JP2003523721A - 抗原性hivc型ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、ポリペプチド、およびそれらの使用 - Google Patents
抗原性hivc型ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、ポリペプチド、およびそれらの使用Info
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Abstract
Description
ドするポリヌクレオチドが記載される。そして免疫原性組成物中でのこれらのポ
リヌクレオチドおよびポリペプチド生成物の使用が、記載される。
健康の脅威の1つとして認識される。現在もなお、この疾患についての療法は存
在しない。
る病因学的な因子を別々に同定した。例えば、Barre−Sinoussiら
(1983)、Science 220:868−871;Montagnie
rら、Human T−Cell Leukemia Viruses(Gal
lo,EssexおよびGross編、1984);Vilmerら(1984
)、Lancet 1:753;Popovicら(1984)、Scienc
e 224:497−500;Levyら、(1984)、Science 2
25:840−842。これらの単離物は、リンパ節腫脹症(lympaden
opathy)関連ウイルス(LAV)、ヒトT細胞リンホトロピック(lym
photropic)ウイルスIII型(HTLV−III)、またはAIDS
関連レトロウイルス(ARV)と、さまざまに呼ばれた。これらの単離物の全て
が、同じウイルスの株であり、そして後にまとめて、ヒト免疫不全ウイルス(H
IV)と呼ばれた。関連するAIDSを引き起こすウイルスの単離物を用いて、
最初にHIVと呼ばれた株が、現在HIV−1と呼ばれており、そして関連する
ウイルスが、HIV−2と呼ばれている。例えば、Guyaderら(1987
)Nature 326:622−669;Brun−Vezinetら(19
86)Science 233:343−346;Clavelら(1986)
Nature 324:691−685を参照のこと。
有効なワクチンについては今日までには同定されていない。HIVによってコー
ドされるenvおよびGag遺伝子産物を含むワクチンの開発のためのいくつか
の標的が、試験されている。Gag遺伝子産物として、Gag−ポリメラーゼお
よびGag−プロテアーゼが挙げられるが、これらに限定されない。Env遺伝
子産物として、単量体のgp120ポリペプチド、オリゴマーの(oligom
eric)gp140ポリペプチドおよびgp160ポリペプチドが挙げられる
が、これらに限定されない。
1996)は、HIV−1による選択的なコドン使用が、ウイルスのタンパク質
合成の実質的にわずかな非効率性を説明するようであることを示唆した。And
reら(J.Virol.72(2):1497−1503、1988)は、最
適化されたコドン使用を有する合成gp120配列を使用するDNAのワクチン
接種によって誘発される、増大された免疫応答を記載した。Schneider
ら(J.Virol.71(7):4892−4903、1997)は、Gag
コード配列およびGagプロテアーゼコード配列内に配置された阻害(または不
安定性)エレメント(INS)の不活化を議論している。
る。HIV−1のGagタンパク質は、アセンブリ、粒子の放出後のビリオンの
成熟、およびウイルスの複製における初期の侵入後の工程を含む、ウイルスの生
存周期の多くの段階に関連している。HIV−1のGagタンパク質の役割は多
数あり、そして複雑である(Freed,E.O.、Virology 251
:1−15、1998)。
/30523;1991年10月2日に公開された、欧州特許出願公開番号第0
,449,116 A1号)は、非感染性のレトロウイルス様の粒子キャリアと
して作用するように、特に、免疫学的に重要なエピトープの提示のために、変更
されたHIV−1のpr55 Gagの使用を記載した。Wangら(Viro
logy 200:524−534、1994)は、ビリオンへのHIV Ga
g−β−ガラクトシダーゼ融合タンパク質のアセンブリを研究するための系を記
載している。彼らは、HIV Gag−β−ガラクトシダーゼ融合タンパク質を
コードする配列の構築、HIV Gagタンパク質の存在下でのこのような配列
の発現、およびウイルス粒子へのこれらのタンパク質のアセンブリを記載してい
る。
/34640号)は、HIV Gagをコードする合成DNA分子、およびHI
V Gagの改変を産生するための、HIV−1(CAM1)Gagコード配列
の変更を記載した。合成分子のコドンは、計画された宿主細胞によって好まれる
コドンであった。
ている。(異なるHIV env改変体をそれぞれ発現する少なくとも4つの異
なる組換えウイルスの混合物を含む免疫原性の組成物を記載している、1998
年12月8日に発行されたHurwitzらの米国特許第5,846,546号
;および、HIV−1 gp120タンパク質のエピトープに対応するペプチド
を記載している、1998年11月24日に発行された、Vahlneらの米国
特許第5,840,313号を参照のこと)。さらに、1999年3月2日に発
行された、Siaらの米国特許第5,876,731号は、配列GPGRを含有
しているHIV−1単離物のV3ループタンパク質のB細胞エピトープのアミノ
酸配列に対して直接連結されたGagのT細胞エピトープのアミノ酸配列を含有
しているHIVに対する候補のワクチンを記載している。抗原性のHIVポリペ
プチド(特に、C型の単離物)の必要性がなお存在している。
イルス様粒子の産生、ならびにEnv含有ポリペプチドに関する。
チドに関する。1つの実施形態においては、発現カセットは、HIVのGag含
有ポリペプチドを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む。
ここでは、Gagポリペプチドをコードしているポリヌクレオチド配列は、本明
細書中に教示される配列に対して、少なくとも約85%、好ましくは約90%、
より好ましくは約95%、そして最も好ましくは約98%の配列同一性を有する
配列を含む。Gag含有ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列として
、以下のポリヌクレオチドが挙げられるが、これらに限定されない:図1のヌク
レオチド844〜903(Gagの主要な相同領域)(配列番号1);図2のヌ
クレオチド841〜900(Gagの主要な相同領域)(配列番号2);図1に
示される配列(配列番号3)および図2に示される配列(配列番号4)。本発明
のGag含有ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドはまた、さらなるポリ
ペプチドをコードする配列を含み得る。このようなさらなるポリペプチドをコー
ドするポリヌクレオチドとして、例えば、他のHIVタンパク質のコード配列(
例えば、HIVプロテアーゼポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列、
およびHIVポリメラーゼポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列)が
挙げられ得る。1つの実施形態においては、HIVポリメラーゼポリペプチドを
コードする配列は、逆転写酵素およびインテグラ−ゼに対応するコード領域の欠
失によって改変され得る。ポリメラーゼポリペプチド中でのこのような欠失はま
た、ポリヌクレオチド配列がT−ヘルパー細胞およびCTLエピトープを保存す
るように作成され得る。他の目的の抗原が、同様にポリメラーゼ中に挿入され得
る。
を含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む。ここでは、Ga
gポリペプチドをコードしているポリヌクレオチド配列は、本明細書中に教示さ
れる配列に対して、少なくとも約85%、好ましくは約90%、より好ましくは
約95%、そして最も好ましくは約98%の配列同一性を有する配列を含む。E
nv含有ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列として、以下のポリヌ
クレオチドが挙げられるが、これらに限定されない:図3のヌクレオチド121
3〜1353(配列番号5)(Envの共通領域);図3のヌクレオチド82〜
1512(配列番号6)(gp120ポリペプチド);図3のヌクレオチド82
〜2025(配列番号7)(gp140ポリペプチド);図3のヌクレオチド8
2〜2547(配列番号8)(gp160ポリペプチド);図3のヌクレオチド
1〜2547(配列番号9)(シグナル配列を有するgp160ポリペプチド)
;図3のヌクレオチド1513〜2547(配列番号10)(gp41ポリペプ
チド);図4のヌクレオチド1210〜1353(配列番号11)(Envの共
通領域);図4のヌクレオチド73〜1509(配列番号12)(gp120ポ
リペプチド);図4のヌクレオチド73〜2022(配列番号13)(gp14
0ポリペプチド);図4のヌクレオチド73〜2565(配列番号14)(gp
160ポリペプチド);図4のヌクレオチド1〜2565(配列番号15)(シ
グナル配列を有するgp160ポリペプチド);および、図4のヌクレオチド1
510〜2565(配列番号16)(gp41ポリペプチド)。
。ここでは、組換え発現系は、本発明のポリヌクレオチドおよび発現カセットを
使用する。このような系においては、ポリヌクレオチド配列は、必要に応じて、
選択された宿主細胞中での発現に適合する制御エレメントに対して作動可能に連
結される。多数の発現制御エレメントが、当業者に公知であり、これらとして以
下が挙げられるがこれらに限定されない:転写プロモーター、転写エンハンサー
エレメント、転写ターミネーターシグナル、ポリアデニル化配列、翻訳の開始の
最適化のための配列、および翻訳終結配列。例示的な転写プロモーターとして、
CMV、CMV+イントロンA,SV40、RSV、HIV−Ltr、MMLV
−ltr、およびメタロチオネインに由来するものが挙げられるが、これらに限
定されない。
では、ポリヌクレオチド配列(例えば、Env含有および/またはGag含有ポ
リペプチドをコードする)が、選択された細胞中での発現に適合する制御エレメ
ントに対して作動可能に連結されている。1つの実施形態においては、このよう
な細胞は、哺乳動物細胞である。例示的な哺乳動物細胞として、BHK、VER
O、HT1080、293、RD、COS−7、およびCHO細胞が挙げられる
が、これらに限定されない。他の細胞、細胞型、組織型など(これらは、本発明
の実施に有用であり得る)として、以下から得られるものが挙げられるが、これ
らに限定されない:昆虫細胞(例えば、Trichoplusia ni(Tn
5)、およびSf9)、細菌細胞、酵母細胞、植物細胞、抗原提示細胞(例えば
、マクロファージ、単球、樹状細胞、B細胞、T細胞、幹細胞、およびそれらの
先祖細胞)、初代細胞、固定化された細胞、腫瘍に由来する細胞。
含む。ここでは、組成物は、代表的には、本発明の発現カセットの少なくとも1
つを含み、そして例えば、発現カセットの組合せ(例えば、Gag−ポリペプチ
ドをコードするポリヌクレオチドを保有している1つ以上の発現カセット、およ
びEnv−ポリペプチドをコードするポリペプチドを保有している1つ以上の発
現カセット)を含む。このような組成物はさらに、アジュバントを含み得る。組
成物はまた、1つ以上のGag含有ポリペプチドおよび/または1つ以上のEn
v含有ポリペプチドを含み得る。Gag含有ポリペプチドおよび/またはEnv
含有ポリペプチドは、組成物中の発現カセットによってコードされるポリペプチ
ドに対応し得るか、あるいは、Gag含有ポリペプチドおよび/またはEnv含
有ポリペプチドは、発現カセットによってコードされるものとは異なり得る。組
成物中で提供される場合の、同じポリペプチドをコードする発現カセット中のポ
リヌクレオチドの一例は以下である:発現カセット中のポリヌクレオチドは図1
のGag−ポリペプチド(配列番号3)をコードし、そしてポリペプチドは、図
1に示される配列によってコードされるポリペプチド(配列番号17)である。
組成物中で提供される場合の、異なるポリペプチドをコードする発現カセット中
のポリヌクレオチドの一例は、以下である:Gag−ポリメラーゼポリペプチド
をコードするポリヌクレオチドを有する発現カセット、および組成物中で提供さ
れるポリペプチドが、Gagおよび/またはGag−プロテアーゼポリペプチド
であり得る。発現カセット(または本発明のポリヌクレオチド)およびポリペプ
チドの両方を含有している組成物においては、本発明のEnvおよびGag発現
カセットが混合され得、そして/または本明細書中に記載されるEnv含有およ
びGag含有ポリペプチドと混合され得、そして/または適合させられ得る。
ては、任意の上記の組成物は、被験体中での発現カセットの発現に適合する条件
下で、被験体中に導入される。1つの実施形態においては、発現カセット(また
は本発明のポリヌクレオチド)は、遺伝子送達ベクターを使用して導入され得る
。遺伝子送達ベクターは、例えば、ウイルス性のベクターまたは非ウイルス性の
ベクターであり得る。例示的なウイルス性のベクターとして、シンドビスウイル
スに由来するベクター、レトロウイルスベクター、およびレンチウイルスベクタ
ーが挙げられるが、これらに限定されない。免疫学的応答の生成に有用な組成物
はまた、粒子状のキャリアを使用して送達され得る。さらに、このような組成物
は、例えば、金またはタングステン粒子状にコーティングされ得、そしてコーテ
ィングされた粒子は、例えば、遺伝子銃を使用して被験体に送達され得る。組成
物はまた、リポソームとして処方され得る。この方法の1つの実施形態において
は、被験体は哺乳動物であり、そして例えば、ヒトであり得る。
む。ここでは、本発明の発現カセットまたはポリヌクレオチドは、本発明のポリ
ヌクレオチドによってコードされるEnv含有および/またはGag含有ポリペ
プチドの発現を提供するように、適切な細胞中で発現される。次いで、ポリペプ
チドが単離され(例えば、実質的に精製され)、そして免疫応答を誘発するため
に十分な量で被験体に投与される。
体の細胞は、任意の上記の本発明の発現カセットまたはポリヌクレオチドで、選
択されたポリヌクレオチドの発現および目的のポリペプチド(例えば、本発明の
任意の発現カセットによってコードされる)の産生を可能にする条件下で、トラ
ンスフェクトされる。この方法によって、ポリペプチドに対する免疫学的応答が
被験体中で誘発される。細胞のトランスフェクションは、エキソビボで行われ得
、そしてトランスフェクトされた細胞は被験体中に再度導入される。あるいは、
またはそれに加えて、細胞は、被験体中でインビボでトランスフェクトされ得る
。免疫応答は、液性であり得るか、および/または細胞によって媒介され得る(
細胞性)。さらなる実施形態においては、この方法はまた、被験体中への発現カ
セットの導入の前、それと同時に、および/またはその後での、Env−および
/またはGag含有ポリペプチドの投与を含み得る。
有ポリペプチドをコードする例示的なポリヌクレオチド配列として、以下のポリ
ヌクレオチドが挙げられるが、これらに限定されない:図1のヌクレオチド84
4〜903(Gagの主要な相同領域)(配列番号1);図2のヌクレオチド8
41〜900(Gagの主要な相同領域)(配列番号2);図1に示される配列
(配列番号3)および図2に示される配列(配列番号4)。Env含有ポリペプ
チドをコードする例示的なポリヌクレオチド配列として、以下のポリヌクレオチ
ドが挙げられるが、これらに限定されない:図3のヌクレオチド1213〜13
53(配列番号5)(Envの共通領域);図3のヌクレオチド82〜1512
(配列番号6)(gp120ポリペプチド);図3のヌクレオチド82〜202
5(配列番号7)(gp140ポリペプチド);図3のヌクレオチド82〜25
47(配列番号8)(gp160ポリペプチド);図3のヌクレオチド1〜25
47(配列番号9)(シグナル配列を有するgp160ポリペプチド);図3の
ヌクレオチド1513〜2547(配列番号10)(gp41ポリペプチド);
図4のヌクレオチド1210〜1353(配列番号11)(Envの共通領域)
;図4のヌクレオチド73〜1509(配列番号12)(gp120ポリペプチ
ド);図4のヌクレオチド73〜2022(配列番号13)(gp140ポリペ
プチド);図4のヌクレオチド73〜2565(配列番号14)(gp160ポ
リペプチド);図4のヌクレオチド1〜2565(配列番号15)(シグナル配
列を有するgp160ポリペプチド);および、図4のヌクレオチド1510〜
2565(配列番号16)(gp41ポリペプチド)。本発明のGag含有ポリ
ペプチドおよびEnv−wを含有しているポリペプチドをコードするポリヌクレ
オチド配列は、代表的には、本明細書中に教示される配列に対して、少なくとも
約85%、好ましくは約90%、より好ましくは約95%、そして最も好ましく
は約98%の配列同一性を有する配列を含む。
によって産生され得る。
容易に行われる。
、生化学的、分子生物学的、免疫学的、および薬理学的な従来の方法を使用する
。このような技術は、文献において完全に説明されている。例えば、Remin
gton’s Pharmaceutical Sciences、18版(E
aston、Pennsylvania;Mack Publishing C
ompany,1990);Methods In Enzymology(S
.ColowickおよびN.Kaplan編、Academic Press
,Inc.);およびHandbook of Experimental I
mmunology,第I〜IV巻(D.M.WeirおよびC.C.Blac
kwell編、1986、Blackwell、Scientific Pub
lications);Sambrookら、Molecular Cloni
ng:A Laboratory Manual(第2版、1989);Sho
rt Protocols in Molecular Biology、第4
版(Ausubelら編、1999、John WileyおよびSons);
Molecular Biology Techniques:An Inte
nsive Laboratory Course(Reamら編、1998、
Academic Press);PCR(Introduction to
Biotechniques Series)、第2版(NewtonおよびG
raham編、1997、Springer Verlag)。
「an」、および「the」は、他に特に明確に示されない限りは、複数形の対
象物を含む。従って、例えば、「抗原」に関しては、2つ以上のこのような因子
の混合物を含む。
ように定義されることが意図される。
記載されているように、例えば、阻害配列のコドンの置換および不活化によって
最適化されている、Gag−をコードするポリヌクレオチドをいう。「野生型」
または「天然の」配列は、本明細書中で使用される場合には、それらが天然にお
いて見出される本質的なポリペプチドのコード配列をいう。例えば、C型の単離
物(例えば、AF110965、AF110967、AF110968、または
AF110975)中で見出される、Gagおよび/またはEnvをコードする
配列。
、以下にさらに議論される任意のいくつかのウイルスに由来する、複製性ではな
いウイルスの殻をいう。VLPは、一般的には、キャプシドタンパク質、コート
タンパク質、殻タンパク質、表面タンパク質、および/またはエンベロープタン
パク質と呼ばれるこれらのタンパク質、あるいはこれらのタンパク質に由来する
粒子形成ポリペプチド(これらに限定されない)のような、1つ以上のウイルス
タンパク質から構成される。VLPは、適切な発現系中でタンパク質の組換え発
現の際に自発的に形成し得る。粒子状のVLPを産生するための方法が当該分野
で公知であり、そして以下により完全に記載される。ウイルスタンパク質の組換
え発現後のVLPの存在は、当該分野で公知の従来技術(例えば、電子顕微鏡分
析、X線結晶解析など)を使用して検出され得る。例えば、Bakerら、Bi
ophys.J.(1991)60:1445−1456;Hagenseeら
、J.Virol.(1994)68:4503−4505を参照のこと。例え
ば、VLPは、密度勾配遠心分離によって単離され得、そして/または特徴的な
密度のバンド形成によって同定され得る。あるいは、低温電子顕微鏡分析が、対
照のVLP調製物のガラス状にされた水溶性のサンプル対して行われ得、そして
適切な露出条件下で画像が記録され得る。
長またはほぼ全長のウイルスタンパク質、ならびにそれらのフラグメント、また
は内部欠失を有するウイルスタンパク質が意味される。これらは、VLP形成に
好ましい条件下でVLPを形成する能力を有する。従って、ポリペプチドは、全
長の配列、フラグメント、短縮された配列および部分的な配列、ならびに対象分
子のアナログおよび前駆体の形態を含み得る。従って、この用語は、ポリペプチ
ドがVLPを形成する能力を維持している限りは、配列に対する欠失、付加,お
よび置換を意図する。従って、この用語は、特定のポリペプチドの天然のバリエ
ーションを含む。なぜなら、コートタンパク質におけるバリエーションはしばし
ば、ウイルスの単離物間で生じるからである。この用語はまた、タンパク質がV
LPを形成する能力を維持している限りは、対象のタンパク質中では天然には生
じない欠失、付加、および置換を含む。
連するアミノ酸のファミリー内で生じる置換)である。詳細には、アミノ酸は、
一般的に、4つのファミリーに分けられる:(1)酸性−−アスパラギン酸およ
びグルタミン酸;(2)塩基性−−リジン、アルギニン、ヒスチジン;(3)非
極性−−アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラ
ニン、メチオニン、トリプトファン;ならびに(4)非荷電極性−−グリシン、
アスパラギン、グルタミン、システイン、セリン、トレオニン、チロシン。フェ
ニルアラニン、トリプトファン、およびチロシンは、時折、芳香族アミノ酸とし
て分類される。
を刺激する1以上のエピトープを含む分子(線状、配座(conformati
onal)のいずれか、またはその両方)をいう。この用語は、用語「免疫原」
と交換可能に使用される。通常、B細胞エピトープは、少なくとも約5個のアミ
ノ酸を含むが、3〜4個の程度の少なさのアミノ酸であり得る。T細胞エピトー
プ(例えば、CTLエピトープ)は、少なくとも約7〜9個のアミノ酸を含み、
そしてヘルパーT細胞エピトープは、少なくとも約12〜20個のアミノ酸を含
む。通常、エピトープは、約7と15との間のアミノ酸(例えば、9、10、1
2、または15個のアミノ酸)を含む。用語「抗原」は、サブユニット抗原(す
なわち、抗原が天然に関連している生物全体から分離され、そして別個である抗
原)、ならびに殺傷されたか、弱毒化されたか、または不活性化された細菌、ウ
イルス、真菌、寄生体、または他の微生物の両方を示す。抗体(例えば、抗イデ
ィオタイプ抗体)、またはそのフラグメントおよび合成ペプチドミモトープ(こ
れは、抗原または抗原決定基を模倣し得る)もまた、本明細書中で使用される場
合、抗原の定義の下にとらえられる。同様に、例えば、遺伝子治療およびDNA
免疫適用において、インビボで抗原または抗原決定基を発現するオリゴヌクレオ
チドまたはポリヌクレオチドもまた、本明細書中の抗原の定義内に含まれる。
かの既知のウイルス、細菌、寄生体および真菌のいずれかに由来し得る。この用
語はまた、種々の腫瘍抗原のいずれかを意図する。さらに、本発明の目的のため
に、「抗原」は、タンパク質が本明細書中に定義されるように免疫学的応答を誘
発する能力を維持する限り、ネイティブな配列に対する改変(例えば、欠失、付
加および置換)(一般に天然に保存される)を含むタンパク質をいう。これらの
改変は、部位特異的変異誘発を通してのように故意であってもよく、または抗原
を産生する宿主の変異を通してのように偶然であってもよい。
に対する被験体の液性および/または細胞性免疫応答における発生である。本発
明の目的のために、「液性免疫応答」とは、抗体分子により媒介される免疫応答
をいい、一方、「細胞性免疫応答」は、Tリンパ球および/または他の白血球に
より媒介されるものである。細胞性免疫の1つの重要な局面は、細胞傷害性T細
胞(「CTL」)による抗原特異的応答に関する。CTLは、主要組織適合遺伝
子複合体(MHC)によりコードされるタンパク質と結合して存在し、そして細
胞表面上に発現されるペプチド抗原に対する特異性を有する。CTLは、細胞内
微生物の破壊またはこのような微生物に感染した細胞の溶解の誘導および促進を
補助する。細胞性免疫の別の局面は、ヘルパーT細胞による抗原特異的応答に関
する。ヘルパーT細胞は、それらの表面上にMHCと結合したペプチド抗原を提
示する細胞に対する機能を刺激し、そしてこの細胞に対する非特異的エフェクタ
ー細胞の活性に焦点を当てることを補助するように作用する。「細胞性免疫応答
」はまた、サイトカイン、ケモカイン、ならびに活性化T細胞および/または他
の白血球(CD4+およびCD8+T細胞に由来するもの)により産生される他
のこのような分子の産生をいう。
結合している抗原の提示により、脊椎動物被験体を感作するように働き得る。こ
の細胞媒介性免疫応答は、その細胞の表面に抗原を提示する細胞に、またはその
付近で指向される。さらに、抗原特異的Tリンパ球は、免疫された宿主の将来的
な保護を可能にするように生成される。
って(例えば、リンホ増殖(lymphoproliferation)(リン
パ球活性化)アッセイ、CTL細胞傷害性細胞アッセイによって、または感作さ
れた被験体における抗原に特異的なTリンパ球についてアッセイをすることによ
って)決定され得る。このようなアッセイは、当該分野において周知である。例
えば、Ericksonら、J.Immunol.(1993)151:418
9〜4199;Doeら、Eur.J.Immunol.(1994)24:2
369〜2376。細胞媒介性免疫応答を測定する最近の方法は、T細胞集団に
よる細胞内サイトカインまたはサイトカイン分泌の測定、またはエピトープ特異
的T細胞の測定を含む(例えば、テトラマー技術による)(McMichael
,A.J.、およびO’Callaghan,C.A.、J.Exp.Med.
