SK8592002A3

SK8592002A3 - Process for the purification of pharmacologically active proteins

Info

Publication number: SK8592002A3
Application number: SK859-2002A
Authority: SK
Inventors: Lucia Scapol; Giuseppe Claudio Viscomi
Original assignee: Alfa Wassermann Spa
Priority date: 2001-07-06
Filing date: 2002-06-14
Publication date: 2003-01-09
Also published as: EP1273592A3; MEP3408A; DE60206847T2; DK1273592T3; RU2274471C2; HRP20020480A2; YU50502A; BR0202431A; EP1273592B1; DE60206847D1; HRP20020480B1; BG106768A; HU0202124D0; ATE307824T1; EP1273592A2; RS51512B; KR100771252B1; KR20030005005A; CU23149A3; CA2388716C

Abstract

The object of the invention is a process for the purification of pharmacologically active proteins based on the use of the cationic exchange chromatography on a solid matrix carried out at a more basic pH, i.e. higher, in respect of the pH corresponding to the isoelectric point, pI, of the proteins to be purified, pH at which however said proteins still remain absorbed. Buffer solutions with values of pH and of ionic strength adjusted from time to time to the kind of pharmacologically active protein to be purified are used in order to get such a result. The process is mainly addressed to the purification of the interferon and albumin proteins.

Description

Spôsob čistenia farmakologicky účinných proteinovMethod for purification of pharmacologically active proteins

Oblasť technikyTechnical field

Predmetom vynálezu je spôsob čistenia farmakologicky účinných proteinov založený na použití katexovej chromatografie na tuhej matrici uskutočňovaný pri zásaditéjšom pH t.j. vyššom vzhľadom ako je pH zodpovedajúce izoelektrickému bodu pi čistených proteinov, pričom ale pri tomto pH zostávajú tieto proteíny absorbované.The present invention provides a process for purification of pharmacologically active proteins based on the use of cation exchange chromatography on a solid matrix performed at a more basic pH i.e. higher than the pH corresponding to the isoelectric point pi of the purified proteins, but at this pH the proteins remain absorbed.

Na tento účel sa používajú tlmivé roztoky s hodnotou pH a iónovou silou, ktoré sa menia v závislosti od času a druhu farmakologicky účinných proteinov, ktoré sa majú čistiť.For this purpose, buffers with pH and ionic strength are used, which vary depending on the time and type of pharmacologically active proteins to be purified.

Spôsob je smerovaný najmä k čisteniu interferónových a albuminových proteinov.In particular, the method is directed to the purification of interferon and albumin proteins.

Doterajší stav technikyBACKGROUND OF THE INVENTION

Široká oblasť biomedicínskych vied je založená na použití farmakologicky účinných proteinov prírodného pôvodu, ktoré sa získali extrakčnými technikami, ako aj syntetického pôvodu, ktoré sa získali pomocou techník rekombinantnej DNA. Úroveň čistoty produktov záujmu je významná v obidvoch prípadoch, pretože ich účinnosť určená možnosťou presného spojenia biologického účinku s prítomnosťou viazaného množstva proteínu.A wide range of biomedical sciences is based on the use of pharmacologically active proteins of natural origin obtained by extraction techniques as well as of synthetic origin obtained by recombinant DNA techniques. The level of purity of the products of interest is significant in both cases, since their potency is determined by the possibility of accurately combining the biological effect with the presence of a bound amount of protein.

V tomto kontexte čistenie farmakologicky účinných proteinov predstavuje významnú časť, pretože čistota získaných proteinov má značný význam pri prítomnosti účinných látok alebo, excipientov v medicinálnych výrobkoch. Možnosť zapríčinenia toxických účinkov a/alebo nepriaznivých vedľajších účinkov počas liečenia tlačí inštitúcie zodpovedné za registráciu a certifikáciu predaja liekov založených ¹ na proteínoch k zavádzaniu prísnejších pravidiel na stanovenie kvality a výroby jednotnejších účinných látok proteínového pôvodu, ktoré sú obsiahnuté v predávaných liekoch.In this context, the purification of pharmacologically active proteins constitutes a significant part since the purity of the proteins obtained is of considerable importance in the presence of the active ingredients or excipients in medicinal products. The possibility of causing toxic effects and / or adverse side effects during treatment pushes the institution responsible for the registration and certification of sale of drugs based on proteins ¹ to introducing stricter rules for determining the quality and production of more uniform active ingredients of protein origin contained in marketed drug.

Z vyššie uvedeného je zrejmý význam čistenia proteinov, v ktorom hlavný problém spočíva v skutočnosti, že farmakologicky účinné proteiny sú vždy v zložených zmesiach spoločne s mnohými inými proteinmi.From the above, the importance of protein purification is obvious, in which the main problem lies in the fact that pharmacologically active proteins are always in compound compositions together with many other proteins.

Táto skutočnosť sa týka prírodných zdrojov používaných na extrakciu farmakologicky účinných proteínov, ako je napríklad krv, extrakty z orgánov zvierat alebo rastlín ako aj použitých techník rekombinantnej DNA, pretože proteiny vykazujú podobné fyzikálno-chemické vlastnosti medzi sebou nezávisle od zdroja ich pôvodu.This is true of the natural sources used for the extraction of pharmacologically active proteins, such as blood, animal or plant extracts, as well as the recombinant DNA techniques used, since the proteins exhibit similar physicochemical properties independently of the source of their origin.

Z vyššie uvedeného vyplýva, že v prípade čistení farmakologicky účinných proteínov, je proteín zmiešaný s inými proteinmi s podobnými vlastnosťami a často výrazne prevyšujúcimi množstvo želaného protéínu, ktorý sa má izolovať s vysokým stupňom čistoty.It follows from the foregoing that, in the case of purification of pharmacologically active proteins, the protein is mixed with other proteins with similar properties and often significantly in excess of the amount of desired protein to be isolated with a high degree of purity.

Úlohou je spresnenie niekoľkých krokov čistenia, ktoré sa bežne používajú na získanie potrebných úrovní čistoty. Čistiace procesy sa takto stali komplexnými a úspech priemyselnej výroby protéínu je v podstate spojený s účinnosťou čistiaceho procesu, pretože táto požiadavka určuje náklady na výrobu.The task is to refine several purification steps that are commonly used to obtain the necessary levels of purity. Thus, the purification processes have become complex and the success of industrial production of the protein is essentially related to the efficiency of the purification process, since this requirement determines the cost of production.

Na čistenie proteínov sa používajú mnohé techniky ako napríklad selektívne zrážanie vo vodných a organických rozpúšťadlách alebo s kaotrópnymi činidlami, separácie pomocou filtrácie a/alebo dialýzy, procesy imuno-zrážania vo vhodných protilátkach, chromatografické procesy. Tieto ostatné procesy nadobudli v posledných rokoch veľký význam, pretože umožňujú dosiahnuť požadované stupne čistoty ako je zrejmé z článku Regniera F. E. v J. Chromatogr. 418, 115-143, (1987).Many techniques are used for protein purification such as selective precipitation in aqueous and organic solvents or with caotropic reagents, separation by filtration and / or dialysis, immunoprecipitation processes in suitable antibodies, chromatographic processes. These other processes have gained great importance in recent years because they make it possible to achieve the desired degrees of purity, as can be seen from the article by Regnier F. E. in J. Chromatogr. 418, 115-143 (1987).

Mnohé techniky sú uvedené vo vedeckej literatúre a môžu sa roztriediť na základe mechanizmu pôsobenia aplikovaného pri . separácii proteínov ako napr. separácia na základe molekulovej hmotnosti, absorpcia na polárnych matriciach, ktoré sa tiež uvádzajú ako normálne stacionárne fázy, absorpcia na nepolárnych matriciach, ktoré sa tiež nazývajú obrátené stacionárne fázy, absorpcia pomocou selektívnej afinity k ligandom naviazaným na inertné matrice, ako sú ťažké kovy ako meď, zinok, železo a platina, chemické farbivá ako je briliantová modrá, proteiny ako proteín A a proteín G, uhľovodíky ako sú polysacharidy a glukózaminoglykány, absorpcia pomocou imuno-afinity so špecifickými protilátkami naviazanými na inertných matriciach, absorpcia iónovou interakciou s elektrostaticky nabitými ligandami naviazanými na inertné matrice.Many techniques are disclosed in the scientific literature and can be categorized based on the mechanism of action applied in the art. separation of proteins such as e.g. molecular weight separation, absorption on polar matrices, also referred to as normal stationary phases, absorption on nonpolar matrices, also called inverted stationary phases, absorption by selective affinity for ligands bound to inert matrices such as heavy metals such as copper , zinc, iron and platinum, chemical dyes such as brilliant blue, proteins such as protein A and protein G, hydrocarbons such as polysaccharides and glucosaminoglycans, immuno-affinity absorption with specific antibodies bound to inert matrices, absorption by ionic interaction with electrostatically charged ligands bound on inert matrices.

Selektivita t.j. schopnosť selektívne rozpoznať želaný protein, náklady a možnosť použitia 'na priemyselnej úrovni sú parametre používané na vyjadrenie prevádzky rôznych chromatografických techník.Selectivity i.e. the ability to selectively recognize the desired protein, cost, and industrial use are parameters used to express the operation of various chromatographic techniques.

