JP7422655B2 - 二重特異性抗pd-1抗tim3抗体 - Google Patents
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Description
- PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメイン、及び
- TIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメイン
を含む抗体又はその機能性部分、誘導体、及び/若しくは類似体と接触させ、それにより上記細胞でのPD-1及び/又はTIM-3媒介性活性を阻害する工程を含む方法を提供する。
- PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメイン、及び
- TIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメイン
を含む抗体又はその機能性部分、誘導体、及び/若しくは類似体を提供し、それにより上記少なくとも2つの細胞間の免疫シナプスの形成、安定性、及び/又は活性を刺激する工程を含む方法を提供する。
い。コード核酸は、生殖系核酸配列とは異なっていてもよい。
スを形成することが可能な2つのCH3ドメインを含み、上記方法は、上記細胞に、a)重鎖を含む第1のCH3ドメインをコードする第1の核酸分子、及びb)重鎖を含む第2のCH3ドメインをコードする第2の核酸分子を提供する工程を含み、上記核酸分子には、重鎖を含む上記第1及び第2のCH3ドメインの優先的対合のための手段が提供されており、上記方法は、上記宿主細胞を培養する工程、及び上記2つの核酸分子の発現を可能にする工程、及び上記二重特異性抗体を上記培養から回収する工程を更に含む方法を提供する。上記第1及び第2の核酸分子は、同じ核酸分子、ベクター、又は遺伝子送達媒体の一部であってもよく、宿主細胞ゲノムの同じ部位に組み込まれてもよい。或いは、上記第1及び第2の核酸分子は、上記細胞に別々に提供される。宿主細胞は、少なくとも1つの軽鎖、好ましくは共通軽鎖を含む。
- a)PD-1の細胞外部分に結合することができる抗原結合部位を含み、第1のCH3ドメインを含む重鎖をコードする第1の核酸分子、及びb)TIM-3の細胞外部分に結合することができる抗原結合部位を含み、第2のCH3ドメインを含む重鎖をコードする第2の核酸分子を有する細胞を準備する工程を含み、上記核酸分子には、上記第1及び第2のCH3ドメインの優先的対合のための手段が提供されており、
上記方法は、上記細胞を培養する工程、及び上記2つの核酸分子によりコードされるタンパク質の発現を可能にする工程、及び上記二重特異性IgG抗体を上記培養から回収する工程を更に含む方法を提供する。特に好ましい実施形態では、上記細胞は、共通軽鎖をコードする第3の核酸分子を更に有する。上記第1、第2、及び第3の核酸分子は、同じ核酸分子、ベクター、又は遺伝子送達媒体の一部であってもよく、宿主細胞ゲノムの同じ部位に組み込まれてもよい。或いは、上記第1、第2、及び第3の核酸分子は、上記細胞に別々に提供される。好ましい共通軽鎖は、O12に基づき、好ましくは、上記に記載のような、再編成された生殖系ヒトカッパ軽鎖IgVκ1 39*01/IGJκ1*01である。上記第1及び上記第2のCH3ドメイン優先的対合のための手段は、好ましくは、重鎖コード領域のCH3ドメインにおける対応する突然変異である。本質的に二重特異性抗体のみを産生するための好ましい突然変異は、第1のCH3ドメインにおけるアミノ酸置換L351K及びT366K(EU付番による付番)及び第2のCH3ドメインにおけるアミノ酸置換L351D及びL368Eであるか、又はその逆である(図2)。したがって、二重特異性抗体を産生するための本発明による方法であって、上記第1のCH3ドメインは、アミノ酸置換L351K及びL366K(EU付番による付番)を含み、上記第2のCH3ドメインは、アミノ酸置換L351D及びL368Eを含み、上記方法は、上記細胞を培養する工程、及び上記核酸分子によりコードされるタンパク質の発現を可能にする工程、及び上記二重特異性抗体を上記培養から回収する工程を更に含む方法が更に提供される。また、二重特異性抗体を産生するための本発明による方法であって、上記第1のCH3ドメインは、アミノ酸置換L351D及びL368E(EU付番による付番)を含み、上記第2のCH3ドメインは、アミノ酸置換L351K及びT366Kを含み、上記方法は、上記細胞を培養する工程、及び上記核酸分子の発現を可能にする工程、及び上記二重特異性抗体を上記培養から回収する工程を更に含む方法が提供される。こうした方法により産生することができる抗体も、本発明の一部である。CH3ヘテロ二量体化ドメインは、好ましくは、IgG1ヘテロ二量体化ドメインである。CH3ヘテロ二量体化ドメインを含む重鎖定常領域は、好ましくは、IgG1定常領域である。
- PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメイン、及び
- TIM-3の細胞外部分に結合することができるその可変ドメイン
を含む抗体又はその機能性部分、誘導体、及び/若しくは類似体と接触させ、それにより上記細胞でのPD-1及び/又はTIM-3媒介性活性を阻害する工程を含む方法を提供する。
- PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメイン、及び
- TIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメイン
を含む抗体又はその機能性部分、誘導体、及び/若しくは類似体を提供し、それにより上記少なくとも2つの細胞間の免疫シナプスの形成、安定性、及び/又は活性を刺激する工程を含む方法を更に提供する。抗体は、細胞膜上にPD-1又はTIM-3を含む細胞上のPD-1及び/又はTIM-3に結合することにより、免疫シナプスの形成、安定性、及び/又は活性を促進する。結合は、PD-1及び/又はTIM-3の活性を阻害する。これは、免疫シナプスの形成、安定性、及び/又は活性が刺激されるという効果を有する。PD-1に結合することができる可変ドメインは、好ましくは、PD-1とPD-L1及び/又はPD-L2、好ましくはPD-L1との結合を阻止する。TIM-3に結合することができる可変ドメインは、好ましくは、TIM-3とガレクチン-9との結合を阻止する。上記2つの細胞は、免疫シナプスを形成することが可能な細胞である。細胞の少なくとも1つは、T細胞受容体陽性細胞である。他の細胞は、典型的には、しかしながら必ずという訳ではないが、抗原提示細胞である。免疫シナプスは、T細胞と抗原提示細胞(APC)とが密接に並置される結果として形成され、T細胞受容体(TCR)が、その抗原リガンド、APC膜に存在するペプチド-MHC複合体により誘発される部位である。T細胞膜の免疫シナプスは、典型的には、膜受容体及びそれらの下層細胞骨格及びシグナル伝達タンパク質の3つの同心円を有する。内側の円、即ち中央超分子活性化クラスター(cSMAC、central supramolecular activation cluster)には、TCR及びCD28のほとんどが集中しており、インテグリンにより形成される辺縁部のSMACにより取り囲まれている。最後に、最も外側の円、即ち遠位SMAC(dSMAC)は、CD43及びCD45等の、大型細胞外ドメインを有するタンパク質が、cSMACから遠方に位置する場所である。
上記抗体又はそれらの機能性部分、誘導体、及び/若しくは類似体の第1及び第2は、
- PD-1の異なるエピトープ、
- TIM-3の異なるエピトープ、又は
- PD-1及びTIM-3の異なるエピトープ
に結合する、組成物又はキットオブパーツを更に提供する。本段落で指定されるようなPD-1及びTIM-3に結合する可変ドメインを有する2つ又はそれよりも多くの抗体又はそれらの機能性部分、誘導体、及び/若しくは類似体を含む方法、使用、組成物、又はキットオブパーツを含む実施形態は、「Oligoclonics」実施形態とも呼ばれる。そのようなOligoclonics実施形態の例は、上記第1及び第2の抗体による実施形態である。「Oligoclonics」は登録商標である。そのようなOligoclonics(登録商標)産物を製作するための基本方法は、国際公開第2013/157953号パンフレット及び国際公開第2004/009618号パンフレットに開示されており、これら文献は参照により本明細書に組み込まれる。
上記抗体又はそれらの機能性部分、誘導体、及び/若しくは類似体の第1及び第2は、
