L(DC−SIGN)、ヒトCLEC−1B(CLEC−2)、ヒトSR−A1及びヒトSR−B3(CD36)が含まれた。ヒトLOX1もまた、結合に関する陽性対照としてコーティングした。以下の最適化抗体を試験した:LX5140108、LX5140110、LX5140092_N>D、LX5140093_N>D、LX6960073_gl及びLX6960073_G82bS_gl。試験する抗体パネルにアイソタイプヒトIgG1−TM対照抗体NIP228を含めて、非特異的バックグラウンドレベルを決定した。
組換えヒト及びカニクイザルオルソログLOX1細胞外ドメイン(ECD)に対する抗LOX1抗体の親和性を、Biacoreによるリアルタイム相互作用モニタリングを用いて37℃で(ヒト及びカニクイザルについて)、及びKinExAを用いて平衡状態で(ヒトLOX1親和性計測について)決定した。
精製IgGについて、LOX1に対するoxLDL、AGE−BSA及びCRP結合を特異的に阻害するそれらの能力を試験した(実施例10;アッセイ 1、2及び3を参照)。LX5140110及びLX6960073_G82bS_glを含む幾つかの単離クローンについて、LOX1に対するoxLDL、AGE−BSA及びCRP結合を遮断するそれらの能力を試験した。図8A、図8B及び図8Cに代表的なプロットを示し、それぞれoxLDL、AGE−BSA及びCRP結合のLX5140110及びLX6960073_G82bS_glによる阻害が示される。これらの抗体がLOX1 SNP K167Nに対して交差反応し、機能活性を有したことを確認するため、これらの抗体について、LOX1 SNP K167Nに対するoxLDL結合を遮断するそれらの能力を試験した。代表的なプロットを図8Dに示し、LX5140110及びLX6960073_G82bS_glが両方ともにLOX1 SNP K167N変異体に対するoxLDL結合を遮断することが示される。結合の阻害に加え、LX5140110及びLX6960073_G82bS_glを含む幾つかの単離クローンについて、LOX1発現細胞に対するoxLDLインターナリゼーション(実施例10、アッセイ4を参照)及びoxLDL誘導性LOX1シグナル伝達(実施例10、アッセイ5を参照)を遮断するそれらの能力を試験した。図8A及び図8Fに代表的なプロットを示し、それぞれoxLDLインターナリゼーション及びoxLDL誘導性LOX1シグナル伝達のLX5140110及びLX6960073_G82bS_glによる阻害が示される。これらの試験の結果を表5に要約する。
実施例1〜9に記載する実験においては、以下の材料及び方法を使用した。
ドキシサイクリン塩酸塩(Sigma #D9891−1G);カルボキシH2DCFDA(MolecularProbes #C400);ヘキスト染色(MolecularProbes #33342);AGE−BSA(Biovision #2221−10);PBS(Gibco # 14190);組換えC反応性タンパク質(R&D #1707−CRCF);BSA 30%(SIGMA #A9576);Lightning Linkビオチンコンジュゲーションキット(Innova Biosciences #704−0010);DyLight 649 NHSエステル(Thermo Scientific #46416);Cypher 5EモノNHS;エステル(GE healthcare #PA15401);HBSS(1×)(GIBCO #14025);Corning 384セル;Bind blackアッセイプレート(Corning Costar #3683);Delfia増強溶液(Perkin Elmer #4001−0010);ユウロピウムストレプトアビジン(Perkin Elmer #1244−360);0.5mL Zeba脱塩カラム(Pierce #89883);CHO−TREx(Invitrogen #R718−07);oxLDL(Intracel #RP049);DiI−oXLDL(Intracel #RP−173);抗LOX1抗体(Biovision #3659);ヘキスト染色(MolecularProbes #33342);PBS(Gibco #14190);成長培地:Hams:F12−GlutaMax−I(Gibco #31765−027);添加物10%ウシ胎仔血清(Invitrogen #16000−044);ブラストサイジン(Invitrogen # 46−1120);ゼオシン(Invitrogen #R25001);リポフェクタミン(Invitrogen #11668−019);ドキシサイクリン塩酸塩(Sigma #D9891−1G)。
oxLDLのCypher 5E標識
ox−LDL(1mg/mL)のpHを、1/10容積の0.5Mホウ酸ナトリウム緩衝液を使用してpH8.5に調整し、製造者キットの説明書に従い40:1のタンパク質:色素のモル比でoxLDLを標識した(室温、暗所で1時間)。製造者の指示に従い(GE healthcareのCypher 5EモノNHSエステル)Zebaスピンカラムを使用して未反応の色素を取り除き、PBSで緩衝液交換した。標識したタンパク質は暗所で4℃に保った。計算上、95%超のタンパク質が回収され、考慮すべき希釈係数はないものと仮定する。
