WO2013191459A1 - 다가 폐렴구균 다당류-단백질 접합체 조성물 - Google Patents

다가 폐렴구균 다당류-단백질 접합체 조성물 Download PDF

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함동수
박만훈
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Definitions

  • the present invention 15 Streptococcus pneumoniae serotypes 1, 2, 3, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 9N, 9V, 14, 18C, 19A, 19F and 23F derived from the capsular polysaccharides (capsular polysaccharide) to CRM 197, etc. It relates to a multivalent immunogenic composition prepared by conjugation to a carrier protein of.
  • the conjugate composition according to the invention relates to the medical field, in particular microbiology, immunology, vaccines, and is useful for preventing diseases caused by pneumococci in infants, infants, children and adults by immunization.
  • Streptococcus pneumoniae is a major causative agent of pneumonia. According to Statistics Korea's 2010 mortality rate by major cause of death, the death rate from pneumonia in 2010 was 14.9 per 100,000, one of the top 10 causes of death, an 82.9% increase from 2000. In 2012, according to the WHO, 476,000 HIV-negative children under the age of five worldwide died of infection with Streptococcus pneumoniae in 2008, and 5% of all children under five died from the disease. It was.
  • the 14-valent polysaccharide vaccine was developed by Robert Austrian, and then developed into a 23-valent polysaccharide vaccine.
  • Multivalent pneumococcal polysaccharide vaccines have proven useful in preventing pneumococcal disease in elderly and high risk patients. Infants and children, however, do not respond well to most pneumococcal polysaccharides because of the T-cell independent immune response.
  • the valent pneumococcal conjugate vaccine (Prevnar ® ) contains capsular polysaccharides from the seven most common serotypes 4, 6B, 9V, 14, 18C, 19F and 23F.
  • Prevna covers approximately 80-90%, 60-80%, and 40-80% of invasive pneumococcal disease in the United States, Europe, and other parts of the world, respectively.
  • Surveillance data accumulated over the years following the introduction of Prevna clearly predicted a reduction in invasive pneumococcal disease caused by serotypes included in Prevna in the United States. However, in some regions, serotype coverage was limited, and serotypes not included in Prevna, particularly 19A, increased invasive pneumococcal disease.
  • PCV-13 contains six additional serotypes (1, 3, 5, 6A, 7F, 19A) in addition to the seven serotypes (4, 6B, 9V, 14, 18C, 19F, 23F) included in Prevna. Pneumococcal conjugate vaccine.
  • ABSCs Active Bacterial Core surveillance
  • the present invention is a multivalent immunogenic composition useful for preventing pneumococcal disease of infants, infants, children, and adults by immunization, and includes a capsular polysaccharide derived from 15 pneumococcal serotypes including serotypes 2 and 9N.
  • a capsular polysaccharide derived from 15 pneumococcal serotypes including serotypes 2 and 9N Provided are multivalent immunogenic compositions.
  • the present invention is a 15-valent pneumococcal strain comprising serotypes 1, 2, 3, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 9N, 9V, 14, 18C, 19A, 19F and 23F, including serotypes 2 and 9N. It is an object to provide a conjugate (PCV-15) composition.
  • a multivalent immunogenic composition comprising 15 different polysaccharide-protein conjugates with a physiologically acceptable vehicle, wherein each serotype of Streptococcus pneumoniae is conjugated to a carrier protein.
  • a multivalent immunogenic composition prepared from 23F.
  • the carrier protein may be CRM 197 .
  • the multivalent immunogenic composition according to the present invention may further comprise an adjuvant, for example, the adjuvant may comprise an aluminum-based adjuvant.
  • the adjuvant may be selected from the group consisting of aluminum phosphate, aluminum sulfate and aluminum hydroxide, preferably aluminum phosphate.
  • a pharmaceutical composition for inducing an immune response against a Streptococcus pneumoniae capsular polysaccharide conjugate comprising an immunologically effective amount of said immunogenic composition.
  • the pharmaceutical composition comprises 2 ⁇ g of each sugar, except that 6B is 4 ⁇ g; About 34 ⁇ g CRM 197 carrier protein; 0.125 mg of elemental aluminum (0.5 mg of aluminum phosphate) adjuvant; And immunogenic compositions formulated to contain sodium chloride and sodium succinate buffer as excipients.
  • the multivalent immunogenic composition according to the present invention comprises 15 capsular polysaccharides derived from 15 pneumococcal serotypes including serotypes 2 and 9N, thereby inducing excellent serum IgG titers and functional antibody activity. Therefore, the multivalent immunogenic composition according to the present invention can be usefully used for preventing diseases caused by pneumococci in infants, infants, children, and adults.
  • Serotype replacement has been shown by some serotypes showing antibiotic resistance and multi-tolerance. Interregional variations in serotype distributions have also raised regional limits for prev or coverage (Harboe ZB, Benfield TL, Valentiner-Branth P, et al. Temporal Trends in Invasive Pneumococcal Disease and Pneumococcal Serotypes over 7 Decades. Clin Infect Dis 2010; 50: 329-37). Therefore, there is no reason to remove any serotype from the existing pneumococcal conjugate vaccine, but rather the need to broaden the scope of application by adding serotypes.
  • Pneumococcal serotypes have different distribution patterns with age.
  • infants aged 0 to 23 months of age who were vaccinated against pneumococcal conjugates showed an increased importance of serotype 9N compared to children aged 24 to 59 months. It was the 14th most common isolate after the 13 serotypes included in PCV-13. This suggests that inclusion of serotype 9N may contribute to the reduction of pneumococcal disease in the whole, particularly infants.
  • the present invention provides a multivalent immunogenic composition comprising capsular polysaccharides derived from 15 pneumococcal serotypes, including serotypes 2 and 9N. That is, the present invention is a multivalent immunogenic composition comprising 15 different polysaccharide-protein conjugates with a physiologically acceptable vehicle, wherein each serotype of Streptococcus pneumoniae is conjugated to each carrier protein. Capsular polysaccharide derived from a), wherein the capsular polysaccharide is prepared from serotypes 1, 2, 3, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 9N, 9V, 14, 18C, 19A, 19F, and 23F. To provide a multivalent immunogenic composition.
  • Capsular polysaccharides can be prepared by standard techniques known to those skilled in the art. Capsular polysaccharides can be reduced in size to reduce viscosity or to increase the solubility of activated capsular polysaccharides.
  • capsular polysaccharides are prepared from serotypes 1, 2, 3, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 9N, 9V, 14, 18C, 19A, 19F and 23F of Streptococcus pneumoniae. These pneumococcal conjugates are prepared by separate procedures and formulated into a single dosage form. For example, each pneumococcal polysaccharide serotype is grown in soy-based medium, and then individual polysaccharides are purified by centrifugation, precipitation, ultrafiltration.
  • Carrier proteins are preferably non-toxic, non-reactogenic, obtainable in sufficient amount and purity.
  • the carrier protein should be appropriate for standard conjugation methods.
  • the carrier protein may be CRM 197 .
  • CRM 197 is a non-toxic variant of diphtheria toxin (ie, toxoid) isolated from the culture of Corynebacterium diphtheria strain C7 ( ⁇ 197) grown in cassanoic acid and yeast extract-based medium.
  • CRM 197 is purified via ultrafiltration, ammonium sulfate precipitation and ion exchange chromatography.
  • CRM 197 can be produced recombinantly according to US Pat. No. 5,614,382.
  • diphtheria toxoids can also be used as carrier proteins.
  • suitable carrier proteins include exotoxin A from tetanus toxoid, pertussis toxoid, cholera toxoid (WO2004 / 083251), E. coli LT, E. coli ST, and Pseudomonas aeruginosa .
  • Inactivated bacterial toxins such as.
  • Bacterial outer membrane proteins such as outer membrane complex c (OMPC), porin, transferrin binding protein, pneumolysine, pneumococcal surface protein A (PspA), pneumococcal adhesin protein (PsaA), group A or group C5a peptidase from B streptococci, or Haemophilus influenzae protein D may also be used.
  • Other proteins such as ovalbumin, keyhole limpet hemocyanin (KLH), bovine serum albumin (BSA) or purified protein derivatives of tuberculin (PPD) can also be used as carrier proteins.
  • Variants of diphtheria toxins such as CRM 173 , CRM 228 and CRM 45 can also be used as carrier proteins.
  • Purified polysaccharides are chemically activated to produce saccharides that can react with the carrier protein. Once activated, each capsular polysaccharide is conjugated to the carrier protein one by one to form a glycoconjugate. In one embodiment, each capsular polysaccharide is conjugated to the same carrier protein. Chemical activation of the polysaccharide and subsequent conjugation to the carrier protein can be performed by known methods (US Pat. Nos. 4,673,574, 4,902,506, etc.). The terminal hydroxyl group of the capsular polysaccharide is oxidized to an aldehyde group with an oxidizing agent such as a periodate (including sodium periodate, potassium periodate, or periodic acid).
  • an oxidizing agent such as a periodate (including sodium periodate, potassium periodate, or periodic acid).
  • the resulting polysaccharide-protein conjugate can be purified by a variety of methods (ie, to enrich the amount of polysaccharide-protein conjugate). Examples of these methods include concentration / diafiltration processes, column chromatography and multilayer filtration. Purified polysaccharide-protein conjugates can be mixed together to formulate into the immunogenic compositions of the invention and used as vaccines. Formulations of immunogenic compositions of the invention can be carried out using methods known in the art. For example, 15 individual pneumococcal conjugates can be formulated with a physiologically acceptable vehicle to make the composition. Examples of such vehicles include, but are not limited to, water, buffered saline, polyols such as glycerol, propylene glycol, liquid polyethylene glycols, and dextrose solutions.
  • the immunogenic composition of the present invention comprises one or more adjuvants.
  • an "adjuvant” is a substance used to increase the immunogenicity of an immunogenic composition of the present invention.
  • adjuvants are often provided to boost the immune response and are well known to those skilled in the art.
  • Adjuvants suitable for increasing the effectiveness of the composition include, but are not limited to:
  • aluminum salts eg, aluminum hydroxide, aluminum phosphate, aluminum sulfate, etc.
  • an oil-in-water emulsion formulation (with or without muramyl peptide (defined below) or other specific immune stimulants such as bacterial cell wall components), for example (a) MF59 (WO 90/14837): Contains 5% Squalene, 0.5% Tween 80 and 0.5% Span 85 (optionally contains varying amounts of MTP-PE (but not required, see below)), Model 110Y Micro Formulated into submicron particles using a microfluidizer such as a microfluidizer [Microfluidics, Newton, Mass.], (B) SAF: 10% squalene, 0.4% tween 80, 5% pluronic ) -Block polymer L121 and thr-MDP (see below), either microfluidized with a submicron emulsion, or vortexed to form a large particle size emulsion, and (c) Ribi TM adjuvants Burnt System (RAS) [Corixa, Hamilton, MT]: 2%
  • AGP aminoalkyl glucoseamine phosphate compounds
  • One such AGP is 2-[(R) -3-tetradecanoyloxytetradecanoylamino] ethyl 2-deoxy-4-O-phosphono-3-O-[(R) -3-tetradecanoyloxy Tetradecanoyl] -2-[(R) -3-tetradecanoyloxytetradecanoylamino] -bD-glucopyranoside, which is also known as 529 (formerly known as RC529), which is aqueous or Formulated as a stable emulsion],
  • 529 previously known as RC529
  • cytokines such as interleukins (eg, IL-1, IL-2, IL-4, IL-5, IL-6, IL-7, IL 12, IL-15, IL-18, etc.) Interferon (eg gamma interferon), granulocyte macrophage colony stimulating factor (GM-CSF), macrophage colony stimulating factor (MCSF), tumor necrosis factor (TNF), costimulatory molecules B7-1 and B7-2, and the like;
  • Interleukins eg, IL-1, IL-2, IL-4, IL-5, IL-6, IL-7, IL 12, IL-15, IL-18, etc.