187(9)1367〜1371、1998;Mcheyzer−Willia
ms,M.G.ら、Immunol.Rev.150:5〜21、1996;L
alvani,A.ら、J.Exp.Med.186:859〜865、199
7)により総説される)。
たはヘルパーT細胞の産生もしくは活性化を刺激するものであり得る。目的の抗
原もまた、抗体媒介性免疫応答を誘発し得る。従って、免疫学的応答は、1以上
の以下の効果を含み得る:B細胞による抗体の産生;ならびに/あるいは目的の
組成物またはワクチンに存在する抗原に対して特異的なサプレッサーT細胞およ
び/またはγδT細胞の活性化。これらの応答は、感染性を中和し、そして/あ
るいは抗体−補体、または抗体依存性細胞傷害性(ADCC)を媒介して、免疫
された宿主に対する免疫を提供するように働き得る。このような応答は、当該分
野において周知である、標準的な免疫アッセイおよび中和アッセイを使用して決
定され得る。
る被験体の液性免疫応答/細胞性免疫応答の発生を生じる抗原性分子を含む組成
物である。免疫原性組成物は、例えば、注射、吸入、経口、鼻腔内、および粘膜
(例えば、直腸内または膣内)投与によって、レシピエント被験体に直接導入さ
れ得る。
、寄生体または真菌由来)の抗原に由来するか、またはそれに相同である、1以
上の選択された抗原(しかし、全ての抗原ではない)を含むワクチン組成物を意
味する。このような組成物は、インタクトな病原性細胞または病原性粒子、また
はこのような細胞もしくは粒子の溶解物を実質的に含まない。従って、「サブユ
ニットワクチン」は、病原体から少なくとも部分的に精製された(好ましくは、
実質的に精製された)免疫原性ポリペプチド、またはそのアナログから調製され
得る。従って、サブユニットワクチンに含まれる抗原を入手する方法は、標準的
な精製技術、組換え産生、または合成産生を含み得る。
ド、タンパク質、ポリペプチド、ポリペプチド組成物)が、存在するサンプルの
主要な割合を含むように、基質を単離することをいう。代表的には、サンプル中
に、実質的に精製された成分は、このサンプルの50%、好ましくは80〜85
%、より好ましくは90〜95%を含む。目的のポリヌクレオチドおよびポリペ
プチドを精製するための技術は、当該分野において周知であり、そして例えば、
イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、および密
度に従う沈降が挙げられる。
な調節配列(または「制御エレメント」)の制御下に置かれた場合、インビボで
転写され(DNAの場合)、そしてポリペプチドに翻訳され(mRNAの場合)
る核酸分子である。コード配列の境界は、5’(アミノ)末端で開始コドンによ
って、そして3’(カルボキシ)末端で翻訳終止コドンによって決定される。コ
ード配列には、ウイルス由来のcDNA、原核生物または真核生物のmRNA、
ウイルスまたは原核生物DNA由来のゲノムDNA配列、および合成DNA配列
さえが含まれるが、これらに限定されない。転写終結配列は、コード配列に対し
て3’に位置され得る。
メント、転写終結シグナル、ポリアデニル化配列(翻訳終止配列に対して3’に
位置する)、翻訳の開始の最適化のための配列(コード配列に対して5’に位置
する)、および翻訳終結配列が含まれるが、これらに限定されない。
のcDNA、真核生物(例えば、哺乳動物)DNA由来のゲノムDNA配列、お
よび合成DNA配列でさえが含まれるが、これらに限定されない。その用語はま
た、DNAおよびRNAの公知の塩基アナログのいずれかを含む配列を捕捉する
。
載された成分は、それらの機能を行うように構成されている。従って、コード配
列に作動可能に連結した所定のプロモーターは、その適切な酵素が存在する場合
、コード配列の発現をもたらし得る。そのプロモーターは、それがその発現を指
向するように機能する限り、コード配列と隣接している必要はない。従って、例
えば、転写はされるが翻訳はされない介在配列が、プロモーター配列とコード配
列との間に存在し得、そしてプロモーター配列はなお、コード配列に「作動可能
に連結」していると考えられ得る。
起源または操作により、(1)天然において結合しているポリヌクレオチドの全
てまたは一部と結合していない;および/または(2)天然において結合してい
る以外のポリヌクレオチドに連結している、ゲノム、cDNA、半合成または合
成の起源のポリヌクレオチドを意味する。タンパク質またはポリペプチドに関し
て使用される用語「組換え」は、組換えポリヌクレオチドの発現によって生成さ
れたポリペプチドを意味する。「組換え宿主細胞」、「宿主細胞」、「細胞」、
「細胞株」、「細胞培養物」、および単細胞部分として培養された原核生物微生
物または真核生物細胞株を示すそのような他の用語は、互換的に使用され、そし
て組換えベクターまたはその他の移入DNAのためのレシピエントとして使用さ
れ得る、または使用されている細胞のことをいい、そしてトランスフェクトされ
ている始原細胞の子孫を含む。単一の親細胞の子孫は、偶発的な変異または意図
的な変異に起因して、必ずしも、形態学上、または起源の親に相補的なゲノムも
しくは全DNAにおいて完全に同一でなくてもよいことが理解される。関連する
特性(例えば、所望のペプチドをコードするヌクレオチド配列の存在)によって
特徴づけられるべき親に充分に類似している親細胞の子孫は、この定義によって
意図される子孫に含まれ、そして上記の用語によって包含される。
般に、「類似性」は、アミノ酸が同一であるか、または類似の化学的および/ま
たは物理的特性(例えば、電荷または疎水性)を有する適切な部位での2つ以上
のポリペプチドの正確なアミノ酸対アミノ酸の比較を意味する。次いで、いわゆ
る「パーセント同一性」は、比較したポリペプチド配列間で決定され得る。核酸
およびアミノ酸配列の同一性を決定するための技術もまた、当該分野で周知であ
り、その遺伝子に対するmRNAのヌクレオチド配列を決定する(通常、cDN
A中間体を介して)こと、およびそれによりコードされるアミノ酸配列を決定す
ること、およびこれを第2のアミノ酸配列と比較することを包含する。一般に、
「同一性」は、2つのポリヌクレオチドまたはポリペプチド配列の、それぞれ、
正確なヌクレオチド対ヌクレオチドまたはアミノ酸対アミノ酸の対応をいう。
ることによって比較され得る。2つ以上のアミノ酸配列は、同様に、「パーセン
ト同一性」を決定することによって比較され得る。2つの配列のパーセント同一
性(核酸またはペプチド配列が一般に記載されているか否か)は、一般に、より
短い配列の長さによって除算され、そして100を積算された2つの整列された
配列間の正確な整合の数として記載される。核酸配列についてのおよその整列は
、SmithおよびWaterman,Advances in Applie
d Mathematics 2:482−489(1981)の局所的な相同
性アルゴリズムによって提供される。このアルゴリズムは、Dayoff,At
las of Protein Sequences and Structu
re,M.O.Dayhoff編、5補遺、3:353−358、Nation
al Biomedical Research Foundation,Wa
shington,D.C.,USAによって開発され、そしてGriskov
、Nucl.Acids.Res.14(6):6745−6763(1986
)によって規格化された、スコア付けマトリックスを使用して、ペプチド配列を
用いる使用にまで拡張し得る。核酸およびペプチド配列についてのこのアルゴリ
ズムの実行は、それらのBestFitユーティリティーアプリケーションにお
いてGenetics Computer Group(Madison,WI
)によって提供される。この方法についてのデフォルトパラメーターは、Wis
consin Sequence Analysis Package Pro
gram Manual,Verson 8(1995)(Genetics
Computer Group、Madison,WI)に記載される。配列間
のパーセント同一性または類似性を計算するための他の等しく適切なプログラム
は、当該分野で一般に公知である。
SmithおよびWatermanの相同性アルゴリズムを、デフォルトスコア
付け表および6ヌクレオチド位置のギャップペナルティーとともに使用して決定
され得る。本発明の状況においてパーセント同一性を確立するための別の方法は
、John F.CollinおよびShane S.Sturrokによって
開発され、そしてIntelliGenetics,Inc.(Mountai
n View、CA)によって頒布されているUniversity of E
dinburghに著作権の帰属するプログラムのMPSRCHパッケージを使
用することである。このパッケージソフトから、Smith−Waterman
アルゴリズムが、スコア付表(例えば、12のギャップオープンペナルティ、1
のギャップ拡張ペナルティ、および6のギャップ)について使用されるデフォル
トパラメータが使用される場合に、利用され得る。作成されたデータから、「マ
ッチ」値は、「配列同一性」を反映する。配列間のパーセント同一性または類似
性を計算するための他の適切なプログラム(例えば、整列プログラムBLAST
(これはデフォルトパラメータでも使用され得る))は、一般に、当該分野で公
知である。例えば、BLASTNおよびBLASTPは、以下のデフォルトパラ
メータでも使用され得る:遺伝子コード=標準;フィルター=なし;鎖=両方;
カットオフ=60;予想=10;マトリックス=BLOSUM62;記載=50
配列;選別=高スコア;データベース=非縮重、Genbank+EMBL+D
DBJ+PDB+Genbank CDS翻訳+Swissタンパク質+Spu
pdate+PIR。これらのプログラムの詳細は、以下のインターネットアド
レスで見出され得る:http://www.ncbi.nlm.gov/cg
i−bin/BLAST。
な検索パラメータを容易に決定し得る。例えば、検索パラメータは、問題の配列
のサイズに基づいて変化し得る。従って、例えば、本発明の代表的な実施形態は
、X個の連続するヌクレオチドを有する単離されたポリヌクレオチドを含み、こ
こで、(i)X個の連続するヌクレオチドは、本明細書に記載される任意の配列
に由来するY個の連続するヌクレオチドに対して少なくとも約50%の同一性を
有し;(ii)XとYは等しく、かつ(iii)Xは、6ヌクレオチドよりも大
きいか、それに等しく、そして5000ヌクレオチドまでであり、好ましくは、
8ヌクレオチドより大きいか、またはそれに等しく、そして5000ヌクレオチ
ドまでであり、より好ましくは、10〜12ヌクレオチドであり、そして500
0ヌクレオチドまでであり、そしてさらにより好ましくは、15〜20ヌクレオ
チドであり、本明細書に記載される全長配列(例えば、配列表および特許請求の
範囲を参照)に存在するヌクレオチドの数までであり、上記の範囲内の全ての整
数値が含まれる。
細書に記載される合成の発現カセット配列に対して(例えば、本発明の特許請求
された配列またはその他の配列)、本発明の配列が問い合わせ配列として使用さ
れた場合に、約80%〜100%の、80〜85%より大きい、好ましくは、9
0〜92%より大きい、より好ましくは、95%より大きい、そして最も好まし
くは、98%より大きい配列同一性(これらの記載の範囲に入る全ての整数値を
含む)有する関連するポリヌクレオチド配列が含まれる。
ダイズ」すると考えられる。2つの核酸分子間の配列同一性の程度は、このよう
な分子間のハイブリダイゼーション事象の効率および強度に影響を及ぼす。部分
的に同一の核酸配列は、少なくとも部分的に、完全に同一な配列が標的分子にハ
イブリダイズすることを阻害する。完全に同一な配列のハイブリダイゼーション
の阻害は、当該分野で周知のハイブリダイゼーションアッセイ(例えば、サザン
ブロット、ノーザンブロット、溶液ハイブリダイゼーション、など、Sambr
ookら、前出、またはAusubelら、前出を参照)を使用して評価され得
る。このようなアッセイは、例えば、低ストリンジェントから高ストリンジェン
トまでの種々の条件を使用して、種々の程度の選択性を使用して行われ得る。低
ストリンジェンシー条件が利用される場合、非特異的結合の不在は、非特異的な
結合事象の不在下で、二次プローブが標的にハイブリダイズしないように、部分
的な程度の配列同一性を欠損する二次プローブ(例えば、標的分子と約30%よ
りも少ない配列同一性を有するプローブ)を使用することによって評価され得る
。
列に対して相補的な核酸プローブが選択され、次いで適切な条件の選択により、
そのプローブおよび標的配列が、互いに、「選択的にハイブリダイズする」か、
結合して、ハイブリッド分子を形成する。「中程度のストリンジェント」な条件
下で標的配列に選択的にハイブリダイズし得る核酸分子は、代表的には、選択さ
れた核酸プローブの配列と少なくとも約70%の配列同一性を有する少なくとも
約10〜14個のヌクレオチド長の標的核酸配列の検出を可能にする条件下でハ
イブリダイズする。ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件は、代表的
には、選択された核酸プローブの配列と約90〜95%より大きな配列同一性を
有する少なくとも約10〜14個のヌクレオチド長の標的核酸配列の検出を可能
にする。プローブと標的が特定の程度の配列同一性を有するプローブ/標的ハイ
ブリダイゼーションのために有用なハイブリダイゼーション条件は、当該分野で
公知なように決定され得る(例えば、Nucleic Acid Hybrid
ization:A Practical Approach、B.D.Ham
esおよびS.J.Higggins編、(1985)Oxford;Wash
igton,DC;IRL Press)。
等価な条件が、例えば、以下のファクターを変化させることによって、特定のス
トリンジェンシーを確立するために利用され得ることは、当該分野で周知である
:プローブおよび標的配列の長さおよび性質、種々の配列の塩基組成、塩および
その他のハイブリダイゼーション溶液成分の濃度、ハイブリダイゼーション溶液
中のブロッキング剤(例えば、ホルムアミド、デキストラン硫酸、およびポリエ
チレングリコール)の存在も非存在、ハイブリダイゼーション反応温度および時
間パラメータ、ならびに種々の洗浄条件。特定の組のハイブリダイゼーション条
件の選択は、当該分野での標準的な方法に従って選択される(例えば、Samb
rookら、前出、またはAusubelら、前出を参照)。
その相補物と、同一の塩基対配列を有するか、または実質的に同一の塩基対配列
を有する場合、あるいは第1のポリヌクレオチドが上記のように配列同一性を示
す場合、その第1のポリヌクレオチドは、その第2のポリヌクレオチドに「由来
する」。
ヌクレオチドによってコードされる場合、または(ii)上記のように第2のポ
リペプチドと配列同一性を示す場合、その第1のポリペプチドは、その第2のポ
リペプチドに「由来する」。
ポリヌクレオチド)のオープンリーディングフレームによってコードされる場合
、(ii)上記のようにそのウイルスのポリペプチドに対する配列同一性を示す
場合、一般に、そのウイルスポリペプチドは、ウイルスの特定のポリペプチド(
ウイルスポリペプチド)に「由来する」。
で、ポリペプチド配列またはその部分は、核酸配列によってコードされるポリペ
プチド由来の、少なくとも3〜5アミノ酸、より好ましくは少なくとも8〜10
アミノ酸、そしてなおより好ましくは少なくとも15〜20アミノ酸のアミノ酸
配列を含む。その配列によってコードされるポリペプチドを用いて免疫学的に同
定され得るポリペプチド配列もまた、含まれる。
るタンパク質を実質的に含まない(例えば、約50%未満を含む、好ましくは約
70%未満を含む、そしてより好ましくは約90%未満を含む)目的のポリヌク
レオチドまたはそのフラグメントをいう。目的のポリヌクレオチドを精製する技
術は、当該分野において周知であり、そして、例えば、カオロピック剤を用いる
ポリヌクレオチドを含有する細胞の破壊、およびイオン交換クロマトグラフィー
、アフィニティークロマトグラフィーおよび密度による沈降によるポリヌクレオ
チドおよびタンパク質の分離が挙げられる。
エピトープ(単数および複数)の発現のために、宿主細胞中に1つ以上の選択し
た抗原をコードする核酸分子を導入することを意味する。核酸分子は、例えば、
注入投与、吸入投与、経口投与、鼻腔内投与、および粘膜投与などによってレシ
ピエント被験体中に直接的に導入され得るか、あるいは、エキソビボで宿主から
取り出された細胞中に導入され得る。後者の場合、形質転換された細胞は、被験
体中に再導入され、被験体中で、核酸分子によってコードされる抗原に対する免
疫応答を開始し得る。
に挿入するための方法または系をいう。そのような方法は、非組み込み型移入D
NAの一過性の発現、染色体外複製および移入レプリコン(例えば、エピソーム
)の発現、または宿主細胞のゲノムDNA中への移入された遺伝子物質の挿入を
生じ得る。遺伝子送達発現ベクターとしては、アルファウイルス、ポックスウイ
ルスおよびワクシニアウイルス由来のベクターが挙げられるが、これらに限定さ
れない。免疫化のために使用される場合、そのような遺伝子送達発現ベクターは
、ワクチンまたはワクチンベクターと称され得る。
る非抗体産生リンパ球である。T細胞は、骨髄から胸腺(胸腺でTリンパ球は、
胸腺ホルモンの指令のもと、成熟化プロセスを受ける)に移動する未成熟のリン
パ球から生じる。ここで、成熟リンパ球は、迅速に分裂し、非常に大多数に増加
する。成熟するT細胞は、特定の抗原を認識しそして結合するその能力に基づい
て、免疫適格となる。免疫適格T細胞の活性化は、抗原がリンパ球表面レセプタ
ーに結合する場合に、誘発される。
めに使用される。外来DNAが細胞膜の内部に導入される場合、その細胞は、「
トランスフェクト」されている。多数のトランスフェクション技術が、当該分野
において一般に公知である。例えば、Grahamら(1973)Virolo
gy、52:456、Sambrookら(1989)Molecular C
loning、a laboratory manual、Cold Spri
ng Harbor Laboratories、New York、Davi
sら(1986)Basic Methods in Molecular B
iology、Elsevier、およびChuら(1981)Gene 13
:197を参照のこと。そのような技術を使用して、適切な宿主細胞中に1つ以
上の外来DNA部分を導入し得る。この用語は、遺伝子物質の安定な取り込みお
よび一過性の取り込みの両方をいい、そしてペプチド結合DNAおよび抗体結合
DNAの取り込みを含む。
ルスベクター、非ウイルスベクター、粒子キャリア、およびリポソーム)。典型
的には、「ベクター構築物」、「発現ベクター」および「遺伝子移入ベクター」
は、目的の遺伝子の発現を指向し得る任意の核酸構築物を意味し、標的細胞へ遺
伝子配列を移入し得る。従って、この用語は、クローニングビヒクルおよび発現
ビヒクル、ならびにウイルスベクターを含む。
細胞に対して比較的非毒性の化合物または組成物に対して細胞を感受性にする。
Moolten、F.L.(1994)Cancer Gene Ther.、
1:279〜287。自殺遺伝子の例は、単純疱疹ウイルスのチミジンキナーゼ
(HSV−tk)、シトクロムP450(Manomeら、(1996)Gen
e Therapy 3:513〜520)、ヒトデオキシシチジンキナーゼ(
Manomeら、(1996)Nature Medicine 2(5):5
67〜573)および細菌酵素シトシンデアミナーゼ(Dongら(1996)
Human Gene Therapy 7:713〜720)である。これら
の遺伝子を発現する細胞は、比較的非毒性のプロドラッグであるガンシクロビル
(HSV−tk)、シクロホスファミド(シトクロムP450 2B1)、シト
シンアラビノシド(ヒトのデオキシシチジンキナーゼ)または5−フルオロシト
シン(細菌シトシンデアミナーゼ)の効果に対して、感受性となる。Culve
rら(1992)Science 256:1550〜1552、Huberら
(1994)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 91:8302
〜8306。
が、むしろ遺伝子移入ベクターのより単純な調製、操作、特徴付けまたは試験を
可能にするために含まれる、遺伝子移入ベクター中に含まれるヌクレオチド配列
をいう。
子の1つは、化学的および/または物理的手段を通じて、第2の分子に特異的に
結合する。特異的結合剤の1つの例は、選択された抗体に対する抗体である。
類、例えば、チンパンジーおよび他の尾なしザル種およびサル種を含む);ウシ
、ヒツジ、ブタ、ヤギおよびウシのような家畜;イヌおよびネコのようなペット
;マウス、ラットおよびモルモットのようなげっ歯類を含む実験室動物;ニワト
リ、シチメンチョウ、および他のキジ類のトリ、アヒル、ガチョウなどのような
ペット、野生のトリおよび競技用のトリを含むトリ、を含む脊索動物亜門のメン
バーを意味する。この用語は、特定の年齢を意味しない。従って、成熟個体およ
び新生個体を含むことが意味される。これら全ての脊椎動物の免疫系は、同様に
作動するので、上記の系は、上記の任意の脊椎動物種における使用が意図される
。
なく、またそれ以外においても望まれないことのない物質、すなわち、望まれな
い生物学的効果を全く生じることなく、かつその物質が含まれる組成物のいずれ
の化合物とも有害な様式において相互作用することなく、処方物または組成物中
で個体に投与され得る物質が意味される。
の範囲内のpH(pH7.2およびpH8.0を含む)、より典型的には約7.
