SU1529119A1 - Method of determining neuroviruses in cerebrospinal fluid - Google Patents
Method of determining neuroviruses in cerebrospinal fluid Download PDFInfo
- Publication number
- SU1529119A1 SU1529119A1 SU874233255A SU4233255A SU1529119A1 SU 1529119 A1 SU1529119 A1 SU 1529119A1 SU 874233255 A SU874233255 A SU 874233255A SU 4233255 A SU4233255 A SU 4233255A SU 1529119 A1 SU1529119 A1 SU 1529119A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- neuroviruses
- cerebrospinal fluid
- determining
- minutes
- neurons
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к медицине, а именно к диагностике нейроинфекций. Цель - повышение чувствительности способа. Дл обнаружени нейровирусов в спинномозговой жидкости используют первичные культуры нейронов спинного и головного мозга эмбрионов крыс, предварительно обработав их средой Игла с PH 6,0-6,5 в течение 30-60 мин. После инкубации в нейронах вы вл ют антигены вируса иммунопироксидазным методом. Предварительна обработка культур клеток приводит к повышению чувствительности способа на 20%.This invention relates to medicine, in particular to the diagnosis of neuroinfections. The goal is to increase the sensitivity of the method. In order to detect neuroviruses in the cerebrospinal fluid, primary cultures of the neurons of the spinal cord and brain of rats are used, after having previously been treated with Eagle's medium with a pH of 6.0-6.5 for 30-60 minutes. After incubation in the neurons, virus antigens are detected by the immunoperoxidase method. Pre-treatment of cell cultures leads to an increase in the sensitivity of the method by 20%.
Description
Изобретение относитс к медицине.This invention relates to medicine.
Целью изобретени вл етс повы- .шение чувствительности способаThe aim of the invention is to increase the sensitivity of the method
Способ осуществл ют следующим образом.The method is carried out as follows.
Дп обнаружени вируса использовались первичные культуры нейронов спинного и головного мозга эмбрионов (12-14- и 16-18-суточные, соответственно ) крыс, приготовленные следующим образом. Беременные крысы соответствующих сроков беремнности помещались в атмосферу углекислого газа-; наркотизировались и забивались переломом шеИд После извлечени эмбрионов их помещали в раствор Хэнкса, отмывали в нем, затем у эмбрионов вскрывали спинно-мозговой канал илиDp detection of the virus was used primary cultures of neurons of the spinal cord and brain of embryos (12-14 and 16-18 days, respectively) rats prepared as follows. Pregnant rats of appropriate terms were placed in an atmosphere of carbon dioxide; Anesthesized and blocked with a fracture of the neck. After the embryos were removed, they were placed in Hanks solution, washed in it, then the cerebral canal was opened or the embryos were removed.
черепную коробку, извлекали спинной или головной мозг. Мозг очищали от оболочек, измельченна мозгова ткань многократно пипетировалась пастеровскими пипетками различных диаметров (от большего к меньшему). В течение 5 мин пробирка со взвесью клеток отстаивалась дл осаждени на дно крупных кусочков ткани, супернатант собиралс и наносилс нл покровные стекла, предварительно покрытые коллагеном . Затем культуры помещались в термостат при 37°С. Культивирование вели в чашках Петри.skull, removed the spinal cord or brain. The brain was purified from the membranes, the crushed brain tissue was repeatedly pipetted with Pasteur pipettes of various diameters (from larger to smaller). For 5 minutes, the tube with the cell suspension was settled to precipitate large pieces of tissue onto the bottom, the supernatant was collected and nl cover slides pre-coated with collagen were applied. Then the culture was placed in a thermostat at 37 ° C. Cultivation was carried out in Petri dishes.