  • Interferon eg gamma interferon
  • GM-CSF granulocyte macrophage colony stimulating factor
  • MCSF macrophage colony stimulating factor
  • TNF tumor necrosis factor
  • costimulatory molecules B7-1 and B7-2 costimulatory molecules
  • Muramil peptides include N-acetyl-murayl-L-threonyl-D-isoglutamine (thr-MDP), N-acetyl-normuryl-L-alanine-2- (1'-2 'dipalmitoyl- sn-glycero-3-hydroxyphosphoryloxy) -ethylamine (MTP-PE), and the like.
  • aluminum salts are used as the adjuvant.
  • the aluminum salt adjuvant may be an aluminum-precipitated vaccine or an aluminum-adsorbed vaccine.
  • Aluminum salts include hydrated alumina, alumina hydrate, alumina trihydrate (ATH), aluminum hydrate, aluminum trihydrate, alhydrogel, Superfos, amphogel, aluminum hydroxide (III), aluminum hydroxyphosphate adjuvant (APA) ), Amorphous alumina, and the like, but is not limited thereto.
  • APA is a suspension of aluminum hydroxyphosphate. Mixing aluminum chloride and sodium phosphate in a ratio of 1: 1 precipitates aluminum hydroxyphosphate sulfate.
  • a high shear mixer is used to prepare the precipitate in 2-8 ⁇ m, followed by dialysis with physiological saline and sterilization.
  • commercially available Al (OH) 3 eg alhydrogel or Superfos
  • Al (OH) 3 eg alhydrogel or Superfos
  • 50-200 g of protein can be adsorbed per mg of aluminum hydroxide, and the ratio depends on the protein's pi and the pH of the solvent.
  • Low pI proteins bind more strongly than proteins with high pi.
  • Aluminum salts form antigen reservoirs that slowly release antigens for two to three weeks, nonspecifically activating macrophages, complement and innate immune mechanisms.
  • the present invention provides a pharmaceutical composition (eg, a vaccine formulation) for inducing an immune response against a Streptococcus pneumoniae capsular polysaccharide conjugate, comprising an immunologically effective amount of the immunogenic composition.
  • a pharmaceutical composition eg, a vaccine formulation
  • a Streptococcus pneumoniae capsular polysaccharide conjugate comprising an immunologically effective amount of the immunogenic composition.
  • Vaccine preparations according to the invention can be used to protect or treat a person susceptible to pneumococcal by administration via the systemic or mucosal route.
  • an "effective amount" refers to the dosage required to elicit an antibody that is capable of significantly reducing the probability or severity of infection with Streptococcus pneumoniae.
  • Administration includes injection via the intramuscular, intraperitoneal, intradermal or subcutaneous route; Or mucosal administration to the oral / digestive tract, airway or urogenital tract.
  • intranasal administration is used for the treatment of pneumonia or otitis media, because it can more effectively prevent nasopharyngeal carriers of pneumococcus, thereby weakening the infection at an early stage.
  • the amount of the conjugate at each vaccine dose is chosen to be an amount that induces an immunoprotective response without significant side effects. This amount may vary depending on the serotype of pneumococcal. In general, each dose will comprise 0.1 to 100 ⁇ g, preferably 0.1 to 10 ⁇ g, more preferably 1 to 5 ⁇ g polysaccharide. Optimal amounts of ingredients for a particular vaccine can be identified by standard studies involving the observation of an appropriate immune response in a subject. For example, the results of animal experiments can be extrapolated to determine the vaccination dose for humans. Dosage can also be determined empirically.
  • the vaccine compositions of the invention are serotypes 1, 2, 3, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 9N, 9V, 14, 18C, 19A, 19F and conjugated to CRM 197 respectively.
  • 23F is a sterile liquid formulation of pneumococcal capsular polysaccharide.
  • the liquid can be filled into a single dose syringe without preservatives. After shaking, the vaccine is a homogeneous white suspension that can be administered intramuscularly immediately.
  • the compositions of the invention may be administered in a single inoculation.
  • the vaccine composition of the present invention may be administered twice, three times, four times or more at appropriate intervals, for example at 1, 2, 3, 4, 5, or 6 month intervals, or It can be administered according to any combination thereof.
  • the immunization plan can follow the one specified for Prevna.
  • routine vaccination plans for infants and babies are 2, 4, 6 and 12 to 15 months of age.
  • the composition is inoculated 4 times at 2, 4, 6 and 12 to 15 months of age.
  • compositions of the present invention may also comprise one or more proteins from Streptococcus pneumoniae.
  • Streptococcus pneumoniae proteins suitable for inclusion include the proteins identified in WO 02/083855, as well as the proteins described in WO 02/053761.
  • compositions of the present invention can be administered to a subject by one or more routes of administration, parenteral, transdermal or mucosal, intranasal, intramuscular, intraperitoneal, intradermal, intravenous or subcutaneous routes known to those skilled in the art, and can be formulated accordingly.
  • the composition of the present invention is a liquid formulation comprising injection via intramuscular, intraperitoneal, epidermal, vein, arterial or subcutaneous routes; Or by respiratory mucosal injection.
  • Liquid preparations for injection include solutions or the like.
  • compositions of the present invention can be formulated in the form of single dose dose vials, multiple dose dose vials or prefilled syringes.
  • Pharmaceutically acceptable carriers used in liquid formulations include aqueous or non-aqueous solvents, suspensions, emulsions, oils.
  • non-aqueous solvents are propylene glycol, polyethylene glycol, ethyl oleate.
  • Aqueous carriers include water, alcohol / aqueous solvents, emulsions or suspensions, physiological saline, buffer solutions.
  • oils are vegetable or animal oils, peanut oils, soybean oils, olive oils, sunflower oils, synthetic oils such as liver oils, marine oils, lipids from milk or eggs.
  • the pharmaceutical composition may be isotonic, hypertonic or hypotonic.
  • pharmaceutical compositions administered by infusion or injection are preferably isotonic in nature.
  • isotonicity or hypertension may be advantageous for storage of the composition.
  • the pharmaceutical composition is hypertonic, it may be diluted to isotonic prior to administration.
  • the tonicity agent may be an ionic tonicity agent such as a salt or a nonionic tonicity agent such as a carbohydrate.
  • Ionic isotonic agents include, but are not limited to, sodium chloride, calcium chloride, potassium chloride, magnesium chloride, and the like.
  • Nonionic isotonic agents include, but are not limited to, sorbitol, glycerol, and the like.
  • At least one pharmaceutically acceptable buffer is preferably composed of a buffer having a buffering capacity at pH 4 to 10, for example, 5 to 9 and 6 to 8.
  • the buffer can be selected from the group consisting of TRIS, acetate, glutamate, lactate, maleate, tartrate, phosphate, citrate, carbonate, glycinate, histidine, glycine, succinate, triethanolamine buffer.
  • the buffer may be selected from buffers suitable for USP.
  • the buffer may be monobasic acids such as acetic acid, benzoic acid, gluconic acid, glyceric acid, lactic acid; Dibasic acids such as aconitic acid, adipic acid, ascorbic acid, carbonic acid, glutamic acid, malic acid, succinic acid, tartaric acid; Polybasic acids such as citric acid and phosphoric acid; It can be selected from the group consisting of bases such as ammonia, diethanolamine, glycine, triethanolamine and TRIS.
  • Vehicles for parenteral administration include sodium chloride solution, Ringer's dextrose solution, dextrose and sodium chloride, lactated Ringer's solution, and fixed oils.
  • Vehicles for intravenous administration include Ringer's dextrose solution, or fluids based on such solutions, nutritional supplements, and electrolyte supplements. Examples are sterile liquids, such as water and oil, with or without surfactants and pharmaceutically suitable adjuvants added. In general, water, saline solution, dextrose solution, related sugar solutions, glycols such as propylene glycol or polyethylene glycol, polysorbate 80 are particularly suitable for injection solutions.
  • oils include animal and vegetable oils, peanut oils, soybean oils, olive oils, sunflower oils, synthetic oils such as liver oils, marine oils, and lipids derived from milk or eggs.
  • the formulation of the invention may comprise a surfactant.
  • a surfactant Preferably, among the polyoxyethylene sorbitan esters (commonly called Tweens), in particular polysorbate 20 and polysorbate 80; Copolymers of ethylene oxide (EO), propylene oxide (PO), butylene oxide (BO) (eg DOWFAX TM ); Oxoxynols having a different repeating number of oxy-1,2-ethanediyl groups, in particular ostonol-9 (Triton-100); Ethylphenoxypolyethoxyethanol (IGEPAL CA-630 / NP-40); Phospholipids such as lecithin; Nonylphenol ethoxylates such as the Tergitol TM NP series; Polyoxyethylene fatty acid ethers (Brij surfactants) derived from lauryl, cetyl, stearyl, oleyl alcohols, in particular triethyleneglycol monolauryl ether (Brij 30); So
  • Tween 80 / Span 85 may also be used.
  • Combinations of polyoxyethylene sorbitan esters such as Tween 80 with octosinols such as Triton X-100 are also suitable.
  • a combination of Laureth 9 and Tween and or octocinol is also useful.
  • the pharmaceutical composition is delivered by a release control system.
  • it may be administered by intravenous infusion, transdermal patch, liposomes, or other routes.
  • polymeric materials such as microspheres or implants are used.
  • S. pneumoniae culture and purification of capsular polysaccharides were performed by methods known to those skilled in the art.
  • Each serotype of S. pneumoniae can be obtained from the American Type Culture Collection (ATCC).
  • ATCC American Type Culture Collection
  • S. pneumoniae was identified as alpha hemolysis in the capsular and non-motile, gram-positive, lancet-shaped diplococci and blood agar medium.
  • Serotypes were identified based on Banlung test using specific antisera (US Pat. No. 5,847,112).
  • Seed stocks were cultured for several generations (F1, F2 and F3 generations) to increase strains and remove components of animal origin. Probiotics were further cultured for two more generations. Additional first generations were cultured from F3 vials and subsequent generations were cultured from additional first generation vials. Seed vials were cryopreserved (-70 ° C. or lower) together with synthetic glycerol as cryopreservative. For cell bank preparation, all cultures were grown in soy-based medium. Prior to freezing, the cells were concentrated by centrifugation, the medium used was removed and the cell pellet was resuspended in fresh medium containing cryopreservative (eg synthetic glycerol).
