RU2425877C1 - BACTERIOPHAGE Escherichia coli V32 STRAIN FOR IDENTIFICATION OF Escherichia coli BACTERIA SEROGROUP O157 - Google Patents
BACTERIOPHAGE Escherichia coli V32 STRAIN FOR IDENTIFICATION OF Escherichia coli BACTERIA SEROGROUP O157 Download PDFInfo
- Publication number
- RU2425877C1 RU2425877C1 RU2010106806/10A RU2010106806A RU2425877C1 RU 2425877 C1 RU2425877 C1 RU 2425877C1 RU 2010106806/10 A RU2010106806/10 A RU 2010106806/10A RU 2010106806 A RU2010106806 A RU 2010106806A RU 2425877 C1 RU2425877 C1 RU 2425877C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- escherichia coli
- bacteriophage
- strain
- serogroup
- bacteria
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицинской микробиологии и может быть использовано для эпидемических учреждений как дополнительное средство при идентификации бактерий Escherichia coli серогруппы О157.The invention relates to medical microbiology and can be used for epidemic institutions as an additional tool for the identification of bacteria Escherichia coli serogroup O157.
В последние годы появилось большое количество сообщений о вспышках у людей геморрагического гастроэнтерита, вызванного бактериями Escherichia coli О157. Решение проблемы во многом зависит от своевременной диагностики возбудителя. В России отсутствуют коммерческие препараты для выявления данных патогенов.In recent years, there have been a large number of reports of outbreaks in humans of hemorrhagic gastroenteritis caused by bacteria Escherichia coli O157. The solution to the problem largely depends on the timely diagnosis of the pathogen. In Russia, there are no commercial preparations for the detection of these pathogens.
Известна питательная среда (1), которая является полуселективной для выделения сорбитолнегативных колоний Escherichia coli из клинического материала и продуктов питания. Чтобы выявить среди них бактерии Escherichia coli серогруппы O157, требуются дополнительные исследования.Known nutrient medium (1), which is semi-selective for the isolation of sorbitol-negative colonies of Escherichia coli from clinical material and food products. To identify among them the bacteria Escherichia coli serogroup O157, additional studies are required.
Также предложен набор для идентификации энтерогеморрагических эшерихий (2), состоящий из иммуномагнитной разделительной тест-системы и тест-системы для постановки мультиплексной полимеразной цепной реакции (ПЦР). Набор обладает высокой специфичностью и чувствительностью. Однако его применение требует специального оборудования и обученного персонала. Кроме того, в некоторых случаях получаются не однозначные результаты, связанные с широким распространением в природе генов, используемых для тестирования.A kit for the identification of enterohemorrhagic Escherichia (2), consisting of an immunomagnetic separation test system and a test system for setting up a multiplex polymerase chain reaction (PCR), is also proposed. The set has high specificity and sensitivity. However, its use requires special equipment and trained personnel. In addition, in some cases, ambiguous results are obtained related to the wide distribution in nature of genes used for testing.
За рубежом для детекции Е.coli O157 обычно используют три метода: микробиологические, ПЦР и иммунный анализы. Кроме этого предложен меченный рекомбинантный бактериофаг РРO1, который позволяет при наличии флюоресцентного микроскопа обнаружить бактерии Е.coli O157 в течение 10 минут (3).Abroad, three methods are usually used to detect E. coli O157: microbiological, PCR, and immunoassays. In addition, a labeled recombinant bacteriophage PPO1 was proposed, which allows the detection of E. coli O157 bacteria within 10 minutes in the presence of a fluorescence microscope (3).
Техническим результатом предлагаемого изобретения является использование для идентификации бактерий Е.coli O157 высокоспецифичного вирулентного бактериофага Escherichia coli V32.The technical result of the invention is the use of highly specific virulent bacteriophage Escherichia coli V32 for identification of E. coli O157 bacteria.
Штамм бактериофага Escherichia coli V32 выделен из стоков коровника, расположенного в Московской области, и депонирован в коллекции музея микроорганизмов ФГУН ГНЦ ПМБ (Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии") под номером Ph25.The strain of the bacteriophage Escherichia coli V32 was isolated from the effluent of a barn located in the Moscow region and was deposited in the collection of the Museum of Microorganisms of the Federal State Institution of Science and Science of the Center for Applied Microbiology under the number Ph25.
