JPH11349490A - Albumin preparation - Google Patents
Albumin preparationInfo
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- JPH11349490A JPH11349490A JP11043586A JP4358699A JPH11349490A JP H11349490 A JPH11349490 A JP H11349490A JP 11043586 A JP11043586 A JP 11043586A JP 4358699 A JP4358699 A JP 4358699A JP H11349490 A JPH11349490 A JP H11349490A
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Abstract
Description
【0001】[0001]
【発明の属する技術分野】本発明は、アルブミン製剤及
びその製法に関する。より詳細には、凝集体含量、夾雑
蛋白質含量等が低減された血清アルブミン製剤及びその
製法に関する。[0001] The present invention relates to an albumin preparation and a method for producing the same. More specifically, the present invention relates to a serum albumin preparation with reduced aggregate content, contaminant protein content, and the like, and a method for producing the same.
【0002】[0002]
【従来の技術及び発明が解決しようとする課題】血清ア
ルブミンは血漿中に最も多く含まれている蛋白質で、血
液中で浸透圧の維持、栄養物質や代謝物質と結合してそ
の運搬などの機能を果たしている。上記血清アルブミン
を含有する製剤は、アルブミンの喪失及びアルブミン合
成低下による低アルブミン血症、出血性ショックなどの
治療に用いられている。アルブミン製剤は、そこに混入
してくる懸念のあるウイルスを不活化するために、通
常、アルブミン含有水溶液の状態での加熱処理が汎用さ
れている。このような方法により製造される市販のアル
ブミン製剤をゲル濾過分析法で分析すると、該製剤中に
は凝集体が存在することが知られている。この凝集体
(通常、ポリマーと称されるので、以下、ポリマーとい
う)は上記の加熱処理前には殆ど存在しないことから、
加熱処理により熱に不安定な夾雑蛋白質の作用でアルブ
ミンが凝集化したものと考えられる。市販のアルブミン
製剤は安全に広く使用されていることから、このポリマ
ーが特に人に害を及ぼすとは考えられていないが、加熱
変性物であることより、製剤中にできるだけ含有しない
ことが好ましい。また、アルブミン中にはトランスフェ
リンなどのようにアルブミンと物理化学的性質の比較的
よく似た夾雑蛋白質が含まれており、分画法等の慣用の
手段では効率的に分離することが困難であり、アルブミ
ン製剤中に夾雑蛋白質が残存するという問題がある。2. Description of the Related Art Serum albumin is the most abundant protein in plasma, and has functions such as maintaining osmotic pressure in blood and transporting nutrients and metabolites by binding them. Plays. The above-mentioned preparations containing serum albumin have been used for treatment of hypoalbuminemia, hemorrhagic shock and the like due to albumin loss and reduced albumin synthesis. In the case of albumin preparations, heat treatment in the state of an albumin-containing aqueous solution is generally used in order to inactivate viruses that may be mixed therein. When a commercially available albumin preparation produced by such a method is analyzed by gel filtration analysis, it is known that aggregates are present in the preparation. Since this aggregate (generally referred to as a polymer, hereinafter referred to as a polymer) hardly exists before the above-mentioned heat treatment,
It is considered that albumin was aggregated by the action of heat-unstable contaminating proteins due to the heat treatment. Since commercially available albumin preparations are widely used safely, this polymer is not considered to be particularly harmful to humans. However, since it is a heat-modified product, it is preferable that it is not contained in the preparations as much as possible. In addition, albumin contains contaminant proteins having relatively similar physicochemical properties to albumin, such as transferrin, and it is difficult to efficiently separate the protein by conventional means such as fractionation. However, there is a problem that contaminating proteins remain in the albumin preparation.
【0003】本発明は上記の課題を解決すべく創案され
たもので、本発明者らが種々検討を重ねた結果、アルブ
ミンを高度に精製することにより、トランスフェリン等
の夾雑蛋白質含量を激減させ得ると共に加熱処理しても
ポリマーが検出されないことを見出して完成したもので
ある。即ち、本発明はポリマー含量及び夾雑蛋白質含量
の少ないアルブミン製剤及びその製法を提供することを
目的とする。The present invention has been made to solve the above-mentioned problems, and as a result of various studies by the present inventors, the content of contaminating proteins such as transferrin can be drastically reduced by highly purifying albumin. It was found that no polymer was detected even when heat treatment was carried out together with the above. That is, an object of the present invention is to provide an albumin preparation having a low polymer content and a low content of contaminating proteins, and a method for producing the same.