Na základe týchto parametrov sa imuno-afinitná chromatografia považuje že, zaručuje väčšiu selektívnosť, ale tiež vykazuje nedostatky ako je vysoká cena pri použití, nebezpečenstvo denaturácie protilátky a nebezpečenstvo spojené s bezpečnosťou čisteného produktu, pretože protilátka je živočíšneho pôvodu.Based on these parameters, immuno-affinity chromatography is considered to guarantee greater selectivity, but also exhibits deficiencies such as high cost of use, the risk of antibody denaturation and the risk associated with the safety of the purified product, since the antibody is of animal origin.

Chromatografia, ktorá používa iónovú interakciu sa tiež nazýva ionexovou chromatografiou a je považovaná za menej riskantnú techniku na udržanie farmakologickej aktivity proteínov a ľahšie sa uskutočňuje v priemyselnom merítku s nižšími nákladmi uskutočnenia, ale vykazuje nedostatok spočívajúci v nižšej selektivite.Ion interaction chromatography is also referred to as ion exchange chromatography and is considered a less risky technique to maintain the pharmacological activity of proteins and is easier to perform on an industrial scale with lower cost of implementation, but exhibits a lack of selectivity.

Preto by bolo výhodné nájsť podmienky vykonávania ionexcvej chromatografie so zvýšenou selektivitou, ktorá by umožnila jej vyrovnanie s ostatnými technikami z hľadiska čistoty získaného produktu.Therefore, it would be advantageous to find conditions for performing ion exchange chromatography with increased selectivity, which would allow it to be compared with other techniques in terms of the purity of the product obtained.

Ionexová chromatografia sa zvyčajne uskutočňuje s použitím kolón rôznych veľkostí, plnených s tuhými matricami s chemickými skupinami, ktoré sú trvalo alebo v zvláštnych podmienkach· elektrostaticky nabité: ·.Ion exchange chromatography is usually carried out using columns of different sizes, packed with solid matrices with chemical groups, which are permanently or under special conditions electrostatically charged:.

Zlúčenina vložená do ionexovej kolóny interaguje prostredníctvom elektrostatického vzájomného pôsobenia/odpudzovania s nábojmi naviazanými na matricu. Rôzne zlúčeniny obsiahnuté v zmesi sú schopné samotné sa viazať na stacionárnu fázu ako funkcia množstva získaného náboja a následne budú viac alebo menej zadržané, čím sa určí ich separácia na výstupe z kolóny.The compound loaded into the ion exchange column interacts with matrix-bound charges via electrostatic interaction / repulsion. The various compounds contained in the mixture are capable of binding themselves to the stationary phase as a function of the amount of charge recovered and will subsequently be more or less retained to determine their separation at the outlet of the column.

Chromatografia sa nazýva katexovou chromatografiou, keď sú náboje matrice negatívne, pretože sa zadržiavajú katióny, zatiaľ čo o anexovú chromatografiu ide, ak náboje matrice sú pozitívne.Chromatography is called cation exchange chromatography when matrix charges are negative because cations are retained, while anion exchange chromatography is when matrix charges are positive.

Proteíny sú zlúčeniny majúce vysokú molekulovú hmotnosť, vyššiu ako 10 000 Daltonov zložené z heterogénnych polymérov aminokyselín, niektoré aminokyseliny majú vo svojom vedľajšom reťazci funkčné skupiny, ktoré sa môžu ionizovať negatívnym spôsobom ako funkcia pH roztoku, ako sú kyslé aminokyseliny, alebo pozitívnym spôsobom, ako sú zásadité aminokyseliny, a preto všetky proteíny majú vysoké množstvo negatívnych a pozitívnych nábojov. Izoelektrický bod pi proteínu je pH, pri ktorom je proteín neutrálny, pretože príspevok negatívnych nábojov je rovný príspevku pozitívnych nábojov, proteín v prostredí elektrického poľa nie je priťahovaný ani jednou z polarít elektrického poľa.Proteins are compounds having a high molecular weight greater than 10,000 Daltons composed of heterogeneous polymers of amino acids, some amino acids have functional groups in their side chain that can be ionized in a negative way as a function of solution pH, such as acidic amino acids, or in a positive way are basic amino acids and therefore all proteins have a high amount of negative and positive charges. The isoelectric point pi of the protein is the pH at which the protein is neutral because the contribution of negative charges equals the contribution of positive charges, the protein in the electric field environment is not attracted by any of the electric field polarities.

Množstvo negatívnych nábojov vzrastá pri pH vyššom ako pi a proteín dosahuje sieťový negatívny náboj, zatiaľ čo opak nastáva pri pH nižšom ako pi a proteín získava pozitívny sieťový náboj. Každý proteín má svoje vlastné charakteristické pi, ktoré ho odlišuje od ostatných a niektoré proteíny majú tendenciu byť nerozpustnými pri izoelektrickom bode.The amount of negative charges increases at a pH higher than pi and the protein reaches a net negative charge, while the opposite occurs at a pH lower than pi and the protein acquires a positive net charge. Each protein has its own characteristic pI that distinguishes it from others and some proteins tend to be insoluble at the isoelectric point.

Keď je proteín v roztoku pri pH nižšom ako. pi má pozitívny sieťový náboj a preto môže interagovať s negatívne nabitou matricou a môže sa podrobiť katexovej chromatografii, zatiaľ čo sa môže proteín podrobiť anexovej chromatografii pri pH vyššom ako jeho pi, ako je uvedené v článku F.E. Regniera, Science, 238, 319-323, (1987) a z článku Yamamota S. .a kol., Chromatographic Science Šerieš, 43; (1988), Marcel Dekker, Inc. Publisher, New York.When the protein is in solution at a pH below. pi has a positive net charge and therefore can interact with a negatively charged matrix and undergo cation exchange chromatography, while the protein can be subjected to anion exchange chromatography at a pH higher than its pi, as described in F.E. Regniera, Science, 238, 319-323, (1987) and from Yamamoto S. et al., Chromatographic Science Serias, 43; (1988), Marcel Dekker Inc. Publisher, New York.

Oproti vyššie uvedenému sa neočakávane zistilo a na tejto skutočnosti je založený samotný predmet tohto vynálezu, že je možné nájsť rozsah hodnôt pH, ktoré sú vyššie ako zodpovedajúce pl proteínu, ktoré je také, že proteíny ešte stále zostávajú absorbované na matriciach katexovej chromatografie, takže je stále možné uskutočniť katexovú chromatografiu. Takýto stav je zvlášť výhodný, pretože vysoká selektivita medzi proteínmi sa dosahuje v týchto podmienkach, pretože veľmi malé rozdiely v pi medzi proteinmi sa stávajú dostatočné na získanie významných separácií, čím sa dosahuje vysoká účinnosť čistenia.In contrast to the above, it has been unexpectedly found, and based on this, the object of the present invention is that a range of pH values that are higher than the corresponding pI protein can be found which is that proteins still remain absorbed on cation exchange matrices so it is still possible to carry out cation exchange chromatography. Such a condition is particularly advantageous because high selectivity between proteins is achieved under these conditions because very small differences in pi between proteins become sufficient to obtain significant separations, thereby achieving high purification efficiency.

Tento posledný aspekt je najmä významný v čistiacich procesoch rekombinantných proteínov, kde je želaný produkt často sprevádzaný príbuznými nečistotami, t. j. obsahujú veľmi malé štruktúrne zmeny produktu, ako napríklad rôzne oxidačné stavy, acetylácie, strata amidových funkcií atď. Tento druh nečistôt je veľmi ťažké odstrániť tiež prostredníctvom imunoafinitnej chromatografie, pretože vo väčšine prípadov nie je možné ich protilátky.This latter aspect is particularly important in the purification processes of recombinant proteins, where the desired product is often accompanied by related impurities, i. j. they contain very small structural changes in the product, such as various oxidation states, acetylations, loss of amide functions, etc. This kind of impurities is also very difficult to remove by immunoaffinity chromatography as in most cases their antibodies are not possible.

Mechanizmus, ktorý môže vysvetliť zistený jav, ktorý je založený na skutočnosti, že distribúcia nábojov pozdĺž vonkajšieho povrchu proteínov nie je jednotná tak, že ak je aj pH o niečo vyššie ako pi a protein má celkový negatívny sieťový náboj, stále tu existujú niektoré pozitívne náboje umiestnené v molekule, ktoré môžu interagovať s negatívnou stacionárnou fázou.A mechanism that can explain the observed phenomenon, which is based on the fact that the charge distribution along the outer surface of the proteins is not uniform such that even if the pH is slightly higher than pi and the protein has an overall negative net charge, there are still some positive charges placed in a molecule that can interact with the negative stationary phase.

Na uskutočnenie tohto mechanizmu je dôležité, aby nadbytok negatívnych nábojov nebol tak výrazný, v opačnom prípade by vytvorené elektrické polia z negatívnych nábojov boli tak vysoké, že by bránili interakcii celého proteínu s negatívne nabitou chromatografickou matricou.For the implementation of this mechanism, it is important that the excess of negative charges is not so significant, otherwise the generated electric fields from the negative charges would be so high that they would prevent the interaction of the whole protein with the negatively charged chromatographic matrix.

Navyše je potrebné kontrolovať iónovú silu roztokov používaných ako eluenty, pretože vysoká iónová sila by mohla spôsobiť tienenie proteínu a tak brániť jeho interakcii so stacionárnou fázou.In addition, it is necessary to control the ionic strength of the solutions used as eluents, as the high ionic strength could cause the shielding of the protein and thus prevent its interaction with the stationary phase.