  • cryopreservative eg synthetic glycerol
  • Cultures from preparative cell banks were used to inoculate spawns containing soy-based medium.
  • a spawn bottle was used to inoculate a spawn fermenter containing soy-based medium.
  • Production culture is the final stage of fermentation. Temperature and pH and stirring speed were adjusted.
  • the fermentation was terminated by adding an inactivating agent. After inactivation the contents of the fermentor were cooled and the pH was adjusted.
  • Culture broth was centrifuged and filtered to remove bacterial cell debris. Several concentration / diafiltration operations, precipitation / elute and multilayer filtration were used to remove impurities and purify capsular polysaccharides.
  • CRM 197 Different serotype polysaccharides were conjugated to CRM 197 after activation along different pathways.
  • the activation process involves reducing the size of the capsular polysaccharide to the target molecular weight, chemically activating it, and including buffer exchange via ultrafiltration.
  • Purification CRM 197 is conjugated with activated capsular polysaccharides, the conjugates are purified using ultrafiltration and finally filtered with a 0.22 ⁇ m filter. Process parameters such as pH, temperature, concentration and time are as described below.
  • Each serotype polysaccharide was diluted in water for injection, sodium acetate and sodium phosphate so that the final concentration range was 1.0-2.0 mg / mL.
  • sodium hydroxide 0.05M final base concentration
  • hydrochloric acid 0.1M final acid concentration
  • hydrochloric acid 0.1M final acid concentration
  • the molar equivalents of sodium periodate required for pneumococcal saccharide activation were determined using the total sugar content. With complete mixing, the oxidation reaction proceeded for 16-20 hours at 21-25 ° C. for all serotypes. However, in the case of serotypes 1, 7F and 19F, the temperature was 10 degrees C or less.
  • the oxidized sugars were concentrated and diafiltered with 100 kDa MWCO ultrafiltration filters (30 kDa for serum type 1 and 5 kDa ultrafiltration filters for serotype 18C) with water for injection. Diafiltration was performed with 0.9% sodium chloride solution for serotype 1, 0.01 M sodium acetate buffer (pH 4.5) for serotype 7F, and 0.01 M sodium phosphate buffer (pH 6.0) for serotype 19F. The permeate was discarded and the residue was filtered through a 0.22 ⁇ m filter.
  • the concentrated saccharides were mixed with CRM 197 carrier protein, filled into vials, lyophilized and stored at -25 ° C ⁇ 5 ° C.
  • serotypes 2, 6A, 6B, 7F, 19A, 19F and 23F a certain amount of sucrose calculated to reach 5% ⁇ 3% sucrose concentration was added.
  • Serotypes 1, 18C did not require sucrose addition.
  • Concentrated saccharide was charged into a glass jar, lyophilized and stored at -25 ° C ⁇ 5 ° C.
  • Aqueous conjugation was used for serotypes 1, 3, 4, 5, 9N, 9V, 14 and 18C, and DMSO conjugation was used for serotypes 2, 6A, 6B, 7F, 19A, 19F and 23F.
  • the lyophilized activated saccharide-CRM 197 mixture was thawed and equilibrated at room temperature.
  • the lyophilized activated saccharide-CRM 197 was then reconstituted in 0.1 M sodium phosphate buffer at a rate determined according to the serotype.
  • serotypes 1, 18C the lyophilized saccharide in conventional ratios of sodium phosphate per 0.11L 1L CRM 197 solution was reconfigured to CRM 197 solution in 1M sodium phosphate 2 basic.
  • Lyophilized activated saccharide serotypes 2, 6A, 6B, 7F, 19A, 19F, 23F and lyophilized CRM 197 carrier proteins were equilibrated at room temperature and reconstituted in DMSO.
  • the activated saccharide and CRM 197 carrier protein were mixed at a ratio ranging from 0.8 to 1.25 g sugar / g CRM 197 .
  • the conjugation reaction was initiated by adding sodium cyanoborohydride solution (100 mg / mL) in a ratio of 0.8 to 1.2 molar equivalents of sodium cyanoborohydride per 1 mole of activated sugars. Water for injection at a target concentration of 1% (v / v) was added to the reaction mixture and the mixture was incubated at 23 ° C. ⁇ 2 ° C. for 11-27 hours.
  • the diluted conjugate mixture was concentrated and diafiltered on a 100 kDa MWCO ultrafiltration filter with at least 20 volumes of 0.9% sodium chloride or buffer. The permeate was discarded.
  • the residue after 100 kDa MWCO diafiltration was filtered through a 0.22 ⁇ m filter.
  • In-process control sucgar content, free protein, free sugars and residual cyanide; residual DMSO addition for DMSO conjugation
  • In-process controls were performed on the filtered residue to determine whether additional concentration, diafiltration and / or dilution was needed. If necessary, the filtered conjugate was diluted with 0.9% sodium chloride so that the final concentration was less than 0.55 g / L.
  • a glass test was performed on the sugar content, protein content and the sugar: protein ratio.
  • the conjugate was filtered (0.22 ⁇ m) and glass tests (appearance, free protein, free saccharides, endotoxins, molecular sizing, residual cyanide, residual DMSO, sugar identity and CRM 197 identity) were performed.
  • the final bulk concentrate was refrigerated at 2-8 ° C.
  • the required amount of final bulk concentrate was calculated based on the batch volume and bulk saccharide concentration.
  • the required amount of 0.85% sodium chloride (physiological saline), polysorbate 80, and succinate buffer were added to the pre-labeled formulation vessel followed by the bulk concentrate. Mix well and filter through a 0.22 ⁇ m filter.
  • the bulk liquid formulated during and after the addition of the bulk aluminum phosphate was slowly mixed. pH was checked and adjusted if necessary.
  • the formulated bulk product was stored at 2-8 ° C.
  • the resulting vaccine composition had 2 ⁇ g of each sugar in 0.5 mL total, except that 6B had 4 ⁇ g; About 32 ⁇ g CRM 197 carrier protein; 0.125 mg of elemental aluminum (0.5 mg aluminum phosphate) adjuvant; About 4.25 mg sodium chloride; About 295 ⁇ g succinate buffer; And about 100 ⁇ g of polysorbate 80.
  • Example 3 A study was conducted to evaluate the ability of the multivalent pneumococcal vaccine, ie the vaccine composition prepared in Example 3 (SK-15), to induce an immune response in rabbits.
  • This immunogenicity was characterized by antigen-specific ELISA for serum IgG concentration and by opsonopagocytosis analysis (OPA) for antibody function.
  • OPA opsonopagocytosis analysis
  • New Zealand White rabbits were immunized intramuscularly at weeks 0 and 3 using a planned human clinical dose of each formulated polysaccharide (2 PS each PS, exception: 4 ⁇ g 6B). Serum was collected at 3 week intervals after inoculation.
  • Capsular polysaccharides (PnPs) for each serotype were coated in 96 well plates at 500 ng / well. The same amount of serum was taken for each individual and the same groups were pooled. The serum pool was serially diluted 10-fold with an antibody dilution buffer containing Tween 20, 4ug / mL of C-PS and 4ug / mL of serotype 22F capsular polysaccharide (PnPs 22F) and reacted at room temperature for 30 minutes. The plate was washed five times with washing buffer, and 50 uL of previously adsorbed and diluted serum was added to the coated well plate and reacted for 18 hours at room temperature.
  • reaction well plates were washed in the same manner, and each well was placed with goat anti-Rabbit IgG-alkaline phosphatase conjugates (1: 50000) at room temperature. The reaction was carried out for 2 hours. The plates were washed in the same manner as above, and each well was added with 1 mg / mL p-nitrophenylamine buffer, a substrate solution, and reacted at room temperature for 2 hours. 50 uL of 3M NaOH was added to stop the reaction, and the absorbance was measured at 405 nm and 690 nm. As a comparative example, it was evaluated in the same manner using the 7-valent vaccine (Prevna 7, Pfizer) and the 13-valent vaccine (Prevna 13, Pfizer), and the results are shown in FIGS. 1 to 15.
  • Serum was analyzed by OPA assay to evaluate the function of the antibody. The same amount of serum was taken for each individual, and the same groups were pooled and diluted 10-fold.
  • S. pneumoniae was incubated in THY medium for each serotype and diluted to 1000 CFU / 10 uL. 200 uL of opsonization buffer, 10 uL of diluted serum, and 10 uL of diluted S. pneumoniae were mixed and reacted at room temperature for 1 hour. A mixed solution of HL-60 cells and complement that had been previously differentiated was added and reacted in a CO 2 incubator (37 ° C.) for 1 hour.
  • Phagocytosis was stopped by lowering the temperature, and 5 uL of the reaction solution was plated in dried agar medium for 30 to 60 minutes in advance. Incubation was performed for 12 to 18 hours in a CO 2 incubator (37 ° C.) and the populations were counted. OPA titers were expressed as dilution multiples where 50% killing was observed. As a comparative example, it was evaluated in the same manner using a 13-valent vaccine (Prevna 13, Pfizer), and the results are shown in Tables 1 to 3 below.
  • OPA titers for the 15-valent serotype Serotype Prevna 13 SK-15 Serotype Prevna 13 SK-15 One 1:64 1:64 9 V 1: 512 1: 512 2 - 1: 512 9N - 1: 2048 3 1: 4 1: 4 14 1: 1024 1: 1024 4 1: 1024 1: 1024 18C 1: 2048 1: 2048 5 1: 512 1: 512 19A 1: 2048 1: 1024 6A 1: 2048 1: 2048 19F 1: 1024 1: 512 6B 1: 2048 1: 1024 23F 1: 2048 1: 2048 7F 1: 2048 1: 2048 - - - -
  • Serotype specific immune responses against the vaccine formulations according to the invention and the vaccine formulations of the comparative example were evaluated by complement-mediated OPA measuring IgG ELISA and functional antibodies.
  • the results of IgG measurement using ELISA are shown in FIGS. 1 to 15, and the results of functional immunogenicity measurement using OPA are shown in Tables 1 to 3, and the immune responses were compared between treatment groups.
  • the results indicate that conjugation of the 15-valent pneumococcal vaccine polysaccharide can induce equivalent or better serum IgG titer and functional antibody activity compared to Prevna-13.

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Abstract

15개의 상이한 다당류-단백질 접합체를 포함하는 면역원성 조성물이 기술된다. 각 접합체는 운반체 단백질에 접합된 상이한 혈청형의 스트렙토코커스 뉴모니애 즉, 혈청형 1, 2, 3, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 9N, 9V, 14, 18C, 19A, 19F 및 23F로부터 제조된 협막 다당류를 포함한다. 알루미늄계 애쥬번트를 가진 백신으로 제제화된 면역원성 조성물은 유아 및 소아에서 폐렴구균 질환에 대한 적용범위를 증가시킨다.