【0004】[0004]
【課題を解決するための手段】上記の課題を解決すべく
なされた本発明のアルブミン製剤は、加熱処理されたア
ルブミン製剤であって、当該製剤を25(w/v)%の
アルブミン溶液としたときに、 ゲル濾過分析法により測定した凝集体含量が検出限界
以下; Mancini法により測定したトランスフェリン含
量が2mg/dl以下; Mancini法により測定したα1−酸性糖蛋白質
含量が4mg/dl以下; Mancini法により測定したハプトグロビン含量
が6.5mg/dl以下; であることを特徴とする製剤であり、また血清アルブミ
ン含有水溶液をpH5.1〜5.25の条件下で陰イオ
ン交換体処理した後、pH4〜8の条件下で陽イオン交
換体処理し、次いで加熱処理することにより得られたア
ルブミン製剤である。なお、アルブミン水溶液の処理に
用いられる陰イオン交換体及び陽イオン交換体として
は、それぞれ強陰イオン交換体及び強陽イオン交換体が
好ましい。The albumin preparation of the present invention, which has been made to solve the above-mentioned problems, is a heat-treated albumin preparation, which is a 25 (w / v)% albumin solution. Sometimes, the aggregate content measured by the gel filtration analysis is below the detection limit; the transferrin content measured by the Mancini method is 2 mg / dl or less; the α 1 -acid glycoprotein content measured by the Mancini method is 4 mg / dl or less; Mancini The haptoglobin content measured by the method is 6.5 mg / dl or less; and the serum albumin-containing aqueous solution is treated with an anion exchanger under conditions of pH 5.1 to 5.25. An albumin preparation obtained by treating with a cation exchanger under conditions of pH 4 to 8 and then heating. . In addition, as an anion exchanger and a cation exchanger used for the treatment of the aqueous albumin solution, a strong anion exchanger and a strong cation exchanger are preferable, respectively.
【0005】[0005]
【発明の実施の形態】本発明にかかる製剤の主成分であ
り又出発原料であるアルブミンの由来には特に制限がな
く、具体的には哺乳動物、例えば、ヒト、ウシ、ウサギ
等に由来するものが挙げられ、特にヒト由来のものが使
用される。アルブミンを調製するための出発原料として
は、例えば、コーン氏の冷アルコール分画によって得ら
れた第V画分等が例示される。BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION The origin of albumin, which is the main component and starting material of the preparation of the present invention, is not particularly limited, and specifically originates from mammals such as humans, cows, rabbits and the like. And particularly those derived from humans. As a starting material for preparing albumin, for example, fraction V obtained by cold alcohol fractionation by Kohn, etc. is exemplified.
【0006】本発明のアルブミン製剤は、上記の血清ア
ルブミンを適当な精製水に溶解したアルブミン含有水溶
液を陰イオン交換体処理した後、陽イオン交換体処理
し、次いで加熱処理することにより得られる。上記の陰
イオン交換体及び陽イオン交換体による処理により、さ
まざまな等電点を持つ夾雑蛋白質が除去されたアルブミ
ン水溶液が得られる。そして、かかる精製アルブミン水
溶液を加熱処理するので、夾雑蛋白質に起因するポリマ
ー化を抑制することができ、ポリマー含量及び夾雑蛋白
質含量が少なく且つ混入が危惧されるウイルスが不活化
されたアルブミン製剤が得られる。The albumin preparation of the present invention can be obtained by treating an albumin-containing aqueous solution obtained by dissolving the above-mentioned serum albumin in appropriate purified water with an anion exchanger, treating with a cation exchanger, and then heating. The treatment with the anion exchanger and the cation exchanger yields an aqueous albumin solution from which contaminating proteins having various isoelectric points have been removed. Then, since the purified aqueous albumin solution is subjected to a heat treatment, polymerization caused by contaminating proteins can be suppressed, and an albumin preparation in which the polymer content and the contaminating protein content are low and the virus which may be contaminated is inactivated is obtained. .
【0007】上記の工程において、アルブミン含有水溶
液中のアルブミン含量としては、通常、0.1〜30%
(W/V、特に明示のない限り以下同様)程度、好まし
くは約1〜10%に調整される。本発明においては、ま
ず、アルブミン水溶液を陰イオン交換体処理に付して精
製する。この陰イオン交換体処理により、ハプトグロビ
ン、α1−酸性糖蛋白質などのアルブミンより等電点の
低い夾雑蛋白質が除去され精製される。使用される陰イ
オン交換体としては陰イオン交換基(例えば、ジエチル
アミノエチル基等)を有する不溶性担体であればいずれ
も使用することができ、より具体的には、この分野で慣
用の陰イオン交換体、例えば、DEAE−セファロー
ス、Q−セファロース(いずれも登録商標、ファルマシ
ア社製)、DEAE−トヨパール、QAE−トヨパール
(いずれも登録商標、東ソー社製)、A200セルロフ
ァイン(登録商標、生化学工業社製)、陰イオン交換樹
脂等が例示され、夾雑蛋白質除去効率の点からしてQ−
セファロース、QAE−トヨパール等の強陰イオン交換
体を用いるのが好ましい。[0007] In the above step, the albumin content in the aqueous solution containing albumin is usually 0.1 to 30%.
