KR100900837B1 - 리포펩타이드와 폴리(ｉ:ｃ)를 아쥬반트로 포함하는 강력한백신 조성물 - Google Patents

리포펩타이드와 폴리(ｉ:ｃ)를 아쥬반트로 포함하는 강력한백신 조성물 Download PDF

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Abstract

본 발명은 리포펩타이드와 폴리(I:C)를 아쥬반트로 포함하는 강력한 백신 조성물에 관한 것으로, 더욱 상세하게는 백신제제에 이상적인 Th1 타입 면역반응을 유도할 뿐 아니라 항원 특이적인 항체 생산을 증가시키고, 적합한 양질의 항체생산을 유도하는 리포펩타이드와 폴리(I:C)를 복합 아쥬반트로 포함하는 강력한 백신 조성물에 관한 것이다. 본 발명의 리포펩타이드와 폴리(I:C)는 바이러스 감염 및 암의 예방 또는 치료를 위한 강력한 백신용 아쥬반트로서 유용하게 사용될 수 있다.
리포펩타이드, 폴리(I:C), 백신, 아쥬반트

Description

리포펩타이드와 폴리(Ｉ:Ｃ)를 아쥬반트로 포함하는 강력한 백신 조성물{A POWERFUL VACCINE COMPOSITION COMPRISING LIPOPEPTIDE AND POLY(I:C) AS AN ADJUVANT}
본 발명은 리포펩타이드와 폴리(I:C)를 아쥬반트로 포함하는 강력한 백신 조성물에 관한 것으로, 더욱 구체적으로는 백신제제에 이상적인 Th1 타입 면역반응을 유도할 뿐 아니라 항원 특이적인 항체 생산을 증가시키는 리포펩타이드와 폴리(I:C)를 아쥬반트로 포함하는 강력한 백신 조성물에 관한 것이다. 이때 리포펩타이드와 폴리(I:C)를 복합 아쥬반트로 제제화한 백신 조성물은 수산화 알루미늄으로 제제화한 것 뿐 아니라 리포펩타이드 또는 폴리(I:C)를 각각 사용한 것과 비교하여 면역반응을 유도함에 있어 시너지효과를 나타낸다.
현재 다양한 종양성 질환 및 감염 질환에 대한 새로운 백신들이 지속적으로 개발되고 있다. 약독화된 병원균 또는 복제를 하지 않는 비활성화된 병원균을 이용했던 예전의 백신과는 대조적으로, 요즘의 백신은 합성, 재조합, 또는 정제된 소 단위 항원으로 이루어진다.
인간의 면역기능을 이용하여 암을 치료하기 위한 면역요법에 대한 연구개발이 활발히 시도되고 있으나, 대부분의 인간의 암 세포는 효과적으로 항원을 제시하지 못하기 때문에 적절한 항원-항체 면역반응을 일으키지 못하거나, 암 세포에 대한 세포독성 T-세포가 활성화되지 않아서 효과적인 치료가 어렵다.
또한, 인플루엔자 감염에 의한 입원 및 사망률을 줄이기 위한 효과적이고 주된 수단으로 백신이 사용되고 있으나, 인플루엔자 바이러스와 같은 RNA 바이러스는 계속적인 항원 변이로 인한 백신 개발의 어려움에도 불구하고 인플루엔자가 전체인구에 주는 피해가 크기 때문에 백신을 개선하려는 노력이 계속되고 있다.
현재 사용 중인 백신의 효력이 충분히 만족스럽지 않으므로 이를 개선하는 것은 중요한 과제이다. 예를 들면 현재 사용중인 이스트에서 생산된 B형 간염백신은 중국에서 약 75% 정도 효과가 있으며(Sun, Z., L. Ming, x. Zhu, and J. Lu. Prevention and control of hepatitis B in China, 2002, J. of Medical Virology 67: 447-450), 현재 사용중인 독감백신은 노년층에서는 효과가 충분치 않은 것으로 알려져 있다. 또한 간이식 환자의 경우 수동면역이 필수적으로 시행되고 있는데 충분히 강력한 백신은 이를 대체할 수 있다. 수술 후 항체가가 높은 HBV 항체를 지속적으로 투여하는 수동면역(passive immunization)은 비용이 많이 들고, 번거로운 일이다. 이러한 환자에 항체형성을 위하여 백신으로 능동면역한 경우, 기존 백신을 투여한 환자군은 20%만이 혈청변환(seroconversion)이 유도된 반면에 강력한 아쥬반트를 사용하여 효력이 개선된 백신으로 면역한 환자군은 80%가 혈청변환이 유도되었다(Bienzle M. et al., 2003, Immunization with an adjuvant hapatitis B vaccine after liver transplantation for hepatitis B-related disease. Hepatology 38: 811-819).
면역학적 반응을 일으키는 여러 단계 중 특정 단계를 더 잘 일어나게 하거나 증폭시켜 궁극적으로 면역 반응이 더 잘 일어나게 하는 것을 아쥬반트라 정의한다. 아쥬반트는 단독으로 투여되었을 때는 면역성을 가지고 있지 않지만, 항원과 같이 투여될 경우 항원에 대한 면역 반응을 증진시키고 지속시킬 수 있다. 전형적인 아쥬반트의 예는 오일 에멀젼(oil emulsion)(Freund's adjuvant), 사포닌(saponin), 알루미늄(aluminium) 또는 칼슘염(calcium salts)(alum), 비이온 블록 중합체 활성제(non-ionic block polymer surfactants), 지질다당류(lipopolysaccharides), 마이코박테리아(mycobacteria), 파상풍균 톡소이드(tetanus toxoid) 등이 알려져 있다.
효과적인 아쥬반트를 사용한 강력한 백신제제는 새로운 백신을 개발하는데도 중요하고, 면역요법으로 만성감염 및 암을 치료하기 위한 치료백신을 개발하는데도 매우 중요하다.
본 발명에서 강력한 백신은 항원 특이적이며 적합한 양질의 항체를 다량 생산할 수 있는 체액성 면역반응을 유도하는 백신제제로 정의하였다. B형 간염바이러스의 표면항원(envelope antigen) 유전자와 HLA-A2 유전자가 도입된 이중형질전환 생쥐모델(double transgenic mouse model)을 이용한 동물 면역실험에서 혈중 HBV 항원의 양이 면역요법으로 유도된 항원특이적인 항체의 양에 의존적으로 감소하는 것이 발견되었다(Loirat, D., M. Mancini-Bourgine, J.-P. Abastado, and M.-L. Michel, 2003, HBsAg/HLA-A2 transgenic mice: a model for T cell tolerance to hepatitis B surface antigen in chronic hepatitis B virus infection. International Immunol. 15: 1125-1136). 같은 동물모델에서 세포성 면역반응을 강력하게 유도하는 공동자극분자(costimulatory molecule)인 anti-4-1BB 단일클론 항체는 혈중 HBV 항원을 제거하는데 비효율적이었다. Agonistic anti-4-1BB 단일클론항체는 세포성 면역반응을 강력하게 유도하며 CD4 T세포를 활성화(rejuvenate)하는 것으로 알려져 있으며(Kwon, B., H. W. Lee and B. S. Kwon. 2002. New insignts into the role of 4-1BB in immune responses: beyond CD8 T cells. Trends in Immunol. 23: 378-380) 이를 종양이 형성된 마우스에 투여하면 암세포 성장을 효과적으로 억제한다(Melero, I., W. W. Shuford, S. A. Newby, A. Aruffo, J. A. Ledbetter, K. E. Hellstrom, R. S. Mittler, and L. Chen. 1997. Monoclonal antibodies against the 4-1BB T-cell activation molecule eradicate established tumors. Nature Medicine 3: 682-685). 그러나 anti-4-1BB 단일클론항체가 아쥬반트인 alhydrogel과 같이 면역실험에 사용된 경우, anti-4-1BB 단일클론항체는 alhydrogel에 의한 항체형성을 약 80% 억제한다. 그러므로 이러한 종류의 물질은 세포성 면역반응을 잘 유도하더라도 본 발명에서 제시한 아쥬반트에서 배제되었다.