2〜7.6の範囲内のpH(pH7.2およびpH7.6を含む)が、意味され
る。
おけるような、感染または再感染の予防、(ii)症状の減少または除去、およ
び(iii)問題の病原体の実質的な除去または完全な除去、のいずれかをいう
。処置は、予防的(感染前)であっても、治療的(感染後)であってもよい。
目的の核酸分子を輸送し、そして特定の実施形態において、目的の核酸分子の発
現を指向し得る核酸構築物をいう。レンチウイルスベクターは、少なくとも1つ
の転写プロモーター/エンハンサーまたは遺伝子座決定エレメント、あるいは選
択的スプライシング、核RNAの搬出、メッセンジャーの転写後修飾、またはタ
ンパク質の翻訳後修飾のような他の手段によって遺伝子発現を制御する他のエレ
メントを含む。そのようなベクター構築物はまた、パッケージングシグナル、長
末端反復(LTR)もしくはその部分、ならびに使用されるレトロウイルスに適
切な正鎖プライマー結合部位および逆鎖プライマー結合部位を含まなければなら
ない(レトロウイルスベクター中に既に存在しない場合)。必要に応じて、組換
えレンチウイルスベクターはまた、ポリアデニル化を指向するシグナル、Neo
、TK、ハイグロマイシン、フレオマイシン、ヒスチジノール、またはDHFR
のような選択マーカー、ならびに1つ以上の制限部位、および翻訳終結配列を含
み得る。例として、そのようなベクターは、代表的に5’LTR、tRNA結合
部位、パッケージングシグナル、第2鎖DNA合成の起点、および3’LTRま
たはそれらの部分を含む。
くとも1つの目的の遺伝子を輸送するレンチウイルスをいう。レトロウィルスは
また、選択マーカーを含み得る。組換えレンチウイルスは、感染の際に、その遺
伝子物質(RNA)をDNAに逆転写し、そしてこの遺伝子物質を宿主細胞のD
NA中に組み込み得る。レンチウイルスベクター粒子は、レンチウイルスエンベ
ロープ、非レンチウイルスエンベロープ(例えば、二重の(ampho)エンベ
ロープまたはVSV−Gエンベロープ)、あるいはキメラエンベロープを有し得
る。
遺伝子の発現を指向し得るアセンブリをいう。核酸発現ベクターは、目的の配列
または目的の遺伝子と作動可能に連結したプロモーターを含む。他の制御エレメ
ントもまた、存在し得る。本明細書において記載される発現カセットは、プラス
ミド構築物中に含まれ得る。発現カセットの成分に加えて、プラスミド構築物は
また、細菌の複製起点、1つ以上の選択マーカー、プラスミド構築物を1本鎖D
NAとして生成させるシグナル(例えば、M13複製起点)、多重クローニング
部位、および「哺乳動物」複製起点(例えば、SV40複製起点またはアデノウ
イルス複製起点)を含み得る。
るが、感染性組換えレトロウィルスの産生に必要なエレメントを含む細胞をいう
。典型的には、そのようなパッケージング細胞は、Gag、polおよびenv
タンパク質をコードし、タンパク質を発現し得る1つ以上の発現カセットを含む
。
ルスベクター粒子の産生のために必要なエレメントの全てを含む細胞をいう。
のパラメーターも変動し得るので、特定の処方物にもプロセスのパラメーターに
も限定されないことが理解されるべきである。本明細書中で用いられる用語は、
本発明の特定の実施形態を記載する目的のためでしかなく、限定されることは意
図されないこともまた理解されるべきである。
および材料が、本発明の実施で用いられ得、好ましい材料および方法が本明細書
中に記載される。
の改変) 本発明の1つの局面は、対応する野生型配列と比較して改善された発現を有す
る、HIV−1 C型GagおよびEnvのタンパク質コード配列ならびに関連
の配列の作製である。
よびAF110967株(例えば、Botswanaからの種々のCサブ型クロ
ーンの分子クローニングについてKorberら(1998)Human Re
troviruses and Aids,Los Alamos,New M
exico:Los Alamos National Laboratory
;Novitskyら(1999)J.Virol.73(5):4427−4
432を参照のこと)から得られたGagタンパク質野生型配列を改変すること
により、本明細書中で例示される。他のC型HIV−1改変体から得られたGa
g配列は、本明細書の教示に従って類似の様式で操作され得る。このような他の
改変体としては、以下が挙げられるがこれらに限定されない:例えば、Novi
tskyら(1999)前出;Myersら,下記;Virology,第3版
(W.K.Joklik編,1988);Fundamental Virol
ogy,第2版(B.N.FieldsおよびD.M.Knipe編,1991
);Virology,第3版(Fields,BN,DM Knipe,PM
Howley編,1996,Lippincott−Raven,Phila
delphia,PAおよびWorld Wide Web(インターネット)
において、例えば、http://hiv−web.lanl.gov/cgi
−bin/hivDB3/public/wdb/ssampublicおよび
http://hiv−web.lanl.gov.において記載されるような
HIV−1 C型の単離体から得られたGagタンパク質コード配列。
用法に匹敵するように、HIV−1コドン使用法パターンを改変した(実施例1
)。HIVコドン使用法は、コドントリプレットのヌクレオチドAまたはTの高
い含量を反映する。HIV−1コドン使用法の効果は、減少した翻訳能力および
mRNAの不安定性をもたらす、DNA配列における高いAT含量である。比較
すると、高度に発現されるヒトコドンは、ヌクレオチドGまたはCを好む。Ga
gコード配列は、高度に発現されるヒト遺伝子において見出されるコドン使用法
に匹敵するように改変された。
性)エレメント(INS)が存在する。RREは、HIVコードRev−タンパ
ク質と相互作用して、INSの発現下方調節効果を克服する二次RNA構造であ
る。RREおよびRevの転写後活性化機構を克服するために、不安定性エレメ
ントは、コードされるタンパク質のリーディングフレームを変更しない複数の点
変異を導入することによって不活化され得る。不活化されたRRE部位を有する
Cサブ型Gagコード配列を、図1(配列番号3)、図2(配列番号4)、図5
(配列番号20)および図6(配列番号26)に示す。
虫細胞を含むがこれに限定されない他の型の細胞株)において、野生型コード配
列と比較して改善された発現をもたらす。さらに、この配列の発現は、これらの
細胞株によるウイルス様粒子(VLP)の産生をもたらす(以下を参照のこと)
。
v配列は、HIV−1のC型のAF110968株およびAF110975株か
ら得られる(例えば、Botswanaからの種々のサブ型Cクローンの分子ク
ローニングについては、Novitskyら(1999)J.Virol.73
(5):4427−4432を参照のこと)。他のC型HIV−1改変体から得
られたEnv配列は、本明細書の教示に従って同様の様式で操作され得る。この
ような他の改変体としては、上記の、HIV−1のC型の単離体から得られたE
nvタンパク質コード配列が挙げられるがこれに限定されない。
コドン使用法と匹敵するように、Envについてのコドン使用法パターンを、G
agについて上記のように改変した。実験を、本発明の支持の下で行って、合成
Env配列が、ネイティブなEnv配列と比較してより高いレベルでタンパク質
産生し得ることを示し得る。
虫細胞を含むがこれに限定されない他の型の細胞株)において、野生型コード配
列と比較して改善された発現をもたらす。類似のEnvポリペプチドコード配列
を得て、最適化し、そしてGagについて上記で記載された単離体を含む種々の
単離体からの改善された発現について試験し得る。
) 実験を行って、HIV−1 Gag−プロテアーゼ配列およびGag−ポリメ
ラーゼ配列の類似の改変もまた、ポリタンパク質の改善された発現、ならびにこ
のような改変されたコード配列から産生されるポリペプチドによって形成された
VLPの産生をもたらすことを示し得る。
フレームシフトまでの領域に制限され、そして代表的にGagリーディングフレ
ームの最後で再度始まる;しかし、フレームシフト翻訳領域内の領域もまた改変
され得る。さらに、Gag−プロテアーゼポリペプチドコード配列のコード配列
内に位置する阻害性(または不安定性)エレメント(INS)もまた変更され得
る。
−プロテアーゼ配列についてのコドン使用法と類似であり得る。
、免疫原性応答が所望される他のポリペプチド(キメラポリペプチドを作製する
)へと融合され得る。
らに限定されない:さらなるウイルスエピトープ/抗原をコードする配列{以下
を含むがこれらに限定されない:HCV抗原(例えば、E1、E2;1998年
2月3日に発行された、Houghton,M.ら,米国特許第5,714,5
96号;1998年1月27日に発行された、Houghton,M.ら,米国
特許第5,712,088号;1997年11月4日に発行された、Hough
ton,M.ら,米国特許第5,683,864号;1998年3月17日に発
行された、Weiner,A.J.ら,米国特許第5,728,520号;19
98年6月16日に発行された、Weiner,A.J.ら,米国特許第5,7
66,845号;1997年9月23日に発行された、Weiner,A.J.
ら,米国特許第5,670,152号)、HIV抗原(例えば、tat、rev
、nefおよび/またはenv由来)};ならびに腫瘍抗原/エピトープをコー
ドする配列。さらなる配列は、以下に記載される。また、互いに対するGagお
よび他のコード配列の配向についてのバリエーションは、以下に記載される。
プチドコード配列は、C型HIV単離体から入手され得る(例えば、Myers
ら、Los Alamos Database,Los Alamos Nat
ional Laboratory,Los Alamos,New Mexi
co(1992);Myersら,Human Retroviruses a
nd Aids,1997,Los Alamos,New Mexico:L
os Alamos National Laboratoryを参照のこと)
。合成発現カセットは、このようなコード配列を出発物質として、本明細書の教
示(例えば、実施例1を参照のこと)に従って用いて作製され得る。
現カセット配列(例えば、図1、2、5および6(配列番号3、4、20および
21)に対して85%を超える、好ましくは90%を超える、より好ましくは9
5%を超える、そして最も好ましくは98%を超える配列同一性を有する、関連
するGagポリペプチドコード配列が挙げられる。
、配列番号5〜17)に対して85%を超える、好ましくは90%を超える、よ
り好ましくは95%を超える、そして最も好ましくは98%を超える配列同一性
を有する、関連するEnvポリペプチドコード配列が挙げられる。種々のコード
領域を図3および図4に示し、例えば、図3(AF110968)では、ヌクレ
オチド1〜81(配列番号18)はシグナルペプチドをコードし、ヌクレオチド
82〜1512(配列番号6)はgp120ポリペプチドをコードし、ヌクレオ
チド1513〜2547(配列番号10)はgp41ポリペプチドをコードし、
ヌクレオチド82〜2025(配列番号7)はgp140ポリペプチドをコード
し、そしてヌクレオチド82〜2547(配列番号8)はgp160ポリペプチ
ドをコードする。
をコードする合成配列の発現) 本発明の合成Gagコード配列および合成Envコード配列(発現カセット)
は、発現のレベルを評価するために、そしてGagの場合、VLPの産生を評価
するために多数の種々の発現ベクター中にクローン化され得る。EnvおよびG
agについての合成DNAフラグメントは、真核生物発現ベクター(一過性発現
ベクター、CMVプロモーターに基づく哺乳動物ベクター、およびバキュロウイ
ルス発現系において使用するためのシャトルベクターを含む)中にクローン化さ
れ得る。対応する野生型配列もまた、同じベクター中にクローン化され得る。
型(例えば、A.T.C.C.から入手可能な293細胞株、RD細胞株、CO
S−7細胞株およびCHO細胞株)中にトランスフェクトされ得る。次いで、こ
れらの細胞株は、適切な条件下で培養され、そしてp24(Gag)またはgp
160もしくはgp120(Env)発現の上清中でのレベルが評価され得る(
実施例2)。Envポリペプチドとしては、以下が挙げられるがこれらに限定さ
れない:例えば、ネイティブgp160、オリゴマーgp140、モノマーgp
120、ならびにこれらのポリペプチドの改変された配列。これらのアッセイの
結果は、合成Env、GagおよびGag−プロテアーゼコード配列の発現が、
対応する野生型配列よりも有意に高いことを実証する。
成Env発現カセットを含む細胞が、予想されるタンパク質を、ネイティブの発
現カセットを含む細胞よりも高い、細胞あたりの濃度で産生することを示し得る
。このGagタンパク質およびEnvタンパク質は、細胞溶解産物および上清の
両方において見られ得る。産生レベルは、本発明の合成発現カセットでトランス
フェクトした細胞についての細胞上清において有意に高い。
た哺乳動物細胞由来の上清の分画を用いて、このカセットが、Gagタンパク質
およびEnvタンパク質の両方の、そしてGagの場合、VLPの、野生型配列
と比較して優れた産生を提供することを示し得る。
v含有ポリペプチドの効率的な発現は、以下の利点を提供する:このポリペプチ
ドは、バキュロウイルス夾雑物を含まないこと;FDAによって承認された樹立
された方法による産生;純度の上昇;(ネイティブのコード配列と比較して)よ
り高い収率;および本発明の構築物を用いて得られる発現の増加がないと実行可
能でないCHO細胞中でGag含有ポリペプチドおよび/またはEnv含有ポリ
ペプチドを産生する新規方法。例示的な哺乳動物細胞株としては、以下が挙げら
れるがこれらに限定されない:BHK、VERO、HT1080、293、29
3T、RD、COS−7、CHO、Jurkat、HUT、SUPT、C816
6、MOLT4/クローン8、MT−2、MT−4、H9、PM1、CEMおよ
びCEMX174(このような細胞株は、例えば、A.T.C.C.から入手可
能である)。
た場合に高レベルの発現およびVLP産生を示す。合成Env発現カセットはま
た、昆虫細胞における高レベルの発現を実証する。さらに、より高い総タンパク
質収率に加えて、合成ポリペプチドからの最終産物は、ネイティブなGagまた
はEnvからの最終産物よりも少ない量の夾雑バキュロウイルスタンパク質を一
貫して含む。
酵母ベクター中へと導入され得、これは次いで、酵母細胞へと形質転換され得、
そして酵母細胞によって効率的に発現され得る(Saccharomyces
cerevisea;1998年3月17日に発行された、Rosenberg
,S.およびTekamp−Olson,P.,米国再発行特許第35,749
号に記載されるようなベクターを用いて)。
、種々の発現ベクター中へと、選択された発現制御エレメントを用いて組み込ま
れ得る。任意の所定の細胞型について適切なベクターおよび制御エレメントは、
発現ベクターについての本明細書の教示および当該分野で公知の情報を考慮して
当業者によって選択され得る。
た細胞型における遺伝子の発現を可能にする、所望のコード配列に作動可能に連
結された制御エレメントを含むベクター中に挿入され得る。例えば、哺乳動物細
胞発現のための代表的なプロモーターとしては、とりわけ、以下が挙げられる:
SV40初期プロモーター、CMVプロモーター(例えば、CMV前初期プロモ
ーター(CMVプロモーターはイントロンAを含み得る))、RSV、HIV−
Ltr、マウス乳腺癌ウイルスLTRプロモーター(MMLV−ltr)、アデ
ノウイルス主要後期プロモーター(Ad MLP)、および単純ヘルペスウイル
スプロモーター。他の非ウイルス性プロモーター(例えば、マウスメタロチオネ
イン遺伝子由来のプロモーター)はまた、哺乳動物発現についての用途を見出す
。代表的に、転写終結配列およびポリアデニル化配列はまた、翻訳終止コドンに
対して3’側に位置して存在する。好ましくは、コード配列に対して5’側に位
置する、翻訳開始の最適化のための配列もまた存在する。転写ターミネーター/
ポリアデニル化シグナルの例としては、Sambrookら,前出に記載される
ような、SV40由来の転写ターミネーター/ポリアデニル化シグナル、ならび
にウシ成長ホルモンターミネーター配列が挙げられる。スプライスドナー部位お
よびスプライスアクセプター部位を含むイントロンもまた、本発明での使用のた
めに構築物中で設計され得る(Chapmanら,Nuc.Acids Res
.(1991)19:3979−3986)。
ベルを増加させ得る。例としては、以下が挙げられる:Dijkemaら,EM
BO J.(1985)4:761に記載されるようなSV40初期遺伝子エン
ハンサー、Gormanら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA(
1982b)79:6777に記載されるようなラウス肉腫ウイルスの長末端反
復配列(LTR)に由来するエンハンサー/プロモーターおよびBoshart
ら,Cell(1985)41:521に記載されるようなヒトCMVに由来す
るエレメント(例えば、CMVイントロンA配列(Chapmanら,Nuc.
Acids Res.(1991)19:3979−3986)に含まれるエレ
メント)。
列は、適切な宿主系でのポリペプチドの発現を生じるために多数の市販のベクタ
ー中にクローン化され得る。これらの系としては、以下が挙げられるがこれらに
限定されない:バキュロウイルス発現{Reilly,P.R.ら,BACUL
OVIRUS EXPRESSION VECTORS:A LABORATO
RY MANUAL(1992);Beamesら,Biotechnique
s 11:378(1991);Pharmingen;Clontech,P
alo Alto,CA)}、ワクシニア発現{Earl,P.L.ら,「Ex
pression of proteins in mammalian ce
lls using vaccinia」、Current Protocol
s in Molecular Biology(F.M.Ausubelら編
),Greene Publishing Associates & Wil
ey Interscience,New York(1991);1992年
8月4日に発行されたMoss,B.ら,米国特許第5,135,855号}、
細菌中での発現{Ausubel,F.M.ら,CURRENT PROTOC
OLS IN MOLECULAR BIOLOGY,John Wiley
and Sons,Inc.,Media PA;Clontech}、酵母中
での発現{1998年3月17日に発行されたRosenberg,S.および
Tekamp−Olson,P.,米国再発行特許第35,749号;1997
年5月13日に発行されたShuster,J.R.,米国特許第5,629,
203号;Gellissen,G.ら,Antonie Van Leeuw
enhoek,62(1−2):79−93(1992);Romanos,M
.A.ら,Yeast 8(6):423−488(1992);Goedde
l,D.V.,Methods in Enzymology 185(199
0);Guthrie,C.およびG.R.Fink,Methods in
Enzymology 194(1991)}、哺乳動物細胞中での発現{Cl
ontech;Gibco−BRL,Ground Island,NY;例え
ば、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞株(Haynes,J.ら,N
uc.Acid.Res.11:687−706(1983);1983,La
u,Y.F.ら,Mol.Cell.Biol.4:1469−1475(19
84);Kaufman,R.J.,「Selection and coam
plification of heterologous genes in
mammalian cells」,Methods in Enzymol
ogy,第185巻,537−566頁、Academic Press,In
c.,San Diego CA(1991)}、および植物細胞中での発現{
植物クローン化ベクター,Clontech Laboratories,In
c.,Palo Alto,CAおよびPharmacia LKB Biot
echnology,Inc.,Pistcataway,NJ;Hood,E
.ら,J.Bacteriol.168:1291−1301(1986);N
agel,R.ら,FEMS Microbiol.Lett.67:325(
1990);Anら,「Binary Vectors」など、Plant M
olecular Biology Manual A3:1−19(1988
);Miki,B.L.A.ら,249−265頁など、Plant DNA
Infectious Agents(Hohn,T.ら編)Springer
−Verlag,Wien,Austria(1987);Plant Mol
ecular Biology:Essential Techniques,
P.G.JonesおよびJ.M.Sutton,New York,J.Wi
ley,1997;Miglani,Gurbachan Dictionar
y of Plant Genetics and Molecular Bi
ology,New York,Food Products Press,1
998;Henry,R.J.,Practical Application
s of Plant Molecular Biology,New Yor
k,Chapman & Hall,1997}。
能にする発現制御エレメントを含む発現ベクターが含まれる。この制御エレメン
トは一般に、プロモーター、翻訳開始コドン、ならびに翻訳終結配列および転写
終結配列、ならびに挿入片をベクター中へと導入するための挿入部位を含む。翻
訳制御エレメントは、M.Kozak(例えば、Kozak,M.,Mamm.
