JP4957547B2

JP4957547B2 - ヘモグロビン誘導体の測定方法、それに用いる試薬組成物、測定キット、分析デバイス、及び分析システム

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Publication number: JP4957547B2
Application number: JP2007521210A
Authority: JP
Inventors: 宏橋田中; 正教田中; 文久北脇
Original assignee: Panasonic Corp; Matsushita Electric Industrial Co Ltd
Current assignee: Panasonic Corp; Panasonic Holdings Corp
Priority date: 2005-04-14
Filing date: 2006-04-12
Publication date: 2012-06-20
Anticipated expiration: 2026-04-12
Also published as: US8921052B2; EP1873522B1; CA2604474A1; CN101160527A; CA2604474C; CN101160527B; JPWO2006112339A1; WO2006112339A1; US20080293074A1; EP1873522A4; EP1873522A1; KR20070116103A

Description

本発明は、血液試料中のヘモグロビン誘導体の測定方法、それに用いる試薬組成物、測定キット、分析デバイス、及び分析システムに関するものであり、迅速かつ確実にヘモグロビンを変性させる技術に関するものである。

ヘモグロビン誘導体の一つである糖化ヘモグロビンは、食事による血糖値変動の影響を排除した通常時の血糖レベルの判定が可能なこともあって、生活習慣病の早期発見のためによく測定される項目である。糖化ヘモグロビンはヘモグロビンＡ１ｃとも呼ばれ、赤血球の中に含まれるヘモグロビンにブドウ糖が結合したものであり、ヘモグロビンに対して糖化ヘモグロビンが存在する比率で数値化される。

糖化ヘモグロビンの測定方法としては、免疫反応を利用する方法がある。この免疫反応を利用した測定方法は、最初に、血液試料を溶血させることによって、赤血球からヘモグロビンを外に取りだし、次にヘモグロビンが非糖化ヘモグロビンであるか糖化ヘモグロビンであるかを判別するために、ヘモグロビンの立体構造を変化させることによって、ヘモグロビンタンパクの糖化された部分をその立体構造の中から外に露出させ（ヘモグロビンの変性）、さらに、糖化された部分を特異的に認識する抗体と反応させることによって、免疫学的に糖化ヘモグロビン量を測定するものである。

このヘモグロビンの変性方法に関しては、従来例として、例えばリチウム塩形態の陰イオンでヘモグロビンを変性させる方法がある（特許文献１参照）。詳述すると、血液試料中の特定のヘモグロビン誘導体を測定する分析方法において、（ａ）血液試料を溶解／変性試薬で処理して赤血球を溶解し、赤血球から放出された検出可能量の上記誘導体を変性し、（ｂ）その結果生じた混合液を、その中に存在する変性型の上記ヘモグロビン誘導体の量に関してイムノアッセイにより試験する方法であって、上記溶血／変性試薬として赤血球を溶解し上記ヘモグロビン誘導体を変性することができるリチウム塩形態の陰イオンを用い、それによって溶血及び上記ヘモグロビン誘導体の変性を、イムノアッセイ工程を有意に妨害しないリチウム塩濃度で迅速に成し遂げることを特徴とする方法である。

また、別の変性方法として、チオシアン化化合物でヘモグロビンを変性させる方法がある（特許文献２参照）。詳述すると、この方法は、血液試料中の特定のヘモグロビン誘導体の相対量を測定するための分析方法であって、（ａ）血液試料を、（i）試料中において０．５〜６．０Ｍの濃度となる、血液試料中に存在する実質的にすべてのヘモグロビンを変性しうるチオシアネート塩と、(ii)血液試料中に存在する実質的にすべてのヘモグロビンをメトヘモグロビンの形態に転化させうる酸化剤とで処理して変性血液試料を得る工程、（ｂ）変性血液試料中のメトヘモグロビンを定量する工程、（ｃ）イムノアッセイによって、変性血液試料中の変性形態の特定のヘモグロビン誘導体を定量する工程、及び（ｄ）上記工程（ｂ）及び（ｃ）から得られる試験結果を関連させることを特徴とするものである。

さらに、別の変性方法として、イオン性界面活性剤による変性を行う方法なども挙げられる（特許文献３参照）。詳述すると、この方法は、血液試料中のヘモグロビン誘導体の含量の測定法であって、（ａ）血液試料を、４〜３７℃の温度で、５〜９．５のｐHを有するイオン性洗剤を含む溶血試薬で１０分間まで処理し、そして（ｂ）ヘモグロビン誘導体を溶血させた血液試料中で免疫学的に測定することを特徴とするものである。
特開平３−５１７５９号公報特開平１−１５５２６８号公報特開平６−１１５１０号公報

前述したように、ヘモグロビンを変性させる方法は様々であるが、各方法とも一長一短がある。例えば、前記特許文献１や特許文献２に記載される、リチウム塩やチオシアン化化合物を使用する方法においては、特に最適とされるチオシアン酸リチウムをはじめ、チオシアン酸カリウムやチオシアン酸アンモニウムなどの試薬が非常に潮解性が高い性質故に、その取り扱いに注意を要する。またこれらの試薬は、乾燥形態を保持することが困難であるため、例えばデバイスに担持する場合は、湿気により劣化する試薬とは別にしなければならないなど、工法上大きな制約を受ける。

また、前記特許文献３に記載される、イオン性界面活性剤を使用する方法では、その強力なタンパク質変性効果故に、ヘモグロビン変性処理後の免疫反応系に悪影響を与えることから、ヘモグロビン変性溶液を緩衝液などで希釈し、希釈された後のヘモグロビン溶液を免疫反応試薬と混合させるといった、多段階の操作が必要とされる。このような煩雑な測定方法は、不便であり、更には希釈バラツキによって測定値に誤差を与えることがある。さらに、希釈操作が必要とされると、簡易な測定システムを構築することが困難になる。

本発明はこれら従来の課題を解決するもので、ヘモグロビン誘導体量を測定する際に、変性試薬による免疫反応への影響を低減しつつ、ヘモグロビンの変性を迅速かつ確実に行えるヘモグロビン誘導体の測定方法、それに用いる試薬組成物、測定キット、分析デバイス、及び分析システムを提供することを目的とするものである。

前記従来の課題を解決するために、本発明のヘモグロビン誘導体の測定方法は、血液成分を含む試料を、非イオン性界面活性剤と酸化剤とで処理して前記試料中のヘモグロビンを変性させる工程を含み、前記非イオン性界面活性剤は、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｏｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−８）、ｎ−Ｎｏｎａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−９）、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含む、ものである。
これにより、免疫反応への影響を最小限に抑えつつ、迅速にかつ確実なヘモグロビン変性効果を得ることができる。

また、本発明のヘモグロビン誘導体の測定方法は、前記非イオン性界面活性剤と酸化剤とで処理して変性させたヘモグロビン誘導体を、該ヘモグロビン誘導体の変性された部位に対して特異的な抗体を用いて免疫アッセイを行い検出するものである。
これにより、ヘモグロビン誘導体を検出することができる。

また、本発明のヘモグロビン誘導体の測定方法は、前記ヘモグロビン誘導体が糖化ヘモグロビンであり、前記非イオン性界面活性剤と酸化剤とで処理して変性させた糖化ヘモグロビンを、該糖化ヘモグロビンの変性された部位に対して特異的な抗体を用いて免疫アッセイを行い検出するものである。
これにより、糖化ヘモグロビンを検出することができる。

さらに、本発明のヘモグロビン誘導体の測定方法は、前記試料を、前記非イオン性界面活性剤のうち、前記免疫アッセイを有意に妨害しない、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つで処理するものである。
これにより、変性処理後に希釈操作が必要なくなり、希釈による測定精度の低下防止に加え、ユーザの操作性をはるかに向上させることができる。

また、本発明のヘモグロビン誘導体の測定方法は、さらに前記試料に含まれるヘモグロビンを測定する工程を含み、前記ヘモグロビンに対する前記ヘモグロビン誘導体の存在比を算出するものである。
これにより、試料中のヘモグロビン誘導体の存在比を得ることができる。

さらに、前記ヘモグロビン誘導体が、糖化ヘモグロビンであるものである。
これにより、試料中の糖化ヘモグロビン誘導体の存在比を得ることができる。

本発明の試薬組成物は、血液成分を含む試料中のヘモグロビン誘導体を測定するための試薬組成物であって、少なくとも非イオン性界面活性剤と酸化剤とを含み、前記非イオン性界面活性剤は、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｏｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−８）、ｎ−Ｎｏｎａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−９）、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含む、ものである。
これにより、免疫反応への影響を最小限に抑えつつ、迅速にかつ確実なヘモグロビン変性効果を得ることができる試薬を提供できる。

また、本発明の試薬組成物は、前記ヘモグロビン誘導体の変性された部位に対して特異的な抗体をさらに含むものである。
これにより、前記試薬組成物と前記試料とを混合させるのみで、ヘモグロビン誘導体を検出することができる。

また、本発明の試薬組成物は、前記ヘモグロビン誘導体が、糖化ヘモグロビンであって、前記糖化ヘモグロビンの変性された部位に対して特異的な抗体をさらに含むものである。
これにより、前記試薬組成物と前記試料とを混合させるのみで、糖化ヘモグロビンを検出することができる。

さらに、本発明の試薬組成物の前記非イオン性界面活性剤は、前記免疫アッセイを有意に妨害しない、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含むものである。
これにより、変性処理後に希釈操作が必要なくなり、希釈による測定精度の低下防止に加え、ユーザの操作性をはるかに向上させることができる。

本発明の測定キットは、血液成分を含む試料中のヘモグロビン誘導体を測定するための測定キットであって、少なくとも非イオン性界面活性剤と酸化剤とを含む試薬組成物を保持してなり、前記非イオン性界面活性剤は、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｏｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−８）、ｎ−Ｎｏｎａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−９）、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含むものである。
これにより、免疫反応への影響を最小限に抑えつつ、迅速にかつ確実なヘモグロビン変性効果を得ることができる測定キットを提供できる。

また、本発明の測定キットは、前記ヘモグロビン誘導体の変性された部位に対して特異的な抗体を保持してなるものである。
これにより、ユーザが専門的な知識を保有していなくても、簡便にヘモグロビン誘導体の測定が可能となる。

また、本発明の測定キットは、前記ヘモグロビン誘導体が糖化ヘモグロビンであり、前記糖化ヘモグロビンの変性された部位に対して特異的な抗体を保持してなるものである。
これにより、ユーザが専門的な知識を保有していなくても、簡便に糖化ヘモグロビンの測定が可能となる。