Штамм бактериофага Escherichia coli V32 рекомендуется использовать на стадии анализа подозрительных сорбитолнегативных колоний микроорганизмов, выросших на среде MacConkey с сорбитолом или на среде (1).The Escherichia coli V32 bacteriophage strain is recommended to be used at the stage of analysis of suspicious sorbitol-negative colonies of microorganisms grown on MacConkey medium with sorbitol or on medium (1).
Использование такого бактериофага позволит легко, без привлечения специального оборудования и обучения персонала идентифицировать бактерии Escherichia coli серогруппы O157.The use of such a bacteriophage will make it easy to identify Escherichia coli serogroup O157 bacteria without the involvement of special equipment and personnel training.
Штамм бактериофага Escherichia coli V32 характеризуется следующими свойствами:The bacteriophage strain Escherichia coli V32 is characterized by the following properties:
- морфология негативных колоний: на чувствительном бактериальном штамме формирует прозрачные негативные колонии диаметром около 2-3 мм, с четким краем. Вторичный рост отсутствует;- morphology of negative colonies: on a sensitive bacterial strain forms transparent negative colonies with a diameter of about 2-3 mm, with a clear edge. Secondary growth is absent;
- относится к лямбдоидной группе фагов;- refers to the lambdoid group of phages;
- вирулентен для 100% бактерий Е. coli O157, используемых для проверки;- virulent for 100% E. coli O157 bacteria used for testing;
- специфичен для бактерий Е. coli O157. Не активен для других серотипов эшерихий, видов шигелл и иерсиний;- specific for bacteria E. coli O157. Not active for other serotypes of Escherichia, Shigella and Yersinia species;
- не содержит факторов патогенности Е. coli O157:Н7 (rfb, stxl, stx2, еае и fliC);- does not contain pathogenicity factors of E. coli O157: H7 (rfb, stxl, stx2, еае and fliC);
- не формирует устойчивых лизогенов;- does not form stable lysogens;
- геном имеет двунитевую ДНК размером около 62 тысяч пар оснований (kb). ДНК не гидролизуется ферментами SalG1, EcoRI, BamHI, PstI. Эндонуклеаза HindIII расщепляет ДНК на 28 фрагментов, EcoRV - на 13.- the genome has double-stranded DNA about 62 thousand base pairs (kb) in size. DNA is not hydrolyzed by SalG1, EcoRI, BamHI, PstI enzymes. HindIII endonuclease cleaves DNA into 28 fragments, EcoRV into 13.
- хранение в виде фаголизата, либо в лиофильно высушенном состоянии.- storage in the form of a phagolysate, or in a lyophilized state.
Пример 1. Получение фаголизата штамма бактериофага Escherichia coli V32.Example 1. Obtaining a phagolysate strain of the bacteriophage Escherichia coli V32.
К 1 мл ночной бульонной культуры Е. coli O157:Н7 EDL933 добавляют 4 мл бульона Лурия и 1 мкл суспензии штамма бактериофага Escherichia coli V32 с концентрацией 5×109 БОЕ/мл. Смесь инкубируют на качалке при 37°С до наступления просветления бактериальной культуры. Добавляют 0,5 мл хлороформа и интенсивно перемешивают в смесителе в течение 20 мин. Низкоскоростным центрифугированием (10000g, 15 мин) удаляют обломки бактериальных клеток и титруют фаголизат. Полученный фаголизат содержит более 109 частиц фага в 1 мл.To 1 ml of night broth culture of E. coli O157: H7 EDL933 add 4 ml of Luria broth and 1 μl of a suspension of the bacteriophage strain Escherichia coli V32 with a concentration of 5 × 10 9 PFU / ml. The mixture is incubated on a rocking chair at 37 ° C until the onset of enlightenment of the bacterial culture. Add 0.5 ml of chloroform and mix vigorously in a mixer for 20 minutes. Low-speed centrifugation (10000g, 15 min) removes fragments of bacterial cells and titrates the phagolysate. The resulting phagolysate contains more than 10 9 phage particles in 1 ml.
Пример 2. Проверка специфичности штамма бактериофага Escherichia coli V32.Example 2. Verification of the specificity of the bacteriophage strain Escherichia coli V32.