Description

다가 폐렴구균 다당류-단백질 접합체 조성물
본 발명은 15개 폐렴구균 혈청형 1, 2, 3, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 9N, 9V, 14, 18C, 19A, 19F 및 23F 유래의 협막 다당류(capsular polysaccharide)를 CRM197 등의 운반체 단백질에 접합하여 제조된 다가 면역원성 조성물에 관한 것이다. 본 발명에 따른 접합체 조성물은 의학 분야, 특히 미생물학, 면역학, 백신과 관련되며, 면역접종으로 영·유아 및 소아 그리고 성인의 폐렴구균에 의한 질환을 예방하는데 유용하다.
스트렙토코커스 뉴모니애(Streptococcus pneumoniae)는 폐렴의 주요한 원인균이다. 통계청 「2010년 주요 사망원인별 사망률 추이」에 의하면 2010년 폐렴으로 인한 사망률은 10만 명당 14.9 명으로 10대 사망원인의 하나이며, 2000년 대비 82.9% 증가한 것으로 나타났다. 또한 2012년 WHO에 따르면 2008년도에 전세계적으로 HIV 음성인 5세 이하 어린이 476,000명이 스트렙토코커스 뉴모니애에 의한 감염으로 사망했으며, 5세 이하 어린이 전체 사망자 중 5%가 이 균에 의한 질환으로 사망하였다.
폐렴구균에 의한 질환을 예방하기 위해 1977 년 Dr. Robert Austrian에 의해 14가 다당류 백신이 개발되었고, 이후 23가 다당류 백신으로 발전하였다. 다가 폐렴구균 다당류 백신은 노인 및 고위험 환자에서 폐렴구균 질환을 예방하는데 있어서 유용한 것으로 입증되었다. 그러나 유아 및 소아는 대부분의 폐렴구균 다당류에 대해 면역 반응이 잘 일어나지 않는데 이는 T-cell 비의존적 면역반응 현상 때문이다. 7가 폐렴구균 접합체 백신(프레브나(Prevnar)®)은 가장 발생 빈도가 높은 7개 혈청형 4, 6B, 9V, 14, 18C, 19F 및 23F 유래의 협막 다당류(capsular polysaccharide)를 포함한다. 2000년 미국에서 최초로 승인된 이후 유아 및 소아에서 침습성 질환 및 중이염에 대해 면역원성이 높고 효과적인 것으로 입증되었다. 이 백신은 현재 전세계 약 80여 개 국가에서 승인되어 있다. 프레브나는 미국, 유럽 및 전세계의 다른 지역에서 침습성 폐렴구균 질환의 대략 80 내지 90%, 60 내지 80%, 및 40 내지 80%를 각각 감당한다. 프레브나의 도입 이후에 수년간 축적된 감시(surveillance) 데이터에서는 예상된 바와 같이, 미국에서 프레브나에 포함된 혈청형에 의한 침습성 폐렴구균 질환이 명확히 감소하였다. 하지만 일부 지역에서는 혈청형 적용 범위에 한계가 있었으며, 프레브나에 포함되지 않은 혈청형, 특히 19A로 인한 침습성 폐렴구균 질환은 증가하였다.
2010년 2월 Advisory Committee on Immunization Practices(ACIP)는 새로 허가받은 13가 폐렴 구균 접합 백신(PCV-13)의 사용 권고를 발표하였다. PCV-13은 프레브나에 포함된 7개 혈청형(4, 6B, 9V, 14, 18C, 19F, 23F) 외에 6개의 추가 혈청형(1, 3, 5, 6A, 7F, 19A)들이 함유된 폐렴구균 접합체 백신이다. 미국 Active Bacterial Core surveillance(ABCs) 조사에 의하면, 5세 이하 어린이의 발병 혈청형으로 알려진 IPD 건 중에서 총 64 %가 PCV13에 포함되어 있으며, 2007의 경우 5세 이하 어린이에서 발병한 4600 IPD 건 중에 PCV7에 의한 경우가 70 건인데 반해 PCV13의 경우는 2900 건으로 과반수 이상을 차지하고 있다. 또한 혈청형 교체가 나타나면서 incidence가 증가한 다른 혈청형을 적용범위에 넣은 15가 폐렴구균 접합체백신도 개발 중이다.
본 발명은 면역접종으로 영·유아, 소아, 및 성인의 폐렴구균에 의한 질환을 예방하는데 유용한 다가 면역원성 조성물로서, 혈청형 2 및 9N을 포함한 15개 폐렴구균 혈청형 유래의 협막 다당류를 포함하는 다가 면역원성 조성물을 제공한다.
즉, 본 발명은 혈청형 2 및 9N을 포함한 혈청형 1, 2, 3, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 9N, 9V, 14, 18C, 19A, 19F 및 23F를 포함하는 15가 폐렴구균 접합체(PCV-15) 조성물을 제공하는 것을 목적으로 한다.
본 발명의 일 태양에 따라, 생리학적으로 허용되는 비히클과 함께 15개의 상이한 다당류-단백질 접합체를 포함하는 다가 면역원성 조성물로서, 각각의 접합체가 운반체 단백질에 접합된 상이한 혈청형의 스트렙토코커스 뉴모니애(Streptococcus pneumoniae) 유래의 협막 다당류(capsular polysaccharide)를 포함하며, 상기 협막 다당류가 혈청형 1, 2, 3, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 9N, 9V, 14, 18C, 19A, 19F 및 23F로부터 제조되는, 다가 면역원성 조성물이 제공된다.
본 발명에 따른 다가 면역원성 조성물에 있어서, 상기 운반체 단백질은 CRM197일 수 있다. 본 발명에 따른 다가 면역원성 조성물은 애쥬번트를 추가로 포함할 수 있으며, 예를 들어, 애쥬번트가 알루미늄계 애쥬번트를 포함할 수 있다. 상기 애쥬번트는 알루미늄 포스페이트, 알루미늄 설페이트 및 알루미늄 하이드록사이드로 이루어진 군으로부터 선택될 수 있으며, 바람직하게는 알루미늄 포스페이트일 수 있다.
본 발명의 다른 태양에 따라, 상기 면역원성 조성물의 면역학적 유효량을 포함하는, 스트렙토코커스 뉴모니애 협막 다당류 접합체에 대한 면역 반응을 유도하기 위한 약학 조성물이 제공된다.
일 구현예에서, 상기 약학 조성물은 2 ㎍의 각 당류, 단 6B는 4 ㎍; 약 34 ㎍의 CRM197 운반체 단백질; 0.125 mg의 알루미늄 원소(0.5 mg의 알루미늄 포스페이트) 애쥬번트; 및 부형제로서 염화나트륨 및 나트륨 석시네이트 완충액을 함유하도록 제제화된 면역원성 조성물일 수 있다.
본 발명에 따른 다가 면역원성 조성물은 혈청형 2 및 9N을 포함한 15개 폐렴구균 혈청형 유래의 협막 다당류를 포함함으로써, 우수한 혈청 IgG 역가와 기능적 항체 활성을 유도할 수 있다. 따라서, 본 발명에 따른 다가 면역원성 조성물은 영·유아, 소아, 및 성인의 폐렴구균에 의한 질환을 예방하는데 유용하게 사용될 수 있다.
도 1 내지 도 15는 본 발명에 따른 백신 조성물 및 비교예[(프레브나 7가 백신(Prevnar) 및 프레브나 13가 백신(Prevnar 13)]의 2차 접종 3주 후(즉, 총 6주 후)에 혈청형 특이적 IgG 농도를 측정한 결과이다.
항생제 내성 및 다재내성을 나타내는 일부 혈청형에 의해 혈청형 교체(serotype replacement)가 나타났다. 또한 혈청형 분포의 지역간 편차로 인해 프레브나 적용범위가 지역에 따라 달라지는 한계가 제기되었다(Harboe ZB, Benfield TL, Valentiner-Branth P, et al. Temporal Trends in Invasive Pneumococcal Disease and Pneumococcal Serotypes over 7 Decades. Clin Infect Dis 2010; 50:329-37). 따라서 기존의 폐렴구균 접합체 백신으로부터 어떤 혈청형도 제거할 이유가 없으며 오히려 혈청형을 추가하여 적용범위를 더 넓혀야 할 필요성이 있다.
2008년 Pneumococcal Global Serotype Project (GSP)에서 1980년부터 2007년까지의 IPD 데이터를 수집하여 발표한 보고자료에서는, 혈청형 2가 top 20 global serotype에서 혈청형 18C에 이어 11번째로 발생 빈도가 높은 혈청형으로 나타났다. 또한 Samir K. Saha 등은 혈청형 2가 방글라데시에서 폐렴구균성 수막염 유발 확률이 높고 폐렴구균 접합체 백신에 포함되지 않아 앞으로 위협이 될 수 있다고 보고하였다(Saha SK, Al Emran HM, Hossain B, Darmstadt GL, Saha S, et al. (2012) Streptococcus pneumoniae Serotype-2 Childhood Meningitis in Bangladesh: A Newly Recognized Pneumococcal Infection Threat. PLoS ONE 2012; 7(3): e32134). 따라서 혈청형 2를 포함시키면 폐렴구균 질환의 수가 감소할 수 있을 뿐만 아니라, 앞으로 PCV-13 접종으로 나타날 혈청형 교체 현상에도 대비할 수 있을 것이다.
폐렴구균 혈청형은 나이에 따라 다른 분포 양상을 보인다. 특히 폐렴구균 접합백신 접종 대상인 0 내지 23개월 이하의 영유아에서는 24 내지 59 개월의 소아와 비교해, 혈청형 9N의 중요성이 상대적으로 증가하는 것으로 나타났다. PCV-13에 포함된 혈청형 13개에 이어 14번째로 흔한 분리주였다. 이것은 혈청형 9N을 포함시키면 전체, 특히 영유아에서 폐렴구균 질환의 감소에 기여할 수 있음을 시사한다.
본 발명은 혈청형 2 및 9N을 포함한 15개 폐렴구균 혈청형 유래의 협막 다당류를 포함하는 다가 면역원성 조성물을 제공한다. 즉, 본 발명은 생리학적으로 허용되는 비히클과 함께 15개의 상이한 다당류-단백질 접합체를 포함하는 다가 면역원성 조성물로서, 각각의 접합체가 운반체 단백질에 접합된 상이한 혈청형의 스트렙토코커스 뉴모니애(Streptococcus pneumoniae) 유래의 협막 다당류(capsular polysaccharide)를 포함하며, 상기 협막 다당류가 혈청형 1, 2, 3, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 9N, 9V, 14, 18C, 19A, 19F 및 23F로부터 제조되는, 다가 면역원성 조성물을 제공한다.
협막 다당류는 당업자에게 공지된 표준 기술에 의해서 제조될 수 있다. 협막 다당류는 점도를 감소시키기 위해서 또는 활성화된 협막 다당류의 용해도를 증가시키기 위해서 크기를 줄일 수 있다. 본 발명에서, 협막 다당류는 스트렙토코커스 뉴모니애의 혈청형 1, 2, 3, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 9N, 9V, 14, 18C, 19A, 19F 및 23F로부터 제조된다. 이 폐렴구균 접합체들은 별개의 과정에 의해서 제조되고 단일 투여 제형으로 제제화된다. 예를 들면, 각 폐렴구균 다당류 혈청형을 대두-기제 배지에서 증식시키고, 이어서 개개의 다당류를 원심분리, 침전, 한외여과를 통해서 정제한다.
