CN102190722A

CN102190722A - 一种纯化重组人血白蛋白的方法

Info

Publication number: CN102190722A
Application number: CN2010101249352A
Authority: CN
Inventors: 项炜; 朱威; 陈忠
Original assignee: SHANGHAI ANRUITE BIOPHARMACEUTICAL TECHNOLOGY Co Ltd
Current assignee: Tonghua anruite biopharmaceutical Co.,Ltd.
Priority date: 2010-03-16
Filing date: 2010-03-16
Publication date: 2011-09-21
Anticipated expiration: 2030-03-16
Also published as: CN102190722B

Abstract

本发明涉及一种纯化重组人血白蛋白(rHSA)的方法。该方法包括将发酵液不经处理，直接用扩张床阴离子柱一步层析达到固液分离、浓缩和初步纯化的三个层析纯化作用。再经过加热、疏水层析、阳离子交换、超滤、螯合、沉淀等步骤获得超高纯度的重组人血白蛋白。

Description

一种纯化重组人血白蛋白的方法

技术领域

本发明属于生物技术领域；更具体地，本发明涉及一种纯化重组人血白蛋白(rHSA)的方法。

背景技术

人血清白蛋白是血浆中的主要蛋白成分，由585个氨基酸组成，分子量为66kD。人血清白蛋白在血液中主要作用是维持正常渗透压，与钙离子、脂肪酸、氨基酸、胆红素和各种药物相结合，并起到转运载体的作用。临床上人血清白蛋白常用于外科手术、出血性休克、烫伤、肾病综合征导致的白蛋白缺乏症、肿瘤肝腹水等疾病的治疗。

一直以来，人血清白蛋白是从人血液中纯化得到的。由于血源匮乏和病毒(肝炎、AIDS)污染等原因，基因重组人血清白蛋白在近十年中得到了国内外大型制药公司的重视。近年来，采用基因重组的方法，在酵母菌(USP5,330,901、JP11-509525、JP6-100592)、大肠杆菌(Lawn，R.M.Construction of DNA sequencesand their use for microbial production of proteins，in particular human serumalbumin“European Patent Appl.”(1983)73，p646)、转基因牛奶(WO9602573A1SEPARATION OF HUMAN SERUM ALBUMIN)中表达和纯化出人血清白蛋白。

然而，人血清白蛋白的临床治疗中的给药剂量较大，一般情况下为5～10g/剂量之间，所以与微量给药的常规重组药物相比，杂质产生的副作用成为十分严重问题。因此，对于基因重组白蛋白比目前市场上的人血清白蛋白和其他基因重组药品的制剂的纯度要高度多。到目前为止仅有日本三菱制药株式会社的毕赤酵母发酵的rHSA在2008年上市，商品名：

解决rhSA的主要难点，就是建立超高纯度(纯度高于99％)和良好的经济性(成本不高于血液纯化的白蛋白)rHSA的制备方法。

野田宗宏等人在专利CN1127299A和CN1364643A中描述了酵母发酵后利用加热发酵液、稀释、调酸、扩张床阳离子(STREAMLINE SP-GE Healthcare公司专为扩张床设计的商品化树脂)层析、加热、疏水层析、螯合吸附、阴离子交换、硼酸钙沉淀等步骤得到高纯度rHSA的方法。该方法中，第一步加热的目的是灭活蛋白酶，否则阳离子交换树脂需要的酸性条件将激活蛋白酶的活性，从而在纯化过程中降解rHSA。该方法稀释的目的是降低离子强度以达到Streamline SP能够吸附的效果。但是，该方法的缺点是加热灭活使得过程延长；调酸激活蛋白酶活性导致rHSA降解风险；大体积稀释使得纯化的溶液体积增加，从而需要扩大纯化设备的规模，纯化过程延长。这样将导致rHSA产品的收率减少，成本增加，产品的品质有可能下降，产品染菌的风险增加等等问题。

柴田伸一等人在中国专利CN1934128A中公开了一种在2价阳离子存在下通过加热处理制备人血清白蛋白的方法，野内俊伸等人在中国专利CN1406246A中公开了包括加热处理步骤的人血清白蛋白的制造方法。

然而，上述方法均存在处理条件复杂，固液分离效率不高，获得的产物纯度不高等缺点。因此，目前还需要进一步开发更理想的纯化重组人血清白蛋白的方法，以满足生产所需和临床所需。