Lamspon G.P. a kol., Arial. Biochem., 11, 374-377, '(1965)' v článku potvrdzujúcom uvádza prípad proteínov ako je ľudský γglobulin, ribonukleáza, hemoglobín, δ-chymotrypsín, globín a lyzozým, v ktorých pri malých zmenách pH, ale pi udržaní príliš vysokej iónovej sily danej 0,1 M fosforečnanovým roztokom, elúcia v katexových chromatografiách nastala pri pH takmer o 0,4 jednotiek nižšom ako je pi.Lamspon G.P. et al., Arial. Biochem., 11, 374-377, '(1965)' in an article confirming the case of proteins such as human γglobulin, ribonuclease, hemoglobin, δ-chymotrypsin, globin and lysozyme, in which, when the pH is changed slightly but maintaining too high an ionic the strength given by the 0.1 M phosphate solution, elution in cation exchange chromatography occurred at a pH almost 0.4 units lower than pi.

Vyššie uvedený princíp, na ktorom sa zakladá samotný vynález, nebol doteraz využitý na uskutočnenie účinného procesu čistenia proteínov.The above principle, on which the invention itself is based, has not yet been used to carry out an effective protein purification process.

Možnosť použitia rozdielov v izoelektrickom bode proteínov na optimalizáciu čistiacich procesov opísaných A.K. Kontturim a kol. v· Acta Chem. Scand.,' '50 (2), 102-106, (1996) sa v skutočnosti týka konvenčného použitia ionexovej chromatografie, kde sa katexová chromatografia vždy uskutočňuje pri pH nižšom ako je izoelektrický bod, zatiaľ čo anexová chromatografia sa uskutočňuje pri pH vyššom ako je izoelektrický bod. Spôsob opísaný v predloženej patentovej prihláške je taký, že katexové chromatografie sa oproti tomu uskutočňujú pri pH vyššom ako je izoelektrický bod proteínu.The possibility of using differences in the isoelectric point of the proteins to optimize the purification processes described by A.K. Kontturim et al. in Acta Chem. Scand., '50 (2), 102-106, (1996) actually refers to the conventional use of ion exchange chromatography, where cation exchange chromatography is always performed at a pH below the isoelectric point, while anion exchange chromatography is performed at a pH above is the isoelectric point. The method described in the present patent application is such that cation exchange chromatography is performed at a pH higher than the isoelectric point of the protein.

Spôsob opísaný v predloženej patentovej prihláške sa môže považovať za všeobecný ako je ukázané v uvedených príkladoch, ktoré uvádzajú jeho úspešné použitie na protein prírodného pôvodu ako aj protein pochádzajúci z rekombinantnej DNA. Rozdiel medzi proteínom a proteinom je vo veľkosti rozsahu pH, vyššieho ako pi, vhodného na čistenie potrebného proteínu. Skutočne napríklad ako bude ukázané v nasledujúcich príkladoch, taký rozsah je okolo 0,2 jednotiek pH v prípade interferónových proteínov, zatiaľ čo v prípade albumínu ide o jednu jednotku pH.The method described in the present patent application can be considered as general as shown in the examples, which indicate its successful application to a protein of natural origin as well as a protein derived from recombinant DNA. The difference between the protein and the protein is in the size of a pH range higher than pi suitable for purification of the protein of interest. Indeed, for example, as will be shown in the following examples, such a range is about 0.2 pH units for interferon proteins, whereas for albumin it is one pH unit.

Použitie predloženého vynálezu na čistenie rekombinantného a interferónu (rIFNa), ktorého izoelektrický bod je 5,9 ako je uvedené v Thacher D. a Panayotatos N., Methods Enzymol. 119, 166-177, (1986), ukazuje ako je možné a výhodné čistiť ho výmenou katiónov pri pH 6,1. Navyše príklad uvádza ľudský ' t , I ' , sérový albumín, ktorého pi je 4,9 ako je uvedené' Rylattom D.B. a kol., J. Chromatogr., 865, 145-153, (1999) a naznačuje ako je možné a výhodné čistiť ho katiónovou výmenou pri pH 6,0.Use of the present invention for purification of recombinant α interferon (rIFNα) having an isoelectric point of 5.9 as disclosed in Thacher D. and Panayotatos N., Methods Enzymol. 119, 166-177, (1986), shows how it is possible and advantageous to purify it by cation exchange at pH 6.1. In addition, the example discloses human 't, I', a serum albumin whose pI is 4.9 as reported by 'Rylatt D.B. et al., J. Chromatogr., 865, 145-153, (1999) and indicates how it is possible and advantageous to purify it by cation exchange at pH 6.0.

Výhody spôsobu, ktorý je predmetnom vynálezu, sú výrazné v porovnaní s výsledkami spôsobov opísaných vo vedeckých publikáciách a/alebo patentoch týkajúcich sa čistenia a interferónu a ľudského sérového albumínu a ktoré zvyčajne vyžadujú využitie troch alebo niekoľkých po sebe idúcich spracovaní a skutočne sú veľmi nákladné a majú nižšie výťažky.The advantages of the method of the present invention are significant compared to the results of the methods described in the scientific publications and / or patents related to purification and interferon and human serum albumin and which usually require the use of three or more consecutive treatments and are indeed very expensive and have lower yields.

Thatcher D. a Panaoytatos N. opisujú čistenie ľudského rekombinantného α-interferónu rIFN-a2, Methods Enzymol., 119,Thatcher D. and Panaoytatos N. describe the purification of human recombinant α-interferon rIFN-α2, Methods Enzymol., 119,

166-177, (1986) cez päť po sebe idúcich spracovaní, a) katexová chromátografia,166-177, (1986) through five consecutive treatments, a) cation exchange chromatography,

b) anexová chromatografia,b) anion exchange chromatography,

c) afinitná chromatografia ťažkých kovov, d) roztokom síranu amónneho, e) chromatografia.c) heavy metal affinity chromatography, d) ammonium sulfate solution, e) chromatography.

spracovanie molekulová s nasýteným vylučovaciaprocessing molecular with saturated excretion

Európsky patent 0108585 opisuje na čistenie interferónu následné použitie troch typov chromatografie a) imunoafinitnej, b) katexovej, c) molekulovej vylučovacej. Americký patent US 4765903 týkajúci sa čistenia interferónu opisuje následné použitie štyroch typov chromatografie a) imunoafinitnej s monoklonálnou protilátkou, b) obrátenou fázou, c) katexovou, d) molekulovou vylučovacou.European patent 0108585 describes the subsequent use of three types of a) immunoaffinity, b) cation exchange, c) molecular exclusion chromatography for the purification of interferon. U.S. Pat. No. 4,765,903 for the purification of interferon discloses the subsequent use of four types of chromatography a) immunoaffinity with monoclonal antibody, b) reverse phase, c) cation exchange, d) molecular exclusion.

Európsky patent 0679718 opisuje spôsob výroby a interferónu, ktorý uvádza nasledujúce štyri chromatografické kroky a) kovovo-chelatačné, b) katexové, c) anexové, d) gélovú filtráciu.European patent 0679718 discloses a process for the production of interferon which discloses the following four chromatographic steps a) metal-chelating, b) cation exchange, c) anion exchange, d) gel filtration.

Ďalšie publikácie a patenty opisujú tri alebo viacero spracovaní, ktoré sú potrebné na čistenie interferónových proteínov, napríklad americký patent US 4732683, medzinárodná patentová prihláška WO 8604067 a publikácia od Khana F.R. a Rai V.R., Bioprocess Technol., 7, 161^169, (1990).Other publications and patents disclose three or more treatments that are required for the purification of interferon proteins, for example, U.S. Pat. No. 4,732,683, International Patent Application WO 8604067, and publication by Khan F.R. and Rai, V.R., Bioprocess Technol., 7, 161-169, (1990).

Uvedené príklady pokrývajú väčšinu príslušných problémov spojených s čistením interferónu vo všeobecnosti a najmä ainterferónu. Ukazujú ako je jeho čistenie náročné a vyžaduje mnohé kroky. Navyše je potrebné podčiarknuť ako sa dosahujú vysoké úrovne čistenia ' najmä pomocou imuno-afinitných chromatografií s použitím monoklonálnych protilátok myšieho pôvodu. Avšak prítomnosť takej chromatografickej techniky v procese priemyselnej výroby zameranej na výrobu aktívnych látok na farmaceutické použitie u ľudí zapríčiňuje nebezpečenstvo možných vírusových znečistení myšieho pôvodu kvôli prítomnosti možných imunogénnych fragmentov pochádzajúcich od myších imunoglobulínov v konečnom produktu a kvôli ťažkostiam s výberomchromatografických matríc z priemyselného hľadiska.The examples given cover most of the relevant problems associated with purification of interferon in general and in particular of ainterferon. They show how difficult it is to clean and requires many steps. In addition, it should be underlined how high levels of purification are achieved, particularly by immuno-affinity chromatography using monoclonal antibodies of murine origin. However, the presence of such a chromatographic technique in an industrial manufacturing process for producing active substances for pharmaceutical use in humans causes the risk of possible viral contamination of murine origin due to the presence of possible immunogenic fragments derived from murine immunoglobulins in the end product and due to difficulties in selecting the chromatographic matrices from an industrial point of view.