적합한 양질의 항체 형성은 예방목적 또는 치료목적의 강력한 백신을 만드는데 중요한 요소이다. 예를 들면, 종양을 제거하는데 있어 IgG 아이소타입들은 서 로 다른 효력을 나타내는데 그 중 IgG2a는 IgG1, IgG2b 또는 IgG3에 비하여 가장 효과적이다(Nimmerjahn, F., and J. V. Ravetch. 2005. Divergent immunoglobulin G subclass activity through selective Fc receptor binding. Science 310: 1510-1512). 또한, 항바이러스 면역에는 IgG2a와 IgG2b가 가장 효과적인 것으로 알려져 있는데(J.-P. Coutelier et al., 1987. Ig G2a restriction of murine antibodies elicited by viral infections. J. Exp. Med. 165: 64-69., Markine-Gorianoff, D. and J.-P. Coutelier. 2002. Increased efficacy of the immunoglobulin G2a subclass in antibody-mediated protection against lactate dehydrogenase-elevating virus-induced polioencephalomyelitis revealed with switch mutants. J. of Virol 76: 432-435) 이들은 T helper cell 1(Th1 세포)이 생산하는 사이토카인의 영향으로 생성된다. 그러므로 본 발명에서 강력한 백신제제는 생산되는 항원특이적 항체의 양과 IgG2a/IgG1 및 IgG2b/IgG1의 비율에 의하여 판단된다.
단백질 항원이 갖는 두 가지 면역학적 요소는 에피토프(epitope)의 특이성을 결정하는 1차 구조와 면역반응의 특성을 결정하는 분자패턴이다. 유도된 면역반응의 특성은 적당한 아쥬반트를 사용함으로써 조절될 수 있다. 항원의 아미노산 서열인 1차 구조는 바뀔 수 없으나 항원의 면역원성을 증가하기 위하여 부가적인 서열이 첨가될 수 있다(Dempsey, P. W., et al., 1996. C3d of complement as a molecular adjuvant: Bridging innate and acquired immunity. Science 271: 348-350, Deres, K. et al., 1989. In vivo priming of virus-specific cytotoxic T lymphocytes with synthetic lipopeptide vaccine. Nature 342: 561-564). HBV 표 면항원의 경우, preS1과 preS2를 포함하지 않는 S 단백질은 B10.S와 B10.M 마우스와 같은 유사유전자형 마우스 종(congenic mouse strain)에서는 면역원성이 나타나지 않는 반면에 preS1과 preS2를 포함하는 L 단백질은 pre S1과 preS2에 대한 항체를 유도할 뿐 아니라 S 항원에 대한 항체형성도 유도한다 (Milich, D. R., A. McLachlan, M. K. KcNamara, F. V Chisari, and G. B. Thornton. 1986. New approaches to immunization(F. Brown, R. M. Chanock, R. A. Lerner eds.), pp377-382. Cold Spring Harbor Laboratories, Cold Spring Harbor, New York).
항원의 분자패턴은 면역반응의 결과에 영향을 준다. 이는 특히 병원성 미생물 전체가 항원으로 사용될 경우 중요한데 이러한 항원은 리포폴리사카라이드, 핵산, 지질단백질 또는 단백질과 같은 여러 종류의 PAMP(pathogen associated molecular pattern) 리간드가 섞여있게 된다. 항원제시 세포(antigen presenting cell) 표면에 있는 PRR(pathogen recognition receptor)은 PAMP을 인지하여 다양한 공동자극 분자와 사이토카인을 유도하기 위한 신호를 일으켜서 어떠한 면역반응이 유도되는지에 영향을 주게 된다. 예를 들면, 인터페론 감마와 IL-12는 바이러스 감염에 대한 면역반응에 중요한 Th1 세포 반응을 유도하게 된다. Th1 타입 면역반응은 더 많은 IgG2a 생성과 강력한 세포성 면역반응으로 나타난다. 그러므로 본 발명에서 좋은 아쥬반트의 기준은 강력한 항체반응을 유도하고, 면역글로불린 클래스를 변경하여 IgG2a 및 IgG2b를 생산하는 것이다.
현재 대부분의 PRR 기능은 잘 밝혀지지 않아서 강력한 백신을 합리적으로 디자인하는 것이 어렵다. 그 중에 기능이 알려진 PRR은 TLR(toll like receptors, 12 members), NLR(NOD(nucleotide binding oligomerization domain) like receptors, 22 members), RLR(RIG-1(retinoid acid inducible gene 1) like receptors) 등이 있다. PRR와 항원의 PAMP가 결합하여 발생되는 다양한 신호간의 상호교신은 면역반응의 결과에 영향을 준다. 그러나 사이토카인과 공동자극 분자를 유도하는데 있어서 이러한 신호들의 기능과 상호작용에 관하여 충분한 연구가 되어있지 않으므로 강력한 백신을 합리적으로 디자인 하는 것이 쉽지 않다.
그러므로 좋은 아쥬반트를 발명하는 것은 대체로 실험적 발견에 근거하게 된다.
이에 본 발명자들은 백신에 리포펩타이드와 폴리(I:C)를 복합 아쥬반트로 사용할 경우, Th1 타입의 면역반응을 유도하고, 종래 수산화 알루미늄으로 제제화한 것뿐 아니라 리포펩타이드 또는 폴리(I:C)를 단독으로 사용한 것과 비교하여 항원 특이적인 항체 생산도 증가시키는 시너지효과가 있음을 밝힘으로써, 본 발명을 완성하였다.
본 발명은 항원과 리포펩타이드 및 폴리(I:C)을 함께 투여하여 적합한 양질의 항체를 형성하는 바이러스 감염 및 암의 예방 또는 치료제를 제공하는 것이다.
본 발명은 리포펩타이드 및 폴리(I:C)를 포함하는 백신 아쥬반트를 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 아쥬반트와 항원을 포함하는 백신 조성물을 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 백신 조성물을 투여하여 Th1 면역반응을 증진시키는 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 아쥬반트 및 항원을 인간을 제외한 포유동물에 투여하는 단계를 포함하는 상기 포유동물내에서 투여된 항원에 대한 적합한 양질의 항체를 형성시키는 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 방법에 의한 바이러스 감염 및 암의 예방 또는 치료제를 제공한다.
이하, 본 발명을 보다 상세히 설명한다.
본 발명은 리포펩타이드 및 폴리(I:C)를 포함하는 백신 아쥬반트를 제공한다.