发明内容

本发明的目的在于提供一种纯化重组人血白蛋白(rHSA)的方法。

在本发明的第一方面，提供一种纯化重组人血清白蛋白的方法，所述方法包括：

(a)将含有重组人血清白蛋白的发酵液上样到含有吸附剂的流化床，使得吸附剂选择性吸附所述重组人血清白蛋白；其中，所述的吸附剂是阴离子交换树脂；以及

(b)回收被吸附的重组人血清白蛋白。

在一个优选例中，在进入含有吸附剂的流化床前，所述的含有重组人血清白蛋白的发酵液不经过加热处理。

在另一优选例中，上样前，将所述的含有吸附剂的流化床调节pH7.0-8.0；较佳地，用缓冲液平衡至pH7.0-8.0；或

上样后，将吸附了所述重组人血清白蛋白的含有吸附剂的流化床调节pH7.0-8.0；较佳地，用pH7.0-8.0的缓冲液清洗。

在另一优选例中，上样前，所述的含有吸附剂的流化床调节pH7.0-7.5；或上样后，吸附了所述重组人血清白蛋白的含有吸附剂的流化床调节pH7.0-7.5。

在另一优选例中，所述的阴离子交换树脂是Streamline阴离子交换树脂。

在另一优选例中，所述的Streamline阴离子交换树脂选自：Streamline Q，Streamline Q XL，或Streamline DEAE。

在另一优选例中，步骤(b)中，还包括：依次采用以下方法进一步纯化：(1)疏水层析；(2)脱色；(3)葡聚糖凝胶过滤；(4)阴离子交换树脂层析。

在另一优选例中，步骤(2)中包括：

(i)采用硼酸或硼酸盐和二价金属离子处理经疏水层析的样液，然后加热至60±20℃；较佳地60±10℃；更佳地60±5℃。较佳地，加热2±1小时，过滤收获滤过液；

(ii)将滤过液进行大孔树脂脱色，得到经脱色的样液。

在另一优选例中，在(i)和(ii)之间，还包括步骤：对滤过液进行超滤。

在另一优选例中，二价金属离子选自：Ca²⁺或Mg²⁺；或

硼酸或硼酸盐的浓度为1～500mM；较佳地为10～200mM；更佳地为50±20mM；最佳地为50±10mM；或

二价金属离子的浓度在1～500mM之间；较佳地为10～80mM；更佳地为30±20mM；最佳地为30±10mM。

在另一优选例中，所述的大孔树脂是含有氨基和羟基的共聚高分子多孔树脂。

在另一优选例中，疏水层析的配基选自：苯基，脂肪族或杂环。

在另一优选例中，疏水层析的纯化方式为流穿。

在另一优选例中，所述的葡聚糖凝胶过滤采用Superdex系列或Sephadex G系列。更佳地，所述的葡聚糖凝胶Sephadex G75。

在另一优选例中，阴离子交换树脂层析的树脂包括：DEAE、QAE、Q配基。

本发明的其它方面由于本文的公开内容，对本领域的技术人员而言是显而易见的。

附图说明

图1、扩张床Streamline Q XL处理后rHSA的样品峰。

图2、Phenyl Sepharose(H Sub)疏水层析后rHSA的样品峰。

图3、大孔脱色树脂XSC700处理后rHSA的样品峰。

图4、DEAE Sepharose FF阴离子层析处理后rHSA的样品峰。

具体实施方式

本发明人经过广泛的研究，开发出一种将发酵液不经加热处理，直接用含有吸附剂(阴离子树脂)的流化床进行固液分离，再经过多个纯化步骤获得超高纯度的重组人血白蛋白的方法。

如本文所用，所述的重组人血清白蛋白(rHSA)是指通过重组技术产生的人血清白蛋白。即将编码人血清白蛋白的DNA导入到合适的宿主细胞中，在适于表达的条件下培养该细胞，从而产生重组人血清白蛋白。所述的宿主细胞选自：细菌(如大肠杆菌和枯草杆菌)，酵母(如啤酒酵母、巴斯德毕赤酵母和克鲁维氏等)，植物细胞，动物细胞。优选的微生物是巴斯德毕赤酵母。较佳地，所述的重组人血清白蛋白被分泌到胞外。

本发明提供一种纯化重组人血清白蛋白的方法，所述方法包括：(a)将含有重组人血清白蛋白的发酵液上样到含有吸附剂的流化床，使得吸附剂选择性吸附所述重组人血清白蛋白；其中，所述的吸附剂是阴离子交换树脂；以及(b)回收被吸附的重组人血清白蛋白。