운반체 단백질은 바람직하게는 무독성이고 비반응원성이며, 충분한 양 및 순도로 수득할 수 있는 단백질이다. 상기 운반체 단백질은 표준 접합 방법에 적절해야 한다. 본 발명에 따른 다가 면역원성 조성물에 있어서, 상기 운반체 단백질은 CRM197일 수 있다. CRM197은 카사미노산 및 효모 추출물-기제 배지에서 증식시킨 코리네박테리움 디프테리아(Corynebacterium diphtheria) 균주 C7 (β197)의 배양물로부터 분리된 디프테리아 독소의 무독성 변이체(즉, 톡소이드)이다. CRM197은 한외여과, 암모늄 설페이트 침전 및 이온 교환 크로마토그래피를 통해서 정제된다. CRM197은 미국특허 제5,614,382호에 따라 재조합적으로 제조될 수 있다.
다른 디프테리아 톡소이드도 또한 운반체 단백질로서 사용될 수 있다. 다른 적당한 운반체 단백질에는, 파상풍 톡소이드, 백일해 톡소이드, 콜레라 톡소이드(제WO2004/083251호), 이.콜라이(E. coli) LT, 이.콜라이 ST, 및 슈도모나스 애루지노사(Pseudomonas aeruginosa) 유래의 외독소 A와 같은 불활성화된 세균 독소가 포함된다. 세균 외막 단백질, 예를 들면, 외막복합체 c (OMPC), 포린, 트랜스페린 결합 단백질, 뉴모리신, 폐렴구균 표면 단백질 A(PspA), 폐렴구균 어드헤신(adhesin) 단백질(PsaA), 그룹 A 또는 그룹 B 연쇄구균 유래의 C5a 펩티다제, 또는 헤모필러스 인플루엔자(Haemophilus influenzae) 단백질 D도 또한 사용될 수 있다. 오브알부민, 키홀 림펫 헤모시아닌(KLH), 소 혈청 알부민(BSA) 또는 투베르쿨린의 정제된 단백질 유도체(PPD)와 같은 다른 단백질도 또한 운반체 단백질로서 사용될 수 있다. CRM173, CRM228, CRM45와 같은 디프테리아 독소의 변이체도 운반체 단백질로 사용할 수 있다.
운반체 단백질과 반응할 수 있는 당류를 제조하기 위하여, 정제된 다당류는 화학적으로 활성화시킨다. 일단 활성화되면, 각 협막 다당류를 운반체 단백질에 하나씩 접합시켜서 당접합체(glycoconjugate)를 형성한다. 일 구현예에서, 각 협막 다당류를 동일한 운반체 단백질에 접합시킨다. 다당류의 화학적 활성화 및 이어지는 운반체 단백질에의 접합은 공지의 방법에 의해 수행될 수 있다(미국특허 제4,673,574호, 제4,902,506호 등). 과요오드산염(과요오드산 나트륨, 과요오드산 칼륨, 또는 과요오드산 포함)과 같은 산화제로 협막 다당류의 말단 히드록실 기를 알데히드 기로 산화시킨다. 화학적 활성화 반응은 불규칙한 서로 인접한 히드록실 기의 산화적 분해를 일으킨다. 접합은 환원적 아미노화에 의해서 달성된다. 예를 들면, 소듐 시아노보로하이드라이드와 같은 환원제와 함께 활성화된 협막 다당류와 운반체 단백질을 반응시킨다. 미반응의 알데히드 기는 강력한 산화제를 첨가하여 제거할 수 있다.
얻어진 다당류-단백질 접합체는 다양한 방법에 의해 정제할 수 있다(즉, 다당류-단백질 접합체의 양을 풍부화할 수 있다). 이들 방법의 예는 농축/투석여과 공정, 칼럼 크로마토그래피 및 다층 여과를 포함한다. 정제된 다당류-단백질 접합체들은 각각을 혼합하여 본 발명의 면역원성 조성물로 제제화하고, 이를 백신으로서 사용할 수 있다. 당업계에서 인정된 방법을 사용하여 본 발명의 면역원성 조성물의 제제화를 수행할 수 있다. 예를 들면, 15개의 개개의 폐렴구균 접합체를 생리학적으로 허용되는 비히클과 함께 제형화하여 조성물을 제조할 수 있다. 이러한 비히클의 예에는, 물, 완충 식염수, 폴리올(예: 글리세롤, 프로필렌 글리콜, 액체 폴리에틸렌 글리콜) 및 덱스트로스 용액이 포함되지만, 이에 제한되는 것은 아니다.
일 구현예에서, 본 발명의 면역원성 조성물은 하나 이상의 애주번트를 포함한다. 본원에서 정의되는 "애주번트"는 본 발명의 면역원성 조성물의 면역원성을 증가시키는데 사용되는 물질이다. 따라서, 애주번트는 종종 면역 반응을 부스터하기 위하여 제공되고 당업자에게 잘 알려져 있다. 조성물의 유효성을 증가시키기에 적당한 애주번트는 다음을 포함하나, 이에 제한되는 것은 아니다:
(1) 알루미늄 염(명반) (예: 알루미늄 하이드록사이드, 알루미늄 포스페이트, 알루미늄 설페이트 등);
(2) 수중유형 에멀젼 제형(무라밀 펩티드(아래에서 정의됨) 또는 세균 세포벽 성분과 같은 다른 특정한 면역 자극제를 함유하거나 함유하지 않음), 예를 들면 (a) MF59 (제WO90/14837호): 5% 스쿠알렌(Squalene), 0.5% 트윈(Tween) 80 및 0.5% 스판(Span) 85를 함유하며(임의로 다양한 양의 MTP-PE(필요하지는 않지만, 아래를 참조)를 함유함), Model 110Y 마이크로플루이다이저(microfluidizer)[Microfluidics, Newton, MA]와 같은 마이크로플루이다이저를 사용하여 서브마이크론 입자로 제형화됨, (b) SAF: 10% 스쿠알렌, 0.4% 트윈 80, 5% 플루로닉(pluronic)-블럭 중합체 L121 및 thr-MDP(아래를 참조)를 함유하며, 서브마이크론 에멀젼으로 미세유동화(microfluidization)되거나, 와동시켜 큰 입자 크기의 에멀젼을 형성시킴, 및 (c) 리비(Ribi)™ 애주번트 시스템(RAS) [Corixa, Hamilton, MT]: 2% 스쿠알렌, 0.2% 트윈 80 및, 미국특허 제4,912,094호에 기술된 3-O-탈아실화된 모노포스포릴 리피드 A(MPL™)[Corixa], 트레할로스 디미콜레이트(TDM) 및 세포벽 골격(CWS)으로 이루어진 그룹으로부터의 하나 이상의 세균 세포벽 성분, 바람직하게는 MPL + CWS (디톡스(Detox)™)를 함유함;
(3) 퀼 에이(Quil A) 또는 스티뮬론(STIMULON)™ QS-21[Antigenics, Framingham, MA](미국특허 제5,057,540호)과 같은 사포닌 애주번트가 사용되거나 이로부터 생성된 입자(예: ISCOM(면역자극 복합체));
(4) 세균 지질다당류, 합성 리피드 A 동족체 (예: 아미노알킬 글루코스아민 포스페이트 화합물(AGP)), 또는 이의 유도체 또는 동족체 [이는 Corixa로부터 구입할 수 있고, 미국특허 제6,113,918호에 기술되어 있음; 한가지 이러한 AGP는 2-[(R)-3-테트라데카노일옥시테트라데카노일아미노]에틸 2-데옥시-4-O-포스포노-3-O-[(R)-3-테트라데카노일옥시테트라데카노일]-2-[(R)-3-테트라데카노일옥시테트라데카노일아미노]-b-D-글루코피라노시드이고, 이는 또한 529로도 알려져 있으며(이전에는 RC529로 알려짐), 이는 수성형 또는 안정한 에멀젼으로서 제형화됨],
(5) 합성 폴리뉴클레오타이드 (예: CpG 모티프를 함유하는 올리고뉴클레오타이드(미국특허 제6,207,646호));
(6) 사이토카인, 예를 들어, 인터루킨(예: IL-1, IL-2, IL-4, IL-5, IL-6, IL-7, IL 12, IL-15, IL-18 등), 인터페론(예: 감마 인터페론), 과립구 대식세포 콜로니 자극 인자(GM-CSF), 대식세포 콜로니 자극 인자(MCSF), 종양 괴사 인자(TNF), 공동자극 분자 B7-1 및 B7-2 등;
(7) 야생형 콜레라 독소(CT) 또는, 예를 들면, 제WO 00/18434호에 따라 아미노산 29번 위치에 있는 글루탐산이 다른 아미노산, 바람직하게는 히스티딘으로 치환된, 돌연변이형 콜레라 독소 (제WO 02/098368호 및 제WO 02/098369호), 백일해 독소(PT), 또는 이.콜라이 열-불안정성 독소(LT), 특히 LT-K63, LT-R72, CT-S109, PT-K9/G129(제WO 93/13302호 및 제WO 92/19265호)와 같은 세균 ADP-리보실화 독소의 무독화된 돌연변이체; 및
(8) Complement component C3d의 trimer와 같은 보체.
무라밀 펩티드에는 N-아세틸-무라밀-L-트레오닐-D-이소글루타민(thr-MDP), N-아세틸-노르무라밀-L-알라닌-2-(1'-2' 디팔미토일-sn-글리세로-3-하이드록시포스포릴옥시)-에틸아민 (MTP-PE) 등이 포함되지만, 이에 제한되는 것은 아니다.
특정 구현예에서, 알루미늄 염이 애주번트로서 사용된다. 알루미늄 염 애주번트는 알루미늄-침전 백신(alum-precipitated vaccine)이거나 알루미늄-흡착 백신(alum-adsorbed vaccine)일 수 있다. 알루미늄 염에는 수화된 알루미나, 알루미나 수화물, 알루미나 3수화물(ATH), 알루미늄 수화물, 알루미늄 3수화물, 알하이드로겔, Superfos, 암포젤, 수산화알루미늄(Ⅲ), 알루미늄 히드록시포스페이트 설페이트(Aluminum Phosphate Adjuvant(APA)), 무정형 알루미나 등이 포함되지만, 이에 제한되는 것은 아니다. APA는 알루미늄 히드록시포스페이트의 현탁액이다. 염화알루미늄과 인산나트륨을 1:1의 비율로 혼합하면 알루미늄 히드록시포스페이트 설페이트가 침전된다. High shear mixer를 이용하여 침전물의 크기가 2~8㎛이 되도록 한 다음 생리식염수로 투석하고 멸균하여 제조한다. 일 구현예에서, 상업적으로 이용가능한 Al(OH)3(예를 들어 알하이드로겔 또는 Superfos)를 사용하여 단백질을 흡착한다. 수산화알루미늄 1 mg당 50~200g의 단백질이 흡착될 수 있으며 이 비율은 단백질의 pI와 용매의 pH에 의존적이다. 낮은 pI의 단백질은 높은 pI를 가진 단백질에 비해 강하게 결합한다. 알루미늄 염은 2~3주간 서서히 항원을 방출하는 항원 저장소를 형성하여 비특이적으로 대식세포, 보체, 선천성 면역 메커니즘을 활성화시킨다.