본 발명에 사용된 리포펩타이드는 박테리아와 마이코플라즈마에서 유래한 리포펩타이드의 합성유사체(synthetic analogue)로 J. Metzger 등에 의해 처음 합성되었다(Metzger, J. et al., 1991, Synthesis of novel immunologically active tripalmitoyl-S-glycerylcysteinyl lipopeptides as useful intermediates for immunogen preparations. Int. J. Peptide Protein Res. 37: 46-57). 하기 화학식 (1)의 분자구조는 N-palmitoyl-S-[2,3-bis(palmitoyloxy)-(2RS)-propyl]-[R]-cystein-SKKKK (pam3Cys-SKKKK)이며, 다양한 유사체들이 합성되었다(EMC microcollections GmbH Sindelfinger Str. 3 72070 Tubingen, Germany).
화학식(1)
Figure 112007088202001-pat00001
H. Schild 등에 따르면 Pam3Cys-Ser-Ser을 인플루엔자 바이러스 T 세포 에피토프와 결합시켜 마우스에 투여한 경우 바이러스 특이적인 세포독성 T 림프구(cytotoxic T lymphocyte, CTL)가 유도되었다(Schild, H. et al., 1991, Efficiency of peptides and lipopeptides for in vivo priming of virus-specific cytotoxic T cells Eur. J. Immunol. 21: 2649-2654.). 본 발명에서도 Pam3Cys-SKKKK가 기존 아쥬반트인 수산화 알루미늄보다 HBV 표면항원의 면역원성을 보다 효과적으로 증가시켰다. 일반적으로 리포펩타이드는 TLR2에 대한 리간드로 알려져 있다(Trinchieri, G. and A. Sher. 2007. Cooperation of Toll-like receptor signals in innate immune defence. Nat. Rev. Immunol 7: 179-190).
리포펩타이드의 사용은 Pam3Cys-SKKKK에 한정되지 않으며, 리포펩타이드는 글리세롤 분자에 결합된 지방산과 여러 아미노산으로 구성될 수 있다. 그 예로 PHC-SKKKK, Ole2PamCys-SKKKK, Pam2Cys-SKKKK, PamCys(Pam)-SKKKK, Ole2Cys-SKKKK, Myr2Cys-SKKKK, PamDhc-SKKKK, PamCSKKKK, Dhc-SKKKK 등이 포함된다. 분자 내에 지방산의 숫자는 한 개 이거나 그 이상 일 수 있다. 리포펩타이드에 아미노산의 수는 하나이거나 그 이상일 수 있다. 또한 지방산과 아미노산은 화학적으로 변형될 수 있다. 또한 리포펩타이드는 그람 양성이나 그람 음성인 박테리아나 마이코플라즈마로부터 유래한 분자 일부이거나 분자 전체 형태로 된 지질단백질일 수 있다.
또한, 폴리(I:C)는 시험관내(in vitro)와 생체내(in vivo)연구에서 타입1 인터페론의 강력한 유도체로 사용되어져 왔다(Magee, M. E. and M. J. Griffith. 1972. The liver as a site for interferon production in response to poly I: poly C. life Science II, 11: 1081-1086, Manetti, YR., F. Annunziato, L. Tomasevic, V, Gianno, P. Parronchi, S. Romagnani and E. Maggi. 1995. poly inosinic acid: polycytidylic acid promotes T helper type 1-specific immune responses bu stimulating macrophage production of interferon-alpha and interleukin-12. Eur. J. Immunol. 25: 2656-2660). 더욱이 폴리(I:C)는 포유류에서 가장 강력한 항원 제시 세포인 수지상세포(dendritic cell)를 안정적이고 성숙하게 형성하는 것으로 알려졌다(Rous, R. et al 2004. poly(I:C) used for human dendritic cell maturationpreserves their ability to secondarily secrete bioactive Il-12, International Immunol. 16: 767-773). 이러한 기존보고에 따르면 폴리(I:C)는 강력한 IL-12 유도물질이며, IL-12는 면역반응을 Th1이 발달하도록 추진하여 세포성 면역반응과 IgG2a항체 형성을 유도하는 중요한 사이토카인이다. 또한 폴리(I:C)는 펩타이드 항원에 대한 강력한 아쥬반트활성을 갖는 것으로 알려졌다 (Cui, Z. and F. Qui. 2005. Synthetic double stranded RNA poly I:C as a potent peptide vaccine adjuvant: Therapeutic activity against human cervical cancer in a rodent model. Cancer Immunol. Immunotherapy 16: 1-13). 폴리(I:C)는 그 길이가 50 내지 2,000 bp인 것이 적합하며, 100-500 bp가 바람직하다.
본 발명에서는 HBV 표면항원을 사용하여 폴리(I:C)의 강력한 아쥬반트 활성을 확인하였는데 수산화 알루미늄으로 제제화한 것에 비하여 약 2배 더 좋은 효과를 보였다.
더욱이 리포펩타이드와 폴리(I:C)를 같이 사용한 백신제제는 리포펩타이드와 폴리(I:C)를 단독으로 사용한 것과 비교하여 항원 특이적인 항체 생산을 증가시키는 상승작용이 있을 뿐 아니라 항원 특이적 항체가 IgG2a 및 IgG2b 생산을 유도하여 면역반응을 Th1 타입으로 유도할 수 있다.
상기 결과들은 리포펩타이드와 폴리(I:C)가 항바이러스 및 항암 면역 반응의 유도를 위한 강력한 백신 아쥬반트로 사용될 수 있음을 제시한다.
또한, 본 발명은 상기 아쥬반트와 항원을 포함하는 백신 조성물을 제공한다.
본 발명의 강력한 백신 조성물은 항원을 포함한 유탁액형태에 합성 리포펩타이드(synthetic lipopeptide)와 폴리(I:C)를 아쥬반트 구성요소로 포함한다.
항원은 숙주의 체내에 들어왔을 때, 숙주의 면역계에 의하여 인식되어 면역반응을 일으킬 수 있는 모든 물질(예를 들면, 단백질, 펩타이드, 암세포, 당단백질, 당지질, 생바이러스, 사바이러스, DNA 또는 다른 합텐 분자)을 의미한다.
항원은 또한 정제된 또는 정제되지 않은 형태로 제공될 수 있으며, 정제된 형태로 제공되는 것이 바람직하다.
본 발명은 병원체의 단백질, 재조합 단백질, 펩티드, 다당류, 당단백질, 지질다당류 및 DNA 분자(폴리뉴클레오티드), 암세포, 생바이러스, 사바이러스를 포함하는 항원에도 적용될 수 있다.