(W / V, the same applies hereinafter unless otherwise specified), preferably about 1 to 10%. In the present invention, first, the albumin aqueous solution is subjected to an anion exchanger treatment and purified. By this anion exchanger treatment, contaminant proteins having a lower isoelectric point than albumin such as haptoglobin and α 1 -acid glycoprotein are removed and purified. As the anion exchanger to be used, any insoluble carrier having an anion exchange group (for example, diethylaminoethyl group or the like) can be used, and more specifically, an anion exchange agent commonly used in this field is used. Body, for example, DEAE-Sepharose, Q-Sepharose (both are registered trademarks, manufactured by Pharmacia), DEAE-Toyopearl, QAE-Toyopearl (both are registered trademarks, manufactured by Tosoh Corporation), A200 Cellulofine (registered trademark, Seikagaku Corporation) Co., Ltd.), anion exchange resin, etc., from the viewpoint of the efficiency of removing contaminating proteins.
It is preferable to use a strong anion exchanger such as Sepharose and QAE-Toyopearl.
【0008】上記の陰イオン交換体を用いる処理は、ア
ルブミン水溶液を陰イオン交換体と接触させることによ
り行われ、陰イオン交換体の使用量はアルブミン含有水
溶液中の夾雑蛋白質含量、陰イオン交換体の交換能等に
より適宜調整されるが、アルブミン1g当り、陰イオン
交換体0.1〜5ml、通常3ml程度使用される。本
方法はカラム法、バッチ法のいずれの方法にて行っても
よいが、夾雑蛋白質の除去効率の面からカラム法にて行
うのが好ましい。The above treatment using an anion exchanger is carried out by bringing an aqueous albumin solution into contact with an anion exchanger. The amount of the anion exchanger used is determined by the content of contaminating proteins in the aqueous solution containing albumin, the amount of the anion exchanger, The anion exchanger is used in an amount of 0.1 to 5 ml, usually about 3 ml, per gram of albumin. This method may be carried out by either a column method or a batch method, but is preferably carried out by a column method from the viewpoint of the efficiency of removing contaminating proteins.
【0009】カラム法にて行う場合、前記のアルブミン
水溶液をpH3〜6程度、好ましくはpH5.1〜5.
25、塩濃度としては0.001〜0.2Mの塩化ナト
リウム程度、好ましくは0.001〜0.05Mに調整
し、緩衝液[例えば、0.02M酢酸ナトリウム(pH
5.1)]で平衡化した陰イオン交換体カラムを通過さ
せ、次いで同緩衝液で展開して非吸着分を回収すること
により行われる。上記の操作はアルブミンの変性を抑制
するため、低温(通常、10℃以下)にて行うのが好ま
しい。In the case of carrying out by the column method, the above-mentioned aqueous solution of albumin is pH 3-6, preferably pH 5.1-5.
25. The salt concentration is adjusted to about 0.001 to 0.2 M sodium chloride, preferably 0.001 to 0.05 M, and the buffer [for example, 0.02 M sodium acetate (pH
5.1)], and then pass through the anion exchanger column equilibrated in [1], and then develop with the same buffer solution to collect non-adsorbed components. The above operation is preferably performed at a low temperature (usually 10 ° C. or lower) in order to suppress denaturation of albumin.
【0010】また、バッチ法にて行う場合、上記条件に
調整したアルブミン水溶液に、陰イオン交換体を添加し
て接触させ、10℃以下にて、30分〜2時間程度混和
した後、遠心分離等の手段により陰イオン交換体と分離
し、上清を回収することにより行われる。When the batch method is used, an anion exchanger is added to and brought into contact with an aqueous albumin solution adjusted to the above conditions, mixed at 10 ° C. or less for about 30 minutes to 2 hours, and then centrifuged. This is performed by separating from the anion exchanger by such means as above, and collecting the supernatant.