본 발명은 상기 면역원성 조성물의 면역학적 유효량을 포함하는, 스트렙토코커스 뉴모니애 협막 다당류 접합체에 대한 면역 반응을 유도하기 위한 약학 조성물(예를 들어, 백신 제제)을 제공한다.
본 발명에 따른 백신 제제는, 전신 또는 점막 경로로 투여함으로써, 폐렴구균에 감염되기 쉬운 사람을 보호 또는 치료하는데 사용될 수 있다. 본원에서 정의되는 "유효량"이란 스트렙토코커스 뉴모니애에 감염될 확률 또는 감염의 심각성을 상당히 감소시킬 수 있을 정도의 항체를 유발하는데 필요한 투여량을 말한다. 투여에는 근육내, 복강내, 피내 또는 피하 경로를 통한 주사; 또는 구강/소화관, 기도관 또는 비뇨생식관으로의 점막 투여가 포함될 수 있다. 일 구현예에서, 폐렴 또는 중이염의 치료를 위하여 비내 투여가 사용되며, 이는 폐렴구균의 비인두 보균을 보다 효과적으로 예방하여, 초기 단계에서 감염을 약화시킬 수 있기 때문이다. 각 백신 용량에서 상기 접합체의 양은, 상당한 부작용 없이 면역보호 반응을 유도하는 양으로 선택된다. 이러한 양은 폐렴구균의 혈청형에 따라 달라질 수 있다. 일반적으로, 각 용량은 0.1 내지 100 ㎍, 바람직하게는 0.1 내지 10 ㎍, 더욱 바람직하게는 1 내지 5㎍의 다당류를 포함할 것이다. 특정 백신에 대한 성분의 최적량은 피험자에서 적당한 면역 반응의 관찰을 포함하는 표준 연구에 의해서 확인될 수 있다. 예를 들어 동물실험 결과를 외삽하여 사람을 대상으로 한 백신접종 용량을 결정할 수 있다. 또한 경험적으로 용량을 결정할 수 있다.
본 발명의 일 구현예에서, 본 발명의 백신 조성물은 각각 CRM197에 접합된 혈청형 1, 2, 3, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 9N, 9V, 14, 18C, 19A, 19F 및 23F의 폐렴구균 협막 다당류의 멸균 액체 제형이다. 각 0.5mL 용량에, 2 ㎍의 각 당류, 단 6B는 4 ㎍; 약 34㎍ CRM197 운반체 단백질; 0.125 mg의 알루미늄 원소(0.5 mg 알루미늄 포스페이트) 애주번트; 및 부형제로서 염화나트륨 및 나트륨 석시네이트 완충액이 함유되도록 제제화될 수 있다. 상기 액체는 보존제 없이 단일 용량 주사기 속에 충전될 수 있다. 진탕하고 나면, 즉시 근육 내 투여할 수 있는 균질한 백색 현탁액의 백신이 된다.
본 발명의 다른 구현예에서, 본 발명의 조성물은 단회 접종으로 투여될 수 있다. 예를 들어, 본 발명의 백신 조성물은 적당한 간격으로 2회, 3회, 4회 또는 그 이상 투여될 수 있으며, 예를 들면, 1, 2, 3, 4, 5, 또는 6개월 간격으로, 혹은 이것의 어떠한 조합에 따라 투여될 수 있다. 면역접종 계획은 프레브나에 대해 명시된 것을 따를 수 있다. 예를 들면, 에스.뉴모니애에 의해서 발생하는 침습성 질환에 대해 유아 및 갓난아이를 대상으로 한 정기접종 계획은 생후 2, 4, 6 및 12 내지 15개월이다. 따라서 당해 양태에서, 조성물을 생후 2, 4, 6 및 12 내지 15개월에 4회 접종한다.
본 발명의 조성물은 또한 스트렙토코커스 뉴모니애 유래의 하나 이상의 단백질을 포함할 수 있다. 포함시키기에 적당한 스트렙토코커스 뉴모니애 단백질의 예에는 제WO 02/053761호에 기술된 단백질뿐만 아니라, 제WO 02/083855호에서 동정된 단백질도 포함된다.
본 발명의 조성물은 당업자에게 공지된 하나 이상의 투여경로, 비경구, 경피 또는 점막, 비내, 근육내, 복강내, 피내, 정맥 또는 피하 경로 등으로 피험자에게 투여될 수 있으며, 그에 따라 제제화할 수 있다. 일 구현예에서, 본 발명의 조성물은 액상제제로서 근육내, 복강내, 표피, 정맥, 동맥 또는 피하 경로를 통한 주사; 또는 호흡기 점막 주사로 투여할 수 있다. 주사용 액상 제제는 용액 또는 그와 같은 종류를 포함한다.
본 발명의 조성물은 단회 투여 용량 바이얼, 다회 투여 용량 바이얼 또는 프리필드시린지 형태로 제제화할 수 있다. 액상 제제에 사용되는 약제학적으로 허용되는 담체에는 수성 또는 비수성 용매, 현탁액, 에멀젼, 오일이 있다. 비수성 용매의 예로는 프로필렌 글리콜, 폴리에틸렌 글리콜, 에틸 올레이트가 있다. 수성 담체는 물, 알코올/수성 용매, 에멀젼 또는 현탁액, 생리식염수, 버퍼 용액을 포함한다. 오일의 예로는 식물성 또는 동물성 오일, 피넛 오일, 대두유, 올리브 오일, 해바라기 오일, 간유, 수산유지(marine oil)와 같은 합성 오일, 우유나 달걀에서 얻은 지질이 있다. 약제학적 조성물은 등장성, 고장성 또는 저장성일 수 있다. 하지만 infusion이나 주사로 투여되는 약제학적 조성물은 기본적으로 등장성이 바람직하다. 따라서 등장성이나 고장성이 조성물의 저장에 유리할 수 있다. 약제학적 조성물이 고장성일 경우, 투여 전에 등장성이 되도록 희석할 수 있다. 등장화제는 염과 같은 이온성 등장화제이거나 탄수화물과 같은 비이온성 등장화제일 수 있다. 이온성 등장화제에는 염화나트륨, 염화칼슘, 염화칼륨, 염화마그네슘 등이 포함되지만, 이에 제한되는 것은 아니다. 비이온성 등장화제에는 솔비톨, 글리세롤 등이 포함되지만, 이에 제한되는 것은 아니다. 바람직하게는 최소한 한 가지의, 약제학적으로 허용되는 완충액을 포함한다. 예를 들면, 약제학적 조성물이 주입제(infusion)나 주사제일 경우 pH 4 내지 10, 예를 들어, 5 내지 9, 6 내지 8에서 완충능을 가지는 완충액으로 구성되는 것이 바람직하다. 완충액은 TRIS, 아세테이트, 글루타메이트, 락테이트, 말리에이트, 타트레이트, 포스페이트, 시트레이트, 카보네이트, 글리시네이트, 히스티딘, 글리신, 석시네이트, 트리에탄올아민 완충액으로 구성된 group에서 선택할 수 있다.
특히 약제학적 조성물이 비경구 투여를 목적으로 할 경우, 완충액은 USP에 적합한 완충액 중에서 선택할 수 있다. 예를 들면, 완충액은 아세트산, 벤조산, 글루콘산, 글리세르산, 젖산과 같은 일염기산; 아코니트산, 아디프산(adipic), 아스코르빈산, 탄산(carbonic), 글루타민산, 말산, 석신산, 주석산과 같은 이염기산; 시트르산, 인산과 같은 다염기산; 암모니아, 다이에탄올아민, 글리신, 트리에탄올아민, TRIS와 같은 염기로 구성된 group에서 선택할 수 있다. 비경구적 투여 시 비히클(피하, 정맥내, 동맥내, 근육내 주사)에는 염화나트륨 용액, Ringer's 덱스트로스 용액, 덱스트로스와 염화나트륨, lactated Ringer's 용액 및 불휘발성유(fixed oils)가 포함된다. 정맥내 투여용 비히클에는 Ringer's dextrose 용액 또는 이와 같은 용액을 기본으로 한 수액과 영양 보충제와 전해질 보충제가 포함된다. 계면활성제와 약제학적으로 적합한 애주번트가 첨가되거나 혹은 첨가되지 않은 물과 오일 같은 멸균된 액체가 그 예이다. 일반적으로, 물, 생리식염수, 덱스트로스 용액, 관련 당 용액, 프로필렌 글리콜이나 폴리에틸렌 글리콜과 같은 글리콜, 폴리소르베이트 80이 특히 주사액에 적합하다. 오일의 예로는 동물성 및 식물성 오일, 피넛 오일, 대두유, 올리브 오일, 해바라기 오일, 간유, 수산유지(marine oil)과 같은 합성 오일, 우유나 달걀에서 얻은 지질이 있다
본 발명의 제제(formulation)은 계면활성제를 포함할 수 있다. 바람직하게는 폴리옥시에틸렌 소르비탄 에스테르(보통 Tweens이라고 불리는) 중 특히 폴리소르베이트 20과 폴리소르베이트 80; 에틸렌 옥시드(EO), 프로필렌 옥시드(PO), 부틸렌 옥시드(BO)의 공중합체(예: DOWFAXTM); 에톡시(oxy-1,2-ethanediyl) 그룹의 반복 수가 서로 다른 옥스톡시놀류, 특히 오스톡시놀-9(Triton-100); 에틸페녹시폴리에톡시에탄올(IGEPAL CA-630/NP-40); 레시틴과 같은 인지질; TergitolTM NP 시리즈와 같은 노닐페놀 에톡시레이트; 라우릴, 세틸, 스테아릴, 올레일 알코올에서 유도된 폴리옥시에틸렌 지방산 에테르(Brij 계면활성제), 특히 트리에틸렌글리콜 모노라우릴 에테르(Brij 30); SPANs으로 알려진 소르비탄 에테르, 특히 소르비탄 트리올레이트(Span 85)와 소르비탄 모노라우레이트와 같은 계면활성제를 포함하지만, 이에 국한되는 것은 아니다. Tween 80는 에멀젼에 포함되기에 바람직하다.
Tween 80/Span 85와 같은 계면활성제의 혼합물도 사용할 수 있다. Tween 80과 같은 폴리옥시에틸렌 소르비탄 에스테르와 Triton X-100과 같은 옥토시놀의 조합도 적합하다. Laureth 9과 Tween, 그리고 혹은 옥토시놀의 조합도 유용하다. 바람직하게는 폴리옥시에틸렌 소르비탄 에스테르(예: Tween 80)를 0.01% 내지 1%(w/v), 특히 0.1%; 옥틸페녹시 폴리옥시에탄올 또는 노닐페녹시 폴리옥시에탄올(예: Triton X-100)은 0.001% 내지 0.1%, 특히 0.005% 내지 0.02%; 폴리옥시에틸렌 에테르(예: laureth 9)는 0.1% 내지 20%, 가급적 0.1% 내지 10%, 특히 0.1% 내지 1% 또는 약 0.5%를 포함한다. 일 구현예에서, 약제학적 조성물은 방출조절시스템에 의해 전달된다. 예를 들면, 정맥내주입, 경피첩포(transdermal patch), 리포좀, 또는 다른 경로로 투여될 수 있다. 한가지 양태에서, 마이크로스피어 또는 임플란트와 같은 고분자 물질이 사용된다.