하기 항원 목록은 실시예의 수단으로 제공될 수 있고, 이에 제한되는 것은 아니다: 인플루엔자 바이러스(influenza virus) 항원(haemagglutinin 및 neuraminidase 항원), 백일해균(Bordetella pertussis) 항원(pertussis toxin, filamentous haemagglutinin, pertactin), 인간 파필로마 바이러스(human papilloma virus, HPV) 항원, 헬리코박터파이로리(Helicobacterpylori) 항원(capsula polysaccharides of serogrup A, B, C, Y 및 W-135), 파상풍균 항원(tetanus toxoid), 디프테리아균(diphtheria) 항원(diphtheria toxoid), 폐렴균(pneumococcal) 항원(Streptococcus pnemoniae type 3 capsular polysaccharide), 결핵균(tuberculosis) 항원, 인간 면역결핍 바이러스(human immunodeficiency virus, HIV) 항원(GP-120, GP-160), 콜레라(cholera) 항원(cholera toxin B subunit), 포도상구균(staphylococcal) 항원(staphylococcal enterotoxin B), 적리균(shigella) 항원(shigella polysaccharides), 소수포성 입안염 바이러스(vesicular stomatitis virus) 항원(vesicular stomatitis virus glycoprotein), 사이토메갈로바이러스(cytomegalovirus, CMV) 항원, 간염바이러스(hepatitis) 항원(hepatitis A(HAV), B(HBV), C(HCV), D(HDV) 및 G(HGV) 항원), 호흡기 다핵체 바이러스(respiratory synctytial virus, RSV) 항원, 허피스 심플렉스(herpes simplex) 항원 또는 그의 조합(예를 들면, 디프테리아, 백일해균 및 파생풍균, DPT).
본 발명의 실시예에서는, 상기 항원 중 HBV 표면항원을 합성 리포펩타이드 및 폴리(I:C)와 같이 제제화하여 기존 아쥬반트인 수산화 알루미늄과 제제화한 것뿐 아니라 리포펩타이드 또는 폴리(I:C) 단독으로 제제화한 것과 비교한 결과 우수한 아쥬반트 활성을 갖는 것을 확인하였다. HBV 표면항원과 두 아쥬반트 구성요 소를 섞어서 제제화할 경우 HBV S항원에 특이적인 항체 및 preS항원에 특이적인 항체가 월등히 증가하였다(도 1 및 도 2 참조). 생산된 항체의 아이소타입도 다른 양상을 나타낸다. Th2 면역반응을 유도하는 것으로 알려진 수산화 알루미늄으로 제제화한 경우 IgG1 항체가 상대적으로 많이 생성되어 IgG2a/IgG1의 비율이 5%이하로 분석되었다. 반면에 리포폴리펩타이드와 폴리(I:C)로 제제화한 경우 IgG2a 항체 및 IgG2b 항체가 많이 생성되어 IgG2a/IgG1의 비율이 40%이상, IgG2b/IgG1의 비율이 350%이상에 달하였다(도 3b 및 도 3c 참조). 이러한 결과는 HBV 표면항원을 리포펩타이드와 폴리(I:C)로 제제화하면 표면항원에 특이적인 항체형성이 증가할 뿐 아니라 면역반응의 질도 개선된다는 것을 보여준다. 즉 HBV 표면항원을 리포펩타이드와 폴리(I:C)로 제제화하면 면역반응이 Th1 면역반응으로 치우쳐져서 바이러스 감염 및 세포감염에 대한 방어에 필요한 IgG2a 및 IgG2b를 생성하게 된다.
백신은 환자에서 면역반응을 자극하기에 효과적인 양으로 투여할 수 있다. 예를 들어, 백신은 인간에게 일회 내지 수회로 투여될 수 있고, 투여량은 1-250 ㎍이고 더욱 바람직하게는 10-100 ㎍이다.
또한, 본 발명은 상기 백신 조성물을 투여하여 Th1 면역반응을 증진시키는 방법을 제공한다.
폴리(I:C)는 강력한 IL-12 유도물질이며, IL-12는 면역반응을 Th1이 발달하도록 추진하여 세포성 면역반응과 IgG2a항체 형성을 유도하는 중요한 사이토카인이다. 한편, 본 발명에서는 폴리(I:C)를 단독으로 아쥬반트로 사용하는 경우보다 리 포펩타이드와 혼합하여 사용하는 경우, 항체가와 IgG2a 및 IgG2b 항체 형성에 있어 시너지 효과가 나타나는 것을 하기 실시예를 통해 확인하였다.
또한, 본 발명은 상기 아쥬반트 및 항원을 인간을 제외한 포유동물에 투여하는 단계를 포함하는 상기 포유동물내에서 투여된 항원에 대한 적합한 양질의 항체를 형성시키는 방법을 제공한다.
상기 적합한 양질의 항체는 바람직하게는 IgG2a 및 IgG2b 타입인 것을 특징으로 한다. 항암 및 항바이러스 면역반응에 가장 효과적인 IgG2a는 T helper 세포 1(Th1)이 생산하는 사이토카인의 영향으로 생성된다. 본 발명의 백신 조성물은 리포펩타이드 및 폴리(I:C)를 아쥬반트로 사용하여 면역반응이 Th1 반응쪽으로 치우쳐져서 항암 및 항바이러스 면역반응에 가장 효과적인 IgG2a 및 IgG2b를 생성한다. 따라서, 상기 방법에 따라 바이러스 감염 및 암의 예방 또는 치료제를 제공할 수 있다.
이상에서 살펴본 바와 같이, 본 발명은 리포펩타이드와 폴리(I:C)를 동시에 아쥬반트로 포함할 경우 항원특이적인 면역반응을 효과적으로 유도하였고, 특히 항암 및 항바이러스 면역반응에 효과적인 IgG2a와 IgG2b의 생성에 시너지효과를 보임을 확인하였다. 리포펩타이드와 폴리(I:C)가 단독으로 면역반응을 유도하는 효과는 이미 알려져 있으나 이를 복합아쥬반트로 사용하여 면역반응을 유도하는데 시너 지 효과를 일으키는 것은 본 발명에서 처음으로 규명하였다. 따라서 상기 두 아쥬반트를 동시에 사용할 경우 항원특이적 항체의 양이 증가되고 IgG2a 및 IgG2b항체 생성이 유도되는 시너지 효과가 나타나므로 바이러스 감염 및 암의 예방 또는 치료를 위한 투여 백신용 아쥬반트로서 유용하게 사용될 수 있다.
이하, 본 발명을 실시예에 의해 더욱 상세히 설명한다.
단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것이 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 의해 한정되는 것은 아니다.
<실시예1> Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)의 시너지 효과: B형간염 바이러스 재조합 L-HBsAg을 항원으로 사용하여 제제화한 경우
재조합 L-HBsAg항원에 수산화 알루미늄, Pam3Cys-SKKKK 및 폴리(I:C)를 각각 또는 복합적으로 사용하여 아쥬반트효과를 비교하였다.
<1-1> 시험 백신의 제조 및 투여
기출원된 특허출원 제 2007-0010167호에서 기술된 B형 간염바이러스 전체표면항원(L-HBsAg)과 하기 아쥬반트를 혼합하여 시험 백신을 제조하였다. 이때 전체표면항원(L-HBsAg)은 HBsAg과 preS1 및 preS2항원을 모두 포함한다.
Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)를 동시에 사용하여 제제화 했을 경우 아쥬반트 효과를 관찰하기 위하여 전체표면항원 0.5 ug과 Pam3Cys-SKKKK 및 폴리(I:C)를 20 ug씩 혼합하여 오일 에멀젼 제제 형태의 시험백신을 제조하였다. 또한 이를 Pam3Cys-SKKKK 또는 폴리(I:C)를 단독으로 사용했을 때의 아쥬반트 효과와 비교하기 위하여 전체표면항원 0.5 ug과 Pam3Cys-SKKKK(EMC microcollections GmbH, 독일) 또는 폴리(I:C)(Sigma, USA)를 각각 20ug씩 혼합한 후 오일 에멀젼 제제 형태의 시험백신을 제조하였다. 음성대조군으로 항원을 포함하지 않은 PBS 완충용액을 투여하였고, 양성대조군으로 항원을 수산화 알루미늄(알룸)에 흡착하여 시험백신을 제조하였다. 각 시험 백신은 도스(dose)당 항원 0.5 ug을 사용하여 6주령 C57BL/6 마우스 암컷에 2주 간격으로 3회 근육주사하였다.
면역그룹은 하기와 같이 실험군 1 내지 5로 분류하여 아쥬반트 효과를 비교하였다.
실험군 1: PBS 완충용액을 투여(음성대조군)
실험군 2: L-HBsAg을 수산화 알루미늄에 흡착하여 투여(양성대조군)
실험군 3: L-HBsAg을 Pam3Cys-SKKKK와 혼합한 후 오일 에멀젼 형태로 제조하여 투여
실험군 4: L-HBsAg을 폴리(I:C)와 혼합한 후 오일 에멀젼 형태로 제조하여 투여
실험군 5: L-HBsAg을 Pam3Cys-SKKKK 및 폴리(I:C)와 혼합한 후 오일 에멀젼 형태로 제조하여 투여
<1-2> 체액성 면역반응 분석방법
면역 전(pre-immune serum)과 면역투여 완료 후 2주째에 혈청(serum)을 분리하여 항원특이적인 항체 형성을 ELISA법으로 분석하여 항체가를 결정하였다. 항체를 분석하기 위해 정제된 재조합 HBsAg을 96 웰 마이크로플레이트에 100 ng/웰의 농도로 코팅한 뒤 소 혈청 알부민(Bovine Serum Albumin) 1%로 1시간 동안 블로킹하였다. 마이크로플레이트를 세척한 뒤 각 웰에 순차적으로 희석된 혈청을 넣고 37℃에서 2시간동안 반응시켰다. 2차 항체로 항 마우스 염소 IgG-HRP(Horse Radish Heroxidase) (Sigma, US)를 넣고 1시간 동안 동일한 조건에서 반응시킨다. 세척 후 발색시약 TMB (3, 3', 5, 5'-tetramethyl benzidine) peroxidase substrate (KPL, US)을 넣고 20분간 상온에서 반응시킨 후 ELISA 리더기를 이용하여 450 nm에서 OD값을 측정하였다. 항체가는 음성대조군의 OD값에 3배에 해당하는 OD값을 나타내는 항체 희석배수의 역수로 정의하였다. 또한 항체 서브타입을 mouse monoclonal antibody isotyping reagents (Sigma, US)을 이용하여 결정하였다.
<1-3> 체액성 면역반응 분석결과
(가) HBsAg에 대한 항체가
기존백신과 같이 수산화 알루미늄을 아쥬반트로 사용한 양성대조군인 실험군 2의 경우 최종 항체가가 5.7×105이었다. Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)를 혼합하여 사용한 실험군 5는 최종 항체가가 3.4×106으로 가장 높은 항체가를 나타냈다. Pam3Cys-SKKKK를 단독으로 사용한 실험군 3의 경우 항체가가 1.4×106이며, 폴리(I:C)를 단독으로 사용한 실험군 4의 경우 항체가가 1.2×106이었다. Pam3Cys-SKKKK 및 폴리(I:C)는 단독으로 사용한 경우에도 수산화 알루미늄보다 체액성 면역반응을 더 잘 유도하는 결과를 확인하였으나 두 아쥬반트를 혼합하여 사용할 경우 단독으로 사용하는 것보다 더 높은 항체가를 유도할 수 있는 시너지 효과를 보였다(도 1).
(나) preS항원에 대한 항체가
백신항원으로 사용한 L-HBsAg은 preS1과 preS2로 구성된 preS항원을 포함하고 있다. preS 단백질은 B형 간염바이러스가 간세포에 감염할 때 중요한 역할을 하는 것으로 알려져 있으므로 이에 대한 항체가 형성되는 것은 예방 및 치료에 매우 중요한 역할을 할 수 있다. 따라서 preS 항원에 대한 항체 형성을 ELISA법을 이용하여 위에서 서술한 것과 같은 방법으로 분석하였다. 종래 백신과 같이 수산화 알루미늄을 아쥬반트로 사용한 실험군 2의 경우 preS 항원에 대한 최종 항체가는 7.1×104이었다. Pam3Cys-SKKKK를 단독으로 사용한 실험군 3의 경우 항체가가 6.2×105이며, 폴리(I:C)를 단독으로 사용한 실험군 4의 경우 항체가가 6.5×105이었다. 따라서 Pam3Cys-SKKKK 및 폴리(I:C)는 단독으로 사용한 경우 S항원에 대한 항체형성과 마찬가지로 preS에 대한 항체형성도 더 잘 유도함을 확인하였다. 즉 Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)는 체액성 면역반응을 기존 아쥬반트인 수산화 알루미늄보다 더 잘 유도함을 확인하였다.
또한 Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)를 혼합하여 사용한 실험군 5는 가장 높은 항체가를 나타냈는데 이때 최종 항체가가 5.1×106으로 두 아쥬반트를 혼합하여 사용할 경우 각각을 사용하여 나타나는 항체가를 더한 것 보다 5 배 이상 더 높은 항체가를 유도할 수 있는 시너지 효과를 보였다(도 2).
(다) 유도된 항원특이적 항체의 아이소타입 분석
HBsAg항원 특이적인 항체의 아이소타입중 IgG1, IgG2a 및 IgG2b를 ELISA법으로 분석하였다(도 3a). 이를 IgG2a와 IgG1의 비로 나타내면 수산화 알루미늄과 Pam3Cys-SKKKK를 사용한 실험군 2와 실험군 3에서 10% 미만인 반면에 Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)를 혼합하여 사용한 실험군 5는 IgG2a/IgG1가 특이적으로 높아 50%에 이르고 있다(도 3b). 또한 Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)를 혼합하여 사용한 실험군 5는 IgG2b의 생성이 월등히 높아 IgG2b/IgG1가 350%이상이었다(도 3c). 즉, 두 아쥬반트를 동시에 사용한 경우 면역반응을 Th1쪽으로 전환할 수 있음을 확인하였다.
<실시예 2> Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)의 시너지 효과: 인플루엔자 HA(Hemagglutinin) 항원으로 사용하여 제제화한 경우
인플루엔자 항원에 수산화 알루미늄, Pam3Cys-SKKKK 및 폴리(I:C)를 각각 또는 복합적으로 사용하여 아쥬반트 효과를 비교하였다.