【0011】上記の陰イオン交換体処理により精製され
たアルブミン水溶液は、必要に応じて、pH調整、濃度
調整等がされた後、陽イオン交換体処理に付してさらに
精製する。この陽イオン交換体処理により、アルブミン
などよりも高pHに等電点のあるトランスフェリンなど
の夾雑蛋白質が除去されて精製される。使用される陽イ
オン交換体としては陽イオン交換基(例えば、スルホ
基、カルボキシル基等)を有する不溶性担体であればい
ずれも使用することができ、より具体的には、この分野
で慣用の陽イオン交換体、例えば、SP−セファデック
ス(登録商標、ファルマシア社製)、SP−トヨパー
ル、TSKgelSP−5PW(いずれも登録商標、東
ソー社製)等が例示され、夾雑蛋白質除去効率の点から
してSP−セファデックス、SP−トヨパール等の強陽
イオン交換体を用いるのが好ましい。The aqueous albumin solution purified by the above-described anion exchanger treatment is subjected to a cation exchanger treatment after further pH adjustment, concentration adjustment and the like, if necessary. By this cation exchanger treatment, contaminant proteins such as transferrin having an isoelectric point at a higher pH than albumin or the like are removed and purified. As the cation exchanger to be used, any insoluble carrier having a cation exchange group (for example, sulfo group, carboxyl group, etc.) can be used, and more specifically, a cation exchanger commonly used in this field is used. Examples of the ion exchanger include SP-Sephadex (registered trademark, manufactured by Pharmacia), SP-Toyopearl, and TSKgelSP-5PW (all are registered trademarks, manufactured by Tosoh Corporation). It is preferable to use a strong cation exchanger such as SP-Sephadex and SP-Toyopearl.
【0012】上記の陽イオン交換体を用いる処理は、前
記陰イオン交換体処理により精製されたアルブミン水溶
液を陽イオン交換体と接触させることにより行われる。
陽イオン交換体の使用量はアルブミン水溶液中の夾雑蛋
白質含量、陽イオン交換体の交換能等により適宜調整さ
れるが、アルブミン1g当り、陽イオン交換体0.1〜
5ml,通常2ml程度使用される。本方法はカラム
法、バッチ法のいずれの方法にて行ってもよいが、夾雑
蛋白質の除去効率の面からカラム法にて行うのが好まし
い。The treatment using the cation exchanger is performed by bringing the aqueous albumin solution purified by the anion exchanger treatment into contact with a cation exchanger.
The amount of the cation exchanger used is appropriately adjusted depending on the content of contaminating proteins in the aqueous albumin solution, the exchange capacity of the cation exchanger, and the like.
5 ml, usually about 2 ml, is used. This method may be carried out by either a column method or a batch method, but is preferably carried out by a column method from the viewpoint of the efficiency of removing contaminating proteins.
【0013】カラム法にて行う場合、前記のアルブミン
水溶液をpH4〜8程度、好ましくはpH4.5〜6.
5、より好ましくはpH5.25〜5.5、塩濃度とし
ては0.001〜0.2Mの塩化ナトリウム程度、好ま
しくは0.001〜0.05Mに調整し、緩衝液[例え
ば、0.02M酢酸ナトリウム(pH5.5)]で平衡
化した陽イオン交換体カラムを通過させ、次いで同緩衝
液で展開して非吸着分を回収することにより行われる。
上記の操作はアルブミンの変性を抑制するため、低温
(通常、10℃以下)にて行うのが好ましい。In the case of carrying out by the column method, the above-mentioned aqueous solution of albumin is pH 4 to about 8, preferably pH 4.5 to 6.
5. More preferably, the pH is adjusted to about 5.25 to 5.5, and the salt concentration is adjusted to about 0.001 to 0.2 M sodium chloride, preferably to about 0.001 to 0.05 M, and the buffer solution [for example, 0.02 M Sodium acetate (pH 5.5)], and then pass through a cation exchanger column, and then develop with the same buffer to collect non-adsorbed components.
The above operation is preferably performed at a low temperature (usually 10 ° C. or lower) in order to suppress denaturation of albumin.
【0014】また、バッチ法にて行う場合、上記条件に
調整したアルブミン水溶液に、陽イオン交換体を添加し
て接触させ、10℃以下にて、30分〜2時間程度混和
した後、遠心分離等の手段により陽イオン交換体と分離
し、上清を回収することにより行われる。When the batch method is used, a cation exchanger is added to and contacted with an aqueous albumin solution adjusted to the above conditions, mixed at 10 ° C. or less for about 30 minutes to 2 hours, and then centrifuged. This is performed by separating from the cation exchanger by such means as above, and collecting the supernatant.