さらに、本発明の測定キットの前記非イオン性界面活性剤は、前記免疫アッセイを有意に妨害しない、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含むものである。
これにより、変性処理後に希釈操作が必要なくなり、希釈による測定精度の低下防止に加え、ユーザの操作性をはるかに向上させることができる。

本発明の分析デバイスは、血液成分を含む試料中のヘモグロビン誘導体を測定するための分析デバイスであって、少なくとも、前記試料を添加する試料添加部位と、前記試料添加部位に連結され、前記添加された試料中のヘモグロビン誘導体を、非イオン性界面活性剤と酸化剤とを含む試薬組成物により変性させる変性部と、前記変性部に連結され、前記変性されたヘモグロビン誘導体を検出する検出部と、から構成され、前記非イオン性界面活性剤は、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｏｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−８）、ｎ−Ｎｏｎａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−９）、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含むものである。
これにより、ヘモグロビンをより簡便且つ迅速に変性させることができる分析デバイスを提供できる。

また、本発明の分析デバイスは、前記ヘモグロビン誘導体の変性された部位に対して特異的な抗体を担持する免疫アッセイ部を有し、前記試料中のヘモグロビン誘導体を前記試薬組成物により変性した後に、該変性されたヘモグロビン誘導体を、前記抗体を用いて免疫アッセイを行い検出するものである。
これにより、検出対象である試料を添加することで、より簡便且つ迅速に、該試料中のヘモグロビン誘導体を検出することができる。

また、本発明の分析デバイスは、前記ヘモグロビン誘導体が糖化ヘモグロビンであり、前記糖化ヘモグロビンの変性された部位に対して特異的な抗体を担持する免疫アッセイ部を有し、前記試料中の糖化ヘモグロビンを前記試薬組成物により変性した後に、該変性された糖化ヘモグロビンを、前記抗体を用いて免疫アッセイを行い検出するものである。
これにより、検出対象である試料を添加することで、より簡便且つ迅速に、該試料中の糖化ヘモグロビンを検出することができる。

さらに、本発明の分析デバイスは、前記試薬組成物に含まれる前記非イオン性界面活性剤は、前記免疫アッセイを有意に妨害しない、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含むものである。
これにより、変性処理後に希釈操作が必要なくなり、希釈による測定精度の低下防止に加え、ユーザの操作性をはるかに向上させることができる。

また、本発明の分析デバイスは、前記試料添加部位に連結され、前記試料に含まれるヘモグロビンを検出する検出部をさらに含み、前記ヘモグロビンに対する前記ヘモグロビン誘導体の存在比を算出するものである。
これにより、検出対象である試料を添加することで、より簡便且つ迅速に、ヘモグロビン誘導体の存在比を得ることができる。

さらに、前記ヘモグロビン誘導体が糖化ヘモグロビンであるものである。
これにより、検出対象である試料を添加することで、より簡便且つ迅速に、糖化ヘモグロビンの存在比を得ることができる。

本発明の分析システムは、前記分析デバイスと、該分析デバイスの検出部位において検出された、前記ヘモグロビン誘導体の量を測定する測定部とから構成されるものである。
これにより、ユーザの手技の影響を受けにくい、簡便且つ迅速なヘモグロビン誘導体の測定が可能となる。

本発明のヘモグロビン誘導体の測定方法によれば、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｏｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−８）、ｎ−Ｎｏｎａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−９）、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含む非イオン性界面活性剤と酸化剤とによって、血液成分を含む試料中のヘモグロビンの変性処理を行うようにしたので、該変性処理を迅速且つ確実に行うことができる。

また、特に、前記非イオン性界面活性剤はｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含むものとするため、ヘモグロビン誘導体を免疫アッセイにより測定する時に、免疫アッセイへの阻害効果が少ないため、変性処理溶液の希釈操作が不要になり、希釈バラツキによって、測定精度が低下する問題を排除することが可能である。また、希釈操作を必要としないので、より簡素な形態の免疫アッセイを構築することが可能となる。

また、前記ヘモグロビン誘導体と同時に、前記試料中のヘモグロビンを測定するようにすれば、前記ヘモグロビンに対する前記ヘモグロビン誘導体の存在比を算出することが可能である。

本発明の試薬組成物によれば、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｏｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−８）、ｎ−Ｎｏｎａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−９）、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含む非イオン性界面活性剤と酸化剤とを含むようにしたので、前記ヘモグロビンの変性処理を迅速且つ確実に行うことができる。

また、前記試薬組成物は、液体状、固体状、液体を乾燥した状態のいずれでもよいが、固体状態にあれば、より安定した状態で長期間保持することが可能となる。

本発明の測定キットによれば、その一部に、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｏｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−８）、ｎ−Ｎｏｎａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−９）、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含む非イオン性界面活性剤と酸化剤とを含む試薬組成物を保持し、前記試薬組成物と前記試薬とを混合することによってヘモグロビンを変性するようにしたので、より簡便に、前記ヘモグロビンの変性処理を迅速且つ確実に行うことができる。

また、前記測定キットに、ヘモグロビン誘導体の測定に必要な試薬や、採血器具、使用説明書などを詰め合わせるようにしたので、専門的な知識を保有していなくとも、より簡便なヘモグロビン誘導体の測定が可能となる。

本発明の分析デバイスによれば、その一部に、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｏｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−８）、ｎ−Ｎｏｎａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−９）、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含む非イオン性界面活性剤と酸化剤とを担持するようにしたので、前記ヘモグロビンの変性処理を迅速且つ確実に行える、ユーザにとって煩雑な作業を削減した装置を提供できる。

また、前記分析デバイスの一部に、前記ヘモグロビン誘導体の変性された部位に対して特異的な抗体を担持し、前記変性処理後に前記抗体を利用して免疫アッセイを行うようにしたので、前記ヘモグロビン誘導体を検出可能な、ユーザにとって煩雑な作業を削減した装置を提供できる。

本発明の分析システムによれば、前記ヘモグロビン誘導体の測定に必要な試薬を担持した分析デバイスと、該分析デバイス専用の測定部とから構成するようにしたので、手技の影響を受けにくい簡便かつ迅速なヘモグロビン誘導体の測定を行うことができる。

以下に、本発明のヘモグロビン変性方法の実施の形態を、詳細に説明する。
（実施の形態１）
本発明の実施の形態１では、血液成分を含む試料を非イオン性界面活性剤と酸化剤とで処理し、前記試料中のヘモグロビンを変性させる工程を含む、ヘモグロビン誘導体の測定方法について説明する。

前記ヘモグロビン（以後、「Ｈｂ」とも表記。）とは、α鎖と非α鎖（β、γ、δ鎖）のグロビンがヘムと結合し、会合して形成される四量体構造を基本とするものであって、そのヘモグロビンのうち、約９０％がＨｂＡ（α₂β₂）、約３％がＨｂＡ２（α₂δ₂）、約１％がＨｂＦ（α₂γ₂）である。そして、前記ＨｂＡには、β鎖アミノ酸末端に糖が結合していないＨｂＡ０と、糖が結合したＨｂＡ１とがあり、さらに、該ＨｂＡ１の中には、ＨｂＡ１ａ、ＨｂＡ１ｂ、ＨｂＡ１ｃ（以後、「糖化ヘモグロビン」とも表記。）があり、これらの糖が結合したＨｂＡ１をヘモグロビン誘導体と呼ぶ。

ヘモグロビン誘導体を決めるポイントとしては、アミノ酸残基やペプチド末端が修飾された領域が存在するかどうかである。例えば、前記ＨｂＡ１ａは、β鎖Ｎ末端がリン酸化糖で修飾されており、前記ＨｂＡ１ｂは、β鎖Ｎ末端がアルデヒド化されており、前記ＨｂＡ１ｃは、β鎖Ｎ末端が糖化されている。

このように、本実施の形態１のヘモグロビン誘導体は、前述したようなヘモグロビンの一部の領域の構造が異なるものをいうものとする。

なお、これら以外にも、ヘモグロビン誘導体には様々な種類があり、例えばアルコールの乱用によるアセトアルデヒド−ヘモグロビン付加物、尿毒症患者の血液中に存在する尿素−ヘモグロビン付加物、また、アスピリン−ヘモグロビンコンプレックスや、カルボキシメチル化ヘモグロビン等、その種類は多岐に亘る。

ヘモグロビン誘導体としては、特に、ヘモグロビンタンパクの反応性アミン基と、グルコースとの非酵素反応によって生成される糖化ヘモグロビンが有用な測定項目として挙げられているが、その測定項目はこれに限定されるものではない。

前述したように、ヘモグロビンの一部の領域の構造のみが異なっている、本実施の形態１のヘモグロビン誘導体を測定する際には、該ヘモグロビン誘導体のわずかに異なる領域を区別・認識して、それぞれのヘモグロビン誘導体を同定・定量する必要がある。そして、そのヘモグロビン誘導体の異なる部分、すなわちヘモグロビン誘導体の特異的な箇所をタンパク質の構造内から構造外へ出す（露出させる）ことを、本実施の形態１では“変性”といい、また、そのたんぱく質の構造内から露出された部位を“変性された部位”という。

そして本実施の形態１では、この変性処理を、非イオン性界面活性剤と酸化剤とを用いて行う。

本実施の形態１における変性の程度については、４次構造を構成するサブユニット構造が解離する程度、３次構造を構成する疎水結合、水素結合、ファンデルワールス力、イオン結合を解離する程度、２次構造を構成するα−へリックスやβシートの構造を変化させる程度、あるいは、ヘモグロビンが直鎖状の構造になる程度のいずれであってもよい。

一般的に、タンパク質は生体内で機能性物質として存在するが、それは、タンパク質がこれらの構造から形成される精密な立体構造を保っているからである。従って、構造を変化させるということは、少なからずタンパク質の機能が変わり、その性質が変わるといえる。これには、機能が低下したことも、或いは機能が向上したことも含まれる。

本実施の形態１における非イオン性界面活性剤とは、電荷をもたない疎水性基と電荷をもたない親水性基とからなる化合物で、一般的には、膜タンパク質を可溶化することを目的として使用されるものであり、その性質としては、目的とするタンパク質の可溶化能力が高く、該たんぱく質を変性・失活させず、且つ免疫アッセイ等の活性測定系で妨害作用を示さないこと等が要求される。