<2-1> 시험 백신의 제조 및 투여
항원은 인플루엔자 바이러스주 A/New Caledonia/20/99(H1N1), a/Wisconsin/67/2005(H3N2) 및 B/Malaysia/2506/2004를 발육계란의 뇨막강내에 접종하여 배양, 정제 및 불활화하여 제조한 재조합 분할백신항원을 사용하였다. Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)를 동시에 사용하였을 경우 상승효과를 관찰하기 위하여 항원 1.8 ug과 Pam3Cys-SKKKK 및 폴리(I:C)를 모두 20ug씩 혼합하여 오일 에멀젼제제 형태의 시험백신을 제조하였고, 이를 Pam3Cys-SKKKK 또는 폴리(I:C)를 단독 아쥬반트로 사용한 경우와 비교하였다. 음성대조군으로 항원을 포함하지 않은 PBS 완충용액을 투여하였고, 양성대조군으로 기존 인플루엔자 백신의 경우와 같이 아쥬반트없이 항원만 사용하거나(양성대조군 1) 또는 수산화 알루미늄에 흡착하여 시험백신(양성대조군 2)을 제조하였다. 각 시험 백신은 도스당 분할백신항원 1.8 ug을 사용하여 5주령 C57BL/6 마우스 암컷에 3주 간격으로 2회 근육주사하였다. 면역그룹은 하기와 같이 실험군 1 내지 6으로 분류하여 아쥬반트 효과를 비교하였다.
실험군 1: PBS 완충용액을 투여(음성대조군)
실험군 2: 아쥬반트없이 인플루엔자 HA항원만 투여(양성대조군1)
실험군 3: 인플루엔자 HA항원을 수산화 알루미늄에 흡착하여 투여 (양성대조군2)
실험군 4: 인플루엔자 HA항원을 Pam3Cys-SKKKK와 혼합한 후 오일 에멀젼 형태로 제조하여 투여
실험군 5: 인플루엔자 HA항원을 폴리(I:C)와 혼합한 후 오일 에멀젼 형태로 제조하여 투여
실험군 6:인플루엔자 HA항원을 Pam3Cys-SKKKK 및 폴리(I:C)와 혼합한 후 오일 에멀젼 형태로 제조하여 투여
<2-2> 체액성 면역 반응 분석방법
체액성 면역반응을 분석하기 위하여 백신투여 전, 1차 백신 투여후 3주후, 2차 백신 투여 후 2주에 혈청을 채취하여 ELISA법으로 인플루엔자 HA항원 특이적인 항체를 분석하였다. 또한 항체 서브타입을 mouse monoclonal antibody isotyping reagents (Sigma, US) 키트를 이용하여 측정하였다.
<2-3> 체액성 면역 반응 분석 결과
(가) 인플루엔자 HA항원에 대한 항체가
도 4에서와 같이 Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)를 혼합하여 사용한 실험군 6에서 가장 높은 항체가를 보였다. 기존백신과 같이 아쥬반트를 사용하지 않은 실험군 2는 최종 항체가가 2.1×105 이었고, 알루미늄을 아쥬반트로 사용한 실험군 3의 경우 최종 항체가가 9.3×105이었다. Pam3Cys-SKKKK를 단독으로 사용한 실험군 4의 경우 6.8×105이며, 폴리(I:C)를 단독으로 사용한 실험군 5의 경우 항체가가 8.6×105이었다. 따라서 Pam3Cys-SKKKK 또는 폴리(I:C)를 단독으로 사용한 경우에는 알루미늄을 아쥬반트로 사용한 경우와 항체가가 유사하게 나타났다. 반면에 Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)를 혼합하여 사용한 실험군 6은 최종 항체가가 3.0×106으로 혼합하여 사용할 경우 항체 유도 효과를 증대시키는 시너지 효과를 보였다.
(나) 유도된 항원특이적 항체의 아이소타입 분석
인플루엔자 항원특이적인 항체의 아이소타입중 IgG1과 IgG2a를 ELISA법으로 분석하였다(도 5a). Th2 면역반응을 유도하는 것으로 알려진 수산화 알루미늄을 사용한 실험군 3에서는 IgG1이 가장 높게 나타났다. IgG2a는 Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)를 혼합하여 사용한 실험군 6에서 상대적으로 높게 나타났다. 이를 IgG2a와 IgG1의 비로 나타내면 다른 실험군에서와 달리 Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)를 혼합하여 사용한 실험군 6에서 특이적으로 IgG2a/IgG1이 높았다(도 5b). 즉, 두 아쥬반트를 동시에 사용한 경우 면역반응을 Th1쪽으로 전환할 수 있음을 확인하였다.
<실시예 3> 한세눌라 폴리몰파에서 생산한 재조합 HBsAg을 항원으로 사용한 경우
한세눌라 폴리몰파에서 생산한 재조합 HBsAg에 재조합 preS단백질을 첨가하고, 아쥬반트로 Pam3Cys-SKKKK, 폴리(I:C)를 사용하여 S항원과 preS항원을 모두 포함한 개선된 백신효능을 확인하였다.
<3-1> 시험백신의 제조 및 투여
항원은 한세눌라 폴리몰파에서 생산된 재조합 HBsAg과 사카로마이세스 세레비지아에서 생산된 재조합 preS 단백질을 사용하였다. 이때 한세눌라 폴리몰파에서 생산된 재조합 HBsAg은 preS항원이 없이 S-HBsAg만을 포함한다. 사카로마이세스 세레비지아에서 생산된 preS 단백질은 콜로이드 골드(colloidal gold)에 컨쥬게이션하여 파티클형태로 제조하였다. 재조합 S-HBsAg 0.5 ug과 preS 항원 5 ug을 Pam3Cys-SKKKK 및 폴리(I:C) 각각 20 ug과 혼합한 후 오일 에멀젼 제제 형태의 시험백신을 제조하였다. 음성대조군으로 항원을 포함하지 않은 PBS 완충용액을 투여하였고(실험군 1), 양성대조군으로 한세눌라 폴리몰파에서 생산된 S-HBsAg 0.5 ug을 알루미륨에 흡착하고, 콜로이드 골드에 컨쥬게이션된 preS 항원 5 ug과 혼합하여 투여하였다(실험군 2). 시험백신은 S-HBsAg을 Pam3Cys-SKKKK 및 폴리(I:C)를 혼합한 후 오일 에멀젼 형태로 제제화한 후, 콜로이드 골드에 컨쥬게이션된 preS 항원을 혼합하거나(실험군 3), S-HBsAg과 콜로이드 골드에 컨쥬게이션된 preS항원을 아쥬반트인 Pam3Cys-SKKKK 및 폴리(I:C)와 혼합한 후 오일 에멀젼 형태로 제제화하였다(실험군 4). 각 시험 백신은 도스당 재조합 HBsAg 0.5 ug과 재조합 preS 항원 5.0 ug 사용하여 5주령 C57BL/6 마우스 암컷에 2주 간격으로 3회 근육주사하였다. 면역그룹은 하기와 같이 실험군 1 내지 4로 분류하였다.
실험군 1: PBS 완충용액을 투여(음성대조군)
실험군 2: 수산화 알루미늄에 흡착된 S-HBsAg과 콜로이드 골드에 컨쥬게이션된 재조합 preS 항원을 혼합하여 투여(양성대조군)
실험군 3: S-HBsAg을 Pam3Cys-SKKKK 및 폴리(I:C)와 혼합한 후 오일 에멀젼 형태로 제조하고, 콜로이드 골드에 컨쥬게이션된 재조합 preS 항원을 혼합하여 투여
실험군 4: S-HBsAg과 콜로이드 골드에 컨쥬게이션된 재조합 preS항원을 Pam3Cys-SKKKK 및 폴리(I:C)와 혼합한 후 오일 에멀젼 형태로 제조하여 투여
<3-2> 체액성 면역반응 분석방법
체액성 면역반응을 분석하기 위하여 백신투여 전, 3차 백신투여 완료 2주 후에 혈청을 채취하여 ELISA법으로 HBsAg 특이적인 항체와 preS항원 특이적인 항체를 분석하였다. 또한 항체 서브타입을 mouse monoclonal antibody isotyping reagents (Sigma, 미국) 키트를 이용하여 측정하였다.