【0015】かかる陰イオン交換体処理及び陽イオン交
換体処理により精製されたアルブミン水溶液中に含まれ
る夾雑蛋白質量は、ハプトグロビン、トランスフェリン
及びα1−酸性糖蛋白質が検出限界以下である。The amount of contaminating proteins contained in the aqueous albumin solution purified by the anion exchanger treatment and the cation exchanger treatment is below the detection limit of haptoglobin, transferrin and α 1 -acid glycoprotein.
【0016】上記の陰イオン交換体処理及び陽イオン交
換体処理により夾雑蛋白質含量が低減されたアルブミン
水溶液は適当な濃度に調整し、例えば、バイアルに充填
するなど所望の製剤形態に製剤化された後、加熱処理さ
れて本発明のアルブミン製剤が得られる。上記の加熱処
理はアルブミン製剤中に混入するおそれのあるウイルス
を不活化するもので、アルブミン濃度5〜30%程度、
通常5又は20〜25%程度に調整した水溶液として行
われ、加熱温度としては、夾雑ウイルスを不活化するに
十分な温度及び時間行えばよく、例えば、50〜70
℃、好ましくは約60℃で、5〜20時間、好ましくは
約10時間行われる。なお、上記の加熱処理に際して
は、必要に応じてアルブミンの安定化剤、例えばN−ア
セチルトリプトファンナトリウム、カプリル酸ナトリウ
ム等を単独で又は混合して添加してもよい。これらアル
ブミンの安定化剤は、製剤中に含有されるアルブミン1
g当り20〜60mg、好ましくは40mg程度使用さ
れる。The aqueous albumin solution in which the content of contaminating proteins has been reduced by the above-mentioned anion exchanger treatment and cation exchanger treatment was adjusted to an appropriate concentration, and was formulated into a desired formulation such as filling in a vial. Thereafter, heat treatment is performed to obtain the albumin preparation of the present invention. The above-mentioned heat treatment inactivates a virus that may be mixed into the albumin preparation, and has an albumin concentration of about 5 to 30%.
Usually, it is performed as an aqueous solution adjusted to about 5 or 20 to 25%, and the heating temperature may be a temperature and time sufficient to inactivate contaminating viruses.
C., preferably at about 60.degree. C., for 5 to 20 hours, preferably for about 10 hours. In the above heat treatment, a stabilizer for albumin, for example, sodium N-acetyltryptophan, sodium caprylate, or the like may be added alone or in combination, if necessary. These albumin stabilizers include albumin 1 contained in the preparation.
It is used in an amount of 20 to 60 mg, preferably about 40 mg per g.
【0017】かくして得られたアルブミン製剤は、ゲル
濾過分析法により測定したポリマー含量が検出限界以下
であり、Mancini法により測定したトランスフェ
リン含量、α1−酸性糖蛋白質含量及びハプトグロビン
含量も検出限界以下である。本発明のアルブミン製剤
は、従来のアルブミン製剤と同様な用量、用法にて使用
される。The albumin preparation thus obtained has a polymer content measured by gel filtration analysis below the detection limit, and the transferrin content, α 1 -acid glycoprotein content and haptoglobin content measured by the Mancini method are below the detection limit. is there. The albumin preparation of the present invention is used in the same dosage and usage as the conventional albumin preparation.
【0018】[0018]
【発明の効果】本発明のアルブミン製剤は、加熱処理に
よりウイルスが不活化されていると共にポリマー含量及
びトランスフェリン等の夾雑蛋白質含量が極めて少な
く、安全性、安定性等に優れた製剤である。The albumin preparation of the present invention is a preparation which is excellent in safety, stability and the like, in which the virus is inactivated by heat treatment, the content of the polymer and the content of contaminating proteins such as transferrin are extremely small.
【0019】[0019]
【実施例】以下、本発明をより詳細に説明するため、実
施例を挙げるが、本発明はこれらの実施例によってなん
ら限定されるものではない。 実施例1 (1)アルブミン水溶液の調製 コーン氏の冷アルコール分画によって得られた第V画分
ペースト(500g)を冷無菌蒸留水2.0Lに溶解
し、酢酸を用いてpHを4.6に調整した後、約1時間
攪拌した。次いで、約−2℃にて濾過(フィルター:
0.45μm)し、さらに冷無菌蒸溜水2.0 Lを加
え、1N水酸化ナトリウムでpH5.1に調整し、アル
ブミン水溶液を得た。EXAMPLES Hereinafter, the present invention will be described in more detail with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples. Example 1 (1) Preparation of Albumin Aqueous Solution A paste of fraction V (500 g) obtained by Kohn's cold alcohol fractionation was dissolved in 2.0 L of cold sterile distilled water, and the pH was adjusted to 4.6 with acetic acid. , And stirred for about 1 hour. Then, filtration at about -2 ° C (filter:
0.45 μm), and 2.0 L of cold aseptic distilled water was added, and the pH was adjusted to 5.1 with 1N sodium hydroxide to obtain an albumin aqueous solution.