ox−LDL又はAGE−BSA(1mg/mL)のpHを、1/10容積の0.5Mホウ酸ナトリウム緩衝液を使用してpH8.5に調整し、製造者の指示に従い(Thermo ScientificのDyLight 649 NHSエステル、室温、暗所で1時間)標識した。製造者の指示に従いZebaスピンカラムを使用して未反応の色素を取り除き、PBSで緩衝液交換した。計算上、95%超のタンパク質が回収され、考慮すべき希釈係数はないものと仮定する。
ヒト抗LOX1抗体(1mg/mL)のpHを、1/10容積の0.5Mホウ酸ナトリウム緩衝液を使用してpH8.5に調整し、製造者の指示に従い(Thermo ScientificのDyLight 649 NHSエステル、室温、暗所で1時間)標識した。製造者の指示に従いZebaスピンカラムを使用して未反応の色素を取り除き、PBSで緩衝液交換した。計算上、95%超のタンパク質が回収され、考慮すべき希釈係数はないものと仮定する。
C反応性タンパク質CRP(R&D systems;担体不含)を4mg/mLの濃度となるように蒸留水中に再構成し、Lightning−Link(商標)ビオチンコンジュゲーションキット(タイプA)に同梱されるキットの指示に従いビオチン化した。
ヒトLOX1遺伝子(NM 002543)を使用して組換えプラスミドpcDNA4/TO−LOX1(pAM2037)を作成し、これはGeneartによって合成され、引き渡された。5’末端にAfl II制限部位及びコザック配列を付加し、及び3’末端にEcoRI制限部位を付加したLOX1遺伝子を合成した。次に、lipfectamine2000を使用して、テトラサイクリンリプレッサーを発現するチャイニーズハムスター卵巣細胞(CHO−TREx細胞)にpAM2037をトランスフェクトした。CHO−TRExは、テトラサイクリン(Tet)リプレッサーの遺伝子を有するpcDNA6/TRを含有するCHO−K細胞株であり、Tetリプレッサーが、pcDNA4/TOにクローニングされた遺伝子の発現を遮断する。これらの細胞をテトラサイクリンで処理すると、抑制が解除され、LOX1遺伝子が発現することになる。
飽和結合曲線
DyLight 649標識oxLDL及びAGE−BSA(1mg/mL)の両方をHBSS中に1:50希釈し、16ポイントの1+1系列希釈を使用して384ウェルプレートでトリプリケートでタイトレーションした。全結合の決定については、全てのウェルに10μLのHBSSを添加し、続いて10μLのヒトLOX1トランスフェクトCHO TREX細胞を添加した(ウェル当たり4000細胞)。非特異的結合の決定については、10μLのHBSSを10μLの非標識oxLDL(1mg/mL)に置き換えた。アッセイプレートを室温で1時間インキュベートした。インキュベーション後、Applied Biosystems 8200細胞検出システム(FMATプレートリーダー)で422のPMT1セッティングを使用し、最小カウントを10に設定してプレートを読み取った;カラー<0.4及びFL1<5600。平均非特異的結合シグナルから平均全結合シグナルをサブトラクトし、得られた結合等温線をPrism Graphpadソフトウェアでワンサイト特異的結合アルゴリズムを用いてプロットすることにより、特異的結合を決定した。KDが決定された計算値濃度を、続くハイスループットスクリーニング及び抗体競合実験に使用した。
CHO TREX細胞上に発現するLOX1受容体との結合に関する抗LOX1抗体とDyLight 649標識リガンド(oxLDL;AGE−BSA)との間の競合を、以下のとおり実施した。
飽和結合曲線
384ウェルNunc Maxisorpプレートの表面上にPBS中3μg/mLの濃度のLOX1(R&D systems)を4℃で一晩固定化した(ウェル当たり25μL)。翌日、アッセイプレートをPBS(カルシウム及びマグネシウム不含)で12回洗浄した。ビオチン化CRPのワーキング溶液をPBS/0.1%BSA/0.01%tween20中20μg/mL(769nM)で調製し、16ポイントの1+1系列希釈を使用して384ウェルプレートでトリプリケートでタイトレーションした(ウェル当たり12.5μL)。更なる12.5μLのアッセイ緩衝液(PBS/0.1%BSA/0.01%tween20中)を各ウェルに添加し、アッセイプレートを室温で2時間インキュベートした。このプレートをPBS/0.01%Tween 20で16回洗浄し、続いて50μLのユウロピウム標識ストレプトアビジン(1:1000希釈)を添加した。アッセイプレートを室温で更に1時間インキュベートし、続いてPBS/0.01%Tween 20で16回洗浄した。100μL/ウェルのDELFIA増強溶液を添加することによりプレートを発色させ、Wallac Victor Vプレートリーダーで工場出荷時インストール済みのDELFAユウロピウムプロトコルを使用して読み取った。得られた結合等温線をPrism Graphpadソフトウェアでワンサイト特異的結合アルゴリズムを使用してプロットした。見かけのKDが決定された計算値濃度を、続くハイスループットスクリーニング及び抗体競合実験に使用した。