Специфичность штамма бактериофага Escherichia coli V32 проверяют методом спот-тестов. Для этого по 0,5 мл ночных бульонных бактериальных культур, указанных в табл.1, смешивают с 4 мл полужидкого агара (бульон Лурия с 0,7% агара) при температуре 47°C и распределяют по поверхности чашки Петри, содержащей богатую питательную среду (например, Nutrient Agar, HIMEDIA). Через 20 мин на поверхность наносят каплю штамма бактериофага V32 (около 107 БОЕ/мл) и инкубируют при температуре 37°C в течение ночи. При визуальном осмотре только на чашках с культурами Е. coli O157:Н7 и Е. coli O157 рост бактериального газона отсутствует в местах внесения штамма бактериофага Escherichia coli V32 (прозрачное пятно лизиса). Во всех остальных случаях таких зон не обнаруживается.The specificity of the bacteriophage strain Escherichia coli V32 is checked by the method of spot tests. To do this, 0.5 ml of the nightly broth bacterial cultures indicated in Table 1 are mixed with 4 ml of semi-liquid agar (Luria broth with 0.7% agar) at a temperature of 47 ° C and distributed over the surface of a Petri dish containing a rich nutrient medium (e.g. Nutrient Agar, HIMEDIA). After 20 minutes, a drop of the bacteriophage V32 strain (about 10 7 PFU / ml) was applied to the surface and incubated at 37 ° C overnight. On visual inspection, only on plates with cultures of E. coli O157: H7 and E. coli O157, bacterial lawn growth is absent at the sites of the introduction of the bacteriophage strain Escherichia coli V32 (transparent lysis spot). In all other cases, such zones are not detected.
**, штаммы Е. coli серотипов O1, O2, O4, O6, O8, O15, O18, O19, O20, O23, O26, O28, O29, O33, O55, O78, O79, O110, O111, O113, O117, O119, O127, O139, О140 и O142;
«+», лизис; «-», нет лизиса.In parentheses: *, the number of strains of this species used in testing;
**, E. coli strains of serotypes O1, O2, O4, O6, O8, O15, O18, O19, O20, O23, O26, O28, O29, O33, O55, O78, O79, O110, O111, O113, O117, O119, O127, O139, O140 and O142;
"+", Lysis; “-”, no lysis.
Пример 3. Ферментативный гидролиз ДНК штамма бактериофага Escherichia coli V32.Example 3. Enzymatic hydrolysis of DNA of the bacteriophage strain Escherichia coli V32.
Составляют рестрикционную смесь, содержащую 0,1 мкг/мл ДНК штамма бактериофага Escherichia coli V32, 1 мкл 10-кратного рестрикционного буфера, 1 единицу соответствующего фермента, деионизованную воду - до общего объема 10 мкл. Смесь инкубируют при температуре 37°С в течение 1 часа. Электрофорез проводят в горизонтальном электрофорезном аппарате при постоянной силе тока 150 мА в течение 1 часа. После 15 мин окрашивания в растворе 0,4 мкг бромистого этидия гель визуализируют под УФ-лампой (см. чертеж).A restriction mixture is prepared containing 0.1 μg / ml DNA of the bacteriophage strain Escherichia coli V32, 1 μl of 10-fold restriction buffer, 1 unit of the corresponding enzyme, deionized water to a total volume of 10 μl. The mixture is incubated at a temperature of 37 ° C for 1 hour. Electrophoresis is carried out in a horizontal electrophoresis apparatus at a constant current of 150 mA for 1 hour. After 15 min of staining in a solution of 0.4 μg of ethidium bromide, the gel is visualized under a UV lamp (see drawing).
Пример 4. Использование штамма бактериофага Escherichia coli V32 для анализа бактериальных колоний методом спот-теста.Example 4. The use of a strain of the bacteriophage Escherichia coli V32 for the analysis of bacterial colonies using the spot test.
Бактериальные колонии анализируемых бактерий индивидуально суспендируют в 0,1 мл стерильного физиологического раствора и переносят на чашки с питательной средой Nutrient Agar. Суспензии досуха втирают стерильным шпателем в поверхность агара и, разделив чашку на 2 сектора, в один из них капают пипеткой каплю штамма бактериофага Escherichia coli V32, в другой - каплю физиологического раствора. Чашки инкубируют ночь при 37°С. При визуальном осмотре только на чашках с чувствительными к фагу Escherichia coli V32 бактериальными культурами (Е.coli O157:Н7 или Е.coli О157:Н-) рост бактериального газона отсутствует на месте внесения бактериофага. Во всех остальных случаях таких зон нет.Bacterial colonies of the analyzed bacteria are individually suspended in 0.1 ml of sterile saline and transferred to plates with Nutrient Agar medium. Suspension to dryness is rubbed with a sterile spatula into the surface of the agar and, after dividing the cup into 2 sectors, a drop of the bacteriophage strain Escherichia coli V32 is pipetted into one of them and a drop of physiological saline into the other. The plates are incubated overnight at 37 ° C. On visual inspection, only on plates with Escherichia coli V32 phage sensitive bacterial cultures (E. coli O157: H7 or E. coli O157: H - ) there is no bacterial lawn growth at the site of bacteriophage insertion. In all other cases, there are no such zones.