【0020】(2)陰イオン交換体処理 QAE−トヨパール(580ml)をカラム(直径5c
m×長さ18cm)に充填し、0.5M塩化ナトリウム
で十分に洗浄した後、0.02M酢酸ナトリウム(pH
5.1)で平衡化し、陰イオン交換体カラムを作製し
た。このカラムに上記(1)のアルブミン水溶液を通
し、さらに冷0.02M酢酸ナトリウム(pH5.1、
2 L)で洗浄した。通過液と洗浄液とを合わせ、0.
8M炭酸水素ナトリウムにてpHを5.5に調整した。(2) Anion exchanger treatment QAE-Toyopearl (580 ml) was applied to a column (diameter 5c).
mx 18 cm in length), washed thoroughly with 0.5 M sodium chloride, and then 0.02 M sodium acetate (pH
Equilibration was performed in 5.1) to prepare an anion exchanger column. The albumin aqueous solution of the above (1) was passed through the column, and further cooled 0.02 M sodium acetate (pH 5.1,
2 L). Combine the passing solution and the washing solution,
The pH was adjusted to 5.5 with 8M sodium bicarbonate.
【0021】(3)陽イオン交換体処理 SP−トヨパール(400ml)をカラムに充填し、
0.5M塩化ナトリウムで十分に洗浄した後、0.02
M酢酸ナトリウム(pH5.5)で平衡化し、陽イオン
交換体カラムを作製した。このカラムに上記(2)で得
られたアルブミン水溶液を通し、さらに0.02M酢酸
ナトリウム(pH5.5、1.2 L)で洗浄した。通
過液と洗浄液とを合わせた後、ペリコンにて透析・濃縮
し、A280=149(アルブミン濃度:28%)とな
るように調製した。(3) Cation exchanger treatment SP-Toyopearl (400 ml) was packed in a column,
After thoroughly washing with 0.5 M sodium chloride, 0.02
Equilibrated with M sodium acetate (pH 5.5) to prepare a cation exchanger column. The aqueous albumin solution obtained in the above (2) was passed through this column, and the column was further washed with 0.02 M sodium acetate (pH 5.5, 1.2 L). After the flow-through solution and the washing solution were combined, the solution was dialyzed and concentrated with Pellicon to prepare A 280 = 149 (albumin concentration: 28%).
【0022】(4)加熱処理 上記(3)で得られたアルブミン水溶液に、該水溶液1
0ml当り1.2mlの安定化剤溶液(100ml中、
N−アセチルトリプトファン5.55g及びカプリル酸
ナトリウム3.89g含有)を添加し、1N水酸化ナト
リウムにてpHを6.85に調整した後、除菌濾過し
た。次いで、アルブミン濃度が25%となるように調整
した後、所定量をバイアルに分注し、60℃にて10時
間加熱処理してアルブミン製剤を得た。(4) Heat treatment The aqueous albumin solution obtained in the above (3) is added to the aqueous solution 1
1.2 ml of stabilizer solution per 0 ml (in 100 ml,
5.55 g of N-acetyltryptophan and 3.89 g of sodium caprylate) were added, and the pH was adjusted to 6.85 with 1N sodium hydroxide. Next, after adjusting the albumin concentration to 25%, a predetermined amount was dispensed into vials and heat-treated at 60 ° C. for 10 hours to obtain an albumin preparation.
【0023】得られた本発明製剤中のポリマー含量をゲ
ル濾過分析法により測定したところポリマーは検出され
なかった。なお、比較として、SP−トヨパールカラム
処理工程を除外した以外は上記製法と実質的に同様にし
て調製したアルブミン製剤(以下、比較製剤という)の
ポリマー含量は、アルブミン含量に対して2.49重量
%であり、本発明のアルブミン製剤のポリマー含量は著
しく低いものであった。なお、ゲル濾過分析は下記の条
件にて行った。When the polymer content in the obtained preparation of the present invention was measured by gel filtration analysis, no polymer was detected. For comparison, the polymer content of an albumin preparation (hereinafter referred to as a comparative preparation) prepared in substantially the same manner as in the above-mentioned production method except that the SP-Toyopearl column treatment step was excluded was 2.49 with respect to the albumin content. % By weight, and the polymer content of the albumin preparation of the present invention was remarkably low. The gel filtration analysis was performed under the following conditions.