本发明人发现，在固液分离前进行加热处理，会导致杂质凝集，不利于后续的分离，且去除凝集物的步骤也很复杂，直接影响到提取率以及纯化效果。此外，在固液分离前进行酶抑制剂处理，会导致成本大大提高(酶抑制剂价格高昂)，以及引入外部污染物的结果。而本发明的方法不同于现有技术中常规的纯化方法，在进入含有吸附剂的流化床前，所述的含有重组人血清白蛋白的发酵液不经过加热处理，也不经过酶抑制剂处理。

所述的含有吸附剂的流化床中，吸附剂是阴离子交换树脂，较佳地是Streamline阴离子树脂。其在碱性条件下对rHSA有很好的吸附和分离性能，不需要对弱碱性的发酵液进行调酸，因而不会激活蛋白酶造成对目标蛋白的降解，同时也避免了酸性条件下rHSA的聚合反应。采用碱性条件还可以节省以后纯化过程中的解聚合步骤。因此，上样前，将所述的含有吸附剂的流化床调节pH7.0-8.0；较佳地，用缓冲液平衡至pH7.0-8.0；更佳地调节pH7.0-7.5；或上样后，将吸附了所述重组人血清白蛋白的含有吸附剂的流化床调节pH7.0-8.0；较佳地，用pH7.0-8.0的缓冲液清洗；更佳地调节pH7.0-7.5。

所述的Streamline阴离子交换树脂选自：Streamline Q，Streamline Q XL，或Streamline DEAE。更佳地，所述的Streamline阴离子树脂优选Sreamline XL阴离子树脂(GE Healthcare公司)，该树脂的蛋白载量提高的将近5～10倍，在较宽的pH范围内和高离子强度下都有很好的吸附性能。

固液分离之后，还可以对获得的重组人血清白蛋白进行进一步的纯化，可以采用本领域技术人员熟知的多种蛋白纯化方法进行。

本发明人对固液分离之后的蛋白纯化也进行了深入的研究和优化，找到了较佳的纯化方法。因此，作为本发明的优选方式，固液分离后，还包括：依次采用以下方法进一步纯化：(1)疏水层析；(2)脱色；(3)葡聚糖凝胶过滤；(4)阴离子交换树脂层析。按照上述的纯化次序进行重组人血清白蛋白的进一步纯化，纯化效果非常理想，且得率高。

本发明对于疏水层析的方法没有特别的限制。较佳地，疏水层析的配基选自：苯基，脂肪族或杂环。较佳地，疏水层析的纯化方式为流穿。例如，可采用PhenylSepharose(H Sub)柱(GE公司)进行。

脱色也可采用本领域技术人员熟知的方法，只要该方法能够有效去除发酵液中的各种色素和含有颜色的物质。然而，本发明人发现，在硼酸或硼酸盐的存在下，二价的金属离子在加热后有更好的去除色素结合白蛋白的能力。因此，作为本发明的优选方式，脱色方法包括：(i)采用硼酸或硼酸盐和二价金属离子处理经疏水层析的样液，然后加热至60±20℃，较佳地60±10℃；更佳地60±5℃；较佳地加热2±1小时，过滤收获滤过液；(ii)将滤过液进行大孔树脂脱色，得到经脱色的样液。采用所述优选的脱色方法，A350/A280值低，脱色效果更为理想。

作为本发明的更为优选的方式，在(i)和(ii)之间，还包括步骤：对滤过液进行超滤。

作为本发明的更为优选的方式，所述的二价金属离子选自：Ca²⁺或Mg²⁺。

作为本发明的更为优选的方式，硼酸或硼酸盐的浓度为1～500mM；较佳地为10～200mM；更佳地为50±20mM；最佳地为50±10mM；或二价金属离子的浓度在1～500mM之间；较佳地为10～80mM；更佳地为30±20mM；最佳地为30±10mM。本发明中硼酸盐包括：原硼酸、偏硼酸、四硼酸或它们生成的盐及其水合物，比如四水硼酸钠和六水硼酸钠等。

作为本发明的更为优选的方式，所述的大孔树脂是含有氨基和羟基的共聚高分子多孔树脂。

在脱色步骤的加热过程中，还可加入辛酸钠作为保护剂；或可加入乙酰半胱氨酸、半胱氨酸等还原剂，放置rHSA聚合；也允许加入盐酸胍、氨基盐酸胍等裂解剂，解聚已经聚合的rHSA。所述的硼酸或硼酸盐与二价金属离子加热处理步骤在rHSA纯化流程中允许在不同的阶段进行。