Genome 7(8):563−574,1996;Kozak,M.,Bi
ochimie 76(9):815−821,1994;Kozak,M.,
J Cell Biol 108(2):229−241,1989;Koza
k,M.およびShatkin,A.J.,Methods Enzymol
60:360−375,1979)によって概説された。
細胞株による組換えタンパク質産生は、哺乳動物発現系であるという利点を有す
る。さらに、ワクシニアウイルス発現は、以下を含むいくつかの利点を有する:
(i)その広範な宿主域;(ii)組換えタンパク質の信頼のおける転写後改変
、プロセシング、折り畳み、輸送、分泌、およびアセンブリー;(iii)比較
的可溶性の組換えタンパク質の高レベルの発現;ならびに(iv)外来DNAを
収容する大きな能力。
組換え発現されたポリペプチドは代表的に、溶解された細胞または培養培地から
単離される。精製は、以下を含む、当該分野で公知の方法によって実施され得る
:塩分画、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾過、サイズ排除クロマトグラ
フィー、サイズ分画およびアフィニティークロマトグラフィー。免疫アフィニテ
ィークロマトグラフィーは、例えば、Gag抗原またはEnv抗原に基づいて生
成された抗体を用いて使用され得る。
有タンパク質を発現することの利点としては、以下が挙げられるがこれらに限定
されない:大規模産生について充分に樹立されたプロトコル;VLPを生成する
能力;細胞株は、優良製造プロセス(good manufacturing
process)(GMP)基準を満たすに適切であること;哺乳動物細胞につ
いての培養条件は当該分野で公知であること。
得る。
の本発明の構築物の使用) ヒト免疫不全ウイルス1型(HIV−1)の群特異的抗原(Gag)は、種々
の真核生物細胞から出芽によって放出される非感染性ウイルス様粒子(VLP)
へと自己アセンブリーする(Freed,E.O.,Virology 251
:1−15,1998によって概説される)。本発明の合成発現カセットは、種
々の異なる細胞型(哺乳動物細胞を含むがこれに限定されない)を用いたHIV
−Gagウイルス様粒子(VLP)の産生のために効率的な手段を提供する。
の適切な提示のためのマトリクスとして用いられ得る。
、ネイティブGagコード配列と比較して優れた産生を提供することを実証する
ために、本発明に支持されて行われ得る。さらに、VLP産生の電子顕微鏡評価
は、予想されたサイズの遊離および出芽した未成熟ウイルス粒子が合成発現カセ
ットを含む細胞によって産生されることを示し得る。
ルス様粒子の産生に用いて、いくつかの利点を提供する。第1に、VLPは、向
上した品質で産生され得、VLPの単離および精製をより容易にする。第2に、
VLPは、種々の細胞型において合成発現カセットを用いて産生され得る(特に
、CHO細胞のような哺乳動物細胞株がVLP産生に用いられ得る)。CHO細
胞を用いた産生は、以下を提供する:(i)VLP形成;(ii)正確なミリス
チル化および出芽;(iii)非哺乳動物細胞夾雑物(例えば、昆虫ウイルスお
よび/または細胞)が存在しないこと;ならびに(iv)精製の容易さ。本発明
の合成発現カセットはまた、哺乳動物細胞株以外の細胞型における発現の増強に
有用である。例えば、合成発現カセットをコードするバキュロウイルスベクター
での昆虫細胞の感染は、(野生型コード配列と比較して)より高レベルの総Ga
gタンパク質収率およびより高いレベルのVLP産生をもたらす。さらに、バキ
ュロウイルス−Gag合成発現カセットに感染させた昆虫細胞由来の最終産物は
一貫して、野生型コード配列を用いた場合の最終産物よりも少ない量の夾雑昆虫
タンパク質を含む。
る場合、自発的に形成し得る。従って、本発明の合成発現カセットを用いて産生
されるVLPは、組換え技術を用いて便利に調製される。以下に考察されるよう
に、本発明のGagポリペプチドコード合成発現カセットは、目的の他のポリペ
プチドコード配列(例えば、HIVプロテアーゼ、HIVポリメラーゼ、HCV
コア;Env;合成Env;実施例1を参照のこと)を含み得る。このような合
成発現カセットの発現は、Gagポリペプチドならびに目的のポリペプチドを含
むVLPを生じる。
れたら、これらは、任意の適切なベクターまたはレプリコン中に発現のためにク
ローン化され得る。多数のクローン化ベクターが当業者に公知であり、そして適
切なクローン化ベクターの選択は、選択の問題である。一般に、Sambroo
kら,前出を参照のこと。次いで、このベクターを用いて、適切な宿主細胞を形
質転換する。適切な組換え発現系としては、当該分野で周知の以下が挙げられる
がこれらに限定されない:細菌発現系、哺乳動物発現系、バキュロウイルス/昆
虫発現系、ワクシニア発現系、セムリキ森林ウイルス(SFV)発現系、アルフ
ァウイルス(例えば、シンドビス、ベネズエラウマ脳炎(VEE))発現系、哺
乳動物発現系、酵母発現系およびXenopus発現系。特に好ましい発現系は
、哺乳動物細胞株、ワクシニア系、シンドビス系、昆虫系および酵母系である。
だがこれらに限定されない、American Type Culture C
ollection(A.T.C.C.)から入手可能な不死細胞株を含む:チ
ャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞、HeLa細胞、ベビーハムスター腎
臓(BHK)細胞、サル腎臓細胞(COS)など。同様に、細菌宿主(例えば、
E.coli、Bacillus subtilisおよびStreptoco
ccus spp.)は、本発現構築物を用いての用途を見出す。本発明で有用
な酵母宿主としては、とりわけ、Saccharomyces cerevis
iae、Candida albicans、Candida maltosa
、Hansenula polymorpha、Kluyveromyces
fragilis、Kluyveromyces lactis、Pichia
guillerimondii、Pichia pastoris、Schi
zosaccharomyces pombeおよびYarrowia lip
olyticaが挙げられる。バキュロウイルス発現ベクターと共に用いるため
の昆虫細胞としては、とりわけ、Aedes aegypti、Autogra
pha californica、Bombyx mori、Drosophi
la melanogaster、Spodoptera frugiperd
aおよびTrichoplusia niが挙げられる。例えば、Summer
sおよびSmith,Texas Agricultural Experim
ent Station Bulletin 第1555号(1987)を参照
のこと。
イルスおよびトリポックスウイルスを含む、ポックスファミリーのウイルス由来
の粒子)に用いられ得る。さらに、Tomeiら,J.Virol.(1993
)67:4017−4026およびSelbyら,J.Gen.Virol.(
1993)74:1103−1113に記載されるようなワクシニアに基づく感
染/トランスフェクション系はまた、本発明についての用途を見出す。本系にお
いて、細胞は最初に、バクテリオファージT7 RNAポリメラーゼをコードす
るワクシニアウイルス組換え体を用いてインビトロで感染される。このポリメラ
ーゼは、T7プロモーター保有テンプレートのみを転写するという点で精妙な特
異性を提示する。感染に続いて、細胞を、T7プロモーターによって駆動される
目的のDNAでトランスフェクトする。ワクシニアウイルス組換え体から細胞質
中で発現されたポリメラーゼは、トランスフェクトされたDNAをRNAへと転
写し、次いでこのRNAは、宿主の翻訳機構によってタンパク質へと翻訳される
。あるいは、T7は、「前駆体」系(StudierおよびMoffatt,J
.Mol.Biol.(1986)189:113−130)においてのように
、精製されたタンパク質または酵素として付加され得る。この方法は、大量のR
NAおよびその翻訳産物の、高レベルで、一過性の細胞質産生を提供する。
質転換された宿主細胞を、粒子形成ポリペプチドが発現され、そしてVLPが形
成され得る条件下で増殖させることによって産生される。適切な増殖条件の選択
は、当該分野の技術範囲内である。VLPが細胞内で形成される場合、細胞は、
細胞を溶解するがVLPを実質的にインタクトなままに保つ、化学的、物理的ま
たは機械的な手段を用いて破壊される。このような方法は、当業者に公知であり
、そして例えば、Protein Purification Applica
tions:A Practical Approach(E.L.V.Har
risおよびS.Angal編,1990)に記載される。
例えば、塩化セシウム(CsCl)勾配、スクロース勾配、ペレット化など)(
例えば、Kirnbauerら、J.Virol.(1993)67:6929
−6936を参照のこと)ならびに標準的精製技術(例えば、イオン交換クロマ
トグラフィーおよびゲル濾過クロマトグラフィーを含む)によって)単離される
(または実質的に精製される)。
されるVLPを用いて、免疫応答を惹起し得る。本発明の1つの利点は、VLP
が合成発現カセットを保有する哺乳動物細胞によって、以前は可能でなかったレ
ベルで産生され得ることである。上記で考察したように、VLPは、Gagポリ
ペプチド(例えば、Gag−プロテアーゼ,Gag−ポリメラーゼ、Env、合
成Envなど)に加えて種々の抗原を含み得る。本発明の合成発現カセットを用
いて産生された精製されたVLPは、通常はワクチン組成物の形態で、脊椎動物
被験体へと投与され得る。このようなワクチンが、例えば、アジュバントである
サブユニットタンパク質(例えば、Env)を含む、組み合わせワクチンもまた
用いられ得る。投与は、単独で処方されたかまたは他の抗原とともに処方された
VLPを用いて行われ得る。さらに、VLPは、DNA免疫のための合成発現カ
セットの送達(以下を参照のこと)および/または他のワクチンの送達の前に、
またはそれらの送達と同時に、またはそれらの送達に続いて投与され得る。また
、VLP投与の部位は、投与される他のワクチン組成物と同じまたは別であり得
る。遺伝子送達は、以下を含むがこれらに限定されない多数の方法によって達成
され得る:DNAでの免疫、アルファウイルスベクター、ポックスウイルスベク
ターおよびワクシニアウイルスベクター。
キャリア、補助物質、調節剤などを含み得る。免疫刺激組成物は、免疫学的応答
を開始させるのに十分な量のVLP/抗原を含む。適切な有効量は、当業者によ
って決定され得る。このような量は、慣用的試験によって決定され得る比較的広
い範囲に入り、そして一般に、約0.1μg〜約1000μg、より好ましくは
約1μg〜約300μgのオーダーのVLP/抗原の量である。
であるキャリアは、必要に応じて存在する。適切なキャリアは代表的に、大きな
、ゆっくりと代謝される高分子(例えば、タンパク質、多糖、ポリ酪酸、ポリグ
リコール酸、ポリマーアミノ酸、アミノ酸コポリマー、脂質凝集物(例えば、油
小滴またはリポソーム)および不活性ウイルス粒子)である。粒子状キャリアの
例としては、ポリメチルメタクリレートポリマー由来の粒子状キャリアならびに
ポリ(ラクチド)およびポリ(ラクチド−コ−グリコリド)に由来する巨大粒子
(PLGとして公知)が挙げられる。例えば、Jefferyら,Pharm.
Res.(1993)10:362−368;McGee JPら,J Mic
roencapsul.14(2):197−210,1997;O’Haga
n DTら,Vaccine 11(2):149−54,1993を参照のこ
と。このようなキャリアは、当業者に周知である。さらに、これらのキャリアは
、免疫刺激剤(「アジュバント」)として作用し得る。さらに、抗原は、細菌ト
キソイド(例えば、ジフテリア、破傷風、コレラなどに由来するトキソイド)な
らびにE.coliに由来する毒素へと結合体化され得る。
ジュバントとしては、以下が挙げられるがこれらに限定されない:(1)アルミ
ニウム塩(ミョウバン)(例えば、水酸化アルミニウム、リン酸アルミニウム、
硫酸アルミニウムなど);(2)水中油型エマルジョン処方物(ムラミルペプチ
ド(以下を参照のこと)または細菌細胞壁成分のような他の特定の免疫刺激剤を
有するかまたは有さない)(例えば、(a)5%スクアレン、0.5% Twe
en 80、および0.5% Span85を含み(必要に応じて種々の量のM
TP−PE(以下を参照のこと)を含むがその必要はない)、マイクロフルイダ
イザー(例えば、モデル110Yマイクロフルイダイザー(Microflui
dics,Newton,MA))を用いて1ミクロン未満の粒子へと処方され
た、MF59(国際公開第WO90/14837号))、(b)1ミクロン未満
のエマルジョンへとマイクロフルイダイズされたかまたはより大きな粒子サイズ
のエマルジョンを作製するためにボルテックスされたかのいずれかの、10%ス
クアレン、0.4% Tween 80、5% プルロニックブロックポリマー
L121およびthr−MDP(以下を参照のこと)を含むSAF、ならびに(
c)2%スクアレン、0.2% Tween 80、ならびにモノホスホリピド
A(MPL)、トレハロースジミコレート(TDM)および細胞壁骨格(CWS
)からなる群より選択される1以上の細菌細胞壁成分、好ましくは、MPL+C
WS(DetoxTM)を含む、RibiTMアジュバントシステム(RAS)(R
ibi Immunochem,Hamilton,MT));(3)サポニン
アジュバント(例えば、StimulonTM(Cambridge Biosc
ience,Worcester,MA)が用いられ得る)またはそれから作製
された粒子(例えば、ISCOM(免疫刺激複合体)));(4)完全フロイン
トアジュバント(CFA)および不完全フロイントアジュバント(IFA);(
5)サイトカイン(例えば、インターロイキン(IL−1、IL−2など)、マ
クロファージコロニー刺激因子(M−CSF)、腫瘍壊死因子(TNF)など)
;(6)免疫刺激CpGモチーフをコードするオリゴヌクレオチドまたはポリマ
ー分子(Davis,H.L.ら,J.Immunology 160:870
−876,1998;Sato,Y.ら,Science 273:352−3
54,1996)または抗原/オリゴヌクレオチドの複合体{ポリマー分子とし
ては、二本鎖および一本鎖のRNAおよびDNA、ならびにそれらの骨格改変物
(例えば、メチルホスホネート結合)が挙げられる);または(7)細菌ADP
リボシル化毒素(例えば、コレラ毒素(CT)、百日咳毒素(PT)またはE.
coli熱不安定性毒素(LT))の無毒化変異体(特にLT−K63(ここで
、リジンが、63位で野生型アミノ酸を置換している)、LT−R72(ここで
、アルギニンが、72位で野生型アミノ酸を置換している)、CT−S109(
ここで、セリンが109位で野生型アミノ酸を置換している)、およびPT−K
9/G129(ここで、リジンが9位で野生型アミノ酸を置換しており、そして
グリシンが129位でグリシンを置換している))(例えば、国際公開第WO9
3/13202号およびWO92/19265号を参照のこと);ならびに(8
)この組成物の有効性を増強する免疫刺激剤として作用する他の物質。さらに、
このようなポリマー分子としては、例えば、以下のような、しかしこれらに限定
されない代替的ポリマー骨格構造が挙げられる:ポリビニル骨格(Pitha,
Biochem Biophys Acta,204:39,1970a;Pi
tha,Biopolymers,9:965,1970b)およびモルホリノ
骨格(1992年8月25日に発行されたSummerton,J.ら,米国特
許第5,142,047号;1993年2月9日に発行されたSummerto
n,J.ら,米国特許第5,185,444号)。種々の他の荷電および非荷電
のポリヌクレオチドアナログが報告されている。以下を含むがこれらに限定され
ない、多数の骨格改変物が当該分野で公知である:非荷電結合(例えば、メチル
ホスホネート、ホスホトリエステル、ホスホアミデートおよびカルバメート)お
よび荷電結合(例えば、ホスホロチオエートおよびホスホロジチオエート)};
ならびに(7)VLP免疫刺激(またはワクチン)組成物の有効性を増強する免
疫刺激剤として作用する他の物質。ミョウバン、CpGオリゴヌクレオチドおよ
びMF59が好ましい。
アセチル−ムラミル−L−トレオニル−D−イソグルタミン(thr−MDP)
、N−アセチル−ノルムラミル−L−アラニル−D−イソグルタミン(N−ac
etyl−normuramyl−L−alanyl−D−isogluatm
e)(nor−MDP)、N−アセチルムラミル−L−アラニル−D−イソグル
タミニル−L−アラニン−2−(1’−2’−ジパルミトイル−sn−グリセロ
−3−ヒドロキシホスホリルオキシ)−エチルアミン(MTP−PE)など。
ケジュールであり得る。複数回用量スケジュールは、最初のクール(cours
e)のワクチン接種が、1〜10個の別々の用量であり得、次いで他の用量がそ
の後、免疫応答を維持および/または増強するように選択された時間間隔(例え
ば、第2の用量について1〜4ヶ月間)を置いて与えられ、そして必要な場合、
続いての用量が数ヵ月後に与えられるスケジュールである。この投薬レジメンは
また、少なくとも部分的に、被験体の必要性によって決定され、そして開業医の
判断に依存する。
での一次感染前に投与される。処置が(例えば、症状または再発の低減)所望さ
れる場合、このVLP組成物は一般に、一次感染後に投与される。
の作製) 多数のウイルスベースの系が、哺乳動物宿主細胞に関する遺伝子移入ベクター
としての使用のために、開発されてきた。例えば、レトロウイルス(特に、レン
チウイルスベクター)は、遺伝子送達系のための便利な土台を提供する。目的の
コード配列(例えば、遺伝子治療適用に有用な配列)が、当該分野で公知の技術
を使用して、遺伝子送達ベクター中に挿入され得、そしてレトロウイルス粒子中
にパッケージングされ得る。次いで、組換えウイルスが単離され得、そしてイン
ビボまたはエキソビボのいずれかで、被験体の細胞に送達され得る。多数のレト
ロウイルス系が、記載されてきた。それらは、例えば、以下を含む:米国特許第
5,219,740号;Millerら(1989)BioTechnique
s 7:980;Miller,A.D.(1990)Human Gene
Therapy 1:5;Scarpaら(1991)Virology 18
0:849;Burnsら(1993)Proc.Natl.Acad.Sci
.USA 90:8033;Boris−Lawrieら(1993)Cur.
Opin.Genet.Develop.3:102;GB 2200651;
EP 0415731;EP 0345242;WO 89/02468;WO
89/05349;WO 89/09271;WO 90/02806;WO
90/07936;WO 90/07936;WO 94/03622;WO
93/25698;WO 93/25234;WO 93/11230;WO
93/10218;WO 91/02805;U.S.5,219,740;
U.S.4,405,712;U.S.4,861,719;U.S.4,98
0,289およびU.S.4,777,127;米国特許出願番号第07/80
0,921;ならびにVile(1993)Cancer Res 53:38
60〜3864;Vile(1993)Cancer Res 53:962〜
967;Ram(1993)Cancer Res 53:83〜88;Tak
amiya(1992)J Neurosci Res 33:493〜503
;Baba(1993)J Neurosurg 79:729〜735;Ma
nn(1983)Cell 33:153;Cane(1984)Proc N
atl Acad Sci USA 81:6349;およびMiller(1
990)Human Gene Therapy 1. 他の実施形態において、遺伝子移入ベクターが、サイトカインまたは他の免疫
調節分子をコードするように構築され得る。例えば、ネイティブIL−2をコー
ドする核酸配列およびγ−インターフェロンをコードする核酸配列が、それぞれ
、米国特許番号第4,738,927号および同第5,326,859号に記載
されるように入手され得、一方、これらのタンパク質の有用な変異体が、米国特
許番号第4,853,332号に記載されるように入手され得る。mCSFの短
い形態をコードする核酸配列および長い形態をコードする核酸配列が、それぞれ
、米国特許番号第4,847,201号および同第4,879,227号に記載
されるように入手され得る。本発明の特定の局面において、サイトカインまた免
疫調節遺伝子を発現するレトロウイルスベクターが、本明細書中に記載されるよ
うに(例えば、本発明のパッケージング細胞株を使用して)そして国際出願番号
PCT US 94/02951「Compositions and Met
hods for Cancer Immunotherapy」に記載される
ように、作製され得る。
IL−1およびIL−2(Karupiahら(1990)J.Immunol
ogy 144:290〜298、Weberら(1987)J.Exp.Me
d.166:1716〜1733、Gansbaherら(1990)J.Ex
p.Med.172:1217〜1224;および米国特許番号第4,738,
927号);IL−3およびIL−4(Tepperら(1989)Cell
57:503〜512、Golumbekら(1991)Science 25
4:713〜716、および米国特許番号第5,017,691号);IL−5
およびIL−6(Brakenhofら(1987)J,Immunol.13
9:4116〜4121、および国際出願番号WO90/06370);IL−
7(米国特許番号第4,965,195号);IL−8、IL−9、IL−10
、IL−11、IL−12およびIL−13(Cytokine Bullet
in、Summer 1994);IL−14およびIL−15;α−インター
フェロン(Finterら(1991)Drugs 42:749〜765、米
国特許番号第4,892,743号および同第4,966,843号、国際公開
番号WO 85/02862、Nagataら(1980)Nature 28
4:316〜320、Famillettiら(1981)Methods i
n Enz.78:387〜394、Twuら(1989)Proc.Natl
.Acad.Sci.USA 86:2046〜2050;およびFaktor
ら(1990)Oncogene 5:867〜872);β−インターフェロ
ン(Seifら(1991)J.Virol.65:664〜671);γ−イ
ンターフェロン(Radfordら(1991)The American S
ociety of Hepatology 20082015、Watana
beら(1989)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 86:9
456〜9460、Gansbacherら(1990)Cancer Res
earch 50:7820〜7825、Maioら(1989)Can.Im
munol.Immunother.30:34〜42;および米国特許番号第
4,762,791号および同第4,727,138号);G−CSF(米国特
許番号第4,999,291号および同第4,810,643号);GM−CS
F(国際公開番号WO 85/04188)・ 免疫調節因子はまた、これらの分子のアゴニスト、アンタゴニスト、またはリ
ガンドであり得る。例えば、可溶形態のレセプターは、しばしば、これらの型の
因子のアンタゴニストとして挙動し得、同様に、これらの因子自体の変異形態も
アンタゴニストとして挙動し得る。
酸分子は、種々の供給源から容易に入手され得る。このような供給源としては、
例えば、American Type Culture Collection
のような寄託機関、またはBritish Bio−Technology L
imited(Cowley、Oxford England)のような商業的
供給源が、挙げられる。代表的例としては、以下が挙げられる:BBG 12(
127アミノ酸の成熟タンパク質をコードするGM−CSF遺伝子を含む)、B
BG 6(γ−インターフェロンをコードする配列を含む)、A.T.C.C.