このような非イオン性界面活性剤の一例としては、
Ｎ，Ｎ-Ｂｉｓ（３−Ｄ−ｇｌｕｃｏｎａｍｉｄｏｐｒｏｐｙｌ）ｃｈｏｌａｍｉｄｅ（以下「ＢＩＧＣＨＡＰ」と表記）
Ｎ，Ｎ-Ｂｉｓ（３−Ｄ−ｇｌｕｃｏｎａｍｉｄｏｐｒｏｐｙｌ）ｄｅｏｘｙｃｈｏｌａｍｉｄｅ（以下「ｄｅｏｘｙ−ＢＩＧＣＨＡＰ」と表記）、
ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（以下「ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ」と表記）
ｎ−Ｄｏｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（以下「ｎ−Ｄｏｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ」と表記）
ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（以下「ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ」と表記）
ｎ−Ｏｃｔａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（以下「ＭＥＧＡ−８」と表記）
ｎ−Ｎｏｎａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（以下「ＭＥＧＡ−９」と表記）
ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（以下「ＭＥＧＡ−１０」と表記）
ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（以下「ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ」と表記）
ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（以下「ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ」と表記）
ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（以下「ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ」と表記）
ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ（以下「ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ」と表記）
β−Ｄ−Ｆｒｕｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−α−Ｄ−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅｍｏｎｏｄｅｃａｎｏａｔｅ（以下「Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ」と表記）
β−Ｄ−Ｆｒｕｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｙｌ−α−Ｄ−ｇｌｕｃｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅｍｏｎｏｄｏｄｅｃａｎｏａｔｅ（以下「Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅ」と表記）
Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃｈｏｌａｔｅ
などが挙げられる。

このような膜タンパク質を可溶化する非イオン性界面活性剤には、特に、該たんぱく質を変性・失活させないという特徴があり、いずれも、タンパク質に対する変性効果は少ない。しかし、前述したような特徴を持つ非イオン性界面活性剤に、さらに酸化剤を組み合わせ、且つ該組み合わせた試薬それぞれについて、適切な濃度を選択することにより、ヘモグロビンを積極的に変性させることができることを見出した（後述の実施例１（ｄ）参照）。したがって、本実施の形態１では、血液検体を、迅速且つ確実、さらに効果的に変性させることができる。

本実施の形態１における変性試薬が効果的にヘモグロビンを変性させうる条件は、該非イオン性界面活性剤の種類によって異なる。これは、非イオン性界面活性剤の臨界ミセル濃度（以下「ＣＭＣ」と表記）によるものであり、ヘモグロビンは、酸化剤の存在下、少なくともＣＭＣ以上、より好適には、ＣＭＣの約２倍以上の濃度で効果的に変性する（後述の実施例１（ｅ）参照）。

例えば、ＳｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのＣＭＣが０．０２％の場合、ヘモグロビンは、０．０５％の濃度で変性可能であるが、ＳｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅのＣＭＣが０．１３％の場合は、ヘモグロビンは０．２５％以上の濃度が必要である。

また、前記酸化剤の濃度については、全てのヘモグロビンを酸化するだけの濃度が必要で、例えば５００倍に希釈した血液中のヘモグロビンを変性させる場合、０．１％以上のフェリシアン化カリウムが必要である（後述の実施例１（ｆ）参照）。

このように、酸化剤で処理することで変性効果が向上するのは、まず酸化剤により、ヘモグロビンがメト化され、それにより、非イオン性界面活性剤による変性効果が受けやすくなったためと考えられる。

酸化剤としては、ヘモグロビンをメトヘモグロビンの形態に変化させうるだけの電荷を保有する物質から選択されることが可能であり、その一例としては、一般的に使用される、Ｋ₃Ｆｅ（ＣＮ）₆（フェリシアン化カリウム）の他、ＫｌＯ₃、ＫＣｌＯ₃、Ｋ₂ＣｒＯ₄、ＮａＮＯ₂、Ｋ₃Ｃｏ（ＮＯ₂）₆などが挙げられるが、ヘモグロビンの酸化作用があれば、これらに限定しない。

また、本実施の形態１において、“非イオン性界面活性剤と酸化剤とで処理”するとは、所望の変性効果を得るための条件を満たす酸化剤を含む非イオン性界面活性剤溶液を調整して、ヘモグロビン誘導体を含む検体に加える、あるいは、前記所望の変性効果を得るための条件を満たす酸化剤を含む非イオン性界面活性剤溶液に対して、血液検体を入れることをいう。なお、非イオン性界面活性剤溶液に対して血液検体を加える場合、該非イオン性界面活性剤には、変性効果だけでなく、赤血球膜を破壊し、ヘモグロビンを溶出する（「溶血」という）効果も兼ねている必要がある。

さらに、非イオン性界面活性剤で処理する方法には、酸化剤と非イオン性界面活性剤とからなる固形の試薬を、所望の変性効果を得るための条件を満たすように、前記ヘモグロビン誘導体を含む検体、もしくは血液検体に直接加える方法も含まれる。
なお、前記“固形の”とは、乾燥物であってもよく、乾燥方法としては、風乾、熱乾燥、真空乾燥、真空凍結乾燥等が挙げられる。

そして、前述したようにして、ヘモグロビン誘導体を含む検体あるいは血液検体を、非イオン性界面活性剤と酸化剤とで処理して、試料中のヘモグロビン誘導体を変性させた後、該変性されたヘモグロビン誘導体を用いて試料中のヘモグロビン誘導体の測定を行う。なお、本実施の形態１において、ヘモグロビン誘導体の測定方法とは、変性によりヘモグロビンの構造外に出した領域を認識する抗体を用いることによる免疫アッセイ、もしくはグルコースのシス・ジオールと親和性をもつホウ酸アフィニティーを用いる方法等がある。

ここで、本実施の形態１におけるヘモグロビン誘導体の測定方法の大きなメリットは、免疫反応への影響を最小限におさえつつ、非イオン性界面活性剤及び酸化剤で処理したヘモグロビン誘導体の変性部位に対する特異的な抗体を利用した免疫アッセイを行えることにある。すなわち、本実施の形態１では、ヘモグロビンの変性工程において、非イオン性界面活性剤を用いることにより、該免疫反応への影響を最小限におさえつつ、ヘモグロビン誘導体を決める特異な領域（変性部位）を、ヘモグロビンの構造外に出すことができるので、より特異的な測定を実施でき、且つ、抗原抗体反応に伴う複合体の形成において、立体的な障害が少なくなるため、抗原抗体反応の反応効率も向上させることができる。

本実施の形態１における免疫アッセイとは、抗原抗体反応を基本とした測定原理であればよく、一般的に知られている、免疫比濁法、免疫比朧法、ラテックス免疫凝集法、免疫凝集阻止法、ラテックス免疫凝集阻止法、蛍光免疫測定法、化学発光免疫測定法、電気化学免疫測定法、蛍光偏光免疫測定法、免疫クロマト法のいずれであってもよい。

そして、前述したヘモグロビン誘導体においてよく測定がなされるのは、糖化ヘモグロビンであり、その測定方法としては、糖化ヘモグロビンの変性された部位、すなわち変性により構造外部に露出される糖化ヘモグロビンの糖化部位、に対して特異的な抗体を利用した免疫アッセイが用いられる。前記糖化ヘモグロビンとは、ＨｂＡ１ｃであり、近年、三大成人病の一つとして問題になっている糖尿病患者を管理するための指標になるもので、１〜３ヶ月間の長期血糖コントロールの目安となるものである。具体的には、ＨｂＡ１ｃを、非イオン性界面活性剤及び酸化剤と作用させて変性させた後に、該ＨｂＡ１ｃ特有のβ鎖Ｎ末端のアミノ酸が糖化された糖化部位に対して特異的な抗体を用いて、免疫アッセイを行う。

そして一般的に、このようなヘモグロビン誘導体は、臨床検査の分野では、ヘモグロビン量に対する比で求められるため、ヘモグロビン誘導体の測定方法には、試料に含まれるヘモグロビン量を測定する工程と、該試料に含まれるヘモグロビン誘導体量を測定する工程と、該測定したヘモグロビン量に対するヘモグロビン誘導体量の比を算出する工程とを含む。

この試料に含まれるヘモグロビン量を測定する工程は、現在、臨床検査で用いられるヘモグロビン定量法でよく、例えば、シアンメトへモグロビン法、もしくは、ＳＬＳ−ヘモグロビン法の他、ヘモグロビンの４１５ｎｍの吸収を測定する方法がある。また、これは、ヘモグロビンに対する抗体を用いた免疫アッセイであってもよい。

また、この工程で測定されるヘモグロビン量は、全ての赤血球を完全に溶血することによって得られる、試料中に含まれる全ヘモグロビン量ではなく、一部の赤血球を溶血させた部分ヘモグロビン量であってもよい。ヘモグロビン誘導体は、前述したように、ヘモグロビン量に対する比で算出されるからである。

さらに、前記ヘモグロビン誘導体がＨｂＡ１ｃである場合に限っていえば、ＩＦＣＣ（国際臨床化学連合）レファレンス法で使用される算出法を用いてもよい。即ち、ＨｂＡ０とＨｂＡ１ｃとの和に対するＨｂＡ１ｃの比率で算出される方法である。以下、ＩＦＣＣレファレンス法について詳述すると、まず、血液試料を生理食塩水で洗浄後、血球を遠心分離で得て、３７℃で４時間インキュベートし、不安定型ＨｂＡ１ｃを除去する。次に、ヘモグロビン濃度を６ｇ／ｄＬに調整し、エンドプロテアーゼと酢酸アンモニウム緩衝液（ｐＨ４．０）にて、３７℃で１８時間処理する。この溶液をＨＰＬＣに注入し、糖化６鎖ペプチド及び６鎖ペプチドを得て、エレクトロスプレーイオン化法によりピーク面積を求めるものである。

このように、ヘモグロビン誘導体を含む検体あるいは血液検体を、非イオン性界面活性剤と酸化剤とで処理して、ヘモグロビンを変性させるようにすれば、安全性を確保しつつ、ヘモグロビンの変性を迅速かつ確実に行うことができる。

ところで、ヘモグロビンを変性するために、従来のように、酵素やイオン性界面活性剤等の試薬を用いると、その強力なタンパク質変性効果故に、抗体に対する影響も大きく、特に濃度が高いほど抗体活性を低下させる傾向があることから、安定な免疫アッセイ系を構築することはできなかった。このため、従来では、変性処理が終了後に、該ヘモグロビン誘導体溶液を、免疫アッセイを有意に妨害しない濃度にまで希釈する処理が必要であった。