葡聚糖凝胶过滤也可采用本领域技术人员熟知的技术。作为本发明的优选方式，所述的葡聚糖凝胶过滤采用Superdex系列或Sephadex G系列。更佳地，所述的葡聚糖凝胶Sephadex G75。

阴离子交换树脂层析也可采用本领域技术人员熟知的技术。作为本发明的优选方式，阴离子交换树脂层析的树脂包括：DEAE、QAE、Q配基。

在收获rHSA后，可以采用本技术领域熟知的技术进行蛋白纯度的分析，所述的方法包括但不限于：HPLC，柱子G3000SW_XL(7.8mm IDx30cm，Tosoh公司)，UV 280nm。

色度的分析可以采用紫外分光光度计。将重组人血白蛋白用超纯水稀释，使其在280nm的吸光度值在0.3～0.7之间。以超纯水为空白，测量280nm吸光度值。将重组人血白蛋白用超纯水稀释，使其在350nm吸光度值在0.3～0.7之间。以超纯水为空白，在330-520nm范围内扫描。选取350nm吸光度值。研究A350/A280值＝(350nm的吸光度值×稀释倍数)/(280nm的吸光度值×稀释倍数)。

可以采用本技术领域熟知的技术进行蛋白浓度的分析，例如可采用BCA检测试剂盒(BCA Protien Assay Kit，Thermo)。

本发明的主要优点在于：

(1)本发明提供了一种在较短时间和较少的工艺流程将rHSA提纯到一个超高纯度水平的简单方法。固液分离前，发酵液不需要加热，在上柱前不稀释或同步少量稀释即可快速进行Streamline阴离子树脂的固液分离、浓缩和初步纯化。本发明克服了现有技术中必须加热灭活蛋白酶才能进行固液分离的技术缺陷。

(2)本发明还对固液分离之后的进一步纯化步骤也进行了优化，找到了较佳的纯化次序。

(3)本发明还优化了脱色方法，使得蛋白脱色效果非常理想。

下面结合具体实施例，进一步阐述本发明。应理解，这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法，通常按照常规条件如Sambrook等人，分子克隆：实验室指南(New York：Cold Spring Harbor Laboratory Press，1989)中所述的条件，或按照制造厂商所建议的条件。除非另外说明，否则百分比和份数按重量计算。

除非另行定义，文中所使用的所有专业与科学用语与本领域熟练人员所熟悉的意义相同。此外，任何与所记载内容相似或均等的方法及材料皆可应用于本发明中。文中所述的较佳实施方法与材料仅作示范之用。

实施例1、重组菌的构建和表达

GS115毕赤酵母菌株(来自ATCC)，由pPIC9K(购自Invitrogen)多克隆位点插入全长的HSA cDNA片段(参见GenBank登录号：AF190168。将Sal I酶线形化的rHSA表达质粒用电穿孔法转化GS115菌株，涂MD平板，取菌落接种在含200微升YPD培养基的96孔板中，30℃培养2天，取10微升转接于含190微升YPD的96孔新板中，过夜培养。同上稀释一次后，取1微升菌液分别点样于G418浓度为0.5～8mg/ml的YPD平板。挑抗性克隆于BMGY培养基中30℃振荡培养至D₆₀₀为2～6时，离心收菌体并悬于1/5～1/10的BMMY培养基中继续培养，每天补甲醇进行诱导表达。将培养上清进行SDS-PAGE筛选出高表达菌株。(参见《军事医学科学院院刊》2001年9月第25卷第三期第202～204页)。

将一管筛选出扩增制备后冻存的重组rHSA毕赤酵母菌株在30℃水浴融解后，无菌转移到含有200mL YPD培养基的三角摇瓶。密封摇瓶并放置到30℃的摇床中，摇动震荡培养24小时。到时后，将种子培养无菌转移到含5LYPD培养基的10L发酵罐中。通气、搅拌开始发酵30℃，24小时。然后将培养液无菌转移到1.2m³的发酵罐中，先期加入含甘油的YPD培养基培养48小时，待甘油消耗完毕后，加入含甲醇的YPM培养基和SM培养基诱导产生rHSA，培养250小时，得到含rHSA 8.5g/L的培养液。