Navyše zo stručne uvedených príkladov vyplýva, že katexová chromatografia sa široko využíva, ale niekedy nie ako jediná separačná technika, pretože jej realizácia je obmedzená vzhľadom na zvyšovanie úrovní čistoty.In addition, the brief examples show that cation exchange chromatography is widely used, but sometimes not as the only separation technique, since its implementation is limited due to the increase in purity levels.

Publikácie od Babu K.R. a kol., Appl. Microbiol. Biotechnol., $3 (6), 655-660, (2000)· a Bouyona R. a. kolt, Biotechnológia Aplicada, 14, 189-192, (1997), opisujú spôsoby čistenia ainterferónu v jednom kroku prostredníctvom ionexovej chromatografie v soľnom gradiente. Avšak v oboch prípadoch na získanie produktu s ' dostatočnou čistotou autori publikácií mohli izolovať iba niektoré z chromatografických frakcií, v ktorých bol obsiahnutý α-interferón, čím sa získali veľmi malé výťažky, až do 7,5% minima. Navyše opísané chromatografické čistiace procesy v soľnom gradiente nie sú schopné priemyselného použitia.Publications by Babu K.R. et al., Appl. Microbiol. Biotechnol., $ 3 (6), 655-660, (2000) and Bouyona R. et al. colt, Biotechnology Aplicada, 14, 189-192, (1997), describe methods for purifying ainterferon in a single step by ion exchange salt gradient chromatography. However, in both cases to obtain a product of sufficient purity, the authors of the publications could isolate only some of the chromatographic fractions in which α-interferon was contained, thus obtaining very low yields, up to a 7.5% minimum. In addition, the described salt gradient chromatographic purification processes are not commercially viable.

Mnohé techniky chromatografického čistenia sú tiež opísané pre prípad ľudského albumínu a vychádzajú z albumínových prípravkov získaných frakcíonácíou ľudského séra alebo pomocou technik rekombinantnej DNA, komplexných techník a zriedkavo prenesiteľných na priemyselnú úroveň, čo potvrdzuje, že problém účinného čistenia ľudského albumínu prírodného ako aj rekombinantného pôvodu stále existuje.Many chromatographic purification techniques are also described for human albumin and are based on albumin preparations obtained by human serum fractionation or by recombinant DNA techniques, complex techniques and rarely transferable to industrial level, confirming that the problem of efficiently purifying human albumin of both natural and recombinant origin is still there.

Americké patenty US 6150504 a 5521287 opisujú čistenie albumínu prostredníctvom ionexovej chromatografie a hydrofóbnej interakcie. Schéma čistenia opísaná v americkom patente US 6034221 uvádza čistenie albumínu prostredníctvom dvoch chromatografických krokov, jedným je ultrafiltračný proces a druhým dva ďalšie kroky chromatografického čistenia.,US Patents 6150504 and 5521287 disclose purification of albumin by ion exchange chromatography and hydrophobic interaction. The purification scheme described in US 6034221 discloses the purification of albumin by two chromatographic steps, one is an ultrafiltration process and the other two chromatographic purification steps.

I ^{1 1} I ^{1 1}

Menej bežné spôsoby čistenia albumínu, v ktorých sa používajú anexové chromatografie vo fluidnom lôžku alebo afinitne chromatografie interagujúce s komerčne dostupnými matricami ako je Streamline^R alebo napríklad s vhodne pripravenými časticami modifikovaného zirkónu alebo s emulziami perfluóruhľovodíkov, sú opísané v americkom patente US 5962649 a publikáciách od Sumi A, a kol., Bioseparation, 8 (1-5), 195200, (1999), Mullick A. a Flickinger M.C., Biotechnol. Bioeng., (3), 282-290, (1999) a Mc Creath G.E. a kol., J.Less common albumin purification methods using anion-exchange fluid bed chromatography or affinity chromatography interacting with commercially available matrices such as Streamline ^R or, for example, suitably prepared modified zirconium particles or perfluorocarbon emulsions are described in U.S. Pat. Sumi A, et al., Bioseparation, 8 (1-5), 195200, (1999), Mullick A. and Flickinger MC, Biotechnol. Bioeng., (3), 282-290, (1999) and Mc Creath GE et al., J.

Chromatogr., 597 (1-2), 189-196, (1992).Chromatogr., 597 (1-2), 189-196 (1992).

Nakoniec sú opísané techniky čistenia albumínu na ťažkých kovoch Yangom L. a kol., Sheng Wu kung Cheng Hsueh Pao, 16 (1), 74-77, (2000) a afinitné techniky na matriciach, ku ktorým sú naviazané molekuly farbív ako napríklad Cibacron Ble F3G, sú opísané v Compagnini A. a kol., J. Chromatogr. A, 736 (1-2), 115, (1996).Finally, heavy metal albumin purification techniques by Yang L. et al., Sheng Wu Kung Cheng Hsueh Pao, 16 (1), 74-77, (2000) and affinity matrix techniques to which dye molecules such as Cibacron are bound are described. Ble F3G, are described in Compagnini A. et al., J. Chromatogr. A, 736 (1-2), 115, (1996).

Všetky tieto techniky ukazujú rôznym spôsobom problémy spojené s komplexným uskutočnením a vysokými nákladmi, pričom problém charakterizácie nových spôsobov čistenia farmakologicky účinných proteínov ľahko a účinne na priemyselnej úrovni a ekonomicky výhodne nie je vyriešený.All of these techniques show in various ways the problems associated with complex execution and high costs, while the problem of characterizing new methods for purifying pharmacologically active proteins easily and efficiently at an industrial level and economically advantageously is not solved.

Nižšie opísaný vynález dáva odpoveď na tieto významné požiadavky poskytnutím spôsobu čistenia farmakologicky účinných proteínov ľahkou priemyselnou uskutočniteľnosťou a nízkymi nákladmi s významnými ekonomickými výhodami.The invention described below responds to these important requirements by providing a process for purifying pharmacologically active proteins by easy industrial feasibility and low cost with significant economic benefits.

Podstata vynálezuSUMMARY OF THE INVENTION

Predložený vynález sa týka spôsobu čistenia farmakologicky účinných proteínov založeného na použití katexovej chromatografie na tuhej matrici za zvláštnych podmienok, ktoré zahŕňajú po vložení vzorky kondicionáciu kolóny s eluentami s vhodným pH a iónovou silou tak, že je v kolóne rovnomerne prítomné zásaditejšie pH, t.j. vyššie ako zodpovedajúci izoelektrický bod pl farmakologicky účinných proteínov, pri ktorom sú proteiny ešte absorbované na tuhej matrici použitej v * I . ' * * , I ionexovej chromatografii. Po kondicionačnéj fáze · sa farmakologicky účinné proteiny eluujú z kolóny zvýšením iónovej sily a/alebo pH eluentov.The present invention relates to a method of purification of pharmacologically active proteins based on the use of cation exchange chromatography on a solid matrix under special conditions which comprise, after loading the sample, conditioning the column with suitable pH and ionic strength eluents such that more basic pH is uniformly present in the column. above the corresponding isoelectric point p1 of the pharmacologically active proteins at which the proteins are still absorbed on the solid matrix used in * I. Ion exchange chromatography. After the conditioning phase, the pharmacologically active proteins are eluted from the column by increasing the ionic strength and / or pH of the eluents.

Účinné uskutočnenie predloženého vynálezu vyžaduje určenie matricou, silou v definuje vykonaním v rozmedzí pravej kombinácie medzi použitou chromatografickou hodnotou pH vyššou ako pl a chromatografických eluentoch, chromatografická matrica, účinné limitovaných variácií pH a /alebo použitou pretože čistenie iónovej sily často iónovou keď sa sa získa desatín pH jednotiek a/alebo variácií iónovej sily v rozmedzí niekoľkých stotín pS.An effective embodiment of the present invention requires a matrix determination, a force v defined by performing within the true combination between the chromatographic pH used above pI and the chromatographic eluents, the chromatographic matrix, the effective limited pH variations and / or used because purification of ionic strength often by ion when tenths are obtained pH units and / or variations in ionic strength in the range of several hundredths of pS.

Môžu sa použiť všetky funkcionalizované tuhé matrice bežne používané ako stacionárne fázy, najmä silné katexy sú uprednostňované, keď je pi čisteného proteínu nižšie ako 6, zatiaľ čo stacionárne fázy so silným ako aj slabým katexom sa môžu bez výnimky pre proteiny s pi vyšším ako 6. Tieto stacionárne fázy môžu byť kremičitými alebo polymérnymi matricami funkcionalizovanými so sulfoskupinami alebo karboxylovými skupinami vo forme kyslých alebo zásaditých solí. Dostupné stacionárne fázy, ktoré sa môžu použiť, sú napríklad Source^R S (Pharmacia Biotech) , Sepharose” SP-Fast Flow, Sepharose^R SP-High Performance, Sp Sepharose^R XL (Pharmacia Biotech), Fractogel^R S (Merck, Darmastadt), Mustang” S (Pall Corporate), CM Sepharose” FF (Pharmacia Biotech), Dowex^R, BioRad^R AG (Bio-Rad), Poros^R S (perSeptive Biosystems), Shodex^R-S, Toyopearl” SP (Tosohass)All functionalized solid matrices commonly used as stationary phases can be used, especially strong cation exchangers are preferred when the pi of the purified protein is less than 6, while stationary phases with both strong and weak cation exchangers can, without exception, for proteins with pI greater than 6. These stationary phases may be siliceous or polymeric matrices functionalized with sulfo or carboxyl groups in the form of acidic or basic salts. Stationary phases commercially available, which can be used, for example, Source ^R S (Pharmacia Biotech), Sepharose "SP-Fast Flow, Sepharose ^R SP-High Performance, Sp Sepharose ^R XL (Pharmacia Biotech), Fractogel ^R S (Merck, Darmastadt) Mustang ”S (Pall Corporate), CM Sepharose” FF (Pharmacia Biotech), Dowex ^R , BioRad ^R AG (Bio-Rad), Poros ^R S (perSeptive Biosystems), Shodex ^R- S, Toyopearl ”SP (Tosohass)

Rozsah pH hodnôt, pri ktorých sa vynález môže účinne uskutočniť je veľmi široký, v závislosti od izoelektrických bodov farmakologicky účinných proteínov, ktoré sa majú čistiť, a je medzi 2 a 11, výhodne medzi 4 a 8,5.The pH range at which the invention can be efficiently carried out is very wide, depending on the isoelectric points of the pharmacologically active proteins to be purified, and is between 2 and 11, preferably between 4 and 8.5.