組換えヒトLOX1との結合に関する抗体とビオチン標識CRPとの間の競合を以下のとおり実施した:384ウェルNunc Maxisorpアッセイプレートの表面上にPBS中3μg/mLの濃度のLOX1(R&D systems)を4℃で一晩固定化した(ウェル当たり25μL)。翌日、アッセイプレートをPBS(カルシウム及びマグネシウム不含)で12回洗浄した。競合抗体はいかなる前希釈もなしに使用し、24ポイントのアッセイ緩衝液(PBS/0.1%BSA/0.01%tween20)中1+1系列希釈を使用して384ウェル希釈プレートでデュプリケートでタイトレーションした(ウェル当たり30μL)。次に、抗体が入った全てのウェルにビオチン標識CRP(KD濃度でウェル当たり30μL)を添加した。次に、384MiniTrak液体ハンドリングロボットを使用して、試料(50μL)を希釈プレートから、固定化した組換えヒトLOX1を含むアッセイプレートに移した。プレートを室温で2時間インキュベートした。このプレートをPBS/0.01%Tween 20で16回洗浄し、続いて50μLのユウロピウム標識ストレプトアビジン(1:1000希釈)を添加した。アッセイプレートを室温で更に1時間インキュベートし、続いてPBS/0.01%Tween 20で16回洗浄した。100μL/ウェルのDELFIA増強溶液を添加することによりプレートを発色させて、Wallac Victor Vプレートリーダーで工場出荷時インストール済みのDELFAユウロピウムプロトコルを使用して読み取った。GRAPHPAD(商標)Prism バージョン5(GraphPad Inc、California)で4パラメータロジスティック方程式を使用してデータを分析し、見かけのIC50値を決定した。Y=Bottom+(Top−Bottom)/(1+10^((Log IC50−X)*HillSlope))(式中、Xは濃度の対数であり、Yは%特異的結合である)。IC50は、特異的結合の50%阻害を生じさせる試料濃度である。
飽和結合曲線
Cypher 5E標識oxLDL(1mg/mLで40:1モル比)をHBSS中に1:50希釈し、16ポイントの1+1系列希釈を使用して384ウェルプレートでトリプリケートでタイトレーションした。全結合の決定については、全てのウェルに10μLのHBSSを添加し、続いて10μLのヒトLOX1トランスフェクトCHO TREX細胞を添加した(ウェル当たり4000細胞)。非特異的結合の決定については、10μLのHBSSを10μLの非標識oxLDL(1mg/mL)に置き換えた。
LOX1受容体を発現するCHO TREX細胞におけるインターナリゼーションに関する抗LOX1抗体とCypher5E標識ox−LDLとの間の競合を以下のとおり実施した。
細胞の調製
実験実施の24時間前に、1μg/mL(最終濃度)のドキシサイクリンでヒトLOX1トランスフェクトCHO TREX細胞を誘導した。実験当日、細胞をスクラップし、1200rpmで5分間遠心した。上清を廃棄し、細胞ペレットを50mLのPBS中に再懸濁し、1200rpmで5分間遠心した。この手順を2回繰り返した。上清を廃棄し、細胞ペレットを5mLのHBSS中に再懸濁した。トリパンブルー排除法を用いて血球計算器で細胞をカウントした。合計4×105細胞となるように細胞の数を調整した。細胞は使用時まで氷上で保った。
Cypher 5E標識oxLDL(1mg/mLで40:1のモル比)をHBSS中に1:50希釈し、16ポイントの1+1系列希釈を使用して384ウェルプレートでトリプリケートでタイトレーションした。全結合の決定については、全てのウェルに10μLのHBSSを添加し、続いて10μLのヒトLOX1トランスフェクトCHO TREX細胞を添加した(ウェル当たり4000細胞)。非特異的結合の決定については、10μLのHBSSを10μLの非標識oxLDL(1mg/mL)に置き換えた。
以下の表9に掲載されるLOX1及びLOX1関連分子に対し、IgG特異性ELISAを本質的に以下のとおり実施した。MAXISORB(商標)(NUNC)プレートをPBS中5μg/mLの抗原でコーティングして4℃で一晩インキュベートし、但しヒトSR−B3については10μg/mLを使用した。プレートをPBSで3回洗浄し、200μL/ウェルブロッキング緩衝液(PBS+3%粉乳)で1時間ブロックした。プレートをPBSで3回洗浄した後、IgGをブロッキング緩衝液中0.2μg/mLに希釈し、50μL/ウェルで添加し、1時間インキュベートした。次にプレートをPBS−Tweenで3回洗浄し、検出試薬(抗ヒトIgGλ軽鎖ペルオキシダーゼコンジュゲート(Sigma A5175、0.23μg/mLに希釈)又はκ軽鎖(Sigma A7164、0.8μg/mLに希釈))を添加し(ブロッキング緩衝液中50μL/ウェル)、プレートを1時間インキュベートした。プレートをPBS−Tweenで3回洗浄し、50μL/ウェルのTMBを添加し、プレートを5〜15分間発色させた。50μL/ウェル 0.1M H2SO4で反応をクエンチし、ENVISION(商標)プレートリーダー、又は同様の機器において450nmでプレートを読み取った。
LOX514及びLOX696を、上記でタンパク質修飾の節に記載したとおりDyLight 649で標識し、リガンド結合アッセイと並行したハイスループットスクリーニング及びプロファイリングの両方の競合分子として使用した。標識抗体は、より高い親和性の非標識抗体が競合し難くなるように、そのそれぞれのKD濃度を上回る幾つかの濃度で使用した。
Dylight 649標識ヒト抗LOX1抗体をHBSSに1:50希釈し、16ポイントの1+1系列希釈を使用して384ウェルプレートでトリプリケートでタイトレーションした。全結合の決定については、全てのウェルに10μLのHBSSを添加し、続いて10μLのヒトLOX1トランスフェクトCHO TREX細胞を添加した(ウェル当たり4000細胞)。非特異的結合の決定については、10μLのHBSSを10μLの非標識ヒト抗LOX1抗体(1mg/mL)に置き換えた。