이하, 본 발명을 실시예를 통하여 더욱 상세히 설명한다. 그러나, 하기 실시에는 본 발명의 설명을 위한 것이며, 이들 실시예에 의해 본 발명이 제한되는 것으로 해석되어서는 안된다.
실시예 1. 에스.뉴모니애 협막 다당류의 제조
에스.뉴모니애 배양과 협막 다당류의 정제는 당업자에게 공지된 방법에 의해서 수행하였다. 에스.뉴모니애 각 혈청형은 수탁기관[American Type Culture Collection (ATCC)]로부터 입수할 수 있다. 협막과 비운동성, 그람 양성, lancet-shaped 쌍구균, 혈액한천배지에서 알파용혈현상으로 에스.뉴모니애를 동정하였다. 혈청형은 특정한 항혈청을 이용한 Quellung test를 바탕으로 확인하였다(미국특허 제5,847,112호).
세포은행의 제조
균주를 증대시키고 동물성 기원의 성분을 제거하기 위하여 원종균(seed stock)을 여러 세대 배양하였다(F1, F2 및 F3 세대). 원종균을 추가적으로 두 세대 더 배양하였다. 추가적인 제1세대는 F3 바이알로부터 배양하였고, 후속 세대는 추가적인 제1세대의 바이알로부터 배양하였다. 냉동보존제로서 합성 글리세롤과 함께 종균 바이알을 냉동보관하였다(-70℃ 이하). 세포 은행 제조를 위하여, 모든 배양물을 대두-기제 배지에서 증식시켰다. 냉동시키기 전에, 원심분리에 의해서 세포를 농축시키고, 사용된 배지를 제거한 후, 냉동보존제(예: 합성 글리세롤)를 함유하는 새로운 배지에 세포 펠렛을 재현탁시켰다.
접종
제조용 세포 은행 유래의 배양물을 사용하여 대두-기제 배지를 함유하는 종균병에 접종하였다. 종균병을 사용하여 대두-기제 배지를 함유하는 종균 발효기에 접종하였다.
종균배양
온도와 pH를 조절하면서 종균발효기에서 발효하였다. 목표 흡광도에 도달한 후에, 대두-기제 배지를 함유하는 생산 발효기에 접종하였다.
생산배양
생산 배양은 발효의 마지막 단계이다. 온도와 pH 및 교반 속도를 조절하였다.
불활성화
성장이 중단된 후 불활성화제를 첨가하여 발효를 종결시켰다. 불활성화 후 발효기의 내용물을 냉각시키고 pH를 조절하였다.
정제
배양물 브로스를 원심분리하고 여과하여 세균 세포 잔해를 제거하였다. 수회의 농축/투석여과 작업, 침전/용출 및 다층여과를 사용하여 불순물을 제거하고 협막 다당류를 정제하였다.
실시예 2. 에스.뉴모니애 협막 다당류와 CRM197의 접합체 제조
상이한 혈청형 다당류는 상이한 경로를 따라 활성화시킨 후 CRM197에 접합시켰다. 활성화 공정은 목표 분자량이 되도록 협막 다당류의 크기를 줄이고, 화학적으로 활성화하며, 한외여과를 통한 버퍼 교환을 포함한다. 정제 CRM197은 활성화된 협막 다당류와 접합되며, 접합체는 한외여과를 이용하여 정제하고 최종적으로 0.22㎛ 필터로 여과한다. pH, 온도, 농도 및 시간 등의 공정 파라미터는 하기에 기재된 바와 같다.
(1) 활성화 공정
Step 1
최종 농도 범위가 1.0 내지 2.0mg/mL이 되도록 각각의 혈청형 다당류를 주사용수, 아세트산나트륨 및 인산나트륨에 희석시켰다. 혈청형 1의 경우, 수산화나트륨(0.05M 최종 염기 농도)을 첨가하고 50℃±2℃에서 용액을 항온처리하였다. 21 내지 25℃로 냉각시키고 6.0±0.1의 목표 pH로 염산을 첨가함으로써 가수분해를 중지시켰다. 혈청형 3의 경우, 염산(0. 01M 최종 산 농도)을 첨가하고 50℃±2℃에서 용액을 항온처리하였다. 21 내지 25℃로 냉각시키고 6.0±0.1의 목표 pH로 1M 인산나트륨을 첨가함으로써 가수분해를 중지시켰다. 혈청형 4의 경우, 염산(0. 1M 최종 산 농도)을 첨가하고 45℃±2℃에서 용액을 항온처리하였다. 21 내지 25℃로 냉각시키고 6.0±0.1의 목표 pH로 1M 인산나트륨을 첨가함으로써 가수분해를 중지시켰다. 혈청형 6A의 경우, 빙초산(0.2M 최종 산 농도)을 첨가하고 60℃±2℃에서 용액을 항온 처리하였다. 이어서, 온도를 21 내지 25℃로 낮추고 6.0±0.1의 목표 pH가 되도록 1M 수산화나트륨을 첨가하였다. 혈청형 14, 18C의 경우, 빙초산(0.2M 최종 산 농도)을 첨가하고 94℃±2℃에서 용액을 항온 처리하였다. 이어서, 온도를 21 내지 25℃로 낮추고 6.0±0.1의 목표 pH가 되도록 1M 인산나트륨을 첨가하였다.
Step 2: 과요오드산염 반응
폐렴구균 당류 활성화에 필요한 과요오드산나트륨 몰당량을 총 당류 함량을 사용하여 측정하였다. 완전히 혼합하면서, 모든 혈청형에 대해 21 내지 25℃에서 16 내지 20시간 동안 산화 반응을 진행시켰다. 단 혈청형 1, 7F, 19F의 경우, 온도를 10℃ 이하로 하였다.
Step 3: 한외여과
산화된 당류를 100 kDa MWCO 한외여과 필터(혈청형 1의 경우 30kDa, 혈청형 18C의 경우 5kDa 한외여과 필터)에 주사용수로 농축 및 투석여과 하였다. 혈청형 1의 경우 0.9% 염화나트륨 용액으로, 혈청형 7F의 경우 0.01M 아세트산나트륨 완충액(pH 4.5)으로, 그리고 혈청형 19F의 경우 0.01M 인산나트륨 완충액(pH 6.0)으로 투석여과 하였다. 투과액을 폐기하고 잔류액을 0.22㎛ 필터를 통해서 여과시켰다.
Step 4: 동결건조
혈청형 3, 4, 5, 9N, 9V 및 14의 경우, 농축된 당류를 CRM197 운반체 단백질과 혼합하여, 유리병 속에 충전하고, 동결건조시킨 다음, -25℃±5℃에서 보관하였다. 혈청형 2, 6A, 6B, 7F, 19A, 19F 및 23F의 경우, 5%±3% 슈크로스 농도에 도달하도록 계산된 특정량의 슈크로스를 첨가하였다. 혈청형 1, 18C는 슈크로스 첨가를 요구하지 않았다. 농축된 당류를 유리병 속에 충전하고 동결건조시킨 다음, -25℃±5℃에서 보관하였다.
(2) 접합 공정
혈청형 1, 3, 4, 5, 9N, 9V, 14 및 18C의 경우 수성 접합을 사용하고, 혈청형 2, 6A, 6B, 7F, 19A, 19F 및 23F의 경우 DMSO 접합을 사용하였다.
Step 1: 용해
수성접합
혈청형 3, 4, 5, 9N, 9V 및 14의 경우, 동결건조된 활성화된 당류-CRM197 혼합물을 해동시키고 실온에서 평형화시켰다. 이어서, 동결건조된 활성화된 당류-CRM197을 혈청형에 따라 정해진 비율로 0.1M 인산나트륨 완충액에 재구성시켰다. 혈청형 1, 18C의 경우, 동결건조된 당류를 CRM197 용액 1L 당 인산나트륨 0.11L의 통상적 비율로 1M 2염기성 인산나트륨 중의 CRM197 용액에 재구성시켰다.
DMSO접합
동결건조된 활성화된 당류 혈청형 2, 6A, 6B, 7F, 19A, 19F, 23F 및 동결건조된 CRM197 운반체 단백질을 실온에서 평형화시키고 DMSO에 재구성시켰다.
Step 2: 접합 반응
수성접합
혈청형 1, 3, 4, 5, 9N, 9V, 14 및 18C의 경우, 당류 1몰 당 나트륨 시아노보로하이드라이드 1.0 내지 1.2몰이 되도록 나트륨 시아노보로하이드라이드 용액(100mg/mL)을 첨가함으로써 접합 반응을 개시시켰다. 반응 혼합물을 23℃ 내지 37℃에서 44 내지 96시간 동안 항온처리하였다. 온도 및 반응시간은 혈청형에 따라 다르게 조절하였다. 이어서, 온도를 23℃±2℃로 낮추고 염화나트륨 0.9%를 반응기에 첨가하였다. 당류 1몰 당 나트륨 보로하이드라이드 1.8 내지 2.2 몰당량이 되도록 나트륨 보로하이드라이드 용액(100mg/mL)을 첨가하고 혼합물을 23℃±2℃에서 3 내지 6시간 동안 항온처리하였다. 이 과정을 통해서, 당류에 존재하는 반응하지 않은 임의의 알데히드를 환원시켰다. 염화나트륨 0.9%를 사용하여 혼합물을 희석시키고 희석된 접합 혼합물을 1.2㎛ 예비필터를 사용하여 여과시켰다.
DMSO접합
혈청형 2, 6A, 6B, 7F, 19A, 19F 및 23F의 경우, 활성화된 당류 및 CRM197 운반체 단백질을 0.8 내지 1.25g 당류/g CRM197 범위의 비로 혼합하였다. 활성화된 당류 1몰에 대해 나트륨 시아노보로하이드라이드 0.8 내지 1.2 몰당량의 비로 나트륨 시아노보로하이드라이드 용액(100mg/mL)을 첨가함으로써 접합 반응을 개시시켰다. 1%(v/v)의 목표 농도로 주사용수를 반응 혼합물에 첨가하고 혼합물을 23℃±2℃에서 11 내지 27시간 항온처리하였다. 100mg/mL의 나트륨 보로하이드라이드 용액(활성화된 당류 1몰 당 통상적으로 나트륨 보로하이드라이드 1.8 내지 2.2 몰당량) 및 주사용수(목표 농도 5% v/v)를 반응물에 첨가하고 혼합물을 23℃±2℃에서 3 내지 6시간 동안 항온처리하였다. 이 과정을 통해서, 당류에 존재하는 반응하지 않은 임의의 알데히드를 환원시켰다. 이어서, 반응 혼합물을 0.9% 염화나트륨으로 희석하고, 희석된 접합체 혼합물을 1.2㎛ 필터를 통해서 여과시켰다.