Rozšírenie rozsahu pH hodnôt vyšších ako je pi, v ktorom sa spôsob podľa vynálezu uskutočňuje, sa mení od pH hodnôt korešpondujúcich s pi farmakologicky účinných proteínov k jednej pH jednotke nad tento pi a vykazuje významné rozdiely medzi proteínmi.The extension of the range of pH values higher than pi in which the method of the invention is carried out varies from the pH values corresponding to pi of pharmacologically active proteins to one pH unit above that pi and shows significant differences between the proteins.

Napríklad sa zistilo, že v prípade rekombinantného a 2b interferónu (rľFNa-2b) je možné získať absorpciu proteínu na katexovej matrici až do 0,2 jednotiek pH nad jeho pi 5,9 a preto je možné uskutočniť jeho čistenie pomocou katexovej chromatografie, zatiaľ čo v prípade ľudského sérového albumínu sa zistilo, že zostáva absorbovaný do jednej pH jednotky nad svoj pi.For example, it has been found that recombinant α 2b interferon (rFNa-2b) can obtain protein uptake on a cation exchange matrix up to 0.2 pH units above its pH of 5.9 and therefore can be purified by cation exchange chromatography while human serum albumin was found to remain absorbed to a single pH unit above its pi.

Rozsah koncentrácií solí vodných roztokov, ktoré sú použiteľné ako eluenty, závisí na druhu čisteného farmakologicky účinného proteínu a zistilo sa, že je medzi hodnotami 1 mM a 100 mM, výhodne medzi 1 mM a 30 mM.The range of concentrations of salts of aqueous solutions that are useful as eluents depends on the type of purified pharmacologically active protein and has been found to be between 1 mM and 100 mM, preferably between 1 mM and 30 mM.

Napríklad v prípade čistenia rekombinantného a 2b interferónu (rIFNa-2b) je koncentrácia roztokov solí medzi lmM a 30mM, výhodne medzi 5 a 15 mM.For example, in the case of purification of recombinant α 2b interferon (rIFNα-2b), the concentration of salt solutions is between 1mM and 30mM, preferably between 5 and 15mM.

Potreba mať presné a stabilné hodnoty pH použitých eluentov na chromatografiu podľa predloženého vynálezu je veľmi vhodná hoci nie absolútne 'nevyhnutná, pri používaní vodných roztokov vhodne tlmených obsahujúcich 5 až 100 mM, výhodne 10 až 20 mM tlmivé zmesi. Každá chemická látka alebo zmes chemických látok, ktorá má tlmivú silu v oblasti pH medzi 2 a 11 sa môže s výhodou použiť, pretože pH hodnoty eluentov, ktoré sa môžu .použiť sú medzi 2 a 11.The need to have accurate and stable pH values of the eluents used for the chromatography according to the present invention is very suitable, although not absolutely necessary, when using aqueous solutions suitably buffered containing 5 to 100 mM, preferably 10 to 20 mM buffer. Any chemical or chemical mixture having a buffering strength in the pH range between 2 and 11 can be advantageously used, since the pH values of the eluents that can be used are between 2 and 11.

Mnohé vodné tlmivé roztoky sa môžu výhodne použiť pri uskutočňovaní predloženého vynálezu a majú nasledujúce zloženie: glycín a chlorid sodný, kyselina maleínová a hydroxid sodný, kyselina malónová a hydroxid sodný, kyselina mliečna a hydroxid sodný, kyselina mravčia a hydroxid sodný alebo lítny, kyselina sukcínová a hydroxid sodný, N-metylpiperazín a kyselina chlorovodíková, piperazín a kyselina chlorovodíková a kyselina octová, L-hystidin a kyselina chlorovodíková, 4—(2— hydroxyetyl)-1-piperazínetánsulfónová kyselina a hydroxid sodný alebo lítny, N-metyldietanolamín a kyselina sírová, Nmetyldietanolamin a kyselina chlorovodíková alebo kyselina octová, pyridín a kyselina mravčia, citran sodný a hydroxid sodný, ftalát draselný a kyselina chlorovodíková, ftalát draselný a hydroxid sodný, hydrogénfosforečnan draselný a dihydrogénfosforečnan sodný, bicín a hydroxid sodný, barbital sodný a kyselina chlorovodíková, boritan sodný a kyselina chlorovodíková, boritan sodný a hydroxid sodný, 1,3diaminoprópán á kyselina chlorovodíková, kyselina >citrónová a fosforečnan monosodný, octan sodný a kyselina octová, imidazol a kyselina chlorovodíková, trietanolamín a kyselina chlorovodíková alebo octová, tris(hydroxymetylaminometán) a kyselina chlorovodíková, uhličitan sodný a kyslý uhličitan sodný, etanolamín a kyselina chlorovodíková, piperidín a kyselina chlorovodíková, trimetylamín a kyselina pyridín a kyselina octová, trimetylamín a chlorovodíková, hydroxid amónny a kyselina mravčia, mravčia, kyselina hydroxid amónny a kyselina octová, trimetylamín a uhličitan sodný, uhličitan amónny a hydroxid sodný.Many aqueous buffers can be advantageously used in the practice of the present invention and have the following composition: glycine and sodium chloride, maleic acid and sodium hydroxide, malonic acid and sodium hydroxide, lactic acid and sodium hydroxide, formic acid and sodium or lithium hydroxide, succinic acid and sodium hydroxide, N-methylpiperazine and hydrochloric acid, piperazine and hydrochloric acid and acetic acid, L-hystidine and hydrochloric acid, 4- (2-hydroxyethyl) -1-piperazinoethanesulfonic acid and sodium or lithium hydroxide, N-methyldiethanolamine and sulfuric acid , N-methyldiethanolamine and hydrochloric or acetic acid, pyridine and formic acid, sodium citrate and sodium hydroxide, potassium phthalate and hydrochloric acid, potassium phthalate and sodium hydroxide, potassium hydrogen phosphate and sodium dihydrogen phosphate, bicine and sodium hydroxide, sodium barbital and hydrochloric acid p, sodium borate and hydrochloric acid, sodium borate and sodium hydroxide, 1,3-diaminopropane and hydrochloric acid, citric acid and monosodium phosphate, sodium acetate and acetic acid, imidazole and hydrochloric acid, triethanolamine and hydrochloric or acetic acid, tris (hydroxymethylaminomethane) and hydrochloric acid, sodium carbonate and sodium bicarbonate, ethanolamine and hydrochloric acid, piperidine and hydrochloric acid, trimethylamine and pyridine and acetic acid, trimethylamine and hydrochloric acid, ammonium hydroxide and formic acid, formic acid, ammonium hydroxide and acetic acid, trimethylamine and sodium carbonate, ammonium carbonate and sodium hydroxide.

Najmä v prípade čistenia rekombinantného a 2b interferónu (rIFNa-2b) sa môžu použiť všetky tlmivé roztoky, ktoré vykazujú tlmiacu silu pri pH medzi 5,9 a 6,1, najmä tlmivé roztoky pri pH medzi 5,9 a 6,1 s obsahom hydrogénfosforečnanu draselného a dihydrogénfosforečnanu sodného, ftalátu draselného a hydroxidu sodného, citrátu sodného a hydroxidu sodného, kyseliny citrónovej a fosforečnanu sodného, imidazolu a kyseliny chlorovodíkovej, zatiaľ čo v prípade čistenia ľudského sérového albumínu sa môžu použiť tlmivé roztoky obsahujúce tie isté zmesi chemických zlúčenín vykazujúcich tlmivú silu pri pHIn particular, in the case of purification of recombinant alpha 2b interferon (rIFNa-2b), all buffers having a buffer strength at a pH of between 5.9 and 6.1 can be used, in particular buffers at a pH of between 5.9 and 6.1 containing potassium hydrogen phosphate and sodium dihydrogen phosphate, potassium phthalate and sodium hydroxide, sodium citrate and sodium hydroxide, citric acid and sodium phosphate, imidazole and hydrochloric acid, whereas buffers containing the same chemical compounds may be used for purification of human serum albumin strength at pH

4,9 až 6,0.4.9 to 6.0.