LOX1受容体は、OxLDLの特異的ライゲーション及びインターナリゼーションと、続く複数の細胞内シグナル伝達カスケードの活性化により、アテローム生成過程の近因の一つとして働く。例えば、Twigg et al.,Cardiol Res Pract.2012:632408(2012)を参照のこと。内皮細胞におけるLOX1受容体の活性化は、一部にはアルギナーゼ2の上方制御に誘導されるROS産生の増加及び一酸化窒素(NO)シグナル伝達の障害を含めた内皮機能不全に寄与する。(例えば、Ryoo et al.,Atherosclerosis 214(2):279−287(2011)、Ryoo et al.,Circ Res.102(8):923−932(2008);及びRyoo et al.,Circ Res.99(9):951−60(2006)を参照のこと。加えて、LOX1受容体活性化が、サイトカイン産生及び接着分子発現の増加を伴う血管壁の炎症過程の惹起及び永続化につながる。従ってLOX1受容体の生物学的阻害薬が開発されれば、アテローム生成過程の発達を減弱する有効な方法となる可能性が高い。ここで、本発明者らは、LX5140110がヒト大動脈内皮細胞(HAEC)によるOxLDLの取込みを用量依存的に遮断することを実証する。加えて、LX5140110は、LOX1依存的であることが以前実証された過程であるアルギナーゼ2の活性化を防ぐ。更に、LX5140110は、Ox−LDL依存的なNO産生の低下及びスーパーオキシド(ROS)産生の増加を防ぐ。加えて、本発明者らは、NFkBルシフェラーゼレポーターコンストラクトを使用して、LX5140110がNFkB(アテローム発生における主要な炎症調節因子)の活性化を有意に減弱させることを実証する。例えば、Pamukcu et al.,Thrombosis Res.128(2):117−23(2011)を参照のこと。最後に、LX5140110抗体は、内皮細胞の関門機能において決定的に重要な過程である接着斑キナーゼ(FAK)のリン酸化及び活性化を防ぐ。従って、本発明者らは、内皮の活性化につながり且つアテローム発生を惹起及び促進する幾つものLOX1依存的過程をLX5140110が遮断することを明らかにする。次には、これらの実験の結果を考察する。
方法:
Alexa Fluor−568とのOxLDLコンジュゲーション
500マイクロリットルのヒト酸化LDL(1mg/ml、Intracel、Frederick、Maryland)を、製造者のプロトコルに従いAlexafluor−568タンパク質標識キット(MolecularProbes、Eugene、Oregon)を使用してAlexafluor−568で標識した。簡潔に言えば、OxLDLを0.1M 重炭酸塩(pH8.3)中のAlexafluor−568と共に室温で1時間インキュベートした。次にAlexafluor−568コンジュゲートOxLDLを精製樹脂カラムで精製した。
フィブロネクチンがコーティングされた(10μg/ml)カバーガラス上にHAECを血清含有培地中8時間播種した後、18時間血清飢餓状態にした。
方法:NFκB−ルシフェラーゼとGFPとを共発現したHAECのコンフルエントな6ウェルプレートを24時間血清飢餓状態にした後、それらを以下の条件に供した(数字は図9B中のバーを左から右に示す):1.対照;2.OxLDL単独(50μg/ml);3.OxLDL+LX5140110(「514」)(10nM);4.OxLDL+NIP(対照抗体)(10nM)。
方法:HAECのコンフルエントな6ウェルプレートを24時間血清飢餓状態にした後、それらを以下の条件に供した(数字は図9C中のバーを左から右に示す):1.対照;2.OxLDL(50μg/ml);3.OxLDL+LX5140110(「514」)(1nM);4.OxLDL+LX5140110(「514」)(3nM);5.OxLDL+LX5140110(「514」)(10nM);6.OxLDL+NIP(10nM)。抗体を添加して1時間後に、OxLDL(50μg/ml)中でHAECを更に3時間インキュベートした。細胞を溶解させて、α−イソニトロソプロピオフェノンを使用した尿素アッセイを用いてアルギナーゼ活性を決定した。簡潔に言えば、溶解緩衝液(50mMトリス−HCl、pH7.5、0.1mM EDTA及びプロテアーゼ阻害薬)と共に4℃で30分間インキュベートし、14,000×g、4℃で20分間遠心した後、抽出細胞ライセートの上清を調製した。次に上清を150mM L−アルギニンと共に37℃で1時間インキュベートした。1時間後、400μlの酸性溶液混合物(H2SO:H3PO4:H2O 1:3:7)を使用して反応を停止させ、次に25μl 9%α−イソニトロソプロピオフェノン(100%EtOH中)を添加し、95℃で30分間加熱し、10分後に540nmで読み取った。各群につきN=3;*は、未処理対照と比較したときP<0.05であることを示す;#は、0nM 抗体514(LX5140110)と比較したときP<0.05であることを示す。図9Cに示すとおり、3nM又は10nM LX5140110を加えると、HAECのOxLDL依存的アルギナーゼ活性が用量依存的に有意に低下したが、10nM NIP(対照抗体)では低下しなかった。これは更に、最近になって血管内皮のLOX−1にカップリングすることが示された下流シグナル伝達経路であるアルギナーゼ2のLOX1依存的活性化がLX514110によって阻害されることを示唆している。例えば、Ryoo et al.,Atherosclerosis 214:279−87(2011)を参照のこと。