Исследование спинно-мочговой жидкости (СМЖ ) на культуре клеток проводили следующим обраги м„The study of spinal-urinary fluid (CSF) on a cell culture was carried out as follows:
СПSP
toto
;о;about
Ко To
В 10-14-суточных культурах клеток ростова среда изымалась и вносилась минимальна среда Игла МЕМ с добавлением глюкозы до 600 мг/% (рН 6,0-6,5)на 1 ч. Затем культуры переносили в ростовую среду (МЕМ 80% j сыворотка плацентарной крови человека 10%; лошадина сыворотка 10%, глюкоза 600 мг/% ) и добавл ли к ней 10% СМЖ. Через 1-5 суто стекла с культурами извлекали из среды роста, промывали 5 мин в физиологическом растворе, .подсушивали феном и фик- . сировали в охлйжденном до +А°С аде- тона 7 Мин. После фиксации стекла отмывали 2 раза по 3 мин в физиологическом растворе и погружали на 10 мин (клетками вверх) в раствор азида натри (0,001 М) с добавлением 0,01% перекиси водорода о Затем стекла с клетками отмывали 3 раза по 10 мин и подсушивали феном. На культуры клеток наносили необходимые кроличьи антисыворотки (к вирусу простого герпеса или приону амиотрофического лейко- спонгиоза) в рабочем разведении 1:50 и помещали во влажную камеру на 40 мин при 37 С. Затем клетки снова отмывали, и наносили коньюгат овечьи антикроличьи антитела меченные перок- сидазой) в разведении 1:100, Через 40 мин контакта во влажной камере при 37°С повтор ли процедуру отмывки , и стекла с исследуемыми культурами клеток погружали в темной камере в раствор субстрата (35 мг 3,3-диа минобензидина в 50 мл физиологического раствора и 0,03% перекиси водорода на 30 миНо Затем стекла изв- лекали, отмывали, проводили через серию спиртов и ксилол, и заключали в канадский бальзам. Результат учитывали под световым микроскопом, по наличию в зараженных клетках корич нево окрашенных круглых структур, при отсутствии таковых в незараженныХ клетках.In 10-14-day-old cell cultures, the growth medium was withdrawn and the Eagle's Minimal Environment MEME was added with glucose added up to 600 mg /% (pH 6.0-6.5) for 1 hour. Then the cultures were transferred to the growth medium (MEM 80% j human placental serum 10%; horse serum 10%, glucose 600 mg /%) and 10% CSF was added to it. After 1-5 days, the glasses with cultures were removed from the growth medium, washed for 5 minutes in saline, dried with a hairdryer and fic. silyat in chilled to + A ° C of adeton 7 Min. After fixing, the glass was washed 2 times for 3 minutes in physiological solution and immersed for 10 minutes (cells up) in a solution of sodium azide (0.001 M) with the addition of 0.01% hydrogen peroxide. Then the glasses and cells were washed 3 times for 10 minutes and dried hair dryer Necessary rabbit antisera (against herpes simplex virus or amyotrophic leuko-spongiosis) were applied to cell cultures at a working dilution of 1:50 and placed in a moist chamber for 40 minutes at 37 C. Then the cells were washed again and the rabbit-labeled anti-rabbit antibodies were applied. - sidase) at a dilution of 1: 100. After 40 min of contact in a humid chamber at 37 ° C, the washing procedure was repeated, and the glasses with the cell cultures under investigation were immersed in a dark chamber in a substrate solution (35 mg of 3,3-diaminobenzidine in 50 ml physiological p The solution and 0.03% hydrogen peroxide per 30 min. Then the glasses were removed, washed, passed through a series of alcohols and xylene, and placed in a Canadian balsam. The result was taken under a light microscope, according to the presence of brown colored structures in the infected brown cells. the absence of those in non-infected cells.
Дп того, чтобы установить опти-, мальные услови дл проникновени возбудителей из СМЖ в клетки был проделан р д опытов. Культура клеток нейронов обрабатывалась средой с рН 6,0-6,5 в течение 30-60 мин. Это было сделано дл изменени проницаемости клеточной мембраны.In order to establish optimal conditions for the entry of pathogens from the CSF into cells, a number of experiments have been carried out. The cell culture of neurons was treated with medium with a pH of 6.0-6.5 for 30-60 minutes. This was done to change the permeability of the cell membrane.
Пример 1. Исследовали СМЖ больной К, с подозрением на герпетический энцефалит. Заражали эмбриональную культуру клеток диссоциированных нейронов после обработки ее средой с рН 6,0 в течение 30 мин Через 2 сут после заражени в нейронах были вы влены антигены вируса простого герпеса иммунопероксидаз- ным методом. Диагноз - герпетический энцефалитExample 1. The CSF of patient K was investigated with suspected herpetic encephalitis. The embryonic cell culture of dissociated neurons was infected after being treated with medium with a pH of 6.0 for 30 minutes. Two days after the infection, the herpes simplex virus antigens were detected using the immunoperoxidase method. Diagnosis - Herpetic Encephalitis
П р и м е р 2. Исследование СМЖ больной Д с подозрением на амиотро- фический лейкоспонгиоз, заражали культуру клеток диссоциированных нейронов после обработки их в тече-. ние 40 мин средой с рН 6,0. Через 3 сут после культивировани в клетках бьш обнаружен антиген возбудител о Диагноз - амиотрофический лейкоспонгиоз оPRI mme R 2. The study of CSF of patient D with suspected amyotrophic leuko- spongiosis infected a cell culture of dissociated neurons after their treatment for -. 40 min medium with a pH of 6.0. Three days after cultivation, an antigen of the pathogen was diagnosed in cells;
П р и м е р 3. СМ}К больной Г. с подозрением на амиотрофический лейкоспонгиоз заразили эмбриональную культуру клеток диссоциированных нейронов после их предварительной обработки средой с рН 6,5 в течение 15 мин. При наблюдении и исследовании этой культуры в течение 2 недель развити вирусной инфекции не установлено .PRI me R 3. CM} To patient G., with suspected amyotrophic leukospongiosis, infected the embryonic cell culture of dissociated neurons after their pretreatment with medium with a pH of 6.5 for 15 minutes. When observing and examining this culture for 2 weeks, the development of a viral infection has not been established.