Vodné roztoky použité ako eluenty môžu obsahovať navyše k chemickým látkam použitým na tlmenie pH tiež chemické látky, ktoré majú za úlohu modifikovať iónovú silu roztoku. S výhodou sa na tento účel používajú organické soli ako napríklad karboxyláty, alkylsulfonáty, ftaláty ako aj anorganické soli ako sú napríklad sírany, chloridy, fosforečnany, ktoré môžu byť sodné, draselné amónne, s primárnymi, sekundárnymi, terciálnymi alebo aromatickými amínmi.Aqueous solutions used as eluents may contain, in addition to the chemicals used to buffer the pH, also chemicals designed to modify the ionic strength of the solution. Organic salts such as carboxylates, alkylsulfonates, phthalates as well as inorganic salts such as sulfates, chlorides, phosphates, which may be sodium, potassium ammonium, with primary, secondary, tertiary or aromatic amines are preferably used for this purpose.

Tieto zlúčeniny sa s výhodou používajú v koncentráciách 1 mM až 100 mM, výhodne 1 mM až 30 mM.These compounds are preferably used in concentrations of 1 mM to 100 mM, preferably 1 mM to 30 mM.

Napríklad v prípade čistenia rekombinantného a 2b interferónu (rIFNa-2b) sa koncentrácia týchto zlúčenín mení v rozsahu 1 mM až 30 mM, výhodne 2 až 20 mM.For example, in the case of purification of recombinant α 2b interferon (rIFNα-2b), the concentration of these compounds varies in the range of 1 mM to 30 mM, preferably 2 to 20 mM.

Účinnosť čistenia sa môže zvýšiť pred elúciou farmakologicky účinných ‘proteínov pomocou · jedného 'alebo viacerých premývaní uskutočnených s eluentmi, ktoré majú vhodnú iónovú silu, pričom kolóna je vždy pri pH vyššom ako izoelektrický bod.Purification efficiency may be increased prior to elution of pharmacologically active ‘proteins by one or more washes carried out with eluents having the appropriate ionic strength, the column being always above the isoelectric point at pH.

Napríklad v prípade ľudského sérového albumínu, ktorého pi je 4,9, sa premývanie môže uskutočniť s tlmivými roztokmi pri pH 5,5 až 5,8, zatiaľ čo v prípade rekombinantného a 2b interferónu (rIFNa-2b) s pi 5.,9 sa premývanie uskutočňuje s tlmivými roztokmi pri 6,0 až 6,1.For example, in the case of human serum albumin whose pI is 4.9, the wash can be performed with buffers at pH 5.5 to 5.8, whereas in the case of recombinant α 2b interferon (rIFNα-2b) with pI 5., 9. washing is performed with buffers at 6.0 to 6.1.

Množstvo eluentu, ktoré prechádza počas týchto premývaní sa mení a bežne sa pohybuje medzi 5 a 10 objemami kolóny (column volumes - CV).The amount of eluent that passes during these washes varies and typically ranges between 5 and 10 column volumes (CV).

Napriklad v prípade ľudského sérového albumínu sa premývania uskutočnili s 20 až 40 CV, zatiaľ čo v prípade rekombinantného a 2b interferónu (rIFNa-2b) s 10 až 80 CV.For example, for human serum albumin, washes were performed with 20 to 40 CVs, while for recombinant α 2b interferon (rIFNα-2b) with 10 to 80 CVs.

Množstvo čisteného produktu, ktoré sa môže vložiť do kolóny závisí od použitých chromatografických matríc a môže stúpať až do maximálnej hodnoty 100 mg celkových proteínov na milimeter stacionárnej fázy, pričom obvykle sa používajú nižšie množstvá medzi 5 až 20 mg/ml.The amount of purified product that can be loaded into the column depends on the chromatographic matrices used and can rise up to a maximum of 100 mg total proteins per millimeter of stationary phase, typically lower amounts between 5 and 20 mg / ml are used.

Eluenty môžu prechádzať cez kolónu s lineárnou rýchlosťou v závislosti na stacionárnej fáze po maximálnu hodnotu 10 cm/min.The eluents can pass through a column at a linear velocity depending on the stationary phase to a maximum value of 10 cm / min.

Vyššie uvedený spôsob čistenia sa môže použiť na všetky farmakologicky účinné proteíny, ako je čistenie interferónových proteínov najmä vzhľadom na interferóny α, β, γ, δ, ω, τ, ďalej na prírodný interferon z leukocytov, cez rekombinantný a 2b a príbuzné interferóny a čistenie albumínu so špeciálnym ohľadom na ľudský albumín prírodného aj rekombinantného pôvodu sú výhodnými uskutočneniami predložených vynálezov.The above purification method can be applied to all pharmacologically active proteins, such as purification of interferon proteins, particularly with respect to interferons α, β, γ, δ, ω, τ, further to natural leukocyte interferon, via recombinant and 2b and related interferons and purification Albumin with particular regard to human albumin of both natural and recombinant origin are preferred embodiments of the present invention.

Cieľom vyššie uvedeného čistiaceho procesu je získať ekonomicky a v priemyselnom merítku farmakologicky účinné proteíny s takým stupňom čistoty, aby sa dali priamo použiť do medicinálnych výrobkov s ich obsahom.The aim of the above-mentioned purification process is to obtain economically and on an industrial scale pharmacologically active proteins with a degree of purity that can be used directly in medicinal products containing them.

Výhodnými medicinálnymi výrobkami v rámci rozsahu predloženého vynálezu sú také, ktoré, obsahujú rekqmbinantný a 2b interferon (rINFa-2b) a albumín, výhodnejšie ľudský álbumín prírodného a rekombinantného pôvodu.Preferred medicinal products within the scope of the present invention are those comprising recombinant and 2b interferon (rINFa-2b) and albumin, more preferably human albumin of natural and recombinant origin.

Niektoré ilustratívne príklady spôsobu podľa vynálezu sú uvedené nižšie s jediným cieľom bližšie objasniť vynález, ale nemajú byť považované nijakým spôsobom ako obmedzujúce samotný vynález.Some illustrative examples of the method of the invention are set forth below with the sole purpose of illustrating the invention in greater detail, but are not to be construed as limiting the invention in any way.

Príklady uskutočnenia vynálezuDETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

Príklad 1Example 1

Produkcia rekombinantného a 2b interferónu (rIFNa~2b)Production of recombinant a 2b interferon (rIFNa ~ 2b)

Časť buniek Escherichia coli kmeňa BL21 DE3 sa transformovala s 5 ng pET9a-IFNa-2b plazmidom získaného klonovaním syntetického génu reprodukujúceho ľudskú génovú sekvenciu IFNoc-2b, ktorý sa vhodne modifikoval na pripojenie sekvencie ku častejšie sa vyskytujúcim kodónom v Escherichia coli do plazmidu pET9a (Novagen).A portion of the cells of Escherichia coli strain BL21 DE3 was transformed with 5 ng of pET9a-IFNa-2b plasmid obtained by cloning a synthetic gene reproducing the human IFNoc-2b gene sequence, which was suitably modified to link the sequence to more frequently occurring codons in Escherichia coli9 ).

Proteínová sekvencia exprimovaná z modifikovaných buniek Escherichia coli je rovnaká ako sekvencia uvedená v Methods in Enzymology, Interferons, part C, Pestka S., 119, 3-14, (1986), Academic Press Inc.The protein sequence expressed from modified Escherichia coli cells is the same as that described in Methods in Enzymology, Interferons, part C, Pestka S., 119, 3-14, (1986), Academic Press Inc.

Kmeň Escherichia coli BL21 DE3 transformovaný pomocou pET9a-IFNct-2b plazmidu sa kultivoval v banke s vhodným kultivačným médiom, napríklad v roztoku obsahujúcom 12 g/1 fytopeptónu (Phyto peptoton, BBL), 24 g/1 kvasinkového extraktu (Yeast extract, DIFCO), 4 g/1 glycerolu (BDH) a neomycínu, pri 37 °C počas času dostatočného na získanie hodnoty optickej hustoty pri 600 nm 0,6 až 0,8, obvykle 7 až 9 hodín. Takto získaná kultúra sa potom použila pri zriedení 1 až 100 na inokuláciu 5 1 fermentéru, kde je kultivačné médium to isté ako v bolo vyššie opísané v banke. Kultúra sa nechala 14 hodín pri 37 °C s aeráciou rovnou jednému objemu vzduchu za minútu vzhľadom na objem kultúry.Escherichia coli strain BL21 DE3 transformed with the pET9a-IFNct-2b plasmid was cultured in a flask with a suitable culture medium, for example in a solution containing 12 g / l phytopeptone (Phyto peptoton, BBL), 24 g / l yeast extract (DIFCO) 4 g / l glycerol (BDH) and neomycin, at 37 ° C for a time sufficient to obtain an optical density at 600 nm of 0.6 to 0.8, usually 7 to 9 hours. The culture thus obtained was then used at a dilution of 1 to 100 to inoculate a 5 L fermenter, where the culture medium is the same as described above in the flask. The culture was left for 14 hours at 37 ° C with aeration equal to one volume of air per minute relative to the culture volume.

Bakteriálne bunky sa zbierali odstreďovaním pri 6000 ot. za min. na konci kultivácie, suspendovali sa .vo vhodnom vodnom roztoku s obsahom 1 mM ditiotreitolu (DTT) v množstve nie vyššom ako 6 ml na gram mokrej hmotnosti odstredených baktérií. Bakteriálna suspenzia sa podrobila bunkovej lýze pomocou známych a opísaných techník, napríklad pôsobením ultrazvuku alebo pôsobením-hydraulického tlaku.Bacterial cells were harvested by centrifugation at 6000 rpm. per min. at the end of the culture, they were suspended in a suitable aqueous solution containing 1 mM dithiothreitol (DTT) in an amount of not more than 6 ml per gram wet weight of the centrifuged bacteria. The bacterial suspension was subjected to cell lysis using known and described techniques, for example by sonication or hydraulic pressure.