しかし、本実施の形態１で変性処理に使用する非イオン性界面活性剤は、免疫測定への影響が小さいため（後述の実施例１（ｇ）参照）、ヘモグロビン誘導体は変性させるが、免疫アッセイに使用する抗体は有意に変性させないようにすることができ、この結果、一つの測定系内に、ヘモグロビン誘導体と抗体と非イオン性界面活性剤とを共存させることが可能となる。このため、本実施の形態１では、希釈操作を必要としない１ステップ測定が実現でき、操作性をはるかに向上させることが可能となる。

そして前述した１５種類の非イオン性界面活性剤のうち、特に、より免疫反応に対する影響は小さいものとして、
ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ
ＭＥＧＡ−１０
ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ
Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ
Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅ
などが挙げられる（実施例１（ｇ）参照）。

これら５種類の非イオン性界面活性剤は、特に、ヘモグロビンの変性を十分行うことが可能な濃度であっても、免疫反応に対する影響は小さく、濃度が変化しても免疫反応への影響が一定であるので、非常に安定な免疫測定系を構築することが可能である。

もちろん、変性処理に、前記５種類の非イオン性界面活性剤以外の非イオン性界面活性剤を使用しても、従来使用していたイオン性界面活性剤等と比較すると、はるかに免疫測定系への影響は少ないため、安定な免疫測定系を構築することができる（後述の実施例１（ｈ）参照）。

以上のように、本実施の形態１のヘモグロビン誘導体の測定方法によれば、血液成分を含む試料を、非イオン性界面活性剤と酸化剤とで処理し、前記試料中のヘモグロビンを変性させる工程を含むようにしたので、迅速且つ確実に変性させることができる。また、前記非イオン性界面活性剤は、免疫アッセイへの阻害効果が少ないため、変性処理後に免疫アッセイ反応によりヘモグロビン誘導体の量を測定する際、該変性処理後の溶液に対する希釈操作が不要となり、希釈による測定精度の低下を防止できるとともに、ユーザの操作性もはるかに向上させることができる。

さらに、本実施の形態１によれば、血液成分を含む試料を、非イオン性界面活性剤と酸化剤で処理する際、使用する非イオン性界面活性剤の濃度を、その臨界ミセル濃度以上、より好適には、ＣＭＣの約２倍以上の濃度にするようにしたので、ヘモグロビンの変性効果をより向上させることができる。

（実施の形態２）
以下、本実施の形態２では、少なくとも非イオン性界面活性剤と酸化剤とを含む、ヘモグロビン誘導体を測定するための試薬組成物について説明する。

この試薬組成物は、液体状であっても、固体の混合物であってもよく、前記液体状の試薬組成物を乾燥させたものであってもよい。この試薬組成物を、ヘモグロビンを含む試料溶液と混合するだけで、ヘモグロビンを変性させることが可能である。よって非イオン性界面活性剤と酸化剤とを含む試薬組成物は、簡易にヘモグロビン誘導体を測定するための最も基本的な要素になりうる。

溶液状態で使用する場合は、冷蔵するか、遮光することによって、より試薬の安定性を向上させることが可能となる。

なお、乾燥させた試薬組成物は、一般的に溶液状態のものよりも保存性が良く、長期の保存が可能である。

試薬組成物を乾燥させる場合には、風乾、熱乾燥、真空乾燥、真空凍結乾燥などの工法をとることが可能であり、特に凍結乾燥する場合は、該試薬組成物を凍らす容器の形状によって、さまざまなデザインの試薬組成物を作製することが可能である。また、真空凍結乾燥をすれば、溶解性をより向上させることができる。

さらに、前記試薬組成物にタンパク質が含まれる場合は、その安定性を高めるために、該試薬組成物に糖を加えることが有効であり、また、免疫反応を促進させるために、該試薬組成物にポリエチレングリコールなどの免疫反応促進剤を含有させることも可能である。

また、酸化剤としてフェリシアン化カリウムを使用する場合は、遮光すること、及び乾燥状態で保存することによって、より長期間安定な試薬組成物を作製することが可能となる。

また、本実施の形態２の場合、免疫測定への影響がかなり小さい非イオン性界面活性剤を用いているため、免疫アッセイに用いる抗体と非イオン性界面活性剤とを一つの系の中で共存させる、すなわち、試薬組成物の中に前記抗体を含むようにしてもよい。

前記試薬組成物に抗体を含める場合の試薬組成物の作製工法としては、風乾、熱乾燥であっても十分安定性は確保できるが、真空凍結乾燥を使用する方法が最も望ましく、該試薬組成物を安定に保つことができる。特に、抗体はタンパク質であるので、糖を付加することが試薬組成物の安定性の向上につながる。

以上のように、本実施の形態２のヘモグロビン誘導体を測定するための試薬組成物によれば、少なくとも非イオン性界面活性剤と酸化剤とを含むようにしたので、前記ヘモグロビンの変性処理を迅速且つ確実に行うことができる。

また、前記試薬組成物は、液体状、固体状、液体を乾燥した状態のいずれでもよいが、特に、固体状態にあれば、より安定した状態で長期間保持することが可能となる。

さらに、前記試薬組成物が、前記前記ヘモグロビン誘導体の変性された部位に対して特異的な抗体をさらに含むようにすれば、前記試薬組成物と前記試料とを混合させることでヘモグロビン誘導体を検出することができるため、ユーザの操作性を向上できる。

（実施の形態３）
本実施の形態３では、少なくとも非イオン性界面活性剤及び酸化剤を含む試薬組成物を保持し、該試薬組成物によりヘモグロビン誘導体を測定するための測定キットについて説明する。

測定キットとは、ヘモグロビン誘導体の測定に必要な試薬や部材を詰め合わせたものを示す。具体的には、ヘモグロビン誘導体の測定に必要な試薬と、使用説明書、ランセットもしくは注射器等の採血用具、採血前後に必要な消毒用品、試薬の添加に用いるディスペンサやスポイトなどの秤量器具などの部材を詰め合わせたものであり、これらの試薬及び部材を用いて、検査対象となる試料を採血して定量希釈し、該試料の変性処理等を行った後、臨床用の自動測定機、もしくは分光光度計等を使用して、簡便にヘモグロビン誘導体を測定することができるようにしたものである。

測定キットでは、ヘモグロビン誘導体の変性、さらにはその測定までの方法が手順化されているので、使用説明書に従えば専門的な知識を保有していなくとも簡便に使用することが可能である。また、前述のヘモグロビン誘導体の測定に必要な試薬とは、少なくとも非イオン性界面活性剤と酸化剤とを含む試薬であり、これによってヘモグロビン誘導体の変性を迅速且つ確実に行うことができる。

さらに、前記測定キットは、ヘモグロビン誘導体に特異的な抗体を担持するものであってもよい。すなわち、ヘモグロビンを溶血・変性させる非イオン性界面活性剤及び酸化剤を含む試薬組成物と、ヘモグロビン誘導体を検出するための、前記ヘモグロビン誘導体の変性された部位に特異的な抗体を保有する試薬（例えばラテックス凝集阻止反応を使用する場合はラテックス標識抗体と凝集多価抗原である凝集試薬）と、から構成される測定キットが考えられる。これらの試薬類をそれぞれ容器に封入し、ヘモグロビン誘導体の溶血及び変性操作、さらには免疫アッセイ操作を手順化することによって、より簡便にヘモグロビン誘導体を測定できるようにしたものである。なお、ここではラテックス凝集阻止反応を例として挙げたが、ヘモグロビンを変性し、該変性されたヘモグロビン誘導体量を、該ヘモグロビン誘導体の変性された部位に対して特異的な抗体を用いて免疫アッセイを行い測定する免疫測定反応であれば、上記に限定しない。

また、前記測定キットに保持させる前記試薬組成物と前記抗体とは、別々に保持してもよいし、該抗体を試薬組成物に含めて保持してもよい。

さらに、前記測定キットに、試料中のヘモグロビンを測定可能な試薬を容器に封入し、付加するようにしてもよい。このようにすれば、ヘモグロビン誘導体の存在比を算出することが可能である。存在比の算出は、特に糖化ヘモグロビンを測定する場合に有用である。

ヘモグロビンを測定する方法としては、ヘモグロビンそのものの吸収を利用して、４１５ｎｍ近傍のピーク波長を測定するか、あるいは５４０ｎｍ近傍の波長を測定するシアンメトヘモグロビン法とＳＬＳ−ヘモグロビン法の他、ラテックス凝集法などが例として挙げられる。

以上のように、本実施の形態３の測定キットによれば、試料中のヘモグロビン誘導体の測定に必要な試薬の一部あるいは全てがそれぞれ容器等に封入されて備えているようにしたので、あらかじめ定められた手順にのっとって、溶血とヘモグロビンの変性を行い、さらには変性したヘモグロビン誘導体を特異的に認識する試薬を用いて、変性したヘモグロビン量を測定することが可能であり、ユーザが専門的な知識を保有していなくとも、より簡便にヘモグロビン誘導体の測定を行うことができる。より好適には、前記測定キットに、さらに試料中のヘモグロビン濃度を測定可能な試薬も付加しておけば、ヘモグロビンに対するヘモグロビン誘導体の存在比を算出でき、特に、糖化ヘモグロビンを測定する場合に有用である。

（実施の形態４）
本実施の形態４では、少なくとも試料を添加する試料添加部と、非イオン性界面活性剤と酸化剤とによって前記試料中のヘモグロビン誘導体を変性させる変性部と、該変性されたヘモグロビン誘導体の量を検出する検出部とから構成される、ヘモグロビン誘導体を測定するための分析デバイスについて説明する。

分析デバイスについては、該分析デバイスを評価する測定装置とセットにして、分析システムの形態をとることが可能である。この形態をとることによって、より簡便かつ迅速にヘモグロビン誘導体の測定が可能となる。

本実施の形態４の分析デバイスは、非イオン性界面活性剤と酸化剤とを担持すると共に、ヘモグロビン誘導体の変性された部位に特異的な試薬と凝集試薬とを担持した形態をとるものであり、さらには、それらを別々な箇所に担持した形態をとることも可能である。

測定工程としては、まず、血液検体と、非イオン性界面活性剤及び酸化剤とを反応させる変性工程の後、該変性されたヘモグロビン誘導体と、該ヘモグロビン誘導体の変性された部位に対して特異的な試薬、例えばヘモグロビン誘導体に対する特異的な抗体をラテックスに標識したラテックス標識抗体及び凝集試薬、とを反応させる工程を含む。

非イオン性界面活性剤及び酸化剤で処理した試料溶液に、前記ラテックス標識抗体と凝集試薬とを同時に反応させてもよいが、ラテックス標識抗体と反応させた後に凝集試薬と反応させるものであってもよい。