- PD-1の異なるエピトープ、
- TIM-3の異なるエピトープ、又は
- PD-1及びTIM-3の異なるエピトープ
に結合する、方法及び使用を提供する。PD-1に結合する可変ドメインによるPD-L1及び/又はPD-L1の結合阻止、及びTIM-3に結合する可変ドメインによるTIM-3とガレクチン-9との結合阻止の優先度は、Oligoclonics実施形態に記載のように、同じである。
選択及びスクリーニングのための物質の生成
細胞株の培養
フリースタイルの293F細胞(カタログ番号p/n51-0029)を、Invitrogen社から得て、293フリースタイル培地において慣習的に維持した。HEK293T(カタログ番号ATCC-CRL-11268)細胞を、ATCCから購入し、L-グルタミン(Gibco)及びFBS(Lonza社)を補充したDMEM/F12(Gibco社)において慣習的に維持し、CHO-S(カタログ番号11619-012)細胞株を、Gibcoから購入し、L-グルタミンを補充したフリースタイルのCHO発現培地(Invitrogen社)において慣習的に維持した。
クローニングのための固有の制限酵素部位及び効率的な翻訳のためのコザック共通配列を含むそれぞれの標的の全長cDNAを、合成するか、又はクローニングのための固有の制限酵素部位及び効率的な翻訳のためのコザック共通配列を導入した特異的プライマーを用いて、標的cDNAを含有する、市販の発現コンストラクト上でのPCR増幅を介して得た。それぞれの標的のcDNAを、NheI/EcoRIを介してpIRES-Neo3(Clontech社;図4)又はpVAX1(Thermo Fisher Scientific社;図5)のような真核生物の発現コンストラクトにクローニングし、それぞれ、pIRES-Neo3_[TARGET_NAME]及びpVAX1_[TARGET_NAME]を得た。挿入配列を、NCBI参照アミノ酸配列との比較により検証した。pIRES-Neo3コンストラクトを、安定な細胞株の生成及び一過性形質移入のため使用した。pVAX1コンストラクトを、免疫目的のため使用した。得られたコンストラクトの名称の概要については、TABLE 1(表3)を参照のこと。
MQIPQAPWPVVWAVLQLGWRPGWFLDSPDRPWNPPTFSPALLVVTEGDNATFTCSFSNTSESFVLNWYRMSPSNQTDKLAAFPEDRSQPGQDCRFRVTQLPNGRDFHMSVVRARRNDSGTYLCGAISLAPKAQIKESLRAELRVTERRAEVPTAHPSPSPRPAGQFQTLVVGVVGGLLGSLVLLVWVLAVICSRAARGTIGARRTGQPLKEDPSAVPVFSVDYGELDFQWREKTPEPPVPCVPEQTEYATIVFPSGMGTSSPARRGSADGPRSAQPLRPEDGHCSWPL
その内:
MQIPQAPWPVVWAVLQLGWR:シグナルペプチド。
PGWFLDSPDRPWNPPTFSPALLVVTEGDNATFTCSFSNTSESFVLNWYRMSPSNQTDKLAAFPEDRSQPGQDCRFRVTQLPNGRDFHMSVVRARRNDSGTYLCGAISLAPKAQIKESLRAELRVTERRAEVPTAHPSPSPRPAGQFQTLV:huPD-1のECD。
VGVVGGLLGSLVLLVWVLAVI:予想TM領域。
CSRAARGTIGARRTGQPLKEDPSAVPVFSVDYGELDFQWREKTPEPPVPCVPEQTEYATIVFPSGMGTSSPARRGSADGPRSAQPLRPEDGHCSWPL:細胞内尾部。
MQIPQAPWPVVWAVLQLGWRPGWFLESPDRPWNAPTFSPALLLVTEGDNATFTCSFSNASESFVLNWYRMSPSNQTDKLAAFPEDRSQPGQDCRFRVTRLPNGRDFHMSVVRARRNDSGTYLCGAISLAPKAQIKESLRAELRVTERRAEVPTAHPSPSPRPAGQFQALVVGVVGGLLGSLVLLVWVLAVICSRAAQGTIEARRTGQPLKEDPSAVPVFSVDYGELDFQWREKTPEPPAPCVPEQTEYATIVFPSGLGTSSPARRGSADGPRSPRPLRPEDGHCSWPL