受託番号39656(TNFをコードする配列を含む)、A.T.C.C.受託
番号20663(α−インターフェロンをコードする)、A.T.C.C.受託
番号31902、同31902および同39517(β−インターフェロンをコ
ードする)、A.T.C.C.受託番号67024(インターロイキン−1bを
コードする配列を含む)、A.T.C.C.受託番号39405、同39452
、同39516、同39626および同39673(インターロイキン−2をコ
ードする配列を含む)、A.T.C.C.受託番号59399、同59398、
および同67326(インターロイキン−3をコードする配列を含む)、A.T
.C.C.受託番号57592(インターロイキン−4をコードする配列を含む
)、A.T.C.C.受託番号59394および同59395(インターロイキ
ン−5をコードする配列を含む)、ならびにA.T.C.C.受託番号6715
3(インターロイキン−6をコードする配列を含む)。
O 94/02951およびWO)が、適切な制限酵素で消化され得、そして目
的の特定の遺伝子を含むDNAフラグメントが、標準的分子生物学技術を使用し
て、遺伝子移入ベクター中に挿入され得る(例えば、Sambrookら、前出
、またはAusbelら(編)Current Protocols in M
olecular Biology、Greene Publishig an
d Wiley−Interscienceを参照のこと)。
伝子を発現する細胞由来のcDNAライブラリーおよびゲノムライブラリーをス
クリーニングすることによってか、またはこのその遺伝子を含むことが公知のベ
クターからその遺伝子を誘導することによって)入手され得る。変化した細胞生
成物をコードする配列を含むプラスミドが、A.T.C.C.のような寄託機関
または商業的供給源から、入手され得る。目的のヌクレオチド配列を含むプラス
ミドが、適切な制限酵素で消化され得、そしてそのヌクレオチド配列を含むDN
Aフラグメントが、標準的分子生物学技術を使用して、遺伝子移入ベクター中に
挿入され得る。
フェノール抽出、およびcDNAまたはゲノムDNAのPCR)を使用して、そ
の配列を発現するかまたは含む、細胞から入手され得る。例えば、Smabro
okら、前出を、DNAを入手および単離するために使用される技術の記載に関
して参照のこと。簡潔には、目的の遺伝子を発現する細胞由来のmRNAが、オ
リゴ−dTプライマーまたはランダムプライマーを使用して、逆転写酵素を用い
て逆転写され得る。次いで、一本鎖cDNAが、所望の配列のいずれかの側の配
列に相補的なオリゴヌクレオチドプライマーを使用して、PCRにより増幅され
得る(米国特許番号第4,683,202号、同4,683,195号および同
4,800,159号を参照のこと。また、PCR Technology:P
rinciples and Applications for DNA A
mplification、Erlich(編)、Stockton Pres
s、1989も参照のこと)。
ば、Applied Biosystems Model 392 DNA S
ynthesizer(ABI、Foster City、Californi
aから入手可能))を使用して、合成によって作製され得る。このヌクレオチド
配列は、所望の発現産物に適切なコドンを用いて設計され得る。完全配列が、標
準的方法により調製された重複オリゴヌクレオチドから組み立てられ、そして完
全コード配列へと組み立てられる。例えば、Edge(1981)Nature
292:756;Nambairら(1984)Science 223:1
299;Jayら(1984)J.Biol.Chem.259:6311を参
照のこと。
、パッケージング細胞株の構築に使用され得る。
、遺伝子治療適用に広く利用されてきた(一般的には、Mannら(Cell
33:153、1993)、CaneおよびMulligan(Proc.Na
t’l.Acad.Sci.USA 81:6349、1984)、およびMi
llerら、Human Gene Therapy 1:5〜14、1990
を参照のこと)。
tRNA結合部位、パッケージングシグナル、目的の1つ以上の遺伝子に作動可
能に連結したプロモーター、第2鎖DNA合成の起点、および3’レンチウイル
スLTRを含み、このレンチウイルスベクターは、核輸送エレメントを含む。こ
の核輸送エレメントは、目的のコード配列(例えば、本発明の合成Gag発現カ
セットまたは合成Env発現カセット)の上流(5’側)または下流(3’側)
のいずれかに位置し得る。特定の実施形態において、この核輸送エレメントは、
RPEではない。1つの実施形態において、このパッケージングシグナルは、長
くしたパッケージングシグナルである。他の実施形態において、このプロモータ
ーは、組織特異的プロモーターであるか、あるいはCMVのようなプロモーター
である。他の実施形態において、このレンチウイルスベクターは、さらに内部リ
ボソーム侵入部位を含む。
うなレンチウイルスとしては、例えば、HIV、HIV−1、HIV−2、FI
VおよびSIVからなる群より選択される、レンチウイルスが挙げられる。
提供される。このカセットは、プロモーターならびに、合成Gagポリメラーゼ
とvpr、vpu、nefまたはvifのうちの少なくとも1つをコードする配
列を含み、このプロモーターは、Gagポリメラーゼ、およびvpr、vpu、
nef、またはvifに作動可能に連結されている。
れかを含む、宿主細胞(例えば、パッケージング細胞株)が提供される。例えば
、1つの局面において、合成Gagポリメラーゼおよび核輸送エレメントをコー
ドする配列を含む発現カセットを含む、パッケージング細胞株が、提供される。
このプロモーターは、Gagポリメラーゼをコードする配列に作動可能に連結さ
れている。パッケージング細胞株は、さらに、プロモーター、およびtat、r
ev、またはエンベロープをコードする配列を含み得、このプロモーターは、t
at、rev、Envタンパク質または改変Envタンパク質をコードする配列
に作動可能に連結されている。このパッケージング細胞株は、nef、vif、
vpu、またはvprのうちのいずれか1つ以上をコードする配列をさらに含み
得る。
ゼを保有する)は、安定に組み込まれている。このパッケージング細胞株は、レ
ンチウイルスベクターの導入に際して、代表的には粒子を産生する。この合成発
現カセットの発現を調節するプロモーターは、誘導性であり得る。代表的には、
このパッケージング細胞株は、レンチウイルスベクターの導入に際して、複製コ
ンピテントウイルスを本質的に含まない、粒子を産生する。
現カセットを含むか、または合成Env遺伝子の発現を指向する発現カセットを
含む、パッケージング細胞株が、提供される。(また、Andre,S.ら、J
ournal of Virology 72(2):1497〜1503、1
998;Haas,J.ら、Current Biology 6(3):31
5〜324、1996を、他の改変Env配列の記載については参照のこと)。
レンチウイルスベクターが、このパッケージング細胞株中に導入されて、ベクタ
ー産生細胞株が生成される。
列を保有または発現するように設計され得る。レンチウイルスベクターは、広範
な種類のレンチウイルスから容易に構築され得る(RNA Tumor Vir
uses、第2版、Cold Spring Harbor Laborato
ry、1985を参照のこと)。レンチウイルスの代表的例は、HIV、HIV
−1、HIV−2、FIVおよびSIVを含んだ。このようなレンチウイルスは
、患者の単離物から、またはより好ましくはAmerican Type Cu
lture Collectionのような寄託機関もしくはコレクションから
入手されるか、あるいは利用可能な技術を使用して公知の供給源から単離される
のいずれかであり得る。
イルスに由来し得る。例えば、所定の組換えレンチウイルスベクターにおいて、
LTRはHIVに、パッケージングシグナルはSIVに、そして第2鎖合成起点
はHrV−2に由来し得る。レンチウイルスベクター構築物は、以下:5’レン
チウイルスLTR、tRNA結合部位、パッケージングシグナル、1つ以上の異
種配列、第2鎖DNA合成の起点、および3’LTRを含み得、このレンチウイ
ルスベクターは、RREでない核輸送エレメントを含む。
のエレメントに細分される。これらのエレメントは、レトロウイルスの生物学的
活性を担う種々のシグナルを含み、そのようなシグナルとしては、例えば、U3
中に位置するプロモーターエレメントおよびエンハンサーエレメントが挙げられ
る。LTRは、プロウイルス(組み込みDNA形態)において、そのゲノムのい
ずれかの末端でのそのLTRの正確な反復によって、容易に同定され得る。本明
細書中で使用される場合、5’LTRは、5’プロモーターエレメント、ならび
にそのベクターのDNAの形態の逆転写および組み込みを可能にするに十分なL
TR配列を含むことが、理解されるべきである。3’LTRは、ポリアデニル化
シグナル、およびそのベクターのDNA形態の逆転写および組み込みを可能にす
るに十分なLTR配列を含むことが、理解されるべきである。
学的に活性であるために重要であり、そして当業者によって容易に同定され得る
。例えば、レトロウイルスtRNAは、ワトソン−クリック塩基対形成により、
tRNA結合部位に結合し、そしてレトロウイルスゲノムとともに、ウイルス粒
子中に保有される。次いで、このtRNAは、逆転写酵素によるDNA合成のプ
ライマーとして利用される。このtRNA結合部位は、5’LTRのすぐ下流に
あるその位置に基づいて、容易に同定され得る。同様に、第2鎖DNA合成の起
点は、その名前は意味する通り、レトロウイルスの第2鎖DNAの合成に重要で
ある。この領域は、ポリリジントラクトとも呼ばれ、3’LTRのすぐ下流に位
置する。
加えて、組換えレトロウイルスベクター構築物はまた、パッケージングシグナル
、ならびに目的も1つ以上の遺伝子またはコード配列も含み得る。さらに、この
レンチウイルスベクターは、好ましい実施形態においてはRREではない、核輸
送エレメントを有する。適切な核輸送エレメントの代表的例は、ラウス肉腫ウイ
ルス中のエレメント(Ogertら、J.Virol 70、3834〜384
3、1996)、ラウス肉腫ウイルス中のエレメント(LiuおよびMertz
、Genes&Dev.9、1766〜1789、1995)およびシミアンレ
トロウイルスI型のゲノム中のエレメント(Zolotukhinら、J Vi
rol.68、7944〜7952、1984)を含む。他の可能なエレメント
としては、ヒストン遺伝子中のエレメント(Kedes、Annu.Rev.B
iochem.48、837〜870、1970)、α−インターフェロン遺伝
子(Nagataら、Nature 287、401〜408、1980)、β
−アドレナリン作用性レセプター遺伝子(Koilkaら、Nature 32
9、75〜79、1987)、およびc−Jun遺伝子(Hattorieら、
Proc.Natl.Acad.Sci.USA 85、9148〜9152、
1988)が、挙げられる。
びEnvのコード配列の両方を欠く。組換えレンチウイルスベクターは、代表的
には、Gagポリメラーゼ遺伝子およびEnv遺伝子において見出される、20
個未満、好ましくは15個、より好ましくは10個、および最も好ましくは8個
連続するヌクレオチドを含む。本発明の1つの利点は、組換えレトロウイルスベ
クター構築物のためのパッケージング細胞株を構築するために使用され得る、合
成Gagポリメラーゼ発現カセットが、野生型Gagポリメラーゼ配列に対して
ほとんど相同性を有さず、従って、この合成配列と野生型配列との間の相同組換
えの可能性をかなり減少または排除することである。
駆動するための組織特異的プロモーターを含み得る。
れるように、作製される。これは、ジシストロン性カセットまたはオリゴシスト
ロン性カセットの使用を介して(例えば、コード領域が、80ヌクレオチド以下
離れている場合、一般的には、Levinら、Gene 108:167〜17
4、1991を参照のこと)か、または内部リボソーム侵入部位(「IRES」
)の使用を介して、達成され得る。
ング細胞株は、本明細書中に提供される開示を考慮して、容易に調製され得る。
簡略には、そのパッケージング細胞株が由来する親細胞株が、種々の哺乳動物細
胞株(例えば、293細胞、RD細胞、COS−7細胞、CHO細胞、BHK細
胞、VERO細胞、HT1080細胞、および骨髄腫細胞が挙げられる)から選
択され得る。
セットが、欠失されているベクターのトランス成分を相補または供給するために
、その細胞株中に導入される。
ては、合成Env発現カセット、合成Gag発現カセット、合成Gagプロテア
ーゼ発現カセット、および合成Gagポリメラーゼ発現カセットが挙げられる。
これらのカセットは、プロモーター、ならびに例えば、Gagポリメラーゼ、お
よびvpr、vpu、nefまたはvifのうちの少なくとも1つをコードする
配列を含み、このプロモーターは、Gagポリメラーゼ、およびvpr、vpu
、nefまたはvifに作動可能に連結されている。上記のように、ネイティブ
のEnvコード配列および/または改変Envコード配列もまた、これらの発現
カセットにおいて利用され得る。
され得る。例えば、1つの局面において、合成Gagポリメラーゼをコードする
配列および核輸送エレメントを含む、発現カセットを含むパッケージング細胞株
が、提供される。このプロモーターは、Gagポリメラーゼをコードする配列に
作動可能に連結されている。他の局面において、プロモーター、ならびにtat
、rev、Envもしくは他のHIV抗原またはこれら由来のエピトープをコー
ドする配列を含む、パッケージング細胞株が提供される。このプロモーターは、
tat、rev、Env、もしくはHIV抗原またはエピトープをコードする配
列に、作動可能に連結されている。さらなる実施形態において、このパッケージ
ング細胞株は、nef、vif、vpu、またはvprのうちのいずれか1つ以
上をコードする配列を含み得る。例えば、このパッケージング細胞株は、単独で
nef、vif、vpuまたはvprのみを含んでも、nefおよびvifを含
んでも、nefおよびvpuを含んでも、nefおよびvprを含んでも、vi
fおよびvpuを含んでも、vifおよびvprを含んでも、vpuおよびvp
rを含んでも、nef、vifおよびvpuを含んでも、nef、vifおよび
vprを含んでも、nef、vpuおよびvprを含んでも、vif、vpuお
よびvprを含んでも、またはnef、vif、vpuおよびvprの4つすべ
てを含んでもよい。
施形態において、このパッケージング細胞株は、レンチウイルスベクターの導入
に際して、粒子を産生する。さらなる実施形態において、このプロモーターは誘
導性である。特定の好ましい実施形態において、このパッケージング細胞株は、
レンチウイルスベクターの導入に際して、複製コンピテントウイルスを含まない
粒子を産生する。
る。(i)代表的には組み込まれている、Gagコード配列、Polコード配列
、およびEnvコード配列の安定なコピーを保有し、そして(ii)受容可能な
レベルのこれらのポリペプチドを発現している(発現は、当該分野で公知の方法
によって評価され得る。例えば、実施例1〜4を参照のこと)、移入された細胞
が、選択される。
、この欠損ウイルスは、このパッケージング細胞株中へと移入される。このパッ
ケージング細胞株は、目的の配列を含むこの欠損ウイルスのゲノムがパッケージ
ングされる、ウイルス様粒子を生成するために必要な機能を提供する。次いで、
これらのVLPが単離され、そして例えば、遺伝子送達または遺伝子治療におい
て使用され得る。
めに使用され得、これは例えば、他の抗原を伴う投与またはワクチン組成物中で
の投与のためのアジュバントとして使用され得る。また、このパッケージング細
胞株中のポリペプチド(例えば、抗原)をコードする選択された目的の配列の同
時発現はまた、このVLP中での選択されたポリペプチドの捕捉および/または
このVLPと選択されたポリペプチドとの会合を生じ得る。
おいて使用される。HIV抗原は、例えば、そのポリペプチド抗原のコード配列
にインフレームで融合された合成Gag発現カセットを含む、DNA免疫構築物
中に含まれ得、この構築物の発現が、目的の抗原を提示するVLPを生じる。
v、nef、vif、vpu、vpr、および他のHIV抗原またはエピトープ
を含む。例えば、このパッケージング細胞株は、nefのみ、および以下を含む
がこれらに限定されないHIV−1(HTLV−III、LAV、ARVなどと
も呼ばれる)を含み得る:gp120、gp41、gp160のような抗原(ネ
イティブおよび改変型の両方);Gag;ならびにHIVIIIb、HIVSF2、H
IV−1SF162、HIV−1SF170、HIVLAV、HIVLAI、HIVMN、HIV−
1CM235、HIV−1US4、多岐のサブタイプ(例えば、サブタイプA〜G、およ
びO)からの他のHIV−1株、HIV−2株および多岐のサブタイプ(例えば
、HIV−2UC1およびHIV−2UC2)を含むがこれらに限定されない種々の単
離株由来のpol。例えば、Myersら、Los Alamos Datab
ase、Los Alamos National Laboratory、L
os Alamos、New Mexico;Myersら、Human Re
troviruses and Aids、1990、Los Alamos、
New Mexico:Los Alamos National Labor
atoryを参照のこと。
、例えば、実施例4に記載されるように実施され得る。マウスが、Gag(およ
び/またはEnv)合成発現カセットおよびGag(および/またはEnv)野
生型発現カセットの両方で免疫される。プラスミドDNAでのマウスの免疫は、
この合成発現カセットが、ネイティブの発現カセットと比較して、免疫原性の明
らかな改善を提供することを示す。また、第2回のブースト免疫が、例えば、2
週間後に、2次免疫応答を誘導する。さらに、CTLアッセイの結果は、DNA
免疫による細胞傷害性Tリンパ球(CTL)応答の誘導について、合成Gag(
および/またはEnv)発現カセットの能力の増強を示す。
感染(特に、C型HIV感染)を処置または予防するために使用され得ることが
、容易に明らかである。
遺伝子を発現する細胞由来のcDNAライブラリーおよびゲノムライブラリーを
スクリーニングすることによるか、またはその遺伝子を含むことが公知であるベ
クターからその遺伝子を誘導することによる)を使用して、入手され得る。さら
に、所望の遺伝子が、その遺伝子をふくむ細胞および組織から直接、標準的方法
(例えば、フェノール抽出、およびcDNAまたはゲノムDNAのPCR)を使
用して単離され得る。例えば、Sambrookら、前出、をDNAを入手およ
い単離するために使用される技術の説明については参照のこと。目的の遺伝子は
また、クローン化する以外に、合成によっても作製され得る。そのヌクレオチド
配列は、所望される特定のアミノ酸配列に適切なコドンを用いて設計され得る。
一般的に、その配列が発現される意図する宿主に好ましいコドンが選択される。
完全配列は、標準的方法により調製される重複オリゴヌクレオチドから組み立て
られ、そして完全コード配列へと組み立てられる。例えば、Edge、Natu
re(1981)292:756;Nambairら、Science(198
4)223:1299;Jayら、J.Biol.Chem.(1984)25
9:6311;Stemmer,W.P.C.(1995)Gene 164:
49〜53を参照のこと。
ットまたは合成Env発現カセットを含むベクター中に挿入され得る。この抗原
は、組み合わされた配列が発現される場合に、Gagポリペプチドおよび目的の
抗原(例えば、Env(ネイティブまたは改変型)、またはHIV由来の他の抗
原)を含むVLPの産生を生じるように、合成Gagコード配列中に挿入される
。挿入が、コード配列内かまたはコード配列のいずれかの末端(5’末端(発現
されたGagポリペプチドのアミノ末端);3’末端(発現されるGagポリペ
プチドのカルボキシ末端))で行われ得る(Wagner,R.ら、Arch
Virol.127:117〜137、1992;Wagner,R.ら、Vi
rology 200:162〜175、1994;Wu,X.ら、J.Vir
ol.69(6):3389〜3398、1995;Wang,C−T.ら、V
irology 200:524〜534、1994;Chazal,N.ら、
Virology 68(1)111〜122、1994;Griffiths
,J.C.ら、J.Virol.67(6):3191〜3198、1993;
Reicin,A.S.ら、J.Virol.69(2):642〜650、1
995)。
ブリーおよび発現効率に影響することなく、欠失され得る(Borsetti,
A.ら、J.Virol.72(11)9313〜9317、1998;Gam
ier,L.ら、J.Virol 72(6):4667〜4677、1998
;Zhang,Y.ら、J.Virol 72(3):1782〜1789、1
998;Wang,C.ら、J.Virol 72(10):7950〜795
9、1998)。本発明の1つの実施形態において、高レベルで発現する合成G
ag発現カセットの免疫原性は、異なる構造的HIV抗原または非構造的HIV
抗原、マルチエピトープカセット、あるいはサイトカイン配列をGag配列の欠
失している領域に挿入することによって、増加され得る。このような欠失は、本
発明の教示および当業者に利用可能な情報に従って、作製され得る。このアプロ
ーチの1つの潜在的利点は、異種ポリペプチドに融合した全長配列を使用するこ
とに比較して、高い、発現産物の発現効率/分泌効率であり得る。
含有ポリペプチドへのミリスチン酸部分の付加のシグナルをコードする、コード
配列(例えば、Met−Glyをコードする配列)を5’末端に含む。
って経験的に決定され得る。
作動可能に連結されたコントロールエレメントを含み、このエレメントによって
、被験体種におけるインビボでの遺伝子発現が可能になる。例えば、哺乳動物細
胞発現のための代表的プロモーターとしては、とりわけ、SV40初期プロモー
ター、CMVプロモーター(例えば、CMV前初期プロモーター)、マウス乳腺
癌ウイルスLTRプロモーター、アデノウイルス主要後期プロモーター(Ad
MLP)、および単純ヘルペスウイルスプロモーターが、挙げられる。他の非ウ
イルス性プロモーター(例えば、マウスメタロチオネイン遺伝子由来のプロモー
ター)もまた、哺乳動物発現のための用途が見出される。代表的には、転写終結
配列およびポリアデニル化配列もまた存在して、翻訳終止コドンの3’側に位置
する。好ましくは、翻訳の開始の最適化のための配列もまた、コード配列の5’
側に位置して、存在する。転写終結因子/ポリアデニル化シグナルとしては、S
ambrookら、前出に記載のような、SV40由来のシグナル、ならびにウ
シ成長ホルモンターミネーターが、挙げられる。
を増加するために使用され得る。例としては、以下が挙げられる:Dijkem
aら、EMBO J.(1985)4:761に記載のような、SV40初期遺
伝子エンハンサー;Gormanら、Proc.Natl.Acad.Sci.