<3-3> 체액성 면역반응 분석 결과
(가) 재조합 HBsAg에 대한 항체반응
도 6에서와 같이 Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)를 혼합하여 사용한 실험군 3과 실험군 4에서 양성대조군보다 높은 항체가를 보였다. 알루미늄에 흡착된 S-HBsAg을 투여한 실험군 2는 최종 항체가가 1.3×105 인 반면에, Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)를 혼합하여 사용한 실험군 3은 HBsAg에 대한 최종 항체가가 1.9×106이었고, 실험군 4의 경우 HBsAg에 대한 최종 항체가가 3.6×106으로 약 28배 증가하였 다. 실험군 3과 실험군 4를 비교하면, 사용된 항원인 S-HBsAg과 콜로이드 골드에 흡착된 preS 항원을 모두 혼합하여 오일 에멀젼으로 제제화한 실험군 4의 경우 약 2배 더 높은 항체가가 나타내었다. 따라서 Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)를 혼합하여 아쥬반트로 사용할 경우 구성분을 모두 포함하여 오일 에멀젼 형태로 하는 것이 가장 좋은 효과를 보였다.
(나) preS항원에 대한 항체가
preS 단백질은 B형 간염바이러스가 간세포에 감염할 때 중요한 역할을 하는 것으로 알려져 있으므로 이에 대한 항체가 형성되는 것은 예방 및 치료에 매우 중요한 역할을 할 수 있다. 따라서 시험백신에 preS 항원을 추가하였고, 면역원성을 높이기 위하여 콜로이드 골드에 컨쥬게이션하여 파티클 형태로 제조하여 사용하였다. preS에 대한 항체 형성은 ELISA 법을 이용하여 분석하였다.
실험군 2는 콜로이드 골드에 컨쥬게이션된 preS항원을 알루미늄에 흡착된 S-HBsAg과 혼합하여 투여하였고, 실험군 3에서는 Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)로 제제화된 S-HBsAg과 혼합하여 투여하였다. 이때 S-HBsAg항원에 사용된 아쥬반트에 따라 preS에 대한 항체반응이 다르게 나타났다. 즉, 실험군 2의 경우 preS 항원에 대한 최종항체가는 4.6×105이었고, 실험군 3에서는 최종 항체가는 1.2×106로 Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)가 사용된 경우 추가된 항원에 대한 체액성 면역반응도 더 잘 유도함을 확인하였다(도 7).
또한 S-HBsAg과 preS항원을 Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)를 혼합하여 오일 에 멀젼 제제화한 실험군 4는 preS 항원에 특이적인 항체가도 2.0×106으로 가장 높았다.
따라서 사용된 항원을 두 아쥬반트와 혼합하여 제제화할 경우 가장 높은 항체가를 유도할 수 있었다.
(다) 유도된 항원특이적 항체의 아이소타입 분석
HBsAg항원 특이적인 항체의 아이소타입중 IgG1, IgG2a 및 IgG2b를 ELISA법으로 분석하였다(도 8a). 이를 IgG2a와 IgG1의 비로 나타내면 수산화 알루미늄을 사용한 실험군 2에서 약 40%인 반면에 Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)를 혼합하여 사용한 실험군 3과 실험군 4에서는 IgG2a/IgG1가 높게 유도되었으며 특히 S-HBsAg과 preS항원 모두를 Pam3Cys-SKKKK와 폴리(I:C)로 제제화한 실험군 4에서는 140%에 이르고 있다(도 8b). 또한 실험군 4는 IgG2b의 생성이 월등히 높아 IgG2b/IgG1가 300%이상으로 관찰되었다(도 8c). 즉, 두 아쥬반트를 동시에 사용한 경우 면역반응을 Th1쪽으로 전환할 수 있음을 확인하였다.
도 1은 L-HBsAg을 수산화 알루미늄(Alum), 폴리(I:C), Pam3Cys-SKKKK와 같이 제제화하여 HBsAg항원에 대한 면역원성을 비교한 결과를 나타낸 도면이다. G1: PBS 대조군, G2: L-HBsAg(w/ Alum), G3: [L-HBsAg+Pam3Cys-SKKKK] 에멀젼, G4: [L-HBsAg+폴리(I:C)] 에멀젼, G5: [L-HBsAg+Pam3Cys-SKKKK +폴리(I:C)] 에멀젼.
도 2는 L-HBsAg을 수산화 알루미늄(Alum), 폴리(I:C), Pam3Cys-SKKKK와 같이 제제화하여 preS 항원에 대한 면역원성을 비교한 결과를 나타낸 도면이다. G1: PBS 대조군, G2: L-HBsAg(w/Alum), G3: [L-HBsAg+Pam3Cys-SKKKK] 에멀젼, G4: [L-HBsAg+폴리(I:C)] 에멀젼, G5: [L-HBsAg+Pam3Cys-SKKKK +폴리(I:C)] 에멀젼.
도 3a는 L-HBsAg을 수산화 알루미늄(Alum), 폴리(I:C), Pam3Cys-SKKKK와 같이 제제화하여 면역한 후 유도된 항체의 아이소타입을 비교한 결과를 나타내는 도면이다. G1: PBS 대조군, G2: L-HBsAg(w/ Alum), G3: [L-HBsAg+Pam3Cys-SKKKK] 에멀젼, G4: [L-HBsAg+폴리(I:C)] 에멀젼, G5: [L-HBsAg+Pam3Cys-SKKKK+폴리( I:C)] 에멀젼.
도 3b는 L-HBsAg을 수산화 알루미늄(Alum), 폴리(I:C), Pam3Cys-SKKKK와 같이 제제화하여 면역한 후 유도된 항체의 아이소타입을 상대적 비율 (IgG2a/IgG1)로 나타낸 도면이다.
도 3c는 L-HBsAg을 수산화 알루미늄(Alum), 폴리(I:C), Pam3Cys-SKKKK와 같이 제제화하여 면역한 후 유도된 항체의 아이소타입을 상대적 비율 (IgG2b/IgG1)로 나타낸 도면이다.
도 4는 인플루엔자 항원을 수산화 알루미늄(Alum), 폴리(I:C), Pam3Cys-SKKKK와 같이 제제화하여 면역원성을 비교한 결과를 나타낸 도면이다. 폴리(I:C)나 Pam3Cys-SKKKK를 단독으로 사용한 경우 수산화 알루미늄(Alum)을 사용한 대조군과 비교하여 항체가가 큰 차이가 없으나 폴리(I:C)와 Pam3Cys-SKKKK를 동시에 사용한 경우 항체가가 약 14배 높았다. G1: PBS 대조군, G2: HA 항원만 투여, G3: HA 항원(w/Alum), G4: [HA 항원+Pam3Cys-SKKKK] 에멀젼, G5: [HA 항원+ 폴리(I:C)] 에멀젼, G6: [HA 항원+Pam3Cys-SKKKK+폴리(I:C)] 에멀젼.