Пример 5. Использование штамма бактериофага Escherichia coli V32 для анализа бактериальных колоний методом фаговой "дорожки".Example 5. The use of a strain of the bacteriophage Escherichia coli V32 for the analysis of bacterial colonies by the phage "track" method.
Каплю штамма бактериофага Escherichia coli V32 наносят на поверхность питательного агара Nutrient Agar и, наклонив чашку Петри, распределяют ее по диаметру. Фаговую "дорожку" высушивают. Для этого чашку, приоткрыв крышку, помещают на 15 мин в термостат при 37°С. После этого суспензии колоний анализируемых бактерий переносят бактериологической петлей на поверхность питательного агара таким образом, чтобы они перпендикулярно пересекали фаговую "дорожку". Чашки инкубируют ночь при температуре 37°С. При визуальном осмотре только культуры Е.coli O157:Н7 и Е.coli O157:Н- растут прерывистой полосой из-за отсутствия роста в зоне фаговой "дорожки". Остальные культуры растут сплошной непрерывной полосой.A drop of the bacteriophage strain Escherichia coli V32 is applied to the surface of Nutrient Agar and, by tilting the Petri dish, distribute it in diameter. The phage "track" is dried. To do this, the cup, having opened the lid, is placed for 15 min in a thermostat at 37 ° C. After this, the suspension of colonies of the analyzed bacteria is transferred by a bacteriological loop to the surface of the nutrient agar so that they cross the phage "path" perpendicularly. Cups are incubated overnight at a temperature of 37 ° C. By visual inspection only culture of E. coli O157: H7 and E. coli O157: H - growing discontinuous strip due to the lack of growth in the area of phage "track". The rest of the cultures grow in a continuous continuous strip.
Таким образом, штамм бактериофага Escherichia coli V32 является специфичным и вирулентным для бактерий Escherichia coli серогруппы О157. Использование предлагаемого штамма бактериофага для идентификации бактерий Escherichia coli серогруппы O157 является простым и общедоступным методом, не требующим больших затрат времени и материалов.Thus, the bacteriophage strain Escherichia coli V32 is specific and virulent for bacteria Escherichia coli serogroup O157. The use of the proposed bacteriophage strain for identification of bacteria of Escherichia coli serogroup O157 is a simple and generally available method that does not require large expenditures of time and materials.
Источники информацииInformation sources
1. Патент RU №2139343, C12Q 1/20. Бюл. №28, 1999 г.1. Patent RU No. 2139343,
2. Патент RU №2270253, C12Q 1/68. Бюл. №5, 2006 г.2. Patent RU No. 2270253,
3. Oda М., Morita М., Unno Н., Tanji Y. Applied Environmental Microbiol. 2004; 70:1:527-534.3. Oda M., Morita M., Unno N., Tanji Y. Applied Environmental Microbiol. 2004; 70: 1: 527-534.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2010106806/10A RU2425877C1 (en) | 2010-02-26 | 2010-02-26 | BACTERIOPHAGE Escherichia coli V32 STRAIN FOR IDENTIFICATION OF Escherichia coli BACTERIA SEROGROUP O157 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2010106806/10A RU2425877C1 (en) | 2010-02-26 | 2010-02-26 | BACTERIOPHAGE Escherichia coli V32 STRAIN FOR IDENTIFICATION OF Escherichia coli BACTERIA SEROGROUP O157 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2425877C1 true RU2425877C1 (en) | 2011-08-10 |
Family
ID=44754547
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2010106806/10A RU2425877C1 (en) | 2010-02-26 | 2010-02-26 | BACTERIOPHAGE Escherichia coli V32 STRAIN FOR IDENTIFICATION OF Escherichia coli BACTERIA SEROGROUP O157 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2425877C1 (en) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2496874C1 (en) * | 2012-06-05 | 2013-10-27 | Федеральное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии (ФБУН ГНЦ ПМБ) | STRAIN OF BACTERIOPHAGE Escherichia coli ECD4, HAVING LYTIC ACTIVITY IN RESPECT TO BACTERIA Escherichia coli OF SEROTYPE O104:H4 |
WO2016003307A1 (en) | 2014-07-02 | 2016-01-07 | Limited Liability Company "Bphage" | Bacteriophage strains, compositions and related methods |