단계 3: 한외여과
희석된 접합 혼합물을 최소 20 용적의 0.9% 염화나트륨 또는 완충액을 사용하여 100 kDa MWCO 한외여과필터에 농축 및 투석여과시켰다. 투과액을 폐기하였다.
단계 4: 멸균 여과
100 kDa MWCO 투석여과 후의 잔류액을 0.22㎛ 필터를 통해서 여과시켰다. 여과된 산물에 대해 제조과정 중 제어(당류 함량, 유리 단백질, 유리 당류 및 잔여 시아나이드; DMSO 접합의 경우, 잔여 DMSO 추가)를 실시하였다. 여과시킨 잔류액에 대해 제조과정 중 제어를 실시하여 추가적인 농축, 투석여과 및/또는 희석이 필요한지의 여부를 결정하였다. 필요한 경우, 여과된 접합체를 최종 농도가 0.55g/L 미만이 되도록 0.9% 염화나트륨을 사용하여 희석시켰다. 이 단계에서 당류 함량, 단백질 함량 및 당류:단백질 비에 대한 유리 시험을 실시하였다. 접합체를 여과시키고(0.22㎛) 유리 시험(외관, 유리 단백질, 유리 당류, 내독소, 분자 크기 결정, 잔여 시아나이드, 잔여 DMSO, 당류 동일성 및 CRM197 동일성)을 실시하였다. 최종 벌크 농축액을 2 내지 8℃에 냉장 보관하였다.
실시예 3. 다가 폐렴구균 접합체 백신의 제제화
배치 용적(batch volume) 및 벌크 당류 농도를 기준으로 하여 최종 벌크 농축액의 필요량을 계산하였다. 필요량의 0.85% 염화나트륨(생리 식염수), 폴리솔베이트 80 및 석시네이트 완충액을 미리 라벨링한 제제화 용기에 첨가한 후에, 벌크 농축액을 첨가하였다. 충분히 혼합하고 0.22㎛ 필터를 통해서 여과시켰다. 벌크 알루미늄 포스페이트의 첨가 중 및 후에 제제화된 벌크액을 서서히 혼합하였다. pH를 체크하고 필요한 경우에 조절하였다. 제제화된 벌크 제품을 2 내지 8℃에서 보관하였다. 얻어진 백신 조성물은 총 0.5 mL 중에 2 ㎍의 각 당류, 단 6B는 4 ㎍; 약 32 ㎍의 CRM197 운반체 단백질; 0.125 mg의 알루미늄 원소(0.5 mg 알루미늄 포스페이트) 애주번트; 염화나트륨 약 4.25 mg; 석시네이트 완충액 약 295 ㎍; 및 폴리솔베이트 80 약 100 ㎍을 함유하였다.
실시예 4. 다가 폐렴구균 접합체 백신의 면역원성 평가
다가 폐렴구균 백신, 즉, 실시예 3에서 제조한 백신 조성물(SK-15)이 래빗에서 면역 반응을 유도하는 능력을 평가하기 위한 연구를 수행하였다. 이러한 면역원성을, 혈청 IgG 농도의 경우 항원-특이적 ELISA에 의해, 그리고 항체 기능의 경우 옵소노파고시토시스 분석(OPA)에 의해서 특성화시켰다. 제제화된 각 다당류의 계획된 사람 임상 용량(각 PS 2㎍, 예외: 6B 4㎍)을 사용하여 0주차 및 3주차에 뉴질랜드 화이트(New Zealand White) 래빗을 근육내로 면역접종시켰다. 접종 후 3주 간격으로 혈청을 채취하였다.
혈청형 특이적 IgG 농도 측정
각 혈청형에 대한 협막 다당류(PnPs)를 500ng/well로 96 웰 플레이트에 코팅하였다. 각 개체 별로 동일한 양의 혈청을 취하여 같은 그룹끼리 혈청을 풀링(pooling)하였다. 혈청 풀(serum pool)을 Tween 20, C-PS 4ug/mL과 혈청형 22F 협막 다당류(PnPs 22F) 4ug/mL가 포함된 항체 희석용 완충액으로 10-배로 순차 희석하고 30분간 상온에서 반응시켰다. 플레이트를 세척용 완충액으로 5회 세척하고, 미리 흡착 및 희석한 혈청 50uL를 코팅된 웰 플레이트에 넣은 후 실온에서 18시간 반응시켰다. 반응시킨 웰 플레이트를 같은 방법으로 세척하고, 각 웰에 고우트 항-래빗 Ig-G-알칼리 포스파타아제 컨쥬게이트(goat anti-Rabbit IgG-alkaline phosphatase conjugates) (1:50000)를 넣은 후 실온에서 2시간 반응시켰다. 플레이트를 위와 같은 방법으로 세척하고 각 웰에 기질 용액인 1mg/mL p-니트로페닐아민 완충액을 넣은 후 실온에서 2시간 반응시켰다. 50uL의 3M NaOH를 넣어 반응을 정지시킨 후 405nm와 690nm에서 흡광도를 측정하였다. 비교예로서 7가 백신(프레브나 7, 화이자), 13가 백신(프레브나 13, 화이자)를 사용하여 동일하게 평가하였으며, 그 결과는 도 1 내지 도 15와 같다.
기능적 면역원성 확인시험(OPA)
OPA assay로 혈청을 분석하여 항체의 기능을 평가하였다. 각 개체 별로 동일한 양의 혈청을 취하여 같은 그룹끼리 혈청을 풀링(pooling)하고 10-배씩 희석하였다. 에스.뉴모니애를 각 혈청형별로 THY 배지에서 배양하고 1000CFU/10uL가 되도록 희석하였다. Opsonization buffer 200uL, 희석한 혈청 10uL, 희석한 에스.뉴모니애 10uL를 혼합하고 실온에서 1시간 반응시켰다. 미리 분화시킨 HL-60 세포와 보체의 혼합액을 첨가하고 CO2 배양기(37℃)에서 1시간 반응시켰다. 온도를 낮춰 식세포 작용을 중단시키고 반응액 5uL를 미리 30 내지 60분간 말린 한천 배지에 도말하였다. CO2 배양기(37℃)에서 12 내지 18시간 배양하고 군집의 개수를 세었다. OPA 역가는 50% 사멸이 관찰되는 희석배수로 표현하였다. 비교예로서 13가 백신(프레브나 13, 화이자)를 사용하여 동일하게 평가하였으며, 그 결과는 하기 표 1 내지 3과 같다.
표 1 1차 접종 3주 후, 15가 혈청형에 대한 OPA 역가
혈청형 프레브나 13 SK-15 혈청형 프레브나 13 SK-15
1 1:16 1:4 9V 1:256 1:256
2 - 1:128 9N - 1:512
3 No dilution No dilution 14 1:256 1:256
4 1:128 1:128 18C 1:1024 1:1024
5 1:64 1:32 19A 1:512 1:256
6A 1:512 1:256 19F 1:256 1:128
6B 1:256 1:128 23F 1:256 1:256
7F 1:1024 1:1024 - - -
표 2 2차 접종 3주 후, 15가 혈청형에 대한 OPA 역가
혈청형 프레브나13 SK-15 혈청형 프레브나 13 SK-15
1 1:64 1:64 9V 1:512 1:512
2 - 1:512 9N - 1:2048
3 1:2 1:4 14 1:1024 1:1024
4 1:1024 1:1024 18C 1:1024 1:512
5 1:256 1:256 19A 1:1024 1:1024
6A 1:2048 1:2048 19F 1:1024 1:512
6B 1:2048 1:2048 23F 1:2048 1:2048
7F 1:2048 1:2048 - - -
표 3 2차 접종 6주 후, 15가 혈청형에 대한 OPA 역가
혈청형 프레브나 13 SK-15 혈청형 프레브나 13 SK-15
1 1:64 1:64 9V 1:512 1:512
2 - 1:512 9N - 1:2048
3 1:4 1:4 14 1:1024 1:1024
4 1:1024 1:1024 18C 1:2048 1:2048
5 1:512 1:512 19A 1:2048 1:1024
6A 1:2048 1:2048 19F 1:1024 1:512
6B 1:2048 1:1024 23F 1:2048 1:2048
7F 1:2048 1:2048 - - -
본 발명에 따른 백신 제제 및 비교예의 백신 제제에 대한 혈청형 특이적 면역 반응을 IgG ELISA 및 기능적 항체를 측정하는 보체-매개 OPA로 평가하였다. 도 1 내지 도 15에 ELISA를 이용한 IgG 측정 결과를 나타내었으며, 표 1 내지 표 3에 OPA를 이용한 기능성 면역원성 측정 결과를 표시하였하여, 각 처리 그룹 간에 면역 반응을 비교하였다. 상기 결과는 15가 폐렴구균 백신 다당류를 접합시키면 프레브나-13과 비교하여 동등하거나 우수한 혈청 IgG 역가와 기능적 항체 활성을 유도할 수 있다는 것을 나타낸다.

Claims (8)

  1. 생리학적으로 허용되는 비히클과 함께 15개의 상이한 다당류-단백질 접합체를 포함하는 다가 면역원성 조성물로서, 각각의 접합체가 운반체 단백질에 접합된 상이한 혈청형의 스트렙토코커스 뉴모니애(Streptococcus pneumoniae) 유래의 협막 다당류(capsular polysaccharide)를 포함하며, 상기 협막 다당류가 혈청형 1, 2, 3, 4, 5, 6A, 6B, 7F, 9N, 9V, 14, 18C, 19A, 19F 및 23F로부터 제조되는, 다가 면역원성 조성물.
  2. 제1항에 있어서, 상기 운반체 단백질이 CRM197인 면역원성 조성물.
  3. 제1항에 있어서, 애쥬번트를 추가로 포함하는 면역원성 조성물.
  4. 제3항에 있어서, 상기 애쥬번트가 알루미늄계 애쥬번트인 면역원성 조성물.
  5. 제4항에 있어서, 상기 애쥬번트가 알루미늄 포스페이트, 알루미늄 설페이트 및 알루미늄 하이드록사이드로 이루어진 군으로부터 선택되는 면역원성 조성물.
  6. 제5항에 있어서, 상기 애쥬번트가 알루미늄 포스페이트인 면역원성 조성물.
  7. 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 따른 면역원성 조성물의 면역학적 유효량을 포함하는, 스트렙토코커스 뉴모니애 협막 다당류 접합체에 대한 면역 반응을 유도하기 위한 약학 조성물.
  8. 제7항에 있어서, 면역원성 조성물이 2 ㎍의 각 당류, 단 6B는 4 ㎍; 약 34 ㎍의 CRM197 운반체 단백질; 0.125 mg의 알루미늄 원소(0.5 mg의 알루미늄 포스페이트) 애쥬번트; 및 부형제로서 염화나트륨 및 나트륨 석시네이트 완충액을 함유하도록 제제화된 단일 0.5 mL 용량인 약학 조성물.
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