도 5a는 인플루엔자 항원을 수산화 알루미늄(Alum), 폴리(I:C), Pam3Cys-SKKKK와 같이 제제화하여 면역한 후 유도된 항체의 아이소타입을 항체가로 비교한 결과를 나타낸 도면이다. 수산화 알루미늄(Alum)을 사용한 대조군은 IgG1 항체가 주로 형성된 반면에 폴리(I:C)와 Pam3Cys-SKKKK를 동시에 사용한 경우에는 IgG2a 항체가 상대적으로 더 높게 형성되었다. G2: HA 항원만 투여, G3: HA 항원(w/ Alum), G4: [HA 항원+Pam3Cys-SKKKK] 에멀젼, G5: [HA 항원+폴리(I:C)] 에멀젼, G6: [HA 항원+Pam3Cys-SKKKK+폴리(I:C)] 에멀젼.
도 5b는 인플루엔자 항원을 수산화 알루미늄(Alum), 폴리(I:C), Pam3Cys-SKKKK와 같이 제제화하여 면역한 후 유도된 항체의 아이소타입을 상대적 비율 (IgG2a/IgG1)로 나타내었다. 수산화 알루미늄(Alum)을 사용한 대조군과 비교하여 폴리(I:C)와 Pam3Cys-SKKKK를 동시에 사용한 경우에 IgG2a항체가 상대적으로 더 높게 형성되었다.
도 6은 S-HBsAg과 preS항원을 혼합하여 면역실험을 수행할 때 이를 수산화 알루미늄(Alum), 폴리(I:C), Pam3Cys-SKKKK와 같이 제제화하여 HBsAg에 특이적인 항체가를 비교한 결과를 나타낸 도면이다. 수산화 알루미늄(Alum)을 사용한 대조군과 비교하여 폴리(I:C)와 Pam3Cys-SKKKK를 사용한 경우 항체가가 높았다. 특히 두 항원 (S-HBsAg, preS항원)을 폴리(I:C)와 Pam3Cys-SKKKK와 혼합하여 에멀젼으로 제제화한 경우 항체가가 가장 높았다. G1: PBS 대조군, G2: S-HBsAg(w/ Alum)+cG-preS, G3: [S-HBsAg+Pam3Cys-SKKKK+폴리(I:C)] 에멀젼+cG-preS, G4: [S-HBsAg+cG-preS+Pam3Cys-SKKKK+폴리(I:C)] 에멀젼. *cG-preS: preS-컨쥬게이션된 콜로이드 골드.
도 7은 S-HBsAg과 preS항원을 혼합하여 면역실험을 수행할 때 이를 수산화 알루미늄(Alum), 폴리(I:C), Pam3Cys-SKKKK와 같이 제제화하여 preS에 특이적인 항체가를 비교하였다. 수산화 알루미늄(Alum)을 사용한 대조군과 비교하여 폴리(I:C)와 Pam3Cys-SKKKK를 사용한 경우 항체가가 높았다. 특히 두 항원(S-HBsAg, preS항원)을 폴리(I:C)와 Pam3Cys-SKKKK와 혼합하여 에멀젼으로 제제화한 경우 항체가가 가장 높았다. G1: PBS 대조군, G2: S-HBsAg(w/Alum)+cG-preS, G3: [S-HBsAg+Pam3Cys-SKKKK+폴리(I:C)] 에멀젼+cG-preS, G4: [S-HBsAg+cG-preS+Pam3Cys-SKKKK+폴리(I:C)] 에멀젼, *cG-preS: preS-컨쥬게이션된 콜로이드 골드.
도 8a는 S-HBsAg과 preS항원을 혼합하여 이를 수산화 알루미늄(Alum), 폴리(I:C), Pam3Cys-SKKKK와 같이 제제화하여 면역한 후 유도된 항체의 아이소타입을 비교한 결과를 나타내는 도면이다. G1: PBS 대조군, G2: S-HBsAg(w/Alum)+cG-preS, G3: [S-HBsAg+Pam3Cys-SKKKK+폴리(I:C)] 에멀젼+cG-preS, G4: [S-HBsAg+cG- preS+Pam3Cys-SKKKK +폴리(I:C)] 에멀젼, *cG-preS: preS-컨쥬게이션된 콜로이드 골드.
도 8b는 S-HBsAg과 preS항원을 혼합하여 이를 수산화 알루미늄(Alum), 폴리(I:C), Pam3Cys-SKKKK와 같이 제제화하여 면역한 후 유도된 항체의 아이소타입을 상대적 비율 (IgG2a/IgG1)로 나타낸 도면이다.
도 8c는 S-HBsAg과 preS항원을 혼합하여 이를 수산화 알루미늄(Alum), 폴리(I:C), Pam3Cys-SKKKK와 같이 제제화하여 면역한 후 유도된 항체의 아이소타입을 상대적 비율 (IgG2b/IgG1)로 나타낸 도면이다.

Claims (14)

  1. 리포펩타이드 및 폴리(I:C)를 포함하는 백신 아쥬반트.
  2. 제 1항에 있어서, 리포펩타이드는 Pam3Cys-SKKKK, PHC-SKKKK, Ole2PamCys-SKKKK, Pam2Cys-SKKKK, PamCys(Pam)-SKKKK, Ole2Cys-SKKKK, Myr2Cys-SKKKK, PamDhc-SKKKK, PamCSKKKK, Dhc-SKKKK인 것을 특징으로 하는 백신 아쥬반트.
  3. 제 1항에 있어서, 폴리(I:C)는 그 길이가 50 내지 2,000 bp인 것을 특징으로 하는 백신 아쥬반트.
  4. 제 1항의 아쥬반트 및 항원을 포함하는 백신 조성물.
  5. 제 4항에 있어서, 항원은 병원체의 단백질, 재조합 단백질, 당단백질, 펩티드, 다당류, 지질다당류 또는 폴리뉴클레오티드인 것을 특징으로 하는 백신 조성물.
  6. 제 4항에 있어서, 항원은 세포 또는 바이러스인 것을 특징으로 백신 조성물.
  7. 제 4항에 있어서, 항원은 L-HBsAg, 인플루엔자 HA, S-HBsAg 및 preS항원으로 구성된 군에서 선택된 어느 하나 이상인 것을 특징으로 하는 백신 조성물.
  8. 제 4항에 있어서, 상기 백신은 항원 특이적이며 세포성 면역반응을 유도하는 IgG2a 및 IgG2b 타입의 항체를 다량 생산할 수 있는 것을 특징으로 하는 백신 조성물.
  9. 삭제
  10. 제 4항에 있어서, Th1 면역반응을 증진시키는 것을 특징으로 하는 백신 조성물.
  11. 제 1항의 아쥬반트 및 항원을 인간을 제외한 포유동물에 투여하는 단계를 포함하는 상기 포유동물 내에서 투여된 항원에 대한 IgG2a 및 IgG2b 타입의 항체를 형성시키는 방법.
  12. 삭제
  13. 제 4항의 백신조성물을 유효성분으로 포함하는 바이러스 감염 예방 또는 치료제.
  14. 제 4항의 백신조성물을 유효성분으로 포함하는 암의 예방 또는 치료제.
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