Предварительна обработка культур клеток диссоциированных нейронов приводит к повыгаению чувствительности метода - из 53 образцов СМЖ с подозрением на герпетическую инфекцию при использовании предлагаемого способа вирус вы влен в 23 случа х, а по способу-прототипу - в 11 случа ХоPretreatment of cultures of cells of dissociated neurons leads to an increase in the sensitivity of the method - out of 53 samples of CSF suspected of having a herpetic infection using the proposed method, the virus was detected in 23 cases, and in the prototype method - in 11 cases
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874233255A SU1529119A1 (en) | 1987-04-20 | 1987-04-20 | Method of determining neuroviruses in cerebrospinal fluid |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874233255A SU1529119A1 (en) | 1987-04-20 | 1987-04-20 | Method of determining neuroviruses in cerebrospinal fluid |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1529119A1 true SU1529119A1 (en) | 1989-12-15 |
Family
ID=21299650
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU874233255A SU1529119A1 (en) | 1987-04-20 | 1987-04-20 | Method of determining neuroviruses in cerebrospinal fluid |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1529119A1 (en) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0534619A2 (en) * | 1991-08-26 | 1993-03-31 | Rhode Island Hospital | Expression cloning method |
US5276059A (en) * | 1992-07-10 | 1994-01-04 | The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services | Inhibition of diseases associated with amyloid formation |
US7041807B1 (en) | 1999-06-23 | 2006-05-09 | Caprion Pharmaceuticals, Inc. | Antibodies to a YYX epitope of a mammalian prion protein |
US7435540B2 (en) | 2002-09-27 | 2008-10-14 | Idexx Corporation | PrPSc-selective peptides |
-
1987
- 1987-04-20 SU SU874233255A patent/SU1529119A1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Баринский И.., 1Нубладус А.К, Этиологи хронических вирусных нейро- инЛекцийо М.: Медицина, 1984, В.Ио Вот ков, Вильнер, Лущицка * |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0534619A2 (en) * | 1991-08-26 | 1993-03-31 | Rhode Island Hospital | Expression cloning method |
EP0534619A3 (en) * | 1991-08-26 | 1994-04-06 | Rhode Island Hospital | |
US5276059A (en) * | 1992-07-10 | 1994-01-04 | The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services | Inhibition of diseases associated with amyloid formation |
US7041807B1 (en) | 1999-06-23 | 2006-05-09 | Caprion Pharmaceuticals, Inc. | Antibodies to a YYX epitope of a mammalian prion protein |
US7435540B2 (en) | 2002-09-27 | 2008-10-14 | Idexx Corporation | PrPSc-selective peptides |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
MacGregor et al. | Virus infection of endothelial cells increases granulocyte adherence | |
Schachter et al. | Lymphogranuloma venereum II. Characterization of some recently isolated strains | |
EP0460414B1 (en) | Culture and detection method for sterile-filterable autonomously replicating biological particles | |
SU1529119A1 (en) | Method of determining neuroviruses in cerebrospinal fluid | |
DE3619902A1 (en) | CMV DNA STRUCTURES, EXPRESSION VECTOR DAFUER, CMV PROTEIN STRUCTURES AND THEIR USE | |
Clark et al. | Identification of Mycoplasmataceae by the fluorescent antibody method | |
CA1180291A (en) | Process for the production of immunobiological preparations applicable in the diagnosis, prevention and/or treatment of candida guilliermondii infections | |
RU2802251C1 (en) | Vaccine composition for the prevention of enzootic abortion in sheep | |
SU712441A1 (en) | Method of mycoplasma pneumoniae indication | |
RU2798283C1 (en) | Chlamydia vnitibp-21 chlamydia abortus strain for the production of immunobiological medicinal products | |
SU778263A1 (en) | Method for differentiating virulent and vaccinal strains of influenza viruses | |
Klement et al. | Studies on the biochemistry, phage sensitivity and serological properties of Pseudomonas pathogenic to mulberry | |
KR920010872B1 (en) | Preparing vaccine against herpes simplex virus | |
SU1328375A1 (en) | Enterovirus suis strain for diagnosis of enterovirus gastroenteritis of swines | |
SU1604851A1 (en) | Strain of enterovirus suis for diagnosis of enterovirus pneumonia of swine | |
RU2136747C1 (en) | Method of inhibition of human immunodeficiency virus infectious activity | |
Sinha | Relative concentration of mycoplasma-like organisms in plants at various times after infection with aster yellows | |
RU2104544C1 (en) | Method for detecting acute radioactive contamination of living organism | |
RU2002804C1 (en) | Method of differential diagnosis of epidemic keratoconjunctivitis and adenoviral conjunctivitis | |
RU2688334C1 (en) | Method for determining specific activity of anti-rabies immunoglobulin on cell culture using atomic force microscopy | |
US8642275B2 (en) | Immunological tests for the presence of bacteria which make use of antibodies obtained using a specific method | |
RU2080600C1 (en) | Method of detection and identification of enteroviruses in pathological material | |
US4816250A (en) | Preparing vaccine against Herpes simplex virus | |
SU1723129A1 (en) | Method of chlamydia trachomatiy detection | |
RU2064794C1 (en) | Agent for estimation of poliomyelitis virus attenuation degree |