そして、このように試薬を反応させた後に、反応液の吸光度の変化を測定することによって、ヘモグロビン誘導体の量を算出する。

また、前記ヘモグロビン誘導体濃度を算出することに加え、ヘモグロビン濃度を算出することによって、ヘモグロビンに対するヘモグロビン誘導体の存在比を算出することが可能である。このヘモグロビン濃度の測定は、ヘモグロビンそのものの吸収を利用して、４１５ｎｍ近傍のピーク波長を測定するか、あるいは５４０ｎｍ近傍の波長を測定するシアンメトヘモグロビン法やＳＬＳ−ヘモグロビン法の他、ラテックス凝集法などが例に挙げられる。

分析デバイスの形状としては、前述した一連の反応、及び測定が、スムーズに進められることが重要である。

分析デバイスの一例としては、例えば、遠心力と毛細管力を利用したものが考えられ、分析デバイス内に形成した複数のチャンバー（空間）と、該チャンバー間に形成した流路を通して液体試料を自由に移送させることによって、測定の順序や試薬容量、反応時間等を制御することが可能である。そして、このような構成の分析デバイスを評価する装置の一例としては、前記分析デバイスを回転させ得る回転機構と、吸光度測定が可能な光学測定機能とを搭載したものが挙げられる。

以下、図１、図２を用いて、前述した分析デバイス及び該分析デバイスを含む分析システムの一構成例について説明する。
図１は、分析システムの構成を示す図である。分析システム１００は、分析デバイス１０１と、該分析デバイス１０１に対して光源１０２から光を照射し、透過光をディテクタ１０３で検出する測定部１１０と、該分析デバイス１０１をその一部を刳り抜いた箇所に固定する回転基板１０４と、該回転基板１０４を回転させるモータ１０５とを備える構成となっている。なお、図１中、モータ１０５の駆動機構や、光源１０２、ディテクタ１０３につながる回路構成については割愛する。
図２は、前記分析デバイスの詳細な構成を示す図であり、図（ａ）はその分解斜視図であり、図（ｂ）は、試薬を添加した状態を示す図である。

分析デバイス１０１は、下基板２０１と、上基板２１３と、表裏両面に接着効果を保有する接着層２０２とからなり、これらを貼り合わせることにより形成される。前記下基板２０１は、透明な樹脂基板が用いられ、射出成形等によって、精度よくさまざまな形状の空間を形成している。詳述すると、前記下基板２０１には、ヘモグロビン誘導体を変性させる変性部位である希釈攪拌部２０３と、希釈液保持部２０４と、添加されたヘモグロビンの量を検出する検出部Ａ２０５と、該変性されたヘモグロビン誘導体の量を検出する検出部位である検出部Ｂ２０６とを形成するための凹部が、その上面に射出成形により成形されている。さらに、前記下基板２０１の樹脂の素材としては、光を透過する材質であればよく、一例として、ポリカーボネートやポリスチレンなどのプラスチック樹脂が挙げられる。

また、接着層２０２には、前記希釈攪拌部２０３、希釈液保持部２０４、検出部Ａ２０５、検出部Ｂ２０６のパターン形状に加えて、それぞれを接続する流路２０７のパターン形状が切り抜かれている。さらに、前記検出部Ａ２０５、及び検出部Ｂ２０６の手前の流路２０７は、その一部を広げるように切り抜かれており、これにより、前記検出部Ａ２０５、及び検出部Ｂ２０６へ移送する液量を定量する定量部Ａ２０８、及び定量部Ｂ２０９を形成するものとする。接着層２０２の接着効果を得る材料としては、接着剤の他、加熱によって接着可能なホットメルトシートなどが使用でき、前記上基板２１３は、透明な樹脂基板から構成されている。

前記分析デバイス１０１は、前記下基板２０１と前記接着層２０２とを貼り合せた後、前記上基板２１３を貼り合わせる前に、図２（ｂ）に示すように、前記下基板２０１の希釈攪拌部２０３に、非イオン性界面活性剤と酸化剤とからなる変性試薬２１０を、また前記下基板２０１と接着層２０２で形成した定量チャンバーＢ２０９に、ヘモグロビン誘導体の変性された部位に対して特異的に反応することが可能なラテックス試薬２１１を、さらに前記検出部Ｂ２０６にはヘモグロビン誘導体の特異的なエピトープ構造を複数結合させた合成多価抗原よりなる凝集試薬２１２を、それぞれ担持した後、真空凍結乾燥により乾燥させ、さらにその後、前記上基板２１３を、前記接着層２０２の上面に貼り合わすことによって、形成される。また、前記上基板２１３と前記接着層２０２と前記下基板２０１とを貼り合わせることにより形成される、該接着層２０２に切り抜かれた流路２０７の２つの開口部は、それぞれ、検体注入口２１５と希釈液注入口２１６となる。

次に、前記分析システム１００の動作について説明する。
試料の分析においては、例えばディスペンサ等を使用して、分析デバイス１０１の検体注入口２１５より血液を１μＬ注入すると共に、希釈液注入口２１６より、希釈液を５００μＬ注入する。これにより、血液は検体注入口２１５内側の流路内に、また希釈液は希釈液保持部２０４に保持される。

次に、前記回転基板１０４の刳り抜かれた箇所に、血液と希釈液とが注入された分析デバイス１０１をセットし、モータ１０５により所定の回転数で一定時間回転する。この回転により、希釈液と血液は前記希釈攪拌部２０３へ移送され混合されて希釈試料液となり、非イオン性界面活性剤と酸化剤の作用により、溶血とヘモグロビン誘導体の変性とを引き起こす。

次に、回転基板１０４の回転を停止することによって、該試料液を毛細管現象により流路２０７を通じて、定量部Ａ２０８と定量部Ｂ２０９まで移送させる。

前記定量部Ｂ２０９に移送された試料液は、該定量部Ｂ２０９において、予め保持されていたラテックス試薬２１１と混合し、ラテックス試薬２１１と該試料液中のヘモグロビン誘導体とが結合する。

この後、再度前記回転基板１０４をモータ１０５により所定の回転数で一定時間回転すると、定量部Ａ２０８に移送された試料液は検出部Ａ２０５へ、一方、前記定量部Ｂ２０９でラテックス試薬２１１と混合された試料液は検出部Ｂ２０６へ移送される。

前記検出部Ｂ２０６に担持した凝集試薬２１２は、ヘモグロビン誘導体と結合していないラテックス試薬と結合し、ヘモグロビン誘導体の濃度に応じたラテックス凝集阻止反応が発生する。一定時間後に、定量部Ｂ２０６の透過光測定を実施することによって、ラテックス凝集阻止反応を検出する。

また同時に、検出部Ａ２０５を測定することによって、ヘモグロビンの吸収を測定し、ヘモグロビン濃度を算出できる。

前記検出部Ｂ２０６におけるラテックス凝集阻止反応の測定は、５５０ｎｍ付近の波長で測定可能であり、前記検出部Ａ２０５におけるヘモグロビンの測定は、４１５ｎｍ付近の極大吸収を測定する方法であっても、５４０ｎｍの吸収を測定する方法であっても良い。

いずれにしても、あらかじめ決まった濃度のヘモグロビンと、ヘモグロビン誘導体の測定結果を基に、検量線を作成しておけば、その検量線を利用して、ヘモグロビンとヘモグロビン誘導体の濃度をそれぞれ算出できるし、そのヘモグロビンの濃度とヘモグロビン誘導体の濃度を関連づけて、ヘモグロビン誘導体の存在比を算出することが可能である。

ここでは一例として、分析デバイス１０１がチップ状で、遠心力と毛細管力を利用した液体移送により、測定系の順序や試薬量、反応時間等を制御する分析システムを一例に挙げたが、測定系の順序や試薬量、反応時間が制御できる形状であれば、この構成及び方法に限定されるものではなく、液体移送については、例えば、ポンプを使用して圧力で液体移送する方法なども十分可能である。また、前記分析デバイスは、例えば、クロマト形態でもよいし、より単純には、直方体のプラスチック製のセルの形状であっても、試薬の担持方法を工夫することによって十分使用できる。

以下、図３及び図４を用いて、より単純な構成の分析デバイス及び該分析デバイスを用いた分析システムについて説明する。
図３は、本実施の形態４における分析システムの別の構成を示す図である。分析システム３００は、該分析デバイス３０１に対して、光源３０８から光を照射し、透過光を受光部３０９で検出する測定部３１０とを備える。なお、図３中、光源３０８、受光部３０９とをつなげる回路構成、あるいは該分析デイバイス３０１を前記分析システム中にセットするための構成については割愛する。
図４は、前記分析デバイス３０１の詳細な構成を示す図であり、図（ａ）はその分解斜視図、図（ｂ）〜（ｄ）は前記分析デバイス３０１における、試薬の変性処理手順を示す図である。

分析デバイス３０１は、血液検体が注入される注入口３０６を備えた下部ケース３０２ｂと、該下部ケース３０２ｂの開放された底面を密閉するための溶液試薬用シール３０５と、上部ケース３０２ａと、前記注入口３０６を密閉するためのケース用シール３０７とからなり、前記上部ケース３０２ａと下部ケース３０２ｂの互いの開放された底面を接着剤で貼り合わせることにより形成される。

前記下部ケース３０２ｂは、底面が開放されたプラスチック製の直方体ケースであり、図４（ｂ）に示されるように、非イオン性界面活性剤と酸化剤からなる試薬に、前記ヘモグロビン誘導体の変性された部位に対して特異的な抗体が添加された試薬３０４が、試薬用シール３０５にて密封されて保持されている。

前記上部ケース３０２ａは、前記下部ケース３０２ｂとほぼ同じ形状の、底面が開放されたプラスチック製の直方体ケースであり、その上端には、図４（ｂ）に示されるように、ヘモグロビン誘導体に特異的に反応することが可能なラテックス試薬３０３が真空凍結乾燥されて担持されている。

次に、前記分析システム３００の動作について説明する。
試料の分析においては、例えばディスペンサ等を使用して、下部ケース３０２ｂに、非イオン性界面活性剤、酸化剤及び凝集試薬を含む試薬３０４を注入して、前記溶液試薬用シール３０５で該下部ケース３０２ｂを密閉した後、図４（ｂ）に示すように、該下部ケース３０２ｂと、前記ラテックス試薬が担持された上部ケース３０２ａとを接着剤で貼り合わせる。前記溶液試薬用シール３０５を剥がした後に、例えばディスペンサ等を使用して、前記注入口３０６より血液検体を０．５μＬ注入し、図４（ｃ）に示すように、ケース用シール３０７で前記注入口３０６を密閉する。そして前記上部ケース３０２ａの上端に担持されたラテックス試薬３０３に、前記試薬３０４がかからないよう前記血液検体と試薬３０４とを穏やかに混合して所定時間放置する。なお、ヘモグロビン濃度も算出する場合は、この時点で、前記分析デバイス３０１を図３に示すように分析システム３００中にセットし、測定部３１０によって５４０ｎｍの吸光度を測定するようにする。