【0024】サンプル:本発明製剤及び比較製剤を、
下記の緩衝液で50倍に希釈し、濾過(フィルター:
0.45μm)した溶液を20μl注入した。 カラム:TSKgelG3000SW(東ソー社製)
を充填したカラム(直径7.8mm×長さ30cm)を
使用した。 緩衝液:0.1MKH2PO4/0.3MNaCl
(pH6.9) 流速:1ml/分 検出波長;λ=280nm 装置;ウォーターズHPLCシステムSample: The preparation of the present invention and the comparative preparation were
Dilute 50-fold with the following buffer, and filter (filter:
20 μl of the solution (0.45 μm) was injected. Column: TSKgelG3000SW (Tosoh Corporation)
Was used (diameter 7.8 mm × length 30 cm). Buffer: 0.1 M KH 2 PO 4 /0.3 M NaCl
(PH 6.9) Flow rate: 1 ml / min Detection wavelength; λ = 280 nm Apparatus; Waters HPLC system
【0025】また、得られた本発明製剤及び比較製剤中
のα1−酸性糖蛋白質(α1−AG)、ハプトグロビン
(Hp)及びトランスフェリン(Tf)含量の測定を行
い、その結果を表1に示す。なお、夾雑蛋白質含量の測
定は一元免疫拡散法(Mancini法:Mancin
i G.ら、Immunochemistry,第2
巻、第3号、第235−254頁、1965年)により
行った。この際、用いた抗α1−酸性糖蛋白質血清、抗
ハプトグロビン血清及び抗トランスフェリン血清は、ウ
サギを免疫動物として常法により調製したものである。
これらの抗血清より作製した一元免疫拡散用ゲルを用
い、それぞれに対応する夾雑蛋白質に対する沈降輪面積
の標準曲線を図1〜図3に示す。表1に示されるよう
に、本発明のアルブミン製剤はα1−AG,Hp及びT
fがいずれも検出限界以下であり、夾雑蛋白質含量の極
めて少ないものであることが判明した。なお、図1〜図
3から明らかなように、α1−AGの検出限界は4mg
/dlであり、Hpの検出限界は6.5mg/dlであ
り、Tfの検出限界は2mg/dlである。Further, alpha 1 in the present invention the formulation obtained and Comparative Composition - acid glycoprotein (alpha 1 -AG), performed haptoglobin (Hp) and the measurement of transferrin (Tf) content, the results are given in Table 1 Show. The contaminant protein content was measured by a one-way immunodiffusion method (Mancini method: Mancini method).
iG. Et al., Immunochemistry, 2nd.
Vol. 3, No. 3, pp. 235-254, 1965). In this case, the anti-α 1 -acid glycoprotein serum, anti-haptoglobin serum and anti-transferrin serum used were prepared by a conventional method using rabbits as immunized animals.
Using a one-piece immunodiffusion gel prepared from these antisera, a standard curve of the area of the settling ring for each corresponding contaminating protein is shown in FIGS. As shown in Table 1, the albumin preparation of the present invention contains α 1 -AG, Hp and Tp.
f was below the detection limit, indicating that the content of contaminating proteins was extremely low. 1 to 3, the detection limit of α 1 -AG is 4 mg.
/ Dl, the detection limit for Hp is 6.5 mg / dl, and the detection limit for Tf is 2 mg / dl.
【0026】[0026]
【表1】 上記表1中、<DLは検出限界以下を示す。[Table 1] In the above Table 1, <DL indicates below the detection limit.
【0027】実施例2 実施例1において、(2)の陰イオン交換体処理工程で
の0.8M炭酸水素ナトリウムによるpH調整をpH
5.25とすると共に(3)の陽イオン交換体処理工程
のpH調整を5.25とする以外は、実施例1と同様に
して、アルブミン製剤を調製した。得られたアルブミン
製剤について、実施例1と同様な方法でポリマー含量及
び夾雑蛋白質含量を測定した。その結果、ポリマーは検
出限界以下であり、またHp、α1−AG及びTf含量
も検出限界以下であった。Example 2 In Example 1, the pH was adjusted with 0.8 M sodium bicarbonate in the anion exchanger treatment step (2).
An albumin preparation was prepared in the same manner as in Example 1 except that the pH was adjusted to 5.25 and the pH of the cation exchanger treatment step (3) was adjusted to 5.25. About the obtained albumin preparation, the polymer content and the contaminating protein content were measured in the same manner as in Example 1. As a result, the polymer was below the detection limit, and the Hp, α 1 -AG and Tf contents were below the detection limit.
【図1】α1−酸性糖蛋白質に対する一元免疫拡散法に
よる標準曲線を示すグラフである。FIG. 1 is a graph showing a standard curve obtained by a one-way immunodiffusion method for α 1 -acid glycoprotein.