Výsledná suspenzia sa získala odstreďovaním a tuhá časť sa suspendovala v 50 ml soľného roztoku s obsahom 1 mM DTT a znovu sa odstreďovala.'The resulting suspension was obtained by centrifugation and the solid was suspended in 50 ml of saline containing 1 mM DTT and centrifuged again.

Tuhá zložka zahŕňajúca telá sa zozbierala a suspendovala pri silnom miešaní pri izbovej teplote v 450 ml roztoku obsahujúceho 6 M guanidínium chlorid, 50 mM Tris HC1 pri pH 8 a 0,1 mM EDTA. Suspenzia sa odstreďovala a supernatant sa zriedil na pomer 1 ku 100 až 1 ku 200 v soľnom roztoku s obsahom 50 mM Tris HC1 pri pH a 0,1 mM EDTA pri pH 8 vhodnom na renaturáciu proteínu. Roztok ha renaturáciu obsahuje aminokyseliny ako napríklad glycín alebo arginín, zmes zlúčenín s obsahom sulfidov v oxidovanej a redukovanej forme s vytvoreným disulfidovým mostíkom, ako je napríklad glutatión, etanolamín, cysteín. Rena'turácia sa uskutočňuje pri silnom miešaní roztoku pri 4 °C počas takmer 72 hod a potom sa roztok filtruje a potom koncentruje pomocou diafiltrácie oproti tlmivému roztoku pripravenému zo 40 mM Tris-HCl pri pH 8 po konečný koncentračný faktor 5 až 10 krát. Konečná koncentrácia roztoku je obvykle 0,4 až 1,0 mg/ml.The solid component including the bodies was collected and suspended under vigorous stirring at room temperature in 450 ml of a solution containing 6 M guanidinium chloride, 50 mM Tris HCl at pH 8 and 0.1 mM EDTA. The suspension was centrifuged and the supernatant diluted to a ratio of 1 to 100 to 1 to 200 in saline containing 50 mM Tris HCl at pH and 0.1 mM EDTA at pH 8 suitable for protein renaturation. The solution for renaturation comprises amino acids such as glycine or arginine, a mixture of sulfide-containing compounds in oxidized and reduced form with a disulfide bridge formed, such as glutathione, ethanolamine, cysteine. Renaturation is performed with vigorous stirring of the solution at 4 ° C for nearly 72 hours and then the solution is filtered and then concentrated by diafiltration against a buffer prepared from 40 mM Tris-HCl at pH 8 to a final concentration factor of 5 to 10 times. The final concentration of the solution is usually 0.4 to 1.0 mg / ml.

Príklad 2Example 2

Čistenie rekombinantného cc-2b interferónu (rIFNa-2b)Purification of recombinant cc-2b interferon (rIFNa-2b)

M Roztok octanu sodného sa pridáva do konečnej koncentrácie 20 mM k zmesi proteínov, ktorá obsahuje rIFNa-2b pochádzajúci z príkladu 1 a zmes sa upraví na pH 5,5 s kyselinou octovou. Takto získaný roztok sa vloží do silnej katexovej kolóny s obsahom komerčne dostupnej chromatografickej matrice Mustang^R S (Pall Corporate). Katexová kolóna sa kondicionuje pred vložením roztoku, proteínov pomocou 20 mM acetátu sodného pri pH 5,5 v množstve rovnom 20 objemov kolóny (CV) .M Sodium acetate solution is added to a final concentration of 20 mM to a protein mixture containing rIFNa-2b originating from Example 1 and the mixture is adjusted to pH 5.5 with acetic acid. The solution thus obtained is loaded onto a strong cation exchange column containing a commercially available Mustang ^R S chromatography matrix (Pall Corporate). The cation exchange column is conditioned before loading the protein solution with 20 mM sodium acetate at pH 5.5 in an amount equal to 20 column volumes (CV).

Potom sa vloží 'proteínový roztok v ta,kom množstve,· že sa neprekročí hodnota 10 mg vložených proteínov na milimeter stacionárnej fázy, výhodne v množstvách 6 až 8 mg/ml.The protein solution is then introduced in an amount such that the value of 10 mg of inserted proteins per millimeter of stationary phase, preferably in amounts of 6-8 mg / ml, is not exceeded.

Po vložení sa produkty naviazané k stacionárnej fáze podrobia prvému cyklu premývania so soľným roztokom pri pH 6,1 zloženého zo zmesi hydrogénfosforečnanu draselného a dihydrogénfosforečnanu sodného pri celkovej koncentrácii 5 až 15 mM. Optimálna koncentrácia roztoku sa v každom prípade fixovala, pretože vodivosť nesmela presiahnuť 1800 pS. 'Celkové použité množstvo roztoku bolo 5 až 60 CV, výhodne. 25 až 35 CV.After insertion, the products bound to the stationary phase are subjected to a first wash cycle with brine at pH 6.1 composed of a mixture of potassium hydrogen phosphate and sodium dihydrogen phosphate at a total concentration of 5 to 15 mM. The optimum solution concentration was fixed in each case since the conductivity should not exceed 1800 pS. The total amount of solution used was 5 to 60 CV, preferably. 25 to 35 CV.

Druhý cyklus premývania sa potom uskutočnil s použitím toho istého roztoku z prvého cyklu premývania, ku ktorému sa pridal chlorid draselný v takom množstve, aby konečná koncentrácia nepresahovala 3 mM, výhodne 2 mM, celkové použité množstvo roztoku bolo 10 až 100 CV, výhodne 30 až 60 CV.The second wash cycle was then performed using the same solution from the first wash cycle to which potassium chloride was added in an amount such that the final concentration did not exceed 3 mM, preferably 2 mM, the total amount of solution used was 10 to 100 CV, preferably 30 to 60 CV.

Po premývacích cykloch sa uskutočnila elučná' fáza s použitím roztoku ako z prvého premývacieho cyklu s konečným množstvom chloridu draselného v koncentrácii nie nižšej ako 10 mM, výhodne pri koncentrácii 15 až 25 mM. Celkové použité množstvo roztoku na elúciu bolo 15 až 40 CV, výhodne 20 až 30 CV.After the wash cycles, an elution phase was performed using the solution as from the first wash cycle with a final amount of potassium chloride at a concentration of not less than 10 mM, preferably at a concentration of 15 to 25 mM. The total amount of elution solution used was 15 to 40 CV, preferably 20 to 30 CV.

Všetky roztoky a vložené vzorky prešli cez kolónu pri lineárnej rýchlosti 0,1 až 1 cm/min, výhodne 0,4 až 0,7 cm/min.All solutions and loaded samples were passed through the column at a linear speed of 0.1 to 1 cm / min, preferably 0.4 to 0.7 cm / min.

V týchto podmienkach sa rINFa-2b eluoval z kolóny so stupňom čistoty vyšším ako 98 %, zatiaľ čo čistota počiatočného roztoku bola 40 %, s výťažkom získavania želaného produktu vyšším ako 80 %.Under these conditions, rINFa-2b eluted from the column with a degree of purity greater than 98%, while the purity of the starting solution was 40%, with a recovery yield of the desired product greater than 80%.

Chromatografické profily pred a po chromatografickom čistení sú ukázané na obr. la a lb.Chromatographic profiles before and after chromatographic purification are shown in FIG. la a lb.

Obr. la ukazuje chromatografický profil interferónového roztoku pred čistením a obr. lb chromatografický profil po čistení.Fig. 1a shows the chromatographic profile of an interferon solution prior to purification; and FIG. 1b chromatographic profile after purification.

Chromagrafické profily sa uskutočnili s HPLC v kvapalnom chromatografe HP 1090 s použitím kolóny Vydac C18 a UV detektora nadstaveného na 214 nm. Elúcia sa uskutočnila pri prietoku 1 ml/min so zmesou z dvoch eluentov, eluent A pozostával zo 700 ml vody, 298 ml acetonitrilu a 2 ml kyseliny trifluóroctovej a eluent B pozostával z 198 ml vody, 800 ml acetonitrilu a 2 ml kyseliny fluóroctovej. Dva eluenty sa zmiešali počas elúcie podľa nasledujúcej tabuľky:The chromatographic profiles were performed by HPLC in an HP 1090 liquid chromatograph using a Vydac C18 column and a UV detector set at 214 nm. Elution was carried out at a flow rate of 1 ml / min with a mixture of two eluents, eluent A consisting of 700 ml of water, 298 ml of acetonitrile and 2 ml of trifluoroacetic acid, and eluent B consisting of 198 ml of water, 800 ml of acetonitrile and 2 ml of fluoroacetic acid. The two eluents were mixed during the elution according to the following table:

Čas (min.) Time (min) % A % A % B % B 0 0 72 72 28 28 1 1 72 72 28 28 5 5 67 67 33 33 20 ' 20 ' 63 63 37 37 30 30 57 57 43 43 40 40 40 40 60 60 42 42 40 40 60 60 50 50 28 28 72 72 60 60 72 72 28 28

Príklad 3Example 3

Spôsob sa uskutočnil podľa príkladu 2 s použitím tlmivého roztoku pripraveného z ftalátu draselného a hydroxidu sodného.The process was carried out according to Example 2 using a buffer prepared from potassium phthalate and sodium hydroxide.