实施例2、固液分离

重组的含rHSA基因的巴斯德毕赤酵母菌，通过高密度发酵，得到表达量为8.5g(rHSA)/L的培养液。取20L该培养液，用蒸馏水稀释20％(24L)左右(；稀释的目的是增加流动性)，直接进样到Streamline Q XL柱(Direct95/1.7柱，95mm×170cm，凝胶体积2500mL，GE公司)，400cm/h流速，该柱预先用20mM磷酸钠缓冲液(pH 7.4)平衡，在进样完成后用同样的20mM磷酸钠缓冲液(pH 7.0)清洗。然后用20mM磷酸钠缓冲液+1.0M NaCl溶液洗脱，流速200cm/h，收集含rHSA的样品峰(6.2L)。见图1。

实施例3、疏水纯化

将实施例2中得到的初步纯化的rHSA直接进样到PhenylSepharose(H Sub)柱(500mm×25cm，GE公司)，该柱预先用50mM磷酸-150mM氯化钠缓冲液(pH 6.9)平衡，上样完成后，用相同的平衡换冲液洗涤，当含rHSA流穿液出现后，开始收集样品(12.7L)。见图2。

实施例4、硼酸钠+氯化钙加热沉淀脱色纯化

将实施例3中得到的含rHSA的溶液，加入终浓度到10mM辛酸钠，50mM硼酸钠，用20％(w/v)氢氧化钠调节pH到9.5，放置4小时。然后加入氯化钙至终浓度30mM，用20％氢氧化钠调节pH到9.5，60℃加热2小时。用压滤得到澄清的溶液(13.5L)。

实施例5、超滤

将实施例4中得到含rHSA的溶液，用截流分子量10kDa的超滤膜超滤，浓缩，然后对蒸馏水除盐超滤，得到2.1L的溶液。

实施例6、脱色

用大孔脱色树脂XSC700(西安电力树脂厂)柱(300mm×300mm)脱色，该脱色柱预先用pH 3的醋酸溶液平衡，将实施例5得到的含rHSA的溶液(用50％(v/v)醋酸调pH到4.5)泵入，并循环16小时。循环完成后，用蒸馏水洗脱吸附的rHSA蛋白，得到3.9L的脱色rHSA溶液。见图3。

实施例7、除内毒素、核酸、小分子物质和除盐

将实施例6中得到的含rHSA溶液(用2M的NaOH调pH到6.9)，泵入Sephadex G75(200mmx300mm，GE公司)柱中，蒸馏水洗脱，得到7.8L的rHSA溶液。

实施例8、阴离子纯化

将实施例7中得到的含rHSA的溶液，载入到预先用100mM磷酸盐缓冲液pH7.2平衡好的DEAE Sepharose FF XK 50/20柱(GE公司)，载入完成后用平衡液洗涤，然后用100mM磷酸盐+0.5M NaCl(0→100％)梯度洗脱，得到17.2L的rHSA溶液。见图4。

采用文献(Wataru Ohtani，*Toyoo Ohda，Akinori Sumi，Kaoru Kobayashi，andTakao Ohmura. Analysis of Pichia pastoris Components in Recombinant HumanSerum Albumin by Immunological Assays an

获得的rHSA的纯度达到大于99.999999％

实施例9、固液分离2

重组的含rHSA基因的巴斯德毕赤酵母菌(GS115)，通过高密度发酵，得到表达量为9.2g(rHSA)/L的培养液。取20L该培养液，直接进样到Streamline QXL柱(Direct95/1.7柱，95mmx170cm，凝胶体积2500mL)，400cm/h流速，该柱预先用20mM磷酸钠缓冲液(pH 7.4)平衡，在进样完成后用同样的20mM磷酸钠缓冲液(pH 7.0)清洗。然后用20mM磷酸钠缓冲液+1.0M NaCl溶液洗脱，流速200cm/h，收集含rHSA的样品峰(8.8L)。

实施例10、硼酸盐与氯化钙的脱色试验

将实施例9中得到的含rHSA的溶液8.8L，分成四份。

第一份加入终浓度到10mM辛酸钠，50mM硼酸钠，用20％(w/v)氢氧化钠调节pH到9.5，放置4小时。然后加入氯化钙至终浓度30mM，用20％氢氧化钠调节pH到9.5，60℃加热2小时。过滤得到澄清的溶液。

第二份加入终浓度到10mM辛酸钠，50mM硼酸钠，用20％氢氧化钠调节pH到9.5，放置4小时。然后加入氯化钙至终浓度30mM，用20％氢氧化钠调节pH到9.5，常温放置2小时。过滤得到澄清的溶液。