次に、図４（ｄ）に示すように、前記分析デバイス３０１の下部ケース３０２ｂが上方にくるようにし、前記ラテックス試薬３０３を血液検体が添加された試薬３０４中に混合させ、所定時間放置する。

所定時間経過後、前記分析デバイス３０１を、図３に示すように、分析システム３００中にセットし、測定部３１０によって、５５０ｎｍの吸光度を測定することによって、ヘモグロビン誘導体の濃度を算出する。

以上のように、本実施の形態４によれば、ヘモグロビン誘導体の測定に必要な試薬を担持した分析デバイスを設計すると共に、該分析デバイス専用の測定部と組みあわせた分析システムを構築するようにしたので、手技の影響をうけにくい、簡便且つ迅速なヘモグロビン誘導体の測定を行うことができる。

（実施例１）
以下、ヘモグロビン誘導体が、糖化ヘモグロビンの代表的検査項目であるＨｂＡ１ｃであり、非イオン性界面活性剤と共に添加する酸化剤が、フェリシアン化カリウムである場合を一例に挙げて、様々な非イオン性界面活性剤の変性効果について検証する。

（ａ）糖化ヘモグロビン標準液の作製（コントロール液の作製）
糖化ヘモグロビン値を測定する試薬類一式は、ロシュ・ダイアグノスティックス株式会社より市販されているコバス試薬ＨｂＡ１ｃを使用した。

まずラテックス凝集試薬に対する糖化ヘモグロビンの応答特性を確認する為に、キット同封の２４．６μＭの糖化ヘモグロビン標準液に対して、×１倍、×２倍、×４倍、×８倍、×１６倍、×３２倍、×６４倍、×１２８倍の希釈系列を作製した。

（ｂ）ラテックス凝集阻止反応による糖化ヘモグロビン濃度と吸光度変化量との関係
前記（ａ）において作製した各濃度の糖化ヘモグロビン標準液２μＬに対して、１００μＬの１００ｋＵ／Ｌのブタ由来ペプシン溶液を添加（５１倍希釈）した後、３分間処理した。次に、この反応液１０２μＬのうち、１４μＬを、５６０μＬの糖化ヘモグロビンの糖化部位に特異的に結合可能なラテックス試薬溶液を入れた光路長１ｃｍのプラスチックセルに加え、４分間反応させた。さらに、この反応液に０．５μｇ／ｍＬの合成多価糖化ヘモグロビン抗原１１２μＬを加え、３分後に５５０ｎｍにおける吸光度の変化量を測定した。

図５は、横軸に糖化ヘモグロビン濃度、縦軸を吸光度の変化量としてプロットとした図である。なお、糖化ヘモグロビン濃度をモルからｍｇ／ｄＬにするには、ヘモグロビン分子量を６４５００として計算を行った。

（ｃ）コントロール測定法においてヘモグロビン変性に要する処理時間の確認
ブタ由来ペプシンで３分間処理する方法によって、血液中の糖化ヘモグロビン全てを変性させ、測定できているかを確認するために、血液検体に対して最長２５分までの変性処理を行い、ラテックス凝集阻止反応における吸光度値を測定した。この操作は、前記（ｂ）に記載した同じ方法で行った。

図６は、横軸を変性の処理時間、縦軸をヘモグロビン変性率としてプロットした図である。なお、各処理時間におけるヘモグロビン変性率は、血液検体をブタ由来ペプシンで２５分間処理したときに算出された糖化ヘモグロビン濃度を１００％として算出した。

図６によると、処理時間が３分以上では、算出された糖化ヘモグロビン濃度は、ほとんど変化が確認されなかったことから、３分でヘモグロビン全てが分解処理を受けていることが判明した。よって、ブタ由来ペプシンで血液を３分間処理することによって、全ての糖化ヘモグロビンが検出可能であるものとし、ヘモグロビンの変性試験のコントロール処理法とした。

（ｄ）複数種類の非イオン性界面活性剤における、血液中のヘモグロビンの変性効果の確認
以下に示す、１０種類の非イオン性界面活性剤について、それぞれのヘモグロビン変性効果を確認した。
ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ
ｎ−Ｄｏｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ
ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ
ＭＥＧＡ−８
ＭＥＧＡ−９
ＭＥＧＡ−１０
ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ
ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ
Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ
Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅ

変性方法は、０．１〜９％までの濃度の前述した１０種類の非イオン性界面活性剤と、０．２５％フェリシアン化カリウム（酸化剤）とを含む水溶液１００μＬを作製し、２μＬの血液検体を添加（５１倍に希釈）した後、２５℃にて３分間放置した。次に、反応液１０２μＬのうち１４μＬを、糖化ヘモグロビン抗体で標識したラテックス試薬溶液５６０μＬと４分間反応させた。その後、１１２μＬの凝集試薬と反応させ、３分後に５５０ｎｍにおける吸光度の変化量を測定した。

変性の確認は、まずブタ由来ペプシンで処理した同じ血液検体のラテックス凝集阻止反応時における吸光度値から、血液検体中の糖化ヘモグロビン濃度を算出し（コントロール値）、次に前述した１０種類の各非イオン性界面活性剤で同じ血液検体を処理した場合におけるラテックス凝集阻止反応の吸光度値から、血液中の糖化ヘモグロビン濃度を求めた。さらに、前記ペプシン処理したコントロールに対して、前記各非イオン性界面活性剤で処理した血液検体は、何％の糖化ヘモグロビンが検出されているかを求め、これを、ヘモグロビンの変性割合とした。

図７は、横軸に非イオン性界面活性剤濃度を、縦軸に変性割合をプロットしたものを示す図である。
図７によると、非イオン性界面活性剤の種類によって変性効果が高い非イオン性界面活性剤濃度は異なるが、いずれもコントロールであるペプシン処理と同等のヘモグロビン変性効果を確認することができた。

（ｅ）非イオン性界面活性剤が血液中のヘモグロビンを効率的に変性させうる、非イオン性界面活性剤濃度の確認
以下に示す、５種類の非イオン性界面活性剤について、それぞれのヘモグロビン変性効果を確認した。
Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ
Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅ
ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ
ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ

変性方法は、０．０５％から０．５％までの濃度の前述した５種類の非イオン性界面活性剤と、０．２５％フェリシアン化カリウム（酸化剤）とを含む水溶液１ｍＬを作製し、２μＬの血液検体を添加（５０１倍に希釈）した後、２５℃にて３分間放置した。次に、反応液１００２μＬのうち１４０μＬを、糖化ヘモグロビン抗体で標識したラテックス溶液５６０μＬと４分間反応させた。その後、１１２μＬの凝集試薬と反応させ、３分後に５５０ｎｍにおける吸光度の変化量を測定した。変性の確認は、前記ｄ）と同様、まずブタ由来ペプシンで処理した同じ血液検体のラテックス凝集阻止反応時における吸光度値から、血液検体中の糖化ヘモグロビン濃度を算出し（コントロール値）、次に前述した１０種類の各非イオン性界面活性剤で同じ血液検体を処理した場合におけるラテックス凝集阻止反応の吸光度値から、血液中の糖化ヘモグロビン濃度を求め、前記ペプシンで変性したものをコントロールとして、各非イオン性界面活性剤の変性率を求めた。

図８は、横軸に非イオン性界面活性剤濃度を、縦軸に糖化ヘモグロビンの変性割合をプロットした図であり、図９は、横軸に各非イオン性界面活性剤のＣＭＣ（臨界ミセル濃度）と該非イオン性界面活性剤濃度との比を、縦軸に糖化ヘモグロビンの変性割合をプロットした図である。

図８によれば、図７に示したものと同様、ヘモグロビン変性効果が高い非イオン性界面活性剤濃度は種類によって異なるが、図９に示したように、各非イオン性界面活性剤のＣＭＣに対する非イオン性界面活性剤濃度で比較すると、いずれもＣＭＣに対して、２倍以上の濃度において、変性効果が高まっていることを確認することが出来た。

（ｆ）ヘモグロビンの変性に必要な、酸化剤（フェリシアン化カリウム）の濃度の確認
非イオン性界面活性剤である、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅについて、フェリシアン化カリウムによる変性効果を確認した。

変性方法は、０．５％のＳｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅについて、０、０．０１、０．０５、０．１、０．２５、０．５％のフェリシアン化カリウムを含む水溶液１ｍＬを作製し、２μＬの血液検体を添加（５０１倍希釈）した後、２５℃にて３分間放置した。

次に、反応液１００２μＬのうち１４０μＬを、糖化ヘモグロビン抗体で標識したラテックス試薬溶液５６０μＬと４分間反応させた。その後、１１２μＬの凝集試薬と反応させ、３分後に５５０ｎｍにおける吸光度の変化量を測定した。なお、この試験においては、血液検体のヘマトクリット値（Ｈｃｔ）を２０、４５、７０％に調整したものを使用した。

変性の確認は、前記ｄ）と同様、まずブタ由来ペプシンで処理した血液検体のラテックス凝集阻止反応時における吸光度値（コントロール値）から、血液検体中の糖化ヘモグロビン濃度を算出し、次に非イオン性界面活性剤で同じ血液検体を処理した場合におけるラテックス凝集阻止反応の吸光度値から、血液中の糖化ヘモグロビン濃度を求めた。そして、前記ペプシン処理したコントロールに対して、前記非イオン性界面活性剤で処理した血液検体は、何％の糖化ヘモグロビンが検出されているかを求め、これを、ヘモグロビンの変性割合とした。

図１０（ａ）は、横軸にフェリシアン化カリウム濃度を、縦軸にヘモグロビンの変性割合をプロットした図であり、図１０（ｂ）は、横軸にフェリシアン化カリウム量とヘモグロビン量との比を、縦軸にヘモグロビンの変性割合をプロットした図である。

図１０（ａ）によれば、非イオン性界面活性剤単独では、ヘモグロビン変性効果は弱いが、非イオン性界面活性剤と同時に０．１％以上のフェリシアン化カリウムで同時に処理することにより、ヘマトクリット値が７０％の血液検体であっても十分変性することがわかった。

また図１０（ｂ）によれば、ヘモグロビン量に対してフェリシアン化カリウム量が２倍以上あれば、血液中のヘモグロビン全てを変性することが明らかであり、フェリシアン化カリウムの存在がヘモグロビンの変性に深く関与していることがわかった。