Príklad 4Example 4

Spôsob sa uskutočnil podľa príkladu 2 s použitím tlmivého roztoku pripraveného z citrátu sodného a hydroxidu sodného.The process was carried out according to Example 2 using a buffer prepared from sodium citrate and sodium hydroxide.

Príklad 5Example 5

Spôsob sa uskutočnil podľa príkladu 2 s použitím tlmivého roztoku pripraveného z kyseliny citrónovej a dihydrogénfosforečnanu sodného.The process was carried out according to Example 2 using a buffer prepared from citric acid and sodium dihydrogen phosphate.

Príklad 6Example 6

Spôsob sa Uskutočnil podľa príkladu 2 s použitím tlmivého roztoku pripraveného z imidazolu a kyseliny chlorovodíkovej.The process was carried out according to Example 2 using a buffer prepared from imidazole and hydrochloric acid.

Príklad 7Example 7

Čistenie ľudského sérového albumínuPurification of human serum albumin

Ľudský sérový albumín (ĽSA) sa získal od Sigma (katalógové číslo A1653 z roku 2000). Nominálne množstvo tohto albumínového prípravku bolo stanovené na 99,6 %, ale RP-HPLC analýza.ukázala reálne množstvo 88 %, pričom produkty podobné albumínu sú považované za nečistoty. Roztok ĽSA sa ’ pripravil v 20 mM kyseline citrónovej pri pH 3 s konečnou koncentráciou rovnou 1 mg/ml a vložil sa do silnej katexovej kolóny obsahujúcej matricu Mustang^R S (Pall Corporate), ktorá je komerčne dostupná. Katexová kolóna sa kondicionovala pred vložením vzorky s 20 mM kyseliny citrónovej pri pH 3,0 v množstve rovnom 20 kolónových objemov (CV) .Human serum albumin (LSA) was obtained from Sigma (Catalog No. A1653 from 2000). The nominal amount of this albumin preparation was determined to be 99.6%, but RP-HPLC analysis showed a real amount of 88%, with albumin-like products being considered impurities. The LSA solution was prepared in 20 mM citric acid at pH 3 at a final concentration of 1 mg / ml and loaded onto a strong cation exchange column containing a Mustang ^R S (Pall Corporate) matrix, which is commercially available. The cation exchange column was conditioned prior to loading the sample with 20 mM citric acid at pH 3.0 in an amount equal to 20 column volumes (CV).

. ¹ '. ¹ '

Množstvo vloženého roztoku je také, že sa neprekročila hodnota 10 mg vložených proteínov na milimeter stacionárnej fázy, výhodne 6 až 8 mg/ml.The amount of the loaded solution is such that a value of 10 mg of inserted proteins per millimeter of the stationary phase, preferably 6-8 mg / ml, is not exceeded.

Po vložení sa produkty naviazané k stacionárnej fáze podrobili nasledujúcim cyklom premývania:After insertion, the products bound to the stationary phase were subjected to the following washing cycles:

1. premývací cyklus - 40 CV s 20 mM roztokom octanu sodného pri pH 5,5,1. Washing cycle - 40 CV with 20 mM sodium acetate solution at pH 5,5

2. premývací cyklus 30 CV s 20 mM roztokom octanu sodného pri pH 5,8.2. 30 CV wash cycle with 20 mM sodium acetate solution at pH 5.8.

Elúcia želaného produktu z kolóny sa uskutočnila pomocou soľného roztoku pri pH 6,0 pozostávajúceho zo zmesi hydrogénfosforečnanu draselného a dihydrogénfosforečnanu sodného pri koncentrácii 5 až 100 mM v závislosti od zloženia zmesi. Avšak vodivosť roztoku nesmie presiahnuť 140 jjS . Celkové použité množstvo roztoku bolo 25 až 35 CV.The elution of the desired product from the column was carried out with a saline solution at pH 6.0 consisting of a mixture of potassium hydrogen phosphate and sodium dihydrogen phosphate at a concentration of 5 to 100 mM, depending on the composition of the mixture. However, the conductivity of the solution must not exceed 140. The total amount of solution used was 25-35 CV.

Všetky roztoky a vložené vzorky prechádzajú cez kolónu s lineárnou rýchlosťou 0,1 až 1 cm/min, výhodne 0,4 až 0,7 cm/min.All solutions and loaded samples are passed through a column with a linear velocity of 0.1 to 1 cm / min, preferably 0.4 to 0.7 cm / min.

V týchto podmienkach sa ĽSA eluoval z kolóny s čistotou vyššou ako 99 % s výťažkom získania želaného produktu vyšším ako.. 56 %’ ¹ . ^{1 1} ₍ Under these conditions HSA is eluted from the column with a purity higher than 99% with a yield of recovery of the wanted product higher than 56% .. ^'first ^{1 1} ₍

Obrázky 2a a 2b ukazujú HPLC chromatografický profil ĽSA pred a po čistení. Analýzy sa uskutočnili s tými istými prístrojmi ako je to v prípade obr. la a lb s .použitím zmesi dvoch eluentov, eluent A pripravený z 950 ml 0,1 % kyseliny trifluóroctovej a 50 ml acetonitrilu a eluen.tu B pripraveného z 950 ml acetonitrilu a 50 ml 0, 1 % kyseliny trifluóroctovej . Elúcia sa uskutočnila s prietokom 1 ml/min pri gradiente zmesi eluentov A a B, ktorý začína pri 20 % B a dosahuje 60 % B počas 20 minút.Figures 2a and 2b show the HPLC chromatographic profile of LSA before and after purification. The analyzes were carried out with the same apparatus as in FIG. 1a and 1b using a mixture of two eluents, eluent A prepared from 950 ml of 0.1% trifluoroacetic acid and 50 ml of acetonitrile and eluent B prepared from 950 ml of acetonitrile and 50 ml of 0.1% trifluoroacetic acid. Elution was performed at a flow rate of 1 ml / min with a gradient of eluent mixture A and B starting at 20% B reaching 60% B over 20 minutes.

Claims

PATENT CLAIMS

A process for purifying pharmacologically active proteins, which comprises cation exchange chromatography on a solid matrix at a more basic pH than the isoelectric point of the purified proteins, at which pH the proteins are still absorbed, and eluting these proteins by increasing the ionic strength and / or pH of the eluents.

Method according to claim 1, characterized in that the eluents used for cation exchange chromatography consist of aqueous buffers having a pH of 2 to 11.

Method according to claim 2, characterized in that the pH of the aqueous buffers is 4 to 8.5.

Method according to claims 2 and 3, characterized in that the aqueous buffers contain 5 to 100 mM of the following buffers: potassium hydrogen phosphate and sodium dihydrogen phosphate, potassium phthalate and sodium hydroxide, sodium citrate and sodium hydroxide, citric acid and sodium dihydrogen phosphate, imidazole and hydrochloric acid.

Method according to claims 2 to 4, characterized in that the buffers contain 1 to 100 mM of organic or inorganic salts for modifying the ionic strength of the solution.

The method of claim 1, wherein the pharmacologically active proteins are interferon and albumin proteins.

7.; The method of claim 6, wherein the interferon proteins are α, β, γ, δ, ω, τ, natural and leukocyte, recombinant α-2b and related interferons and albumin proteins are natural and recombinant human albumin.

A method of purifying recombinant α-2b interferon, rIFNa-2, which comprises loading a protein mixture originating from the production of rIFNoc-2b fermentation, to which 1 M sodium acetate solution was added and the pH was adjusted to 5.5 with acetic acid, into a column packed with a strong cation exchange resin conditioned at pH 5.5 with 20 mM sodium acetate solution, with 6-8 mg of proteins present in each milliliter of the stationary phase, subjecting the column to two wash cycles, first with a buffer at pH 6.1 at a concentration of 5 to 15 mM, then with the same buffer enriched with 2 mM potassium chloride and finally eluting the pure rIFNa-2b from the column using a buffer at pH 6.1 at a concentration of 5 to 15 mM containing potassium chloride at a concentration of 15 to 25 mM .

Method according to claim 8, characterized in that the matrix used is MUstang ^R S and the buffer mixtures are selected from potassium hydrogen phosphate and sodium dihydrogen phosphate, potassium phthalate and sodium hydroxide, sodium citrate and sodium hydroxide, citric acid and sodium dihydrogen phosphate and imidazoate hydrochloric acid.

A method for purifying human serum albumin, comprising loading a solution containing human serum albumin adjusted to pH 3 with citric acid in a column packed with a strong cation exchange resin conditioned at pH 3 with 20 mM citric acid solution, wherein 6-8 mg of protein is present in each ml of the stationary phase, the column is subjected to two wash cycles with 20 mM sodium acetate solutions, followed by adjusting the pH to 5.5 to 5.8 and then eluting from the column with pure human serum albumin buffer at pH 6.0 consisting of a mixture of potassium hydrogen phosphate and sodium dihydrogen phosphate at concentrations of 5 to 100 mM.

Use of a method according to any one of the preceding claims for the manufacture of active substances comprised in medicinal products based on pharmacologically active proteins.

The use according to claim 11, wherein the active ingredients are interferon proteins.

The use according to claim 12, wherein it is. interferon protein recombinant α-2b interferon.

The use according to claim 11, wherein the active ingredients are albumin proteins.

The use of claim 14, wherein the albumin proteins are natural or recombinant human serum albumin.