USA(1982b)79:6777に記載のような、ラウス肉腫ウイルスの長
末端反復(LTR)由来のエンハンサー/プロモーター、ならびにBoshar
tら、Cell(1985)41:512に記載のような、ヒトCMV由来のエ
レメント(例えば、CMVイントロンA配列に含まれるエレメント)。
エピトープ(例えば、1つより多くのウイルス単離株由来)をコードする)を含
む、プラスミドが、構築され得る。
そしてこのキメラ転写単位は、目的の抗原および合成Gagコード配列の両方を
コードする、単一のオープンリーディングフレームを有する。あるいは、マルチ
シストロン性カセット(例えば、ジシストロン性カセット)が構築され得、これ
により、EMCV IRESなどを使用して、単一のmRNAからの複数の抗原
が可能になる。
疫に使用される。遺伝子送達のための方法は、当該分野で公知である。例えば、
米国特許第5,399,346号、同第5,580,859号、同第5,589
,466号を参照のこと。遺伝子は、脊椎動物被験体に直接送達されるか、ある
いはその被験体由来の細胞にエキソビボで送達されて、その細胞がその被験体に
再移植されるかの、いずれかであり得る。
れている。例えば、レトロウイルスは、遺伝子送達系のための便利な土台を提供
する。選択された配列は、当該分野で公知の技術を使用して、ベクター中に挿入
され得、そしてレトロウイルス粒子中にパッケージングされ得る。次いで、組換
えウイルスが単離され、そしてインビボまたはエキソビボのいずれかで、被験体
の細胞に送達され得る。多数のレトロウイルス系が記載されている(米国特許番
号5,219,740;MillerおよびRosman、BioTechni
ques(1989)7:980〜990;Miller,A.D.、Huma
n Gene Therapy(1990)1:5〜14;Scarpaら、V
irology(1991)180:849〜852;Burnsら、Proc
.Natl.Avad.Sci.USA(1993)90:8033〜8037
;ならびにBoris−LawrieおよびTemin、Cur.Opin.G
enet.Develop.(1993)3:102〜109)。
込まれるレトロウイルスとは異なり、アデノウイルスは、染色体外のままで存在
し、それによって挿入性突然変異に関連する危険が最小になる(Haj−Ahm
anおよびGraham、J.Virol.(1986)57:267〜274
;Bettら、J.Virol.(1993)67:5911〜5921;Mi
tterderら、Human Gene Therapy(1994)5:7
17〜729;Sethら、J.Virol.(1994)68:933〜94
0;Barrら、Gene Therapy(1994)1:51〜58;Be
rkner,K.L.、BioTechniques(1988)6:616〜
629;およびRichら、Human Gene Therapy(1993
)4:461〜476)。
めに開発されている。AAVベクターは、当該分野で周知の技術を使用して、容
易に構築され得る。例えば、米国特許番号5,173,414および同5,13
9,941;国際公開番号WO92/01070(1992年1月23日公開)
および同WO93/03769(1993年3月4日公開);Lebkowsk
iら、Molec.Cell.Biol,(1988)8:3988〜3966
;Vincentら、Vaccines 90(1990)(Cold Spr
ing Harbor Laboratory Press);Carter,
B.J.、Current Opinion in Biotechnolog
y(1992)3:533〜539;Muzycka,N.、Current
Topics in Microbiol.and Immunol.(199
2)158:97〜129;Kotin,R.M.、Human Gene T
herapy(1994)5:793〜801;ShellingおよびSmi
th、Gene Therapy(1994)1:165〜169;ならびにZ
houら、J.Exp.Med.(1994)179:1867〜1875を参
照のこと。
ll,Jr.,P.A.ら、(米国特許番号5,676,950、1997年1
0月14日発行)に記載される、経験的に投与される組換えポックスウイルスワ
クチンである。
ウイルスベクターとしては、ポックスファミリー(ワクシニアウイルスおよび鳥
類ポックスウイルス(avian poxvirus)を含む)由来のベクター
が、挙げられる。例として、遺伝子を発現するワクシニアウイルス組換え体は、
以下のように構築され得る。特定の合成Gag/抗原コード配列またはEnv/
抗原コード配列をコードするDNAが、まず、適切なベクター中に、そのDNA
が、ワクシニアプロモーターおよび隣接するワクシニアDNA配列(例えば、チ
ミジンキナーゼ(TK)をコードする配列)に隣接するように、挿入される。次
いで、このベクターが、細胞をトランスフェクトするために使用され、この細胞
が同時にワクシニアに感染する。相同組換えが、このワクシニアプロモーター、
および目的のコード配列をコードする遺伝子を、ウイルスゲノム中に挿入するよ
うに作用する。生じたTK組換え体は、5−ブロモデオキシウリジンの存在下で
細胞を培養すること、および5−ブロモデオキシウリジンに耐性であるウイルス
プラークを拾うことによって、選択され得る。
カナリアポックスウイルス)もまた、これらの遺伝子を送達するために使用され
得る。哺乳動物病原体由来の免疫原を発現する、組換えトリポックスウイルスが
、非鳥類種に投与された場合に、防御免疫を付与することが公知である。トリポ
ックスベクターの使用が、ヒト種および他の哺乳動物種において特に望ましい。
なぜなら、トリポックス(avipox)属のメンバーは、感受性の鳥類種での
み生産的に複製し得、従って、哺乳動物細胞においては感染力がない。組換えト
リポックスウイルスを生成するための方法は、当該分野で公知であり、そしてワ
クシニアウイルスの生成に関して上記に記載されるように、遺伝子組換えを使用
する。例えば、WO91/12882;WO89/03429;およびWO92
/03545を参照のこと。
1993)268(1993)268:6866〜6869およびWagner
ら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA(1992)89:609
9〜6103に記載される、アデノウイルスキメラベクター)もまた、遺伝子送
達のために使用され得る。
ビスウイルス由来のベクター、セムリキ森林ウイルス由来のベクター、およびベ
ネズエラウマ脳脊髄炎ウイルス由来のベクター)もまた、本発明のポリヌクレオ
チド(例えば、合成Gagポリペプチドをコードする発現カセット)を送達する
ためのウイルスベクターとして使用が見出される。本発明の方法の実施に有用な
シンドビスウイルス由来ベクターの記載に関しては、Dubenskyら、J.
Virol.(1996)70:508〜519;および国際公開番号WO95
/07995およびWO96/17072;ならびにDubensky,Jr.
T.W.ら、米国特許番号5,843,723(1998年12月1日発行)お
よびDubensky,Jr.T.W.、米国特許番号5,789,245号(
1998年4月4日発行)を参照のこと。
的のコード配列の誘導性の一過性発現を提供するために、簡便にしようされ得る
。この系において、細胞が、まず、バクテリオファージT7 RNAポリメラー
ゼをコードするワクシニアウイルス組換え体に、インビトロで感染される。この
ポリメラーゼは、T7プロモーターを保有するテンプレートのみを転写するとい
う点で、精巧な特異性を示す。感染の後、細胞は、目的のポリヌクレオチドでト
ランスフェクトされ、T7プロモーターにより駆動される。このワクシニアウイ
ルス組換え体から細胞質において発現されるポリメラーゼは、このトランスフェ
クトされたDNAをRNAへと転写し、次にこのRNAが、宿主の翻訳機構によ
ってタンパク質へと翻訳される。この方法は、大量のRNAおよびその翻訳産物
に、高レベルで一過性の細胞質での産生を提供する。例えば、Elroy−St
einおよびMoss、Proc.Natl.Acad.Sci.USA(19
90)87:6743〜6747;Fuerstら、Proc.Natl.Ac
ad.Sci.USA(1986)83:8122〜8126を参照のこと。
ため、または他のウイルスベクターを使用する遺伝子送達のための、代替的アプ
ローチとして、宿主細胞への導入後に高レベルの発現をもたらす増幅系が、使用
され得る。詳細には、T7 RNAポリメラーゼのコード領域の前にあるT7
RNAポリメラーゼが、操作され得る。このテンプレートからのRNAの翻訳に
よって、T7 RNAポリメラーゼが生成され、次いで、このT7 RNAポリ
メラーゼが、より多くのテンプレートを転写する。同時に、発現がT7ポリメラ
ーゼの制御下にあるcDNAが存在する。従って、増幅テンプレートRNAの翻
訳から産生されたT7 RNAポリメラーゼのうちのいくらかが、所望の遺伝子
の転写をもたらす。いくらかのT7 RNAポリメラーゼが増幅を開始するため
に必要とされるので、T7 RNAポリメラーゼが、転写反応を刺激(prim
e)するためのテンプレートともに、細胞中に導入され得る。このポリメラーゼ
は、タンパク質として導入され得るか、またはこのRNAポリメラーゼをコード
するプラスミド上で導入され得る。T7系および細胞を形質転換するためのさら
なる記載に関しては、例えば、国際公開番号WO94/26911;Studi
erおよびMoffatt、J.Mol.Biol.(1986)189:11
3〜130;DengおよびWoff、Gene(1994)143:245〜
249;Gaoら、Biochem.Biophys.Res.Commun.
(1994)200:1201〜1206;GaoおよびHuang、Nuc.
Acids Res.(1993)21:2867〜2872;Chenら、N
uc.Acids Res.(1994)22:2114〜2120;ならびに
米国特許番号5,135,855を参照のこと。
また、ウイルスベクターを用いないで送達され得る。例えば、この合成発現カセ
ットは、被験体またはその被験体に由来する細胞に送達する前に、リポソーム中
にパッケージングされ得る。脂質カプセル化は、一般に、核酸を安定に結合また
は捕捉しそして保持し得る、リポソームを使用して達成される。濃縮DNAの、
脂質調製物に対する比は、変化し得るが、一般的には約1:1(DNA(mg)
:脂質(μmol))であるか、またはより多くの脂質である。核酸の送達のた
めのキャリアとしての使用の概説に関しては、HugおよびSleight、B
iochim.Biophys.Acta.(1991)1097:1〜17;
Straubingerら、Methods of Enzymology(1
983)、第101巻、512〜527頁を参照のこと。
荷電した)調製物、陰イオン性(負に荷電した)調製物および中性調製物が挙げ
られ、カチオン性リポソームが特に好ましい。カチオン性リポソームは、プラス
ミドDNA(Felgnerら、Proc.Natl.Acad.Sci.US
A(1987)84:7413〜7416);mRNA(Maloneら、Pr
oc.Natl.Acad.Saci.USA(1989)86:6077〜6
081);および精製転写因子(Debsら、J.Biol.Chem.(19
90)265:10189〜10192)の、機能性形態での細胞内送達を媒介
することが示されている。
ジオレイルオキシ)プロピル]−N,N,N−トリエチルアンモニウム(DOT
MA)リポソームが、商標Lipofectinの下で、GIBCO BRL、
Grand Island、NYから入手可能である。(また、Felgner
ら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA(1987)84:741
3〜7416も参照のこと)。他の市販の脂質としては、(DDAB/DOPE
)およびDOTAP/DOPE(Boerhinger)が挙げられる。他のカ
チオン性リポソームは、当該分野で周知の技術を使用して、容易に入手可能な材
料から調製され得る。例えば、Szokaら、Proc.Natl.Acad.
Sci.USA(1978)75:4194〜4198;PCT公開番号WO9
0/11092を、DOTAP(1,2−ビス(オレイルオキシ)−3−(トリ
メチルアンモニオ)プロパン)リポソームの合成の記載に関して参照のこと。
i Polar Lipids(Birmingham、AL)から入手可能で
あるか、または容易に入手可能な材料を使用して、容易に調製され得る。このよ
うな材料としては、とりわけ、ホスファチジルコリン、コレステロール、ホスフ
ァチジルエタノールアミン、ジオレオイルホスファチジルコリン(DOPC)、
ジオレオイルホスファチジルグリセロール(DOPG)、ジオレオイルホスファ
チジルエタノールアミン(DOPE)が、挙げられる。これらの材料はまた、適
切な比率で、DOTMA開始材料およびDOTAP開始材料と混合され得る。こ
れらの材料を使用してリポソームを生成するための方法が、当該分野で周知であ
る。
(SUV)、または大きな単膜リポソーム(LUV)を含み得る。種々のリポソ
ーム−核酸複合体が、当該分野で公知の方法を使用して、調製される。例えば、
Straubingerら、METHODS OF IMMUNOLOGY(1
983)第101巻、512〜527頁;Szokaら、Proc.Natl.
Acad.Sci.USA(1978)75:4194〜4198;Papah
adjopoulosら、Biochim.Biophys.Acta(197
5)394:483;Wilsonら、Cell(1979)17:77);D
eamerおよびBangham、Biochim,Biophys.Acta
(1976)443:629;Ostroら、Biochem.Biophys
.Res.Commun.(1977)76:836;Fraleyら、Pro
c.Natl.Acad.Sci.USA(1979)76:3348);En
ochおよびStrittmatter、Proc.Natl.Acad.Sc
i.USA(1979)76:145);Fraleyら、J.Biol.Ch
em.(1980)255:10431;SzokaおよびPapahadjo
poulos、Proc.Natl.Acad.Sci.USA(1978)7
5:145;ならびにSchaefer−Ridderら、Science(1
982)215:166を参照のこと。
opoulosら、Biochem.Biophys.Acta.(1975)
394:483〜491により記載されるものと類似する、渦巻形の脂質組成物
中で送達され得る。また、米国特許番号4,663,161および同4,871
,488も参照のこと。
されても、または会合してもよい。このようなキャリアは、この免疫系に対する
選択された抗原の複数のコピーを提示し、そして局所的リンパ節における抗原の
捕捉および保持を促進する。この粒子は、マクロファージにより貪食され得、そ
してサイトカインの放出を介して、抗原提示を増強し得る。粒子状キャリアの例
としては、ポリメタクリル酸メチルポリマーに由来する粒子状キャリア、ならび
にポリ(ラクチド)およびポリ(ラクチド−co−グリコリド)に由来する微粒
子(PLGとして公知)が挙げられる。例えば、Jefferyら、Pharm
.Res.(1993)10:362〜368;McGee JPら、J Mi
croencapsul.14(2)197〜210、1997;O’Haga
n DTら、Vaccine 11(2):149〜54、1993を参照のこ
と。適切な微粒子はまた、荷電した界面活性剤(例えば、陰イオン性界面活性剤
またはカチオン性界面活性剤)の存在下で、製造されて、正味で負電荷を有する
かまたは正味で正電荷を有する表面を有する微粒子が生じ得る。例えば、陰イオ
ン性界面活性剤(例えば、ヘキサデシルトリメチルアンモニウムブロミド(CT
AB)を用いて製造された微粒子(すなわち、CTAB−PLG微粒子)は、負
に荷電した高分子(例えば、DNA)を吸着する。(例えば、国際出願番号PC
T/US99/17308を参照のこと)。
キソビボ送達のために使用され得る。例えば、ポリマー(例えば、ポリリジン、
ポリアルギニン、ポリオルニチン、スペルミン、スペルミジン、ならびにこれら
の分子の結合体)は、目的の核酸を移入するために有用である。同様に、DEA
Eデキストラン媒介性トランスフェクション、リン酸カルシウム沈殿、または他
の不溶性無機塩(例えば、リン酸ストロンチウム、ケイ酸アルミニウム(ベント
ナイトおよびカオリンを含む)、酸化クロム、ケイ酸マグネシウム、滑石など)
を使用する沈殿は、本発明の方法を用いる使用が見出される。例えば、Felg
ner,P.L.、Advanced Drug Delivery Revi
ews(1990)5:163〜187を、遺伝子移入に有用な送達系の概説に
関して参照のこと。ペプトイド(Zuckerman,R.N.ら、米国特許番
号5,831,005(1998年11月3日発行))もまた、本発明の構築物
の送達に使用され得る。
銃(biolistic)送達系が、本発明の全身発現カセットを送達するため
に特に有用である。これらの粒子は、一般的に減圧下で「遺伝子銃」からの火薬
放出を使用して送達されそして高速に加速されるべき、合成発現カセットでコー
ティングされる。このような技術およびその技術に有用な装置の記載に関して、
例えば、米国特許番号4,945,050;同5,036,006;同5,10
0,792;同5,179,022;同5,371,015および同5,478
,744を参照のこと。また、針なし注射器も、使用され得る(Davis,H
.L.ら、Vaccine 12:1503〜1509、1994;Bioje
ct,Inc.、Portland、OR)。
送達のための組成物へと処方される。これらの組成物は、予防用(感染を予防す
るため)または治療用(感染後に疾患を処置するため)のいずれかであり得る。
これらの組成物は、「治療上有効な量」の目的の遺伝子を、その組成物が投与さ
れる個体において免疫応答が生成されるような量の抗原がインビボで産生される
ように、含む。必要な正確な量は、数ある要因の中でも、処置される被験体;処
置される被験体の年齢および一般的状態;その被験体の免疫系が抗体を合成する
能力;所望される保護の程度;処置される状態の重篤度;選択される特定の抗原
およびその投与様式に依存して変化する。適切な有効量は、当業者により容易に
決定され得る。従って、「治療上有効な量」とは、慣用的試行を介して決定され
得る、比較的広い範囲にある。
例えば、水、生理食塩水、グリセロール、ポリエチレングリコール、ヒアルロン
酸、エタノールなど)を含む。さらに、補助物質(例えば、湿潤剤または乳化剤
、pH緩衝化物質など)が、このようなビヒクル中に存在し得る。核酸の取り込
みおよび/または発現の特定の促進剤はまた、組成物に含まれ得るか、または例
えば、ブピバカイン、心臓毒およびスクロース(に限定されない)と共に投与さ
れ得る。
ば、上記のように)か、あるいは、上記のような方法を用いて、被験体由来の細
胞にエクスビボに送達され得る。例えば、形質転換された細胞の被験体へのエク
スビボ送達および再移植の方法は、当該分野において公知であり、そして、例え
ば、デキストラン媒介トランスフェクション、リン酸カルシウム沈澱、ポリブレ
ン媒介トランスフェクション、リポフェクトアミンおよびLT−1媒介トランス
フェクション、プロトプラスト融合、エレクトロポーレーション、リポソーム中
へのポリヌクレオチドのカプセル化(対応する抗原ありまたはなし)、および核
へのDNAの直接マイクロインジェクションが挙げられ得る。
慣用的な注射器または遺伝子銃(例えば、Accell(登録商標)遺伝子送達
システム(PowderJect Technologies、Inc.、Ox
ford、England)のいずれかを用いる注射によって、ウイルスベクタ
ーを用いても用いないでも達成され得る。構築物は、皮下、上皮、皮内、粘膜内
(例えば、鼻腔内、直腸内および膣内)、腹腔内、静脈内、経口または筋肉内の
いずれかで注射され得る。表皮細胞へのDNAの送達は、この投与様式が皮膚関
連のリンパ細胞への接近を提供し、そしてレシピエント中にDNAの一過的な存
在を提供する場合、特に好ましい。投与の他の様式は、経口投与および肺投与、
坐剤、注射針なしの注射、経皮的(transcutaneousおよびtra
nsdermal)適用を含む。投与処置は、単一の用量スケジュールまたは複
数の用量スケジュールであり得る。核酸の投与はまた、ペプチドまたは他の物質
の投与との組み合わせであり得る。
マクロファージ、単球、リンパ細胞、樹状細胞、B細胞、T細胞、幹細胞、およ
びその前駆細胞)を含むが、これに限定されない)は、本発明の合成発現カセッ
トのエクスビボ送達のために使用され得る。T細胞は、当業者に公知の種々の手
順によって、末梢血リンパ球(PBL)から単離され得る。例えば、T細胞集団
は、アクセサリー細胞およびB細胞の除去を通じて、PBLの集団から「濃縮さ
れ」得る。特に、T細胞濃縮は、抗MHCクラスIIモノクローナル抗体を用い
る非T細胞の排除によって達成され得る。同様に、他の抗体は、非T細胞の特定
の集団を枯渇するために使用され得る。例えば、抗Ig抗体分子は、B細胞を枯
渇するために使用され得、そして抗MacI抗体分子は、マクロファージを枯渇
するために使用され得る。
され得る。2つの主要な部分集団を、細胞表面マーカーCD4およびCD8の差
示的な発現に基づいて単離し得る。例えば、上記のようなT細胞の濃縮に続き、
CD4+細胞をCD4に特異的な抗体を用いて濃縮し得る(Coliganら(
前出)を参照のこと)。抗体を磁気ビーズのような固相に結合し得る。逆に、C
D8+細胞を、CD4に特異的な抗体の使用を通じて濃縮し得る(CD4+細胞
を除去して)か、または固相に結合したCD8抗体の使用によって単離し得る。
HIV−1感染患者由来のCD4リンパ球を、Wilsonら(1995)J.