方法:DAF蛍光を使用してNO産生を決定した。簡潔に言えば、NOを計測するため、白色96ウェルプレート(ThermoLabsystems)にHAEC細胞をウェル当たり約5×104細胞の密度でプレーティングし、一晩血清飢餓状態にした(1%血清)。細胞は7つの実験群で調べた(数字は図9D中のバーを左から右に示す):1.対照;2.OxLDL(50μg/ml);3.OxLDL+LX5140110(「514」)(0.5nM);4.OxLDL+LX5140110(「514」)(1nM);5.OxLDL+LX5140110(「514」)(5nM);6.OxLDL+LX5140110(「514」)(10nM);7.OxLDL+NIP(10nM)。抗体を添加して1時間後に、OxLDL(50μg/ml)中でHAECを24時間インキュベートした。次に培地を取り除き、DAF−FM DA(5μM)を含有するEBM2培地に37℃で細胞を37℃で30分間置いた。次に培地を新鮮培地に交換し、細胞を更に20分間インキュベートした後、FlexStation3マイクロプレートリーダー(Molecular Devices)において励起495nm及び発光515nmで全蛍光を計測した。eNOSによってNOが産生されたことを確認するため、NOS阻害薬L−NAMEを対照として使用した(データは示さず)。各群につきN=5;*は、P<0.05であることを示す(未処理対照との比較)。図9Dに示すとおり、5nM又は10nM LX5140110を加えると、HAECの一酸化窒素産生のOxLDL依存的低下が用量依存的に有意に阻害されたが、10nM NIP(対照抗体)では阻害されなかった。
方法:ルミノール類似体L−012を使用してスーパーオキシド産生を決定した。スーパーオキシド(ROS)を計測するため、白色TC処理96ウェルプレート(ThermoLabsystems)にHAEC細胞をウェル当たり約5×104細胞の密度でプレーティングし、一晩血清飢餓状態にした(1%血清)。7つの試験集団は以下のとおりであった(数字は図9E中のバーを左から右に示す):1.対照;2.OxLDL(50μg/ml);3.OxLDL+LX5140110(「514」)(0.5nM);4.OxLDL+LX5140110(「514」)(1nM);5.OxLDL+LX5140110(「514」)(5nM);6.OxLDL+LX5140110(「514」)(10nM);7.OxLDL+NIP(10nM)。抗体を添加して1時間後に、OxLDL(50μg/ml)中でHAECを24時間インキュベートした。次に培地を取り除き、400μMのルミノール類似体L−012(Wako)を含有するフェノール不含DMEM(Sigma)中で細胞を37℃で最低20分間更にインキュベートした後、アゴニストを添加した。FlexStation3マイクロプレートリーダー(Molecular Devices)を使用してルミネセンスを経時的に定量化した。スーパーオキシドスカベンジャーSOD(5mM)とコインキュベートすることによって活性酸素種に対するL−012の特異性を確認したところ、これにより対照又はOxLDL刺激条件下で生じたルミネセンスは事実上検出不能なレベルであった(図9Fを参照のこと)。従ってL−012のルミネセンスから定量化した相対発光単位(RLU)が、スーパーオキシド産生の変化を示す。スーパーオキシドがeNOSによって産生されたことを確認するため、NOS阻害薬L−NAMEを対照として使用した。各群につきN=5。図9E及び図9Fに示されるとおり、0.5nM、1nM、5nM又は10nM LX5140110を加えると、HAECのOxLDL依存的ROS産生が阻害されたが、10nM NIP(対照抗体)では阻害されなかった。従って、LX5140110は、LOX−1活性化及びアルギナーゼ2の下流活性化を妨げることにより、OxLDL媒介性eNOSアンカップリング、及び続くROS産生の増加を妨げる。例えば、Ryoo et al.,Atherosclerosis 214:279−87(2011)を参照のこと。
方法:5%血清を含むECM培地(ScienCell、Carlsbad、CA)でHAECを1日培養した後、18時間血清飢餓状態にした。次にLX5140110又は対照抗体NIPを図9Gに示す濃度で細胞に添加し、1時間インキュベートした。細胞を新鮮培地で洗浄して抗体を取り除いた後、それらを50μg/mlのOxLDLと共に1時間インキュベートした。細胞を氷冷PBS緩衝液で洗浄し、次に、改変RIPA緩衝液(PBS中0.1%DOC、0.1% Trition X−100、2mM EDTA、1mM PMSF、2mMバナジン酸ナトリウム、20mg/mlロイペプチン、及び20mg/mlアプロチニン)を使用してタンパク質を抽出した。細胞ライセートを15,000×g、4℃で10分間遠心することにより清澄化した。次にタンパク質濃度をビシンコニン酸アッセイ(Pierce、Rockford、IL)によって定量化した。10μgのタンパク質ライセートを2×レムリー試料緩衝液と混合し、沸騰させ、次に4〜15%勾配ポリアクリルアミドゲルを使用したSDS−PAGEに供し、続いてニトロセルロース膜に転写してウエスタンブロッティングを行った。
方法:LOX1 shRNAアデノウイルスの構築:
pAdBLOCK−iTキット(Life Sciences)を使用して、Ad−shNontargetedコードウイルス及びAd shLOX1コードウイルスを作成した。簡潔に言えば、標的化されなかったオリゴヌクレオチド、及びヒトLOX1の他の標的化する5’UTR領域をLife Sciencesの専売のソフトウェアで設計し、pU6−ENTRにクローニングした。使用した配列は以下のとおりであった。非標的化:Top、5’−CAC CGA TGG ATT GCA CGC AGG TTC TCG AAA GAA CCT GCG TGC AAT CCA TC−3’(配列番号79);Bottom、5’−AAA AGA TGG ATT GCA CGC AGG TTC TTT CGA GAA CCT GCG TGC AAT CCA TC−3’(配列番号80)。LOX1sh:Top、5’−CAC CGC TTC ACT CTC TCA TTC TTA GCG AAC TAA GAA TGA GAG AGT GAA GC−3’(配列番号81);Bottom、5’−AAA AGC TTC ACT CTC TCA TTC TTA GTT CGC TAA GAA TGA GAG AGT GAA GC−3’(配列番号82)。
Claims (44)
- 一組の相補性決定領域(CDR):重鎖可変領域(VH)−CDR1、VH−CDR2、VH−CDR3、及び軽鎖可変領域(VL)−CDR1、VL−CDR2及びVL−CDR3を含む単離LOX1結合タンパク質であって、前記一組のCDRは、
(i)VH−CDR1が配列番号1のアミノ酸配列を有し、
(ii)VH−CDR2が配列番号5のアミノ酸配列を有し、
(iii)VH−CDR3が配列番号14のアミノ酸配列を有し、
(iv)VL−CDR1が配列番号30のアミノ酸配列を有し、
(v)VL−CDR2が配列番号31のアミノ酸配列を有し、及び
(vi)VL−CDR3が配列番号32のアミノ酸配列を有する
一組の参照CDRと比べて合計18個以下のアミノ酸置換、欠失、及び/又は挿入を有する、単離LOX1結合タンパク質。 - 一組の相補性決定領域(CDR):重鎖可変領域(VH)−CDR1、VH−CDR2、VH−CDR3、及び軽鎖可変領域(VL)−CDR1、VL−CDR2及びVL−CDR3を含む単離LOX1結合タンパク質であって、
(a)(i)VH−CDR1が配列番号1のアミノ酸配列を有し、
(ii)VH−CDR2が配列番号2のアミノ酸配列を有し、
(iii)VH−CDR3が配列番号3のアミノ酸配列を有し、
(iv)VL−CDR1が配列番号30のアミノ酸配列を有し、
(v)VL−CDR2が配列番号31のアミノ酸配列を有し、及び
(vi)VL−CDR3が配列番号32のアミノ酸配列を有するか、
(b)(i)VH−CDR1が配列番号1のアミノ酸配列を有し、
(ii)VH−CDR2が配列番号5のアミノ酸配列を有し、
(iii)VH−CDR3が配列番号14のアミノ酸配列を有し、
(iv)VL−CDR1が配列番号30のアミノ酸配列を有し、
(v)VL−CDR2が配列番号31のアミノ酸配列を有し、及び
(vi)VL−CDR3が配列番号32のアミノ酸配列を有するか、
(c)(i)VH−CDR1が配列番号38のアミノ酸配列を有し、
(ii)VH−CDR2が配列番号39のアミノ酸配列を有し、
(iii)VH−CDR3が配列番号44のアミノ酸配列を有し、
(iv)VL−CDR1が配列番号55のアミノ酸配列を有し、
(v)VL−CDR2が配列番号60のアミノ酸配列を有し、及び
(vi)VL−CDR3が配列番号61のアミノ酸配列を有するか、
又は
(d)(i)VH−CDR1が配列番号38のアミノ酸配列を有し、
(ii)VH−CDR2が配列番号39のアミノ酸配列を有し、
(iii)VH−CDR3が配列番号40のアミノ酸配列を有し、
(iv)VL−CDR1が配列番号55のアミノ酸配列を有し、
(v)VL−CDR2が配列番号56のアミノ酸配列を有し、及び
(vi)VL−CDR3が配列番号57のアミノ酸配列を有する、
単離LOX1結合タンパク質。 - 配列番号4、19〜29、41、又は48〜54と少なくとも90、95、97、98又は99%の配列同一性を有する重鎖可変領域(VH);及び配列番号33、36、37、58又は65〜70と少なくとも90、95、97、98又は99%の配列同一性を有する軽鎖可変領域(VL)を含む単離LOX1結合タンパク質。
- 重鎖可変領域(VH)及び軽鎖可変領域(VL)を含む単離LOX1結合タンパク質であって、前記VH配列が、配列番号4、19〜28及び29からなる群から選択される参照VH配列と比べて合計15個以下のアミノ酸置換、欠失、及び/又は挿入を有し、且つ前記VL配列が、配列番号33、36、及び37からなる群から選択される参照VL配列と比べて合計6個以下のアミノ酸置換、付加及び/又は欠失を有する、単離LOX1結合タンパク質。
- 配列番号4、19〜29、41、又は48〜54を含むVHからなる群から選択される重鎖可変領域(VH)及び配列番号33、36、37、58又は65〜70を含むVLからなる群から選択される軽鎖可変領域(VL)を含む単離LOX1結合タンパク質。
- (a)配列番号4のアミノ酸配列を有するVH及び配列番号33のアミノ酸配列を有するVL、
(b)配列番号29のアミノ酸配列を有するVH及び配列番号33のアミノ酸配列を有するVL、
(c)配列番号41のアミノ酸配列を有するVH及び配列番号58のアミノ酸配列を有するVL、及び
(d)配列番号54のアミノ酸配列を有するVH及び配列番号70のアミノ酸配列を有するVL、
からなる群から選択される重鎖可変領域(VH)及び軽鎖可変領域(VL)を含む単離LOX1結合タンパク質。 - 配列番号4を含む重鎖可変領域(VH)及び配列番号33を含む軽鎖可変領域(VL)を含む単離LOX1結合タンパク質。