（ｇ）非イオン性界面活性剤がラテックス凝集反応（免疫アッセイ反応）に与える影響の確認
以下に示す９種類の各非イオン性界面活性剤が、ラテックス凝集反応に与える影響を確認した。
ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ
ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ
ＭＥＧＡ−８
ＭＥＧＡ−９
ＭＥＧＡ１０
ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ
ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ
Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ
Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅ

変性方法は、前述のラテックス試薬溶液に、各非イオン性界面活性剤溶液を加えた後、凝集試薬を加え、３分後に５５０ｎｍの吸光度の変化量を測定した。

免疫アッセイ反応への影響の確認は、非イオン性界面活性剤の最終濃度が０．２５〜１．４％前後になるように加えた時のラテックス凝集反応の吸光度変化量と、非イオン性界面活性剤を加えなかった時のラテックス凝集反応の吸光度変化量とを比較した。

また、同時に、前述と同様の方法により、特許文献３に記載されるイオン性界面活性剤であるラウリル硫酸ナトリウム（ＳＬＳ）についても、０．１％と０．２５％濃度において、ラテックス凝集反応への影響を確認した。

図１１は、横軸に界面活性剤の濃度を、縦軸にコントロールの吸光度変化量を１００％とした時の、各非イオン性界面活性剤の吸光度変化量比をプロットした図である。

図１１によれば、イオン性界面活性剤であるラウリル硫酸ナトリウム（ＳＬＳ）に関しては、濃度の増大によって極端なラテックス凝集反応の低下傾向を示したが、非イオン性界面活性剤は、ラテックス凝集反応への影響は緩やかであることがわかった。

また、非イオン性界面活性剤のうち、特に、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄ、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ＭＥＧＡ１０、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅなどは、十分なヘモグロビン変性効果を保有する濃度においても、ラテックス凝集反応への影響が少ないことが確認できた。これは、ヘモグロビン変性溶液を、そのままラテックス凝集反応、もしくは、ラテックス凝集阻止反応における反応用の試薬組成としても、十分使用可能であることを示唆するものである。

（ｈ）非イオン性界面活性剤存在下でのラテックス凝集阻止反応（免疫アッセイ反応）効果の確認
糖化ヘモグロビン濃度が異なる３種類の血液検体を準備した。
そして、まず、血液２μＬに対して１００μＬの１００ｋＵ／Ｌのブタ由来ペプシン溶液を添加（５１倍希釈）した後、３分間処理し、この反応液１０２μＬのうち、１４μＬを、５６０μＬの糖化ヘモグロビンの糖化部位に特異的に結合可能なラテックス標識抗体溶液を入れた光路長１ｃｍのプラスチックセルに加え、４分間反応させた。さらにこの反応液に０．５μｇ／ｍＬの合成多価糖化ヘモグロビン抗原１１２μＬを加え、３分後に５５０ｎｍにおける吸光度の変化量を測定した。同じ実験を各濃度の血液検体に対しても行った。

次に、血液２μＬに対して１００μＬの０．５％Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ及び０．２５％フェリシアン化カリウム溶液を添加し、３分間処理し、この反応液１０２μＬのうち、１４μＬを、５６０μＬの糖化ヘモグロビンの糖化部位に特異的に結合可能なラテックス試薬、及び０．５％Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、及び０．２５％フェリシアン化カリウム溶液を入れた光路長１ｃｍのプラスチックセルに加え、４分間反応させた。さらに、この反応液に０．５μｇ／ｍＬの合成多価糖化ヘモグロビン抗原１１２μＬを加え、３分後に５５０ｎｍにおける吸光度の変化量を測定した。ペプシンの場合と同様に、同じ実験を各濃度の血液検体に対しても行った。

図１２は、横軸に糖化ヘモグロビン濃度を、縦軸に吸光度の変化量をプロットした図である。
図１２によれば、糖化ヘモグロビン濃度に応じた吸光度が得られていることから、０．５％Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、及び０．２５％フェリシアン化カリウム溶液でヘモグロビン誘導体の変性反応を行い、且つその変性試薬組成が含まれる状態でラテックス凝集阻止反応を行うことが可能であることがわかった。

（実施例２）
以下、ヘモグロビン誘導体の存在比を測定する方法について検証した。
（ａ）ヘモグロビン濃度のコントロールの測定
ヘモグロビンの測定は、和光純薬工業株式会社より販売されている「ヘモグロビンB−テストワコー」を使用した。これはＳＬＳ−ヘモグロビン法によりヘモグロビンを検出する方法である。

まず、ヘモグロビンの標準曲線の作製を以下の手順にて行った。
３．５mＭラウリル硫酸ナトリウム溶液５ｍＬに対して、５ｇ／ｄＬ、１０ｇ／ｄＬ、１５．０ｇ／ｄＬのヘモグロビン標準液を、それぞれ２０μＬずつ加えた反応液と、１５．０ｇ／ｄＬのヘモグロビン標準液４０μＬとを加えた反応液を作製し、光路長１ｃｍのセル内で５４０ｎｍの吸光度を測定した。図１３は、１５ｇ／ｄＬのヘモグロビン標準液を４０μＬ加えた反応液のヘモグロビン濃度を３０ｇ／ｄＬとして、横軸にヘモグロビン濃度を、縦軸に吸光度をプロットした図であり、これをヘモグロビン濃度測定のコントロールとした。

（ｂ）糖化ヘモグロビンの存在比の算出
次に、測定対象とする血液検体Ａ、Ｂそれぞれ２０μＬを、３．５mＭラウリル硫酸ナトリウム溶液５ｍＬに対して加えた。この反応液の５４０ｎｍにおける吸光度を測定し、図１３の既知のヘモグロビン濃度に対する吸光度データから、前記血液検体Ａ、Ｂのヘモグロビン濃度を求めた。次に、それぞれ０．５％濃度のＳｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ／０．２５％フェリシアン化カリウム溶液１００μＬに、前記２μＬの血液検体Ａ、Ｂを加え、３分間放置した。次に、反応液１０２μＬのうち、１４μＬを糖化ヘモグロビン抗体で標識したラテックス溶液５６０μＬと４分間反応させた。その後、１１２μＬの凝集試薬と反応させ、３分後に５５０ｎｍにおける吸光度の変化量を測定した。

図１４は、血液検体Ａ、Ｂのヘモグロビン濃度、糖化ヘモグロビン濃度、及び、全ヘモグロビン中の糖化ヘモグロビンの占める割合を示す図である。

また、図１５は、前述した血液検体Ａ、Ｂを、糖化ヘモグロビン測定の標準法とされる東ソー社の自動糖化ヘモグロビン分析計（ＨＬＣ−７２３ＧＨｂＶ）にて、糖化ヘモグロビンの占める割合を測定した結果である。

図１４、１５を比較すれば、非常に相関性の高い結果を示していることがわかる。これに、０．５％Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ／０．２５％フェリシアン化カリウム溶液で血液検体を処理することによって、十分なヘモグロビンの変性が行われ、糖化ヘモグロビン濃度を算出することが可能であることが示唆された。

なお、ここでは、非イオン性界面活性剤が、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅの場合のみについて実験結果を示したが、変性効果を有する他の非イオン性界面活性剤においても同様の結果を示す。

（実施例３）
以下、図３に示す分析システムを用いた、ヘモグロビン誘導体の測定について説明する。
（ａ）分析デバイスの作製
まず、図４（ａ）に示すような底面が開放された、縦０．５ｃｍ×横０．５ｃｍ×高さ１ｃｍのプラスチック製の上部ケース３０２ａの上端に、図４（ｂ）に示すように、糖化ヘモグロビンに特異的に結合可能なラテックス試薬と５％スクロースとを含む溶液からなるラテックス試薬３０３を真空凍結乾燥により担持させる。

次に、図４（ａ）に示すような前記上部ケース３０２ａと同じ形状のプラスチック製の下部ケース３０２ｂに、図４（ｂ）に示すように、試薬３０４として、０．５％Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ溶液及び０．２５％フェリシアン化カリウムからなる溶液０．２ｍＬと、合成多価糖化ヘモグロビン抗原とを注入し、溶液試薬用シール３０５にて密封した後、前記上部ケース３０１と前記下部ケース３０２とを、互いの開放された底面を合わせるように接着剤で張り合わせることで、分析デバイス３０１を形成した。

（ｂ）分析
まず、溶液試薬用シール３０５を剥がし、分析デバイス３０１の注入口３０６より０．５μＬの血液検体を注入し、図４（ｃ）に示すように、該注入口３０６にケース用シール３０７を貼ることによって、分析デバイス３０１を密閉する。

次に、前記上部ケース３０２ａに担持されたラテックス試薬３０３に、試薬３０４がかからないよう穏やかに混合し、この状態で３分間放置後、図３に示すように、分析デバイス３０１を分析システム３００内にセットし、前記測定部３１０によって、５４０ｎｍの吸光度を測定する。

次に図４（ｄ）に示すように、分析デバイス３０１を反転させて、前記上部ケース３０２ａのラテックス試薬３０３と試薬３０４とを混和させて溶かした後、３分間放置後、図３に示すように、前記分析デバイス３０１を分析システム３００の中にセットし、前記ラテックス試薬３０３を溶かしてから３分後に、測定部３１０によって５５０ｎｍの吸光度を測定する。

測定部３１０については詳細な説明を省くが、光源３０８から分析デバイス３０１に光を照射し、透過光を受光部３０９で検出する。なお、測定部３１０の一例としては、分光光度計の機能を用いれば十分使用可能であるので、詳細な説明は割愛する。なお、ここでは、５４０ｎｍによって、シアンメトヘモグロビンを測定し、５５０ｎｍによって、ラテックス凝集を測定している。この一連の測定動作を、前記血液検体Ａ及びＢについて行う。

この後、前記分析システム３００を用いて、既知の濃度のヘモグロビン溶液、及び糖化ヘモグロビン溶液を利用してあらかじめ作成しておいたシアンメトヘモグロビンの検量線、及び糖化ヘモグロビンのラテックス凝集阻止反応の検量線に、前述のようにして得た吸光度値を代入することによって、前記血液検体Ａ，Ｂそれぞれの、ヘモグロビン濃度及び糖化ヘモグロビン濃度を求めた。