第三份加入终浓度到10mM辛酸钠，50mM硼酸钠，用20％氢氧化钠调节pH到9.5，放置4小时，然后再60℃加热2小时。过滤得到澄清的溶液。

第四份加入氯化钙至终浓度30mM，用20％氢氧化钠调节pH到9.5，60℃加热2小时。过滤得到澄清的溶液。

计算上述处理后的溶液的A350/A280值，值越低表示脱色效果越好。具体的不同纯化结果见表1。

表1不同条件下的纯化结果

	辛酸钠(10mM)	硼酸钠(50mM)	氯化钙(30mM)	加热(60℃)	A350/A280
						处理前					0.172
第一份	+	+	+	+	0.021
						第二份	+	+	+	-	0.038
第三份	+	+	-	-	0.079
						第四份	-	-	+	+	0.075

(注：+表示含有，-表示没有)

实施例11、固液分离对比例

重组的含rHSA基因的巴斯德毕赤酵母菌(GS115)，通过高密度发酵，得到表达量为8.5g(rHSA)/L的培养液。取20L该培养液，56℃加热30分钟，将蛋白酶灭活。再用蒸馏水稀释4倍左右，HAC调pH到4.5，进样到Streamline SP(阳离子树脂)柱(Direct95/1.7柱，95mm×170cm，凝胶体积2500mL，GE公司)，300cm/h流速，该柱预先用磷酸缓冲液(pH 4.5)平衡，在进样完成后用同样的20mM磷酸钠缓冲液(pH 4.5)清洗。然后用50mM磷酸钠缓冲液+150mM NaCl溶液(pH 9.0)洗脱，流速200cm/h，收集含rHSA的样品峰(5.8L)。后面按照实施例2至7的步骤进行处理，得到12.3L的rHSA溶液，该实施例方法的总收率较低，为32.2％。

采用文献(Wataru Ohtani，Toyoo Ohda，Akinori Sumi，Kaoru Kobayashi，andTakao Ohmura.Analysis of Pichia pastoris Components in Recombinant HumanSerum Albumin by Immunological Assays and by HPLC with PulsedAmperometric Detection，Anal.Chem.1998，70，425-429)方法测得毕赤酵母宿主的含量4.3ng/ml(250mg/ml)，可见其宿主蛋白的去除率较低。

在本发明提及的所有文献都在本申请中引用作为参考，就如同每一篇文献被单独引用作为参考那样。此外应理解，在阅读了本发明的上述讲授内容之后，本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改，这些等价形式同样落于本申请所附权利要求书所限定的范围。

Claims

1.一种纯化重组人血清白蛋白的方法，其特征在于，所述方法包括：

(b)回收被吸附的重组人血清白蛋白。

2.如权利要求1所述的方法，其特征在于，上样前，将所述的含有吸附剂的流化床调节pH7.0-8.0；或

上样后，将吸附了所述重组人血清白蛋白的含有吸附剂的流化床调节pH7.0-8.0。

3.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述的阴离子交换树脂是Streamline阴离子交换树脂。

4.如权利要求3所述的方法，其特征在于，所述的Streamline阴离子交换树脂选自：Streamline Q，Streamline Q XL，或Streamline DEAE。

5.如权利要求1所述的方法，其特征在于，步骤(b)中，还包括：依次采用以下方法进一步纯化：(1)疏水层析；(2)脱色；(3)葡聚糖凝胶过滤；(4)阴离子交换树脂层析。

6.如权利要求5所述的方法，其特征在于，步骤(2)中包括：

(i)采用硼酸或硼酸盐和二价金属离子处理经疏水层析的样液，然后加热至60±20℃，过滤收获滤过液；和

(ii)将滤过液进行大孔树脂脱色，得到经脱色的样液。

7.如权利要求6所述的方法，其特征在于，在(i)和(ii)之间，还包括步骤：对滤过液进行超滤。

8.如权利要求6所述的方法，其特征在于，二价金属离子选自：Ca²⁺或Mg²⁺；或

硼酸或硼酸盐的浓度为1～500mM；或

二价金属离子的浓度在1～500mM之间。

9.如权利要求5所述的方法，其特征在于，所述的大孔树脂是含有氨基和羟基的共聚高分子多孔树脂。

10.如权利要求5所述的方法，其特征在于，疏水层析的配基选自：苯基，脂肪族或杂环。