【図2】ハプトグロビンに対する一元免疫拡散法による
標準曲線を示すグラフである。FIG. 2 is a graph showing a standard curve obtained by a one-way immunodiffusion method for haptoglobin.
【図3】トランスフェリンに対する一元免疫拡散法によ
る標準曲線を示すグラフである。FIG. 3 is a graph showing a standard curve obtained by a one-way immunodiffusion method for transferrin.
─────────────────────────────────────────────────────
────────────────────────────────────────────────── ───
【手続補正書】[Procedure amendment]
【提出日】平成11年2月10日[Submission date] February 10, 1999
【手続補正1】[Procedure amendment 1]
【補正対象書類名】明細書[Document name to be amended] Statement
【補正対象項目名】0009[Correction target item name] 0009
【補正方法】変更[Correction method] Change
【補正内容】[Correction contents]
【0009】カラム法にて行う場合、前記のアルブミン
水溶液をpH3〜6程度、好ましくはpH4.5〜5.
5、より好ましくはpH5.1〜5.25、塩濃度とし
ては0.001〜0.2Mの塩化ナトリウム程度、好ましくは0.
001〜0.05Mに調整し、緩衝液[例えば、0.02M酢酸ナ
トリウム(pH5.1)]で平衡化した陰イオン交換体
カラムを通過させ、次いで同緩衝液で展開して非吸着分
を回収することにより行われる。上記の操作はアルブミ
ンの変性を抑制するため、低温(通常、10℃以下)に
て行うのが好ましい。In the case of carrying out by the column method, the above-mentioned aqueous albumin solution is pH 3-6, preferably pH 4.5-5.
5, more preferably about pH 5.1 to 5.25, and a salt concentration of about 0.001 to 0.2 M sodium chloride, preferably about 0.1 to 0.2 M.
The solution is adjusted to 001 to 0.05M, passed through an anion exchanger column equilibrated with a buffer [for example, 0.02M sodium acetate (pH 5.1)], and then developed with the same buffer to collect non-adsorbed components. This is done by: The above operation is preferably performed at a low temperature (usually 10 ° C. or lower) in order to suppress denaturation of albumin.
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 冨岡 新二 大阪府高槻市大塚町4−12−1 吉富製薬 株式会社淀川工場内 (72)発明者 横山 和正 大阪府豊中市寺内2−7−2 ──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on front page (72) Inventor Shinji Tomioka 4-12-1 Otsukacho, Takatsuki-shi, Osaka Yoshitomi Pharmaceutical Yodogawa Plant Co., Ltd. (72) Inventor Kazumasa Yokoyama 2-7-2, Terauchi, Toyonaka-shi, Osaka
Claims (2)
て、当該製剤を25(w/v)%のアルブミン溶液とし
たときに、 ゲル濾過分析法により測定した凝集体含量が検出限界
以下; Mancini法により測定したトランスフェリン含
量が2mg/dl以下; Mancini法により測定したα1−酸性糖蛋白質
含量が4mg/dl以下; Mancini法により測定したハプトグロビン含量
が6.5mg/dl以下; であることを特徴とするアルブミン製剤。1. In a heat-treated albumin preparation, when the preparation is a 25% (w / v)% albumin solution, the aggregate content measured by gel filtration analysis is below the detection limit; measured by the Mancini method albumin which is a; acidic glycoprotein content 4 mg / dl or less - Mancini method was measured by alpha 1; that; haptoglobin content determined by Mancini method 6.5 mg / dl or less transferrin content of 2 mg / dl or less was Formulation.
〜5.25の条件下で陰イオン交換体処理した後、pH
4〜8の条件下で陽イオン交換体処理し、次いで加熱処
理することにより得られる請求項1記載のアルブミン製
剤。2. An aqueous solution containing serum albumin having a pH of 5.1.
After treatment with an anion exchanger under conditions of ~ 5.25,
The albumin preparation according to claim 1, which is obtained by treating with a cation exchanger under the conditions of 4 to 8, followed by heat treatment.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP11043586A JPH11349490A (en) | 1999-01-11 | 1999-01-11 | Albumin preparation |
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Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1153137A Division JPH0768137B2 (en) | 1989-06-15 | 1989-06-15 | Albumin preparation and manufacturing method thereof |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
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JPH11349490A true JPH11349490A (en) | 1999-12-21 |
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JP11043586A Pending JPH11349490A (en) | 1999-01-11 | 1999-01-11 | Albumin preparation |
Country Status (1)
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JP (1) | JPH11349490A (en) |
-
1999
- 1999-01-11 JP JP11043586A patent/JPH11349490A/en active Pending
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