- 表1、図4又は図5に示されるとおりの一組の相補性決定領域(CDR):重鎖可変領域(VH)−CDR1、VH−CDR2、VH−CDR3、及び軽鎖可変領域(VL)−CDR1、VL−CDR2及びVL−CDR3を含む単離LOX1結合タンパク質。
- 表1、図4又は図5に示されるとおりの重鎖可変領域(VH)及び軽鎖可変領域(VL)を含む単離LOX1結合タンパク質。
- 一組の相補性決定領域(CDR):重鎖可変領域(VH)−CDR1、VH−CDR2、VH−CDR3、及び軽鎖可変領域(VL)−CDR1、VL−CDR2及びVL−CDR3を含む単離LOX1結合タンパク質であって、
(a)VH−CDR1がアミノ酸配列:
E L S M H(配列番号1)を含み、
(b)VH−CDR2がアミノ酸配列:
G F D P E D HX1 HX2 HX3 HX4 HX5 HX6 Q K F Q G(配列番号71)を含み
(式中、HX1は、G、W、Y及びFからなる群から選択され、
HX2は、E、T、Q、K、A、及びSからなる群から選択され、
HX3は、T、Y、I、及びNからなる群から選択され、
HX4は、I、A、R及びHからなる群から選択され、
HX5は、Y、V、T、L及びQからなる群から選択され、及び
HX6は、A、D、G、S及びHからなる群から選択される)、
(c)VH−CDR3がアミノ酸配列:
HX7 HX8 G HX9 HX10 HX11 HX12 G V R G W D Y Y Y G M D V(配列番号72)を含み
(式中、HX7は、P、S及びVからなる群から選択され、
HX8は、N、W、D、及びTからなる群から選択され、
HX9は、Q、R及びTからなる群から選択され、
HX10は、Q及びHからなる群から選択され、
HX11は、G及びQからなる群から選択され、及び
HX12は、K及びGからなる群から選択される)、
(d)VL−CDR1がアミノ酸配列:
T G S S S N I G A G Y D V H(配列番号30)を含み、
(e)VL−CDR2がアミノ酸配列:
G N S N R P S(配列番号31)を含み、及び
(f)VL−CDR3がアミノ酸配列:
Q S Y D S LX1 LX2 LX3 LX4 LX5 LX6(配列番号73)を含む
(式中、LX1は、M及びSからなる群から選択され、
LX2は、L、Y及びHからなる群から選択され、
LX3は、S及びRからなる群から選択され、
LX4は、A及びGからなる群から選択されるか又は省略され(アミノ酸無し)、
LX5は、W及びFからなる群から選択され、及び
LX6は、V、G及びAからなる群から選択される)、
単離LOX1結合タンパク質。 - 請求項1〜10のいずれか一項に記載の単離LOX1結合タンパク質と同じエピトープに結合する単離LOX1結合タンパク質。
- 請求項1〜10のいずれか一項に記載の単離LOX1結合タンパク質とLOX1に対する結合に関して競合する単離LOX1結合タンパク質。
- 前記LOX1結合タンパク質がLOX1活性を低減し、阻害し、又はアンタゴナイズする、請求項1〜10のいずれか一項に記載の単離LOX1結合タンパク質。
- 前記LOX1結合タンパク質が、以下からなる群から選択される少なくとも1つの特性を有する:
(a)LOX1に対するoxLDL、C反応性タンパク質(CRP)及び/又は終末糖化産物(AGE)の結合を低減し、又は阻害する、
(b)細胞表面LOX1を発現する内皮細胞のRhoA/Rac1、一酸化窒素(NO)、p38MAPK、プロテインキナーゼB及びC、ERK1/2、及び/又はNFκBシグナル伝達を低下させ、又は阻害する、
(c)細胞表面LOX1を発現する内皮細胞のカスパーゼ−8、カスパーゼ−9、及び/又はBAX活性を低下させ、又は阻害する、
(d)一塩基多型K167Nを有するLOX1に結合する、
(e)oxLDLインターナリゼーションを低減し、又は阻害する、
(f)oxLDL誘導性LOX1シグナル伝達を低減し、又は阻害する、
(g)BIACORE又はKinExAによって決定するとき約150pM〜約600pM又は約400pMの解離定数(KD)でLOX1に結合する、
(h)BIACOREによって決定するとき約1×105M-1s-1〜約6×106M-1s-1又は約5×105M-1s-1のKon速度でLOX1に結合する、及び
(i)BIACOREによって決定するとき約1×10-4s-1〜約3×10-4s-1又は約2.3×10-4s-1のKoff速度でLOX1に結合する、
請求項1〜10のいずれか一項に記載の単離LOX1結合タンパク質。 - 前記LOX1結合タンパク質が抗体である、請求項1〜14のいずれか一項に記載の単離LOX1結合タンパク質。
- 前記抗体が、モノクローナル抗体、組換え抗体、ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、二重特異性抗体、多重特異性抗体、又はLOX1結合抗体断片である、請求項15に記載の単離LOX1結合タンパク質。
- 前記LOX1結合抗体断片が、Fab断片、Fab’断片、F(ab’)2断片、Fv断片、ダイアボディ、又は一本鎖抗体分子からなる群から選択される、請求項16に記載の単離LOX1結合タンパク質。
- 前記LOX1結合タンパク質又は抗体が、
(a)ヒトIgA定常ドメイン、
(b)ヒトIgD定常ドメイン、
(c)ヒトIgE定常ドメイン、
(d)ヒトIgG1定常ドメイン、
(e)ヒトIgG2定常ドメイン、
(f)ヒトIgG3定常ドメイン、