図１６は、血液検体Ａ，Ｂそれぞれの、糖化ヘモグロビン濃度及びヘモグロビン濃度、さらに糖化ヘモグロビンの存在比を示す図である。

図１６によれば、本分析システム３００にて、糖化ヘモグロビンの占める割合を測定した結果は、あらかじめ東ソー社の自動糖化ヘモグロビン分析計（ＨＬＣ−７２３ＧＨｂＶ）にて、糖化ヘモグロビンの占める割合を測定した結果（図１５参照）と非常に近く、本分析システム３００によって、正確な糖化ヘモグロビン濃度の測定が可能であることが確認された。

本発明によれば、迅速かつ確実に試料液中のヘモグロビンを変性させることができるので、正確なヘモグロビン誘導体の測定が可能となる。

図１は、本発明の実施の形態４における分析システムの構成を示す図である。図２は、本発明の実施の形態４における分析デバイスの詳細な構成を示す図であり、図（ａ）はその分解斜視図であり、図（ｂ）は、その分析デバイスに試薬を添加した状態を示す斜視図である。図３は、本発明の実施の形態４における分析システムの別の構成を示す図である。図４は、本発明の実施の形態４における分析デイバスの詳細な構成を示す図であり、図（ａ）は、その分解斜視図であり、図（ｂ）〜（ｄ）は、分析デバイスにおける変性処理手順を示す図である。図５は、本発明の実施例１における、ブタ由来ペプシンで標準液を処理することによって得られるコントロール曲線を示す図である。図６は、本発明の実施例１における、ブタ由来ペプシンで血液検体を処理した時間と、ヘモグロビン変性率との関係を示す図である。図７は、本発明の実施例１における、各非イオン性界面活性剤と、ヘモグロビンの変性率との関係を示す図である。図８は、本発明の実施例１における、各非イオン性界面活性剤と、ヘモグロビンの変性率との関係を示す図である。図９は、本発明の実施例１における、各非イオン性界面活性剤のＣＭＣに対する濃度比と、ヘモグロビンの変性率との関係を示す図である。図１０（ａ）は、本発明の実施例１における、各フェリシアン化カリウム濃度と、ヘモグロビンの変性率との関係を示す図であり、図１０（ｂ）は、本発明の実施例１における、ヘモグロビン量に対するフェリシアン化カリウム量の比と、ヘモグロビンの変性率との関係を示す図である。図１１は、本発明の実施例１における、各非イオン性界面活性剤と、イオン性界面活性剤とが、ラテックス凝集反応に及ぼす影響を説明する図である。図１２は、本発明の実施例１における、糖化ヘモグロビンを変性しラテックス凝集阻止反応を行った場合の測定結果と、従来方法により得た測定結果とを比較した図である。図１３は、本発明の実施例２における、ヘモグロビンＢテストワコーによるヘモグロビン測定結果を説明する図である。図１４は、本発明の実施例２における、血液検体Ａ、Ｂのヘモグロビン濃度と、糖化ヘモグロビン濃度と、糖化ヘモグロビンの存在比とを示す図である。図１５は、本発明の実施例２における、東ソー社の自動糖化ヘモグロビン分析計による血液検体Ａ、Ｂの測定結果を示す図である。図１６は、本発明の実施例３における分析システムで、血液検体Ａ、Ｂを測定した結果を示す図である。

符号の説明

１００，３００分析システム
１０１，３０１分析デバイス
１０２光源
１０３ディテクタ
１０４回転基板
１０５モータ
１１０，３１０測定部
２０１下基板
２０２接着層
２０３希釈攪拌部
２０４希釈液保持部
２０５検出部Ａ
２０６検出部Ｂ
２０７流路
２０８定量部Ａ
２０９定量部Ｂ
２１０変性試薬
２１１ラテックス試薬
２１２凝集試薬
２１３上基板
２１５検体注入口
２１６希釈液注入口
３０２ａ上部ケース
３０２ｂ下部ケース
３０３ラテックス試薬
３０４試薬
３０５溶液試薬用シール
３０６注入口
３０７ケース用シール
３０８光源
３０９受光部

Claims

血液成分を含む試料を、非イオン性界面活性剤と酸化剤とで処理して前記試料中のヘモグロビンを変性させる工程を含み、前記非イオン性界面活性剤は、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｏｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−８）、ｎ−Ｎｏｎａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−９）、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含む、ことを特徴とするヘモグロビン誘導体の測定方法。
請求項１に記載のヘモグロビン誘導体の測定方法において、前記非イオン性界面活性剤と酸化剤とで処理して変性させたヘモグロビン誘導体を、該ヘモグロビン誘導体の変性された部位に対して特異的な抗体を用いて免疫アッセイを行い検出する、ことを特徴とするヘモグロビン誘導体の測定方法。
請求項２に記載のヘモグロビン誘導体の測定方法において、前記ヘモグロビン誘導体が糖化ヘモグロビンであり、前記非イオン性界面活性剤と酸化剤とで処理して変性させた糖化ヘモグロビンを、該糖化ヘモグロビンの変性された部位に対して特異的な抗体を用いて免疫アッセイを行い検出する、ことを特徴とするヘモグロビン誘導体の測定方法。
請求項２または請求項３に記載のヘモグロビン誘導体の測定方法において、前記試料を、前記非イオン性界面活性剤のうち、前記免疫アッセイを有意に妨害しない、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つで処理する、ことを特徴とするヘモグロビン誘導体の測定方法。
請求項１ないし請求項４のいずれかに記載のヘモグロビン誘導体の測定方法において、さらに、前記試料に含まれるヘモグロビンを測定する工程を含み、前記ヘモグロビンに対する前記ヘモグロビン誘導体の存在比を算出する、ことを特徴とするヘモグロビン誘導体の測定方法。
請求項５に記載のヘモグロビン誘導体の測定方法において、前記ヘモグロビン誘導体が、糖化ヘモグロビンである、ことを特徴とするヘモグロビン誘導体の測定方法。
血液成分を含む試料中のヘモグロビン誘導体を測定するための試薬組成物であって、少なくとも非イオン性界面活性剤と酸化剤とを含み、前記非イオン性界面活性剤は、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｏｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−８）、ｎ−Ｎｏｎａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−９）、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含む、ことを特徴とする試薬組成物。
請求項７に記載の試薬組成物において、前記試薬組成物は、前記ヘモグロビン誘導体の変性された部位に対して特異的な抗体をさらに含む、ことを特徴とする試薬組成物。
請求項７に記載の試薬組成物において、前記ヘモグロビン誘導体が、糖化ヘモグロビンであって、前記糖化ヘモグロビンの変性された部位に対して特異的な抗体をさらに含む、ことを特徴とする試薬組成物。
請求項８または請求項９に記載の試薬組成物において、前記非イオン性界面活性剤は、前記免疫アッセイを有意に妨害しない、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含む、ことを特徴とする試薬組成物。
血液成分を含む試料中のヘモグロビン誘導体を測定するための測定キットであって、少なくとも非イオン性界面活性剤と酸化剤とを含む試薬組成物を保持してなり、前記非イオン性界面活性剤は、は、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｏｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−８）、ｎ−Ｎｏｎａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−９）、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含む、ことを特徴とする測定キット。
請求項１１に記載の測定キットにおいて、前記ヘモグロビン誘導体の変性された部位に対して特異的な抗体を保持してなる、ことを特徴とする測定キット。
請求項１２に記載の測定キットにおいて、前記ヘモグロビン誘導体が糖化ヘモグロビンであり、前記糖化ヘモグロビンの変性された部位に対して特異的な抗体を保持してなる、ことを特徴とする測定キット。
請求項１２または請求項１３に記載の測定キットにおいて、前記非イオン性界面活性剤は、前記免疫アッセイを有意に妨害しない、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含む、ことを特徴とする測定キット。
血液成分を含む試料中のヘモグロビン誘導体を測定するための分析デバイスであって、少なくとも、前記試料を添加する試料添加部位と、前記試料添加部位に連結され、前記添加された試料中のヘモグロビン誘導体を、非イオン性界面活性剤と酸化剤とを含む試薬組成物により変性させる変性部と、前記変性部に連結され、前記変性されたヘモグロビン誘導体を検出する検出部と、から構成され、前記非イオン性界面活性剤は、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｏｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｈｅｐｔｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−８）、ｎ−Ｎｏｎａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−９）、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｏｃｔｙｌ−β−Ｄ−ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含む、ことを特徴とする分析デバイス。
請求項１５に記載の分析デバイスにおいて、前記ヘモグロビン誘導体の変性された部位に対して特異的な抗体を担持する免疫アッセイ部を有し、前記試料中のヘモグロビン誘導体を前記試薬組成物により変性した後に、該変性されたヘモグロビン誘導体を、前記抗体を用いて免疫アッセイを行い検出する、ことを特徴とする分析デバイス。
請求項１５に記載の分析デバイスにおいて、前記ヘモグロビン誘導体が糖化ヘモグロビンであり、前記糖化ヘモグロビンの変性された部位に対して特異的な抗体を担持する免疫アッセイ部を有し、前記試料中の糖化ヘモグロビンを前記試薬組成物により変性した後に、該変性された糖化ヘモグロビンを、前記抗体を用いて免疫アッセイを行い検出する、ことを特徴とする分析デバイス。
請求項１６または請求項１７に記載の分析デバイスにおいて、前記試薬組成物に含まれる前記非イオン性界面活性剤は、前記免疫アッセイを有意に妨害しない、ｎ−Ｄｅｃｙｌ−β−Ｄ−ｍａｌｔｏｓｉｄｅ、ｎ−Ｄｅｃａｎｏｙｌ−Ｎ−ｍｅｔｈｙｌｇｌｕｃａｍｉｄｅ（ＭＥＧＡ−１０）、ｎ−Ｎｏｎｙｌ−β−Ｄ−ｔｈｉｏｍａｌｔｏｓｉｄｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｃａｐｒａｔｅ、Ｓｕｃｒｏｓｅｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅのうちの少なくともいずれか１つを含む、ことを特徴とする分析デバイス。
請求項１５ないし請求項１８のいずれかに記載の分析デバイスにおいて、前記試料添加部位に連結され、前記試料に含まれるヘモグロビンを検出する検出部をさらに含み、前記ヘモグロビンに対する前記ヘモグロビン誘導体の存在比を算出する、ことを特徴とするヘモグロビン誘導体の分析デバイス。
請求項１９に記載の分析デバイスにおいて、前記ヘモグロビン誘導体が、糖化ヘモグロビンである、ことを特徴とするヘモグロビン誘導体の分析デバイス。
請求項１５ないし請求項１８のいずれかに記載の分析デバイスと、該分析デバイスの検出部位において検出された、前記ヘモグロビン誘導体の量を測定する測定部とから構成される、ことを特徴とする分析システム。