Infect.Dis.172:88によって記載されるような形質導入の前ま
たは後にエクスビボで拡張し得る。
載されるような、非ウイルスベースまたはウイルスベースの遺伝子移入ベクター
構築物を用いて実施し得る。例えば、1つのこのようなアプローチは、ベクター
産生細胞由来の培養物のベクター含有上清を有する精製T細胞集団の形質導入を
含む。第二のアプローチは、照射された単層のベクター産生細胞と精製T細胞と
の同時培養を含む。第三のアプローチは、類似の同時培養アプローチを含む;し
かし、精製T細胞は、種々のサイトカインで事前に刺激され、そして照射された
ベクター産生細胞との同時培養の前48時間培養される。このような形質導入の
前の、事前の刺激は、効果的な遺伝子移入を増加する(Noltaら、(199
2)Exp.Hematol.20:1065)。増殖のためのこれらの培養物
の刺激はまた、患者への再注入のための増加した細胞集団を提供する。同時培養
に続いて、T細胞をベクター産生細胞単層から回収して、拡張し、そして液体窒
素中で凍結する。
T細胞に送達するための適切な制御エレメントに関連する)を、公知の方法を用
いてアセンブルし得る。
、細胞傷害性剤に耐性な遺伝子移入ベクターで形質導入された哺乳動物細胞を知
らせるマーカーが、使用され得る。細胞傷害性剤は、ネオマイシン、アミノグリ
コシド、テトラサイクリン、クロラムフェニコール、サルファ剤、アクチノマイ
シン、ネトロプシン、ジスタマイシンA、アントラサイクリン(anthrac
ycline)、またはピラジナミドでありえるが、これらに限定されない。例
えば、ネオマイシンホスホトランスフェラーゼIIは、ネオマイシンアナログの
ジェネチシン(G418)に対する耐性を与える。
で維持され得る。種々の増殖因子は、当該分野において公知であり、これらは、
特定の型の細胞の増殖を維持する。このような増殖因子の例は、rIL−2、I
L−10、IL−12、およびIL−15のようなサイトカインマイトジェンで
あり、これらは、リンパ球の増殖および活性化を促進する。特定の型の細胞は、
ホルモン(ヒト絨毛性性腺刺激ホルモン(hCG)およびヒト成長ホルモンを含
む)のような他の増殖因子によって刺激される。特定の細胞集団に対する適切な
増殖因子の選択は、当業者によって容易に達成される。
て刺激される。より好ましくは、IL−3、IL−4、IL−5、IL−6、I
L−9、GM−CSF、M−CSF、およびG−CSF(活性化THおよび活性
化マクロファージによって産生される)は、骨髄幹細胞を刺激する。次いで、こ
の細胞は、多能性幹細胞、顆粒球−単球前駆細胞、好酸球前駆細胞、好塩基球前
駆細胞、巨核球、および赤血球前駆細胞に分化する。分化は、GM−CSF、I
L−3、IL−6、IL−11、およびEPOのような増殖因子によって調節さ
れる。
B細胞前駆細胞、胸腺細胞、TH細胞、TC細胞およびB細胞に分化する。この分
化は、IL−3、IL−4、IL−6、IL−7、GM−CSF、M−CSF、
G−CSF、IL−2、およびIL−5のような増殖因子によって調節される。
のような分化は、増殖因子(GM−CSF、M−CSF、およびIL−8)によ
って調節される。好酸球前駆細胞は、好酸球に分化する。このプロセスは、GM
−CSFおよびIL−5によって調節される。
−4、およびIL−9によって調節される。巨核球は、GM−CSF、EPO、
およびIL−6に応答して血小板を産生する。赤血球前駆細胞は、EPOに応答
して赤血球に分化する。
例えば、IL−2のようなサイトカイン)と接触し得る。特に好ましい実施形態
において、IL−2は、約50〜100μg/mlの濃度でT細胞の集団に添加
される。CD3結合因子を用いる活性化を、2〜4日間実施し得る。
が可能な条件下で、T細胞を適切な遺伝子移入ベクターと接触させることによっ
て、T細胞は一般に改変される。T細胞集団の細胞密度が約0.1×106と5
×106との間、好ましくは0.5×106と2×106との間である場合、遺伝
的改変が実施される。多くの適切なウイルスベースまたは非ウイルスベースの遺
伝子移入ベクターが、使用について本明細書中で記載される。
する。例えば、形質導入に用いられた遺伝子移入ベクターが細胞傷害性剤に対し
て耐性を示す選択マーカーを含む場合、細胞は適切な細胞傷害性剤に接触され得
、これにより非形質導入細胞は、形質導入細胞から陰性に選択される。選択マー
カーが細胞表面マーカーである場合、細胞は特定の細胞表面マーカーに特異的な
結合因子と接触され得、これにより、形質導入された細胞は、この集団から陽性
に選択される。この選択工程はまた、蛍光細胞分析分離装置(FACS)技術を
包含し得(例えば、FACSが使用され、特定の細胞表面マーカーを含む集団か
ら細胞を選択する場合)、またはこの選択工程は、標的細胞捕獲および/または
バックグラウンド除去のための回収可能な支持体として、磁気的に反応性な粒子
の使用を包含する。
、FACSVantageTM Cell Sorter、Becton Dic
kinson Immunocytometry Systems、San J
ose、CA)を用いて実施し得、選択可能な細胞表面マーカーを発現する形質
導入された細胞をソートし、そして回収する。形質導入に続いて、細胞を、特定
の細胞表面マーカーに対する蛍光標識抗体分子で染色する。それぞれの細胞に結
合した抗体の量を、セルソーターを通じて、細胞を含有する滴体を通過すること
によって測定し得る。染色された細胞を含む滴体に電磁気的電荷を与えることに
よって、形質導入細胞を他の細胞から分離し得る。次いで、陽性に選択された細
胞を、滅菌回収容器内に回収する。これらの細胞ソーティング手順を、例えば、
FACSVantageTM Training Manual(項3−11〜3
−28および10−1〜10−17を特に参照して)に詳細に記載する。
細胞の磁気的分離を用いて実施され得る。このような分離技術において、陽性に
選択される細胞を、まず特定の結合因子(例えば、細胞表面因子と特異的に相互
作用する抗体または因子)と接触する。次いで、細胞を、回収可能な粒子(例え
ば、磁気的に反応性な粒子)と接触する。この粒子は、特異的結合因子(陽性細
胞に結合した)と結合する試薬と結合されている。次いで、細胞結合因子−粒子
複合体を、非標識細胞と物理的に分離し得る(例えば、磁場を用いて)。磁気的
に反応性な粒子を用いる場合、標識細胞を磁場を用いて容器内に留め得る一方、
陰性細胞を除去する。これらおよび類似の分離手順は、当業者に公知である。
ッセイによって評価し得る。例えば、ウエスタンブロット分析またはノーザン分
析を、目的の挿入ヌクレオチド配列の特性に依存して使用し得る。いったん発現
が達成され、そして形質導入されたT細胞が選択された合成発現カセットの存在
について試験された場合、末梢血流を介する患者への注入が準備される。
ットを含む。このキットは代表的に、少なくとも1つの選択マーカーおよび少な
くとも1つの合成発現カセットをコードする遺伝子移入ベクターを含み、付属の
試薬またはハードウェア、およびキットの使用についての取扱説明書を1つ以上
の容器に含む。
施例は、例示的な目的にのみに提供され、そしていずれにしても本発明の範囲を
限定することは意図しない。
なされたが、もちろん、いくつかの実験的誤差および偏差が考慮されるべきであ
る。
リメラーゼの核酸コード配列の改変) Gag、Gag−プロテアーゼ、およびGag−ポリメラーゼのコード配列を
、C型株AF110965およびAF110967から選択した。Envコード
配列を、C型株AF110968およびAF110975から選択した。これら
の配列を操作して、これらの遺伝子産物の発現を最小化した。
核酸コード配列は、高度に発現されるヒト遺伝子に見出される使用頻度に匹敵し
た。HIVコドン使用は、コドン−3連のヌクレオチドAまたはTの高い含有量
を反映する。HIV−1コドン使用頻度の効果は、DNA配列における高いAT
含量であり、これは、翻訳能の減少およびmRNAの不安定性を生じる。比較し
て、高度に発現されたヒトコドンは、ヌクレオチドGまたはCを好む。コード配
列は改変されて、高度に発現されるヒト遺伝子に見出されるコドン使用頻度に匹
敵する。
する阻害(または不安定)エレメント(INS)が存在する(Schneide
r R.ら、J Virol.71(7):4892−4903、1997)。
RREは、RNAの二次構造であり、HIVのコードするRevタンパク質と相
互作用し、INSの発現下方制御効果を克服する。RREおよびRevの転写後
活性化機構を克服するために、不安定なエレメントを、複数の点変異を導入する
ことによって不活性化する。これらの変異は、コードタンパク質のリーディング
フレームを変化しない。図5および6(配列番号3、4、20および21)は、
株AF110965およびAF110967由来の合成配列にいくつか残存する
INSの位置を示す。これらの配列に作製された変化を、図中で囲む。図5およ
び6において、上線は、示された株由来のGagポリペプチドのコドン最適化配
列を示す。囲まれた領域中の線の下に示されるヌクレオチドは、INSをさらに
除くように作製された変化を示す。従って、囲まれた領域内に示された変化が作
成される場合、得られた配列は、それぞれ図1および2に示された配列に対応す
る。
レームシフトまで領域を制限し、そしてGagリーディングフレームの末端にお
いて再度開始する。さらに、Gag−プロテアーゼポリペプチドコード配列のコ
ード配列内に位置する阻害(または不安定)エレメント(INS)を、十分に変
化する。合成コード配列を、例えば、Midland Certified R
eagent Company(Midland、Texas)のような会社に
よって、当該分野において公知の方法によってアセンブリする。
ag−プロテアーゼについて記載されるような、類似の改変を含む。
ーゼコード領域は、合成の最適化されたGag/Env発現カセットによって発
現されるウイルス様粒子に対するエピトープの数を増加するように、Gagまた
はEnvの合成配列に包含される。合成HIV−1Gag−ポリメラーゼが機能
的酵素逆転写酵素(RT)およびインテグラーゼ(INT)を発現するので(構
造タンパク質およびプロテアーゼに加えて)、RT機能およびINT機能を不活
性化することが重要である。RTおよびINTのコード配列におけるいくつかの
欠失または変異を、それらのRT活性およびINT活性に関する触媒的な非機能
的酵素を達成するために作製され得る。{Jay.A.Levy(編)(199
5)The Retroviridae、Plenum Press、New
York.ISBN 0−306−45033X.215−20頁;Grimi
son,B.およびLaurence,J.(1995)、Journal O
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ce 267(5200):988−993}。
ag−ポリメラーゼ構築物のRTコード配列およびINTコード配列の欠失内に
加え、RTおよびINTの機能的改変によって欠失される任意のエピトープを置
換および増強し得る。あるいは、RTおよびINTから選択されたB細胞エピト
ープおよび/またはT細胞エピトープ(CTLエピトープを含む)を、上記の合
成Gagカセットまたは合成GagProtカセットの発現によって形成される
最小限のVLPに組み込み得る。(公知のHIV B細胞エピトープおよびT細
胞エピトープの記載について、HIV Molecular Immunolo
gy Database CTL Search Interface;Los
Alamos Sequence Compendia、1987−1997
;インターネットアドレス:http://hiv−web.lanl.gov
/immunology/index.htmlを参照のこと)。
;合成Gag発現カセット;合成Gag−プロテアーゼ発現カセット;および合
成Gag−ポリメラーゼ発現カセット。共通のGag領域(Gag共通)は、A
F110965に関連して、ヌクレオチド844位〜903位(配列番号1)(
または、配列番号17のおよそのアミノ酸残基282〜301(配列番号17)
)まで、そしてAF110967に関連して、ヌクレオチド841位〜900位
(配列番号2)(または、配列番号22のおよそのアミノ酸残基281〜301
)まで、伸長する。共通のEnv領域(Env共通)は、AF110968に関
連して、ヌクレオチド1213位〜1353位(配列番号5)、および配列番号
23のおよそのアミノ405位〜451位まで、そしてAF110975に関連
して、ヌクレオチド1210位〜1353位(配列番号11)、およびアミノ酸
残基404〜451(配列番号24)まで、伸長する。
ベクターにクローニングする:pCMVKm2(一過性の発現アッセイおよびD
NA免疫研究のため)、pCMVKm2ベクターは、pCMV6a(Chapm
anら、Nuc.Acids.Res.(1991)19:3979−3986
)由来であり、カナマイシン選択マーカー、ColE1複製起点、CMVプロモ
ーターエンハンサーおよびイントロン(Intron)Aを含み、以下に記載の
合成配列のための挿入部位が続き、ウシ成長ホルモン由来のポリアデニル化シグ
ナルが続く。pCMVKm2ベクターは、ポリペプチドリンカー部位がpCMV
Km2に挿入されてpCMV−linkを生成する点でのみ、pCMV−lin
kベクターと異なる;pESN2dhfrおよびpCMVPLEdhfr(チャ
イニーズハムスター卵巣(CHO)細胞での発現のため)、ならびにpAcC1
3(バキュロウイルス発現系における使用のためのシャトルベクター)(pAc
C13は、pAcC12由来であって、pAcC12は、Munemitsu
S.ら、Mol Cell Biol.10(11):5977−5982,1
990によって記載される)。
入部位)リーダーを、pCite−4a+(Novagen,Inc.,Mil
waukee,WI)からPCR増幅し、pET−23d(Novagen,I
nc.,Milwaukee,WI)にXba−Ncoフラグメントとして挿入
してpET−EMCVを得た。dhfr遺伝子をpESN2dhfrからPCR
増幅して、翻訳終止コドンの代わりにGly−Gly−Gly−Serスペーサ
ーを有する産物を得、Nco−BamHIフラグメントとして挿入し、pET−
E−DHFRを得た。次に、減弱したneo遺伝子を、pSV2Neo(Clo
ntech,Palo Alto,CA)誘導体からPCR増幅し、そしてpE
T−E−DHFRの独特のBamHI部位に挿入してpET−E−DHFR/N
eo(m2)を得た。最終的に、pCDNA3(Invitrogen,Inc.,
Carlsbad,CA)由来のウシ成長ホルモンターミネーターを、neo遺
伝子の下流に挿入し、pET−E−DHFR/Neo(m2)BGHtを得た。EM
CV−dhfr/neo選択マーカーカセットフラグメントを、pET−E−D
HFR/Neo(m2)BGHtの切断によって調製した。
hapmanら、Nuc.Acids Res.(1991)19:3979−
3986)からHindIII−SalIフラグメントとしてpUC19(Ne
w England Biolabs,Inc.,Beverly,MA)に移
入した。pUC19のベクター骨格を、NedI部位からSap1部位まで削除
した。上記のDHFRカセットをこの構築物に加え、その結果、EMCV IR
ESがCMVプロモーターに続いた。このベクターはまた、ampr遺伝子およ
びSV40複製起点を含む。
24−CA配列に位置する。これは、約20アミノ酸の保存的ストレッチである
。野生型AF110965 Gagタンパク質におけるこの位置は、282〜3
01(配列番号25)であり、そしてGag DNA配列に対する844〜90
3(配列番号26)の領域にかかる。合成Gagタンパク質における位置はまた
、282〜301(配列番号25)であり、そして合成GagDNA配列に対す
る844〜903(配列番号1)の領域にかかる。野生型および合成のAF11
0967 Gagタンパク質におけるこの位置は、281〜300(配列番号2
7)であり、そして改変Gag DNA配列に対する841〜900(配列番号
2)の領域にかかる。MHRにおける変異または欠失は、粒子産生を重度に損い
得る(Borsetti,A.ら、J.Virol.72(11):9313−
9317、1998;Mammano,F.ら、J.Virol 68(8):
4927−4936,1994)。
を有するSmith−Waterman検索アルゴリズム(Time Logi
c,Incline Village,NV)を用いて決定し得る:重量マトリ
ックス=nuc4x4hb;ギャップ開放ペナルティ=20、ギャップ伸長ペナ
ルティ=5。
る。これは、約47アミノ酸の保存的ストレッチである。野生型および合成のA
F110968 Envタンパク質における位置は、アミノ酸残基約405〜4
51(配列番号28)であり、そしてEnv DNA配列に関して1213〜1
353(配列番号5)の領域にかかる。野生型および合成のAF110975
Envタンパク質における位置は、アミノ酸残基約404〜451(配列番号2
9)であり、そしてEnv DNA配列に関して1210〜1353(配列番号
11)の領域にかかる。
を有するSmith−Waterman検索アルゴリズム(Time Logi
c,Incline Village,NV)を用いて決定し得る:重量マトリ
ックス=nuc4x4hb;ギャップ開放ペナルティ=20、ギャップ伸長ペナ
ルティ=5。
せられ得る。
(AF110965およびAF110967由来)配列およびGag−プロテア
ーゼ(AF110965およびAF110967由来)配列を、合成Env、G
agおよびGag−プロテアーゼの配列をクローニングするベクターと同じ特徴
を有する発現ベクターにクローニングする。
いての発現有効性を、以下のように評価する。いくつかの哺乳動物細胞株由来の
細胞(293、RD、COS−7、およびCHO;全てをAmerican T
ype Culture Collection、10801 Univers
ity Boulevard、Manassas、VA 20110−2209
より入手した)を、トランスフェクション試薬LT1(PanVera Cor
poration、545 Science Dr.,Madison,WI)
中の2μgのDNAでトランスフェクトする。細胞を減少した血清培地(Opt
i−MEM、Gibco−BRL、Gaithersburg、MD)中で5時
間インキュベートする。次いで、培地を以下のような正常の培地に置換する:2
93細胞、IMDM、10% ウシ胎児血清、2% グルタミン(BioWhi
ttaker、Walkersville、MD);RD細胞およびCOS−7
細胞、D−MEM、10% ウシ胎児血清、2% グルタミン(Opti−ME
M、Gibco−BRL、Gaithersburg、MD);およびCHO細
胞、Ham’s F−12、10% ウシ胎児血清、2% グルタミン(Opt
i−MEM、Gibco−BRL、Gaithersburg、MD)。細胞を
48時間または60時間のいずれかの期間、インキュベートする。細胞溶解物を
、以下の実施例3に記載のように回収する。上清を回収し、そして0.45μm
シリンジフィルターを通して濾過滅菌する。Coulter p24−assa
y(Coulter Corporation,Hialeah,FL,US)
を用いて、HIV核抗原に対するマウスモノクローナル抗体でコートされた96
ウェルプレートを使用して、上清を評価する。HIV−1 p24抗原を、コー
トしたウェルに結合する。HIVに対するビオチン化抗体は、結合したp24抗
原を認識する。結合したストレプトアビジン−西洋ワサビペルオキシダーゼは、
このビオチンと反応する。TMB基質を用いる過酸化水素の反応によって、色を
発色させる。4N H2SO4の添加によって、反応を停止する。色の強度は、サ
ンプル中のHIV p24抗原の量と直接比例する。
胞株において発現される場合、これらのタンパク質産物の産生において、ネイテ
ィブ(野生型C型)に比べて劇的な増加を提供する。
トを含むpCMV6aベースのベクターを用いて、実施例2に記載のようにトラ
ンスフェクトする。細胞を、トランスフェクション後60時間培養する。上清を
記載のように調整する。細胞溶解物を以下のように調製する。細胞をリン酸緩衝
化生理食塩水で一回洗浄し、界面活性剤(0.1M Tris−HCl(pH7
.5)中の1% NP40(Sigma Chemical Co.,St.L
ouis,MO))を用いて溶解し、そして溶解物を新しいチューブに移す。S
DSポリアクリルアミドゲル(プレキャスト8〜16%;Novex、San
Diego、CA)を、20μlの上清または12.5μlの細胞溶解物を用い
てロードする。タンパク質標準もまたロードする(5μl、broad siz
e range standard;BioRad Laboratories
,Hercules,CA)。電気泳動を実施し、そしてタンパク質をBioR
ad Transfer Chamber(BioRad Laborator
ies,Hercules,CA)を用いて、製造業者(Millipore)
によって推奨される転写用緩衝液を使用して、Immobilon P mem
branes(Millipore Corp.,Bedford,MA)に転
写する。ここで、この転写は、100ボルトで90分間実施する。メンブレンを
、HIV−1陽性ヒト患者血清に曝露し、そしてo−フェニレンジアミンジヒド
ロクロライド(OPD;Sigma)を用いて免疫染色する。
細胞が、ネイティブの発現カセットを含む細胞より高い値(細胞濃度あたり)で
期待のタンパク質を産生する。このタンパク質は、細胞溶解物および上清の両方
に見られる。本発明の合成発現カセットを用いてトランスフェクトした細胞に関
して、細胞上清における産生のレベルは、顕著に高い。
画する。上清のアリコートを、PolyclearTM ultracentri
fuge tubes(Beckman Instruments,Colum
bia,MD)に移し、20%(重量/重量)のスクロースの溶液を下敷きして
、そして28,000rpmで2時間、Beckman SW28ローターで遠
心分離に供する。得られたペレットをPBS中に懸濁し、そして20〜60%(
重量/重量)のスクロースの勾配上に重層し、そして40,000rpmで2時
間、Beckman SW41tiローターで遠心分離に供する。
最後の勾配)に分画する。サンプルを画分1〜9に得、そして8〜16%のSD
Sポリアクリルアミドゲル上で電気泳動する。293/合成EnvまたはGag
の細胞からの上清は、293/ネイティブのEnvまたはGagの細胞からの上
清よりより強いバンドを与える。
るために、マウスの研究を実施する。プラスミドDNAであるpCMVKM2(
合成Gag発現カセットを有する)を、100μlの総注射量における以下の最
終濃度に希釈する:20μg、2μg、0.2μg、0.02μgおよび0.0
02μg。希釈したDNAの起こり得る陰性希釈効果を克服するために、各々の
サンプル中の総DNA濃度を、ベクター(pCMVKM2)単独を用いて20μ
gまで上げる。コントロールとして、ネイティブGag発現カセットのプラスミ
ドDNAを、同一の様式において扱う。4〜10のBalb/cマウス(Cha
rles River、Boston、MA)の12群を、表1のスケジュール
に従って、筋肉内で免疫(肢あたり50μl、前脛骨筋内への筋肉内注射)する
。
2週に採血する。6〜20群および16〜20群を、0週(免疫前)、4週に採
血する。
および8週後、二度目の免疫の2および4週後(1〜4群)のマウス血清の、抗
HIV GagまたはEnv抗体ELISA(酵素結合免疫測定法)を用いて調
べる。
定する。簡単には、免疫したマウス由来の血清を、HIV p55 Gagタン
パク質またはEnvタンパク質(例えば、gp160またはgp120)に対す
る抗体についてスクリーニングする。ELISAマイクロタイタープレートを、
1ウェル当たり0.2μgのGagまたはEnvのタンパク質で一晩コートし、
そして4回洗浄する;引き続き、PBS−0.2% Tween(Sigma)
を用いて2時間ブロッキングする。ブロッキング溶液の除去後、100μlの希
釈マウス血清を添加する。血清を1/25希釈、そしてその後の連続3倍希釈で
試験する。マイクロタイタープレートを4回洗浄し、そしてペルオキシダーゼ結
合抗マウスIgG二次抗体(Pierce、Rockford、IL)でインキ
ュベートする。ELISAプレートを洗浄し、そして1ウェル当たり100μl
の3,3’,5,5’−テトラメチルベンジジン(TMB;Pierce)を添
加する。各々のウェルの最適濃度を15分後に測定する。報告された力価は、最
大半分吸光度(O.D.)を与えた血清の希釈の逆数である。
改善を提供する。
cマウスCD4細胞の標準クロム放出アッセイによって、評価する。CD−8細
胞に感染させたGagまたはEnvの発現ワクチンウイルスを、陽性コントロー
ルとして使用する。簡単には、脾臓細胞(エフェクター細胞、E)を、上記のよ
うに免疫されたBALB/cマウスから得、そして培養し、再刺激し、そして記
載された(Doe,B.およびWalker,C.M.、AIDS 10(7)
:793−794、1996)ように、Gagペプチド標識細胞に対するCTL
活性についてアッセイする。細胞傷害性活性を、標準51Cr放出アッセイにおい
て測定する。標的(T)細胞を、種々のE:T比で4時間エフェクター(E)と
培養し、そして複製のウェルからの平均cpmを用いて特異的51Cr放出パーセ
ントを計算する。
DNAを用いて免疫したマウスから回収した脾臓細胞において測定する。Gag
またはEnvのDNA免疫動物由来のエフェクター細胞は、CTL応答を示すG
agまたはEnvのペプチド標識SV−BALB(MHC一致)標的細胞の特異
的な溶解を示す。ペプチド標識され、そしてMHC非対応のマウス系統(MC5
7)由来である標的細胞は、溶解されない。
害性Tリンパ球(CTL)応答の誘導について増加した効力を示す。
) 非ヒト霊長類を、種々の用量(例えば、1〜5mg)の合成Gagおよび/ま
たはEnv含有プラスミドを用いて、皮内、粘膜内または両方、大腿四頭筋への
筋肉内に複数回(例えば、0、4、8および24週)免疫する。この動物からそ
れぞれの免疫2週間後に採血し、そして単離した血漿を用いてELISAを実施
する。ELISAを、二次抗体結合物が抗ヒトIgGのg鎖特異的ペルオキシダ