(g)ヒトIgG4定常ドメイン、及び
(h)ヒトIgM定常ドメイン、
からなる群から選択される重鎖免疫グロブリン定常ドメインを更に含む、請求項1〜17のいずれか一項に記載の単離LOX1結合タンパク質。 - 前記LOX1結合タンパク質又は抗体が、
(a)ヒトIgκ定常ドメイン、及び
(b)ヒトIgλ定常ドメイン、
からなる群から選択される軽鎖免疫グロブリン定常ドメインを更に含む、請求項1〜18のいずれか一項に記載の単離LOX1結合タンパク質。 - 前記LOX1結合タンパク質又は抗体が、ヒトIgG1重鎖定常ドメイン及びヒトλ軽鎖定常ドメインを更に含む、請求項1〜19のいずれか一項に記載の単離LOX1結合タンパク質。
- 前記IgG1定常Fc領域ドメインが、234位、235位及び331位(これらの位置の付番はKabatにあるとおりのEUインデックスに従う)に突然変異を含有する、請求項18〜20のいずれか一項に記載の単離LOX1結合タンパク質。
- 前記IgG1 Fcドメインが、突然変異L234F、L235E及びP331S(これらの位置の付番はKabatにあるとおりのEUインデックスに従う)を含有する、請求項21に記載の単離LOX1結合タンパク質。
- 請求項1〜22のいずれか一項に記載のLOX1結合タンパク質をコードする単離核酸分子又は一組の核酸分子。
- cDNAである、請求項23に記載の単離核酸分子又は一組の核酸分子。
- 請求項23又は24に記載の核酸分子又は一組の核酸分子の断片、又はその相補体である、ハイブリダイゼーションプローブ、PCRプライマー又はシーケンシングプライマーとしての使用に十分な単離ポリヌクレオチド又はcDNA分子。
- 前記核酸分子が制御配列に作動可能に連結されている、請求項23又は24に記載の核酸分子又はcDNA分子。
- 請求項23、24、又は26のいずれか一項に記載の核酸分子を含むベクター。
- 請求項23、24、又は26のいずれか一項に記載の核酸分子又は請求項27に記載のベクターで形質転換された宿主細胞。
- 哺乳類宿主細胞である、請求項28に記載の宿主細胞。
- 前記宿主細胞が、NS0マウス骨髄腫細胞、PER.C6(登録商標)ヒト細胞、又はチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞である、請求項29に記載の哺乳類宿主細胞。
- 請求項28、29、又は30のいずれか一項に記載の宿主細胞を、LOX1結合タンパク質の産生に好適な条件下で培養するステップを含む、請求項1〜22のいずれか一項に記載のLOX1結合タンパク質を作製する方法。
- 前記宿主細胞から分泌されたLOX1結合を単離するステップを更に含む、請求項31に記載の方法。
- 請求項32に記載の方法を用いて作製されたLOX1結合タンパク質。
- 請求項1〜22又は33のいずれか一項に記載のLOX1結合タンパク質と薬学的に許容可能な担体とを含む医薬組成物。
- 標識基又はエフェクター基を更に含む、請求項34に記載の医薬組成物。
- 前記標識基が、同位体標識、磁気標識、酸化還元活性部分、光学色素、ビオチン化基、蛍光部分、例えば、ビオチンシグナル伝達ペプチド、緑色蛍光タンパク質(GFP)、青色蛍光タンパク質(BFP)、シアン蛍光タンパク質(CFP)、及び黄色蛍光タンパク質(YFP)、及び二次レポーターによって認識されるポリペプチドエピトープ、例えば、ヒスチジンペプチド(his)、ヘマグルチニン(HA)、金結合ペプチド、及びFlagからなる群から選択される、請求項35に記載の医薬組成物。
- 前記エフェクター基が、放射性同位元素、放射性核種、毒素、治療薬及び化学療法剤からなる群から選択される、請求項35に記載の医薬組成物。
- 薬剤として使用される、請求項34〜37のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- LOX1に関連する疾患又は病態を治療するための、請求項34〜37のいずれか一項に記載の医薬組成物の使用。
- 前記疾患又は病態が、アテローム性動脈硬化症、血栓症、冠動脈疾患(CAD)、虚血(例えば心筋虚血)、梗塞(例えば心筋梗塞)、急性冠症候群(ACS)、脳卒中、再灌流傷害、再狭窄、末梢血管疾患、高血圧、心不全、炎症(例えば慢性炎症)、血管新生、子癇前症及び癌からなる群から選択される、請求項39に記載の使用。
- 対象におけるLOX1に関連する疾患又は病態を治療し、予防し、及び/又は改善する方法であって、それを必要としている対象に、請求項1〜22又は33のいずれか一項に記載のLOX1結合タンパク質を含む組成物、又は請求項34〜37のいずれか一項に記載の医薬組成物の有効量を投与するステップを含む方法。
- 前記疾患又は病態が、アテローム性動脈硬化症、血栓症、冠動脈疾患(CAD)、虚血(例えば心筋虚血)、梗塞(例えば心筋梗塞)、急性冠症候群(ACS)、脳卒中、再灌流傷害、再狭窄、末梢血管疾患、高血圧、心不全、炎症(例えば慢性炎症)、血管新生、子癇前症及び癌からなる群から選択される、請求項41に記載の方法。
- 前記LOX1結合タンパク質又は医薬組成物が、単独で、又は併用療法として投与される、請求項41に記載の方法。
- 請求項1〜22又は33のいずれか一項に記載のLOX1結合タンパク質、又は請求項34〜37のいずれか一項に記載の医薬組成物の有効量を投与するステップを含む、対象のLOX1活性を低減し、又は阻害する方法。
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