CN117737001A (en) * | 2022-12-27 | 2024-03-22 | 菲吉乐科(南京)生物科技有限公司 | Coliphage for preventing and treating canine bacterial diarrhea and application thereof |
-
2010
- 2010-02-26 RU RU2010106806/10A patent/RU2425877C1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
ODA M., MORITA M., UNNO H., TANJI Y. Rapid detection of Escherichia coli 0157: H7 by using green fluorescent protein-labeled PP01 bacteriophage. Appl Environ MicrobioL, 2004, Jan 70 (1), p.527-534. * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2496874C1 (en) * | 2012-06-05 | 2013-10-27 | Федеральное бюджетное учреждение науки Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии (ФБУН ГНЦ ПМБ) | STRAIN OF BACTERIOPHAGE Escherichia coli ECD4, HAVING LYTIC ACTIVITY IN RESPECT TO BACTERIA Escherichia coli OF SEROTYPE O104:H4 |
WO2016003307A1 (en) | 2014-07-02 | 2016-01-07 | Limited Liability Company "Bphage" | Bacteriophage strains, compositions and related methods |
CN117737001A (en) * | 2022-12-27 | 2024-03-22 | 菲吉乐科(南京)生物科技有限公司 | Coliphage for preventing and treating canine bacterial diarrhea and application thereof |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN104073469B (en) | The separation of cracking aquatic pathogenic bacteria phage and screening technique | |
BR112013016757B1 (en) | METHOD FOR DETECTING THE PRESENCE OR ABSENCE OF A TARGET MICRO-ORGANISM | |
JP2015503345A (en) | Method for detecting Salmonella microorganisms | |
RU2425877C1 (en) | BACTERIOPHAGE Escherichia coli V32 STRAIN FOR IDENTIFICATION OF Escherichia coli BACTERIA SEROGROUP O157 | |
CN112961805B (en) | Salmonella typhimurium with quinolone drug resistance genes gyrA and parE mutated simultaneously and application thereof | |
CN112961804B (en) | Salmonella typhimurium and application thereof | |
Li et al. | Effect of environmental conditions on the formation of the viable but nonculturable state of Pediococcus acidilactici BM-PA17927 and its control and detection in food system | |
CN102146429A (en) | Vibrio alginolyticus selectivity differential medium | |
RU2531236C1 (en) | Method of detecting microorganism of species vibrio parahaemolyticus | |
O’doherty et al. | Development of nalidixic acid amphotericin B vancomycin (NAV) medium for the isolation of Campylobacter ureolyticus from the stools of patients presenting with acute gastroenteritis | |
CN112575100B (en) | Staphylococcus albus standard reference strain containing specific molecular target and detection and application thereof | |
Shabana et al. | Molecular Characterization of Yersinia Enterocolitica Isolated From Chicken Meat Samples. | |
JP2015062373A (en) | Rapid detection method of microorganism by transgenic virus | |
RU2518297C2 (en) | TEST-SYSTEM FOR DIFFERENTIATING SPECIES AND BIOTYPES OF BACTERIA OF GENUS Yersinia | |
CN113913318B (en) | Salmonella typhimurium carrying four quinolone drug-resistant mutation sites simultaneously and application thereof | |
CN112646906B (en) | Diarrhea-causing escherichia coli standard reference strain containing specific molecular target and detection and application thereof | |
RU2827921C1 (en) | Reference strain for differentiation of bacteria yersinia pseudotuberculosis of genetic group 1b | |
RU2772351C1 (en) | Method for identifying promising probiotic strains from natural media | |
RU2332453C1 (en) | Vibrio metschnikovii bacteria strain as indicator culture for specific phage detection | |
Tanrikul et al. | Assessment of Chromogenic Media in Bacterial Fish Pathogens | |
Farber | Potential use of membrane filters and a fluoregenic reagent-based solid medium for the enumeration of Escherichia coli in foods | |
RU2460802C1 (en) | Method for identifying yersinia enterocolitica | |
JP6124912B2 (en) | Medium and method for detecting pathogenic Yersinia enterocolitica bacteria | |
JP5354564B2 (en) | Medium for simultaneous detection of E. coli O26 and O157 and detection method thereof | |
Haque et al. | Influence of some physicochemical stresses on the survival of Vibrio cholerae O1 at non-culturable state |