ーゼ結合物(Sigma Chemical Co.,St.Louis、MD
63178)(1:500の希釈で使用される)であることを除いて、原則的
には実施例4に記載のように実施する。50μg/mlの酵母抽出物を、血漿サ
ンプルおよび抗体結合物の希釈物に添加し、非ヒト霊長類に前もって存在する酵
母抗体に起因する非特異的バックグラウンドを減少させる。
をまた、免疫後に評価し得る。
免疫原性であることを期待される。
AおよびDNAのインビトロ発現) アルファウイルスベクターにおける合成EnvおよびGagの発現カセットの
発現効率を評価するために、選択された合成発現カセットを、プラスミドDNA
ベースのシンドビスウイルスベクターおよび組換えベクター粒子ベースのシンド
ビスウイルスベクターの両方にサブクローニングする。特に、シンドビスウイル
スRNAベクターレプリコンのインビトロ転写のためのcDNAベクター構築物
(pRSIN−luc;Dubenskyら、J.Virol.70:508−
519、1996)を改変して、プラスミド直線化のためのPmeI部位および
異種遺伝子の挿入のためのポリリンカーを含める。ポリリンカーを、XhoI部
位、PmlI部位、ApaI部位、NarI部位、XbaI部位、およびNot
I部位を含む2つのオリゴヌクレオチド(XPANXNFおよびXPANXNR
)を用いて作製する。
よびNotIで消化し、ルシフェラーゼ遺伝子挿入物を除去し、Klenowお
よびcNTPを用いて平滑末端化し、そしてGeneCleanII(Biol
01、Vista、CA)を用いてアガロースゲルより精製する。オリゴヌクレ
オチドを互いにアニールし、プラスミドに連結する。得られた構築物をNotI
およびSacIで消化し、最小限のシンドビス 3’末端配列およびA40トラク
トを除去し、そしてPKSSIN1−BV(WO97/38087)由来の約0
.4kbpのフラグメントと連結する。pKSSIN1−BVをNotIおよび
SacIで消化して、そしてアガロースゲルからのサイズ分画後の精製によって
、この0.4kbpフラグメントを得る。このフラグメントは、完全なシンドビ
スウイルスの3’末端、A40トラクト、および連結のためのPmeI部位を含む
。この新しいベクター構築物を、SINBVEと称する。
enowおよびdNTPを用いる平滑末端化、GeneCleanIIでの精製
、SalIでの消化、アガロースゲルでのサイズ分画、およびアガロースゲルか
らのGeneCleanIIを用いる精製によって、親プラスミドから得る。こ
の合成HIV GagまたはEnvのコードフラグメントを、XhoIおよびP
mtIで消化されるSINBVEベクターに連結する。得られたベクターを、G
eneCleanIIを用いて精製し、SINBVGagと称する。ベクターR
NAレプリコンを、SINBVGagからインビトロで転写(Dubensky
ら、前出)し得、細胞の形質転換のために直接使用し得る。あるいは、これらの
レプリコンを、欠損ヘルパーRNAとの同時発現によってかまたはアルファウイ
ルスパッケージング細胞株を用いて、組換えベクター粒子内にパッケージし得る
。
al(Dubenskyら、J Virol.70:508−519,1996
)をSalIおよびXbaIで消化し、β−ガラクトシダーゼ遺伝子挿入物を除
去し、そしてアガロースゲルサイズ分画後にGeneCleanIIを用いて精
製する。HIV GagまたはEnvの遺伝子を、SINBVGagのSalI
およびXhoIでの消化、アガロースゲルサイズ分画後のGag含有フラグメン
トのGeneCleanIIを用いる精製、および連結によって、pDCMVS
IN−beta−galに挿入する。得られた構築物を、pDSIN−Gagと
称し、インビボ投与または本明細書中に記載の任意の方法を用いる処方のために
、直接使用し得る。
て、それぞれトランスフェクトする。上清および細胞融解物を、Coulter
捕獲ELISAで試験する(表2)。
よってトランスフェクトする。
ランスフェクトする。合成Gagおよび/またはEnv含有プラスミドを、陽性
コントロールとして使用する。上清および溶解物を、トランスフェクション48
時間後に回収する。
びRNAベースのシンドビスベクターシステムの両方から効果的に発現し得る。
Envの発現カセットのインビボの免疫原性) (A.免疫) シンドビスレプリコン中の組換え合成GagおよびEnvの発現カセットの免
疫原性を評価するために、マウスの研究を実施する。合成Gagおよび/または
Envの発現カセットを有するを有するシンドビスウイルスDNAベクター(実
施例6)を、100μlの総注射量における以下の最終濃度に希釈する:20μ
g、2μg、0.2μg、0.02μgおよび0.002μg。希釈したDNA
の起こり得る陰性希釈効果を克服するために、各々のサンプル中の総DNA濃度
を、シンドビスレプリコンベクターDNA単独を用いて20μgまで上げる。4
〜10のBalb/cマウス(Charles River、Boston、M
A)の12群を、表2のスケジュールに従って、筋肉内で免疫(肢あたり50μ
l、前脛骨筋内への筋肉内注射)する。あるいは、シンドビスウイルス粒子を、
以下の用量で調製する:表3に示されるように、100μl中に103pfu,
105pfuおよび107pfu。シンドビスEnvまたはGagの粒子調製物を
筋肉内経路および皮下経路を用いてマウスに投与する(部位あたり50μl)。
の両方の評価(例えば、特異的CTLの頻度)を実施する。
変が、添付する特許請求の範囲によって規定されるような本発明の精神および範
囲を逸脱することなくなされ得ることが理解される。
ドのヌクレオチド配列を示す。示されるヌクレオチド配列は、C型株AF110
965を改変することによって得られ、そしてINSのさらなる改変を含む。
ドのヌクレオチド配列を示す。示されるヌクレオチド配列は、C型株AF110
967を改変することによって得られ、そしてINSのさらなる改変を含む。
ドのヌクレオチド配列を示す。ヌクレオチド配列は、gp160(シグナルペプ
チドを含む)を示し、そしてC型株AF110968を改変することによって得
られた。矢印は、ポリヌクレオチドの種々の領域の位置を示し、これらには、以
下をコードするシグナル配列が挙げられる:シグナルペプチド(ヌクレオチド1
〜81)(配列番号18)、gp120ポリペプチド(ヌクレオチド82〜15
12)(配列番号6);gp41ポリペプチド(ヌクレオチド1513〜254
7)(配列番号10)、gp140ポリペプチド(ヌクレオチド82〜2025
)(配列番号7)、およびgp160ポリペプチド(ヌクレオチド82〜254
7)(配列番号8)。シグナルペプチドをコードするコドンが、ネイティブHI
V−1のシグナル配列から改変される(本明細書中で上記のように)。
チドのヌクレオチド配列を示す。このヌクレオチド配列は、gp160(シグナ
ルペプチドを含む)を示し、そしてC型株AF110975を改変することによ
って得られた。矢印は、ポリヌクレオチドの種々の領域の位置を示し、これらに
は、以下をコードするシグナル配列が挙げられる:シグナルペプチド(ヌクレオ
チド1〜72)(配列番号19)、gp120ポリペプチド(ヌクレオチド73
〜1509)(配列番号12);gp41ポリペプチド(ヌクレオチド1510
〜2565)(配列番号16)、gp140ポリペプチド(ヌクレオチド73〜
2022)(配列番号13)、およびgp160ポリペプチド(ヌクレオチド7
3〜2565)(配列番号14)。シグナルペプチドをコードするコドンが、ネ
イティブHIV−1のシグナル配列から改変される(本明細書中で上記のように
)。
いるINSの位置を示す。これらの配列に対する変更は、図中に四角で囲まれる
。上部の線は、示された株に由来するGagポリペプチドのコドンを最適化され
た配列を示す(配列番号20)。四角で囲まれた領域の線の下に示すヌクレオチ
ドは、さらなるINSの除去のために作成された変更を示し、図1中に示される
配列に対応する(配列番号3)。
いるINSの位置を示す。これらの配列に対して作成された変更が、図中に四角
で囲まれる。上部の線は、示された株に由来するGagポリペプチドのコドンを
最適化された配列を示す(配列番号21)。四角で囲まれた領域の線の下に示す
ヌクレオチドは、さらなるINSの除去のために作成された変更を示し、図2中
に示される配列に対応する(配列番号4)。
Claims (58)
- 【請求項1】 HIV Gagポリペプチドを含むポリペプチドをコードす
るポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Gagポリペプチドを
コードする該ポリヌクレオチド配列が、配列番号1または配列番号2に対して少
なくとも90%の同一性を有する少なくとも60個のヌクレオチドの連続する配
列を含む、発現カセット。 - 【請求項2】 HIV Gagポリペプチドを含むポリペプチドをコードす
るポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Gagポリペプチドを
コードする該ポリヌクレオチド配列が、(A)配列番号3に対して少なくとも約
90%の同一性を有する少なくとも1479個のヌクレオチド、または(B)配
列番号4に対して少なくとも90%の同一性を有する少なくとも1509個のヌ
クレオチド、の連続する配列を含む、発現カセット。 - 【請求項3】 HIV Gagポリペプチドを含むポリペプチドをコードす
るポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Gagポリペプチドを
コードする該ポリヌクレオチド配列が、配列番号3に対して少なくとも約90%
の同一性を有する少なくとも1479個のヌクレオチドの連続する配列を含む、
発現カセット。 - 【請求項4】 HIV Gagポリペプチドを含むポリペプチドをコードす
るポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Gagポリペプチドを
コードする該ポリヌクレオチド配列が、配列番号4に対して少なくとも90%の
同一性を有する少なくとも1509個のヌクレオチドの連続する配列を含む、発
現カセット。 - 【請求項5】 前記Gagポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列
が、配列番号3からなる、請求項3に記載の発現カセット。 - 【請求項6】 前記Gagポリペプチドをコードする前記ポリヌクレオチド
配列が、配列番号4からなる、請求項4に記載の発現カセット。 - 【請求項7】 HIV Gagポリペプチドを含むポリペプチドをコードす
るポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Gagポリペプチドを
コードする該ポリヌクレオチド配列が、(A)X個の連続するヌクレオチドであ
って、ここで(i)該X個の連続するヌクレオチドが、配列番号1由来のY個の
連続するヌクレオチドに対して少なくとも90%の同一性を有し、(ii)Xが
Yに等しく、そして(iii)Xが60個のヌクレオチドである、ヌクレオチド
;または(B)X個の連続するヌクレオチドであって、ここで(i)X個の連続
するヌクレオチドが、配列番号2のY個の連続するヌクレオチドに対して少なく
とも約90%の同一性を有し、(ii)XがYに等しく、そして(iii)Xが
60個のヌクレオチドである、ヌクレオチド、を含む、発現カセット。 - 【請求項8】 HIV Gagポリペプチドを含むポリペプチドをコードす
るポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Gagポリペプチドを
コードする該ポリヌクレオチド配列が、(A)X個の連続するヌクレオチドであ
って、ここで(i)該X個の連続するヌクレオチドが、配列番号3由来のY個の
連続するヌクレオチドに対して少なくとも90%の同一性を有し、(ii)Xが
Yに等しく、そして(iii)Xが1479個のヌクレオチドである、ヌクレオ
チド;または(B)X個の連続するヌクレオチドであって、ここで(i)X個の
連続するヌクレオチドが、配列番号4のY個の連続するヌクレオチドに対して少
なくとも約90%の同一性を有し、(ii)XがYに等しく、そして(iii)
Xが1509個のヌクレオチドである、ヌクレオチド、を含む、発現カセット。 - 【請求項9】 HIV Gagポリペプチドを含むポリペプチドをコードす
るポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Gagポリペプチドを
コードするポリヌクレオチド配列が、X個の連続するヌクレオチドであって、こ
こで(i)該X個の連続するヌクレオチドが、配列番号3のY個の連続するヌク
レオチドに対して少なくとも90%の同一性を有し、(ii)XがYに等しく、
そして(iii)Xが1479個のヌクレオチドである、ヌクレオチド、を含む
、発現カセット。 - 【請求項10】 HIV Gagポリペプチドを含むポリペプチドをコード
するポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Gagポリペプチド
をコードするポリヌクレオチド配列が、X個の連続するヌクレオチドであって、
ここで(i)該X個の連続するヌクレオチドが、配列番号4のY個の連続するヌ
クレオチドに対して少なくとも約90%の同一性を有し、(ii)XがYに等し
く、そして(iii)Xが1509個のヌクレオチドである、ヌクレオチド、を
含む、発現カセット。 - 【請求項11】 HIV Gagポリペプチドを含むポリペプチドをコード
するポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Gagポリペプチド
をコードするポリヌクレオチド配列が、配列番号3のX個の連続するヌクレオチ
ドからなり、そしてXが1479個のヌクレオチドである、発現カセット。 - 【請求項12】 HIV Gagポリペプチドを含むポリペプチドをコード
するポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Gagポリペプチド
をコードするポリヌクレオチド配列が、配列番号4のX個の連続するヌクレオチ
ドからなり、そしてXが1509個のヌクレオチドである、発現カセット。 - 【請求項13】 前記ポリヌクレオチド配列が、HIVプロテアーゼポリペ
プチドをコードするポリヌクレオチド配列をさらに含む、請求項1〜12のいず
れか1項に記載の発現カセット。 - 【請求項14】 前記ポリヌクレオチド配列が、HIVポリメラーゼポリペ
プチドをコードするポリヌクレオチド配列をさらに含む、請求項1〜12のいず
れか1項に記載の発現カセット。 - 【請求項15】 前記HIVポリメラーゼポリペプチドをコードする配列が
、逆転写酵素およびインテグラーゼに対応するコード領域の欠失により改変され
ている、請求項14に記載の発現カセット。 - 【請求項16】 前記Gagをコードするポリヌクレオチド配列が、Tヘル
パー細胞エピトープおよびCTLエピトープを保存している、請求項1〜15の
いずれか1項に記載の発現カセット。 - 【請求項17】 HIV Envポリペプチドを含むポリペプチドをコード
するポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Envポリペプチド
をコードするポリヌクレオチド配列が、配列番号5に対して少なくとも90%の
同一性を有する少なくとも141個のヌクレオチドの連続する配列を含む、発現
カセット。 - 【請求項18】 請求項17に記載の発現カセットであって、該HIV E
nvポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列が、(A)配列番号6に対
して少なくとも90%の同一性を有する1430個のヌクレオチド;(B)配列
番号7に対して少なくとも90%の同一性を有する1943個のヌクレオチド;
(C)配列番号8に対して少なくとも90%の同一性を有する2465個のヌク
レオチド;または(D)配列番号9に対して少なくとも90%の同一性を有する
2546個のヌクレオチド、からなる群より選択される連続する配列を含む、発
現カセット。 - 【請求項19】 HIV Envポリペプチドを含むポリペプチドをコード
するポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Envポリペプチド
をコードするポリヌクレオチド配列が、配列番号10に対して少なくとも90%
の同一性を有する少なくとも1034個のヌクレオチドの連続する配列を含む、
発現カセット。 - 【請求項20】 HIV Envポリヌクレオチドを含むポリペプチドをコ
ードするポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該ポリヌクレオチ
ド配列が、配列番号11に対して少なくとも90%の同一性を有する少なくとも
143個のヌクレオチドの連続する配列を含む、発現カセット。 - 【請求項21】 請求項20に記載の発現カセットであって、該HIV E
nvポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列が、以下:(A)配列番号
12に対して少なくとも90%の同一性を有する1436個のヌクレオチド;(
B)配列番号13に対して少なくとも90%の同一性を有する1949個のヌク
レオチド;(C)配列番号14に対して少なくとも90%の同一性を有する24
92個のヌクレオチド;または(D)配列番号15に対して少なくとも90%の
同一性を有する2564個のヌクレオチド、からなる群より選択される連続する
配列をさらに含む、発現カセット。 - 【請求項22】 HIV Envポリペプチドを含むポリペプチドをコード
するポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Envポリペプチド
をコードするポリヌクレオチド配列が、配列番号16に対して少なくとも90%
の同一性を有する少なくとも1055個のヌクレオチドの連続する配列を含む、
発現カセット。 - 【請求項23】 HIV Envポリペプチドを含むポリペプチドをコード
するポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Envポリペプチド
をコードする該ポリヌクレオチド配列が、図3または図4のいずれかとして示さ
れる配列からなる、発現カセット。 - 【請求項24】 HIV Envポリペプチドを含むポリペプチドをコード
するポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Envポリペプチド
をコードするポリヌクレオチド配列が、X個の連続するヌクレオチドであって、
ここで(i)該X個の連続するヌクレオチドが、配列番号10のY個の連続する
ヌクレオチドに対して少なくとも約90%の同一性を有し、(ii)XがYに等
しく、そして(iii)Xが1035個のヌクレオチドである、ヌクレオチド、
を含む、発現カセット。 - 【請求項25】 HIV Envポリペプチドを含むポリペプチドをコード
するポリヌクレオチド配列を含む発現カセットであって、該Envポリペプチド
をコードするポリヌクレオチド配列が、(A)X個の連続するヌクレオチドであ
って、ここで(i)X個の連続するヌクレオチドが、配列番号5のY個の連続す
るヌクレオチドに対して少なくとも約90%の同一性を有し、(ii)XがYに
等しく、そして(iii)Xが141個のヌクレオチドである、ヌクレオチド、
を含む、発現カセット。 - 【請求項26】 選択された宿主細胞における使用のための組換え発現系で
あって、該系は、請求項1〜25のいずれか1項に記載の発現カセットを含み、
該ポリヌクレオチド配列が、該選択された宿主細胞における発現と適合する制御
エレメントに作動可能に連結されている、組換え発現系。 - 【請求項27】 請求項26に記載の組換え発現系であって、前記制御エレ
メントが、転写プロモーター、転写エンハンサーエレメント、転写終結シグナル
、ポリアデニル化配列、翻訳の開始の最適化のための配列、および翻訳終結配列
からなる群より選択される、組換え発現系。 - 【請求項28】 請求項27に記載の組換え発現系であって、該転写プロモ
ーターが、CMV、CMVおよびイントロンA、SV40、RSV、HIV−L
tr、MMLV−ltr、ならびにメタロチオネインからなる群より選択される
、組換え発現系。 - 【請求項29】 請求項1〜25のいずれか1項に記載の発現カセットを含
む細胞であって、前記ポリヌクレオチド配列が、前記選択された細胞における発
現に適合する制御エレメントに作動可能に連結されている、細胞。 - 【請求項30】 前記細胞が哺乳動物細胞である、請求項29に記載の細胞
。 - 【請求項31】 前記細胞が、BHK細胞、VERO細胞、HT1080細
胞、293細胞、RD細胞、COS−7細胞、およびCHO細胞から選択される
、請求項30に記載の細胞。 - 【請求項32】 請求項29に記載の細胞であって、前記細胞が、昆虫細胞
、細菌細胞、酵母細胞、植物細胞、霊長類細胞、不死化細胞、腫瘍由来細胞、マ
クロファージ、単球、樹状細胞、B細胞、T細胞、幹細胞、および始原細胞から
なる群より選択される、細胞。 - 【請求項33】 レンチウイルスベクターをパッケージングするために有用
な細胞株であって、請求項1〜25のいずれか1項に記載の発現カセットを含む
発現ベクターでトランスフェクトされている適切な宿主細胞を含み、該ポリヌク
レオチド配列が、該宿主細胞における発現と適合する制御エレメントに作動可能
に連結されている、細胞株。 - 【請求項34】 請求項1〜25のいずれか1項に記載の発現カセットを含
む遺伝子送達ベクターであって、該ポリヌクレオチド配列が、被験体における発
現に適合する制御エレメントに作動可能に連結されている、ベクター。 - 【請求項35】 請求項34に記載の遺伝子送達ベクターであって、該遺伝
子送達ベクターが、非ウイルスベクター、ウイルスベクターおよび細菌プラスミ
ドベクターからなる群より選択される、ベクター。 - 【請求項36】 請求項35に記載のウイルスベクターであって、レトロウ
イルスベクター、レンチウイルスベクター、アデノウイルスベクター、αウイル
スベクター、およびポックスウイルスベクターからなる群より選択される、ウイ
ルスベクター。 - 【請求項37】 前記ベクターが真核生物階層ベクター開始系を含む、請求
項36に記載のαウイルスベクター。 - 【請求項38】 前記ポックスウイルスベクターがワクシニアウイルスであ
る、請求項36に記載のポックスウイルスベクター。 - 【請求項39】 前記ベクターがリポソーム調製物中にカプセル化されてい
る、請求項34〜38のいずれか1項に記載のベクター。 - 【請求項40】 前記ベクターがリポソーム調製物中にカプセル化されてい
る、請求項45〜50のいずれか1項に記載のベクター。 - 【請求項41】 免疫応答を刺激するための、請求項1〜25のいずれか1
項に記載の発現カセットの使用。 - 【請求項42】 被験体において免疫応答を誘導するための医薬品の製造に
おける、請求項1〜25のいずれか1項に記載の発現カセットの使用。 - 【請求項43】 請求項1〜25のいずれか1項に記載の発現カセットによ
り発現されるポリペプチドを産生するための方法であって、該方法が、該ポリペ
プチドの発現を生じる条件下で宿主細胞を培養する工程、および該ポリペプチド
を回収する工程を包含する、方法。 - 【請求項44】 被験体において免疫応答を誘導するための医薬品の製造に
おける、請求項42から回収されるポリペプチドの使用。 - 【請求項45】 免疫応答を刺激するための、請求項1〜25のいずれか1
項に記載のポリヌクレオチド配列の使用であって、該ポリヌクレオチド配列が、
被験体の組織中に直接導入された場合に、HIVポリヌクレオチドを作動可能に
コードする、使用。 - 【請求項46】 前記ポリヌクレオチド配列が、遺伝子送達ベクターによっ
て組織中に導入される、請求項1〜25のいずれか1項に記載のポリヌクレオチ
ド配列の使用。 - 【請求項47】 アジュバントをさらに含む、請求項43に記載のポリペプ
チドの使用。 - 【請求項48】 被験体において免疫応答を誘導するための医薬品の製造に
おける、請求項1〜25のいずれか1項に記載の発現カセットを含む組成物。 - 【請求項49】 前記免疫応答が液性免疫応答である、請求項48に記載の
組成物の使用。 - 【請求項50】 前記免疫応答が細胞性免疫応答である、請求項48に記載
の組成物の使用。 - 【請求項51】 被験体における免疫応答を刺激するための第1組成物およ
び第2組成物の使用であって、請求項1〜25のいずれか1項に記載の発現カセ
ットを含む該第1組成物が、プライム工程において被験体に投与され、そして請
求項1〜25のいずれか1項に記載の発現カセットを含む該第2組成物が、ブー
スト工程において同じ被験体に投与される、使用。 - 【請求項52】 前記第1組成物または前記第2組成物がアジュバントをさ
らに含む、請求項51に記載の第1組成物および第2組成物の使用。 - 【請求項53】 前記第1組成物および前記第2組成物の両方がアジュバン
トをさらに含む、請求項51に記載の第1組成物および第2組成物の使用。 - 【請求項54】 HIVの処置における使用のための、請求項48〜53の
いずれか1項に記載の組成物。 - 【請求項55】 請求項1〜16のいずれか1項に記載の発現カセットの少
なくとも1つによってコードされるさらなるGagポリペプチドをさらに含む、
請求項48に記載の組成物。 - 【請求項56】 請求項17〜25のいずれか1項に記載の発現カセットの
少なくとも1つによってコードされるさらなるEnvポリペプチドをさらに含む
、請求項48に記載の組成物。 - 【請求項57】 アジュバントをさらに含む、請求項48、49、50、5
4、55または56のいずれか1項に記載の組成物。 - 【請求項58】 請求項49または50のいずれか1項に記載の免疫応答を
誘導するための組成物の使用であって、Envポリペプチドが、Gagポリペプ
チドが投与される前に、その投与と同時に、またはその投与後に、被験体に投与
される、使用。
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Patent Citations (1)
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