その内:
MQIPQAPWPVVWAVLQLGWR:シグナルペプチド。
PGWFLESPDRPWNAPTFSPALLLVTEGDNATFTCSFSNASESFVLNWYRMSPSNQTDKLAAFPEDRSQPGQDCRFRVTRLPNGRDFHMSVVRARRNDSGTYLCGAISLAPKAQIKESLRAELRVTERRAEVPTAHPSPSPRPAGQFQALV:maPD-1のECD。
VGVVGGLLGSLVLLVWVLAVI:予想TM領域。
CSRAAQGTIEARRTGQPLKEDPSAVPVFSVDYGELDFQWREKTPEPPAPCVPEQTEYATIVFPSGLGTSSPARRGSADGPRSPRPLRPEDGHCSWPL:細胞内尾部。
MFSHLPFDCVLLLLLLLLTRSSEVEYRAEVGQNAYLPCFYTPAAPGNLVPVCWGKGACPVFECGNVVLRTDERDVNYWTSRYWLNGDFRKGDVSLTIENVTLADSGIYCCRIQIPGIMNDEKFNLKLVIKPAKVTPAPTLQRDFTAAFPRMLTTRGHGPAETQTLGSLPDINLTQISTLANELRDSRLANDLRDSGATIRIGIYIGAGICAGLALALIFGALIFKWYSHSKEKIQNLSLISLANLPPSGLANAVAEGIRSEENIYTIEENVYEVEEPNEYYCYVSSRQQPSQPLGCRFAMP
その内:
MFSHLPFDCVLLLLLLLLTRS:シグナルペプチド。
SEVEYRAEVGQNAYLPCFYTPAAPGNLVPVCWGKGACPVFECGNVVLRTDERDVNYWTSRYWLNGDFRKGDVSLTIENVTLADSGIYCCRIQIPGIMNDEKFNLKLVIKPAKVTPAPTLQRDFTAAFPRMLTTRGHGPAETQTLGSLPDINLTQISTLANELRDSRLANDLRDSGATIRIG:ECD。
IYIGAGICAGLALALIFGALI:予想TM領域。
FKWYSHSKEKIQNLSLISLANLPPSGLANAVAEGIRSEENIYTIEENVYEVEEPNEYYCYVSSRQQPSQPLGCRFAMP:細胞内尾部。
MFSHLPFDCVLLLLLLLLTRSSEVEYIAEVGQNAYLPCSYTPAPPGNLVPVCWGKGACPVFDCSNVVLRTDNRDVNDRTSGRYWLKGDFHKGDVSLTIENVTLADSGVYCCRIQIPGIMDEKHNVKLVVIKPAKVTPAPTLQRDLTSAFPRMLTTGEHGPAETQTPGSLPDVNLTVSNFFCELQIFTLTNELRDSGATIRTAIYIAAGISAGLALALIFGALIFKWYSHSKEKTQNLSLISLANIPPSGLANAVAEGIRSEENIYTIEEDVYEVEEPNEYYCYVSSGQQPSQPLGCRVAMP
その内:
MFSHLPFDCVLLLLLLLLTRS:シグナルペプチド。
SEVEYIAEVGQNAYLPCSYTPAPPGNLVPVCWGKGACPVFDCSNVVLRTDNRDVNDRTSGRYWLKGDFHKGDVSLTIENVTLADSGVYCCRIQIPGIMDEKHNVKLVVIKPAKVTPAPTLQRDLTSAFPRMLTTGEHGPAETQTPGSLPDVNLTVSNFFCELQIFTLTNELRDSGATIRTA:ECD。
IYIAAGISAGLALALIFGALI:予想TM領域。
FKWYSHSKEKTQNLSLISLANIPPSGLANAVAEGIRSEENIYTIEEDVYEVEEPNEYYCYVSSGQQPSQPLGCRVAMP:細胞内尾部。
pIRES-Neo3_[TARGET_NAME]発現コンストラクト(TABLE 1(表3))を使用して、それぞれのタンパク質を安定的に発現するCHO-S又はフリースタイル293Fクローンを作製した。コンストラクトを、リポフェクタミントランスフェクションを使用して、CHO-S及びフリースタイル293F細胞において一過性に遺伝子導入し、それぞれのタンパク質との抗体反応を使用したFACSによりスクリーニングした。発現の確認後、一過性に遺伝子導入した細胞を、限界希釈において播種し、使用した発現コンストラクトに関連する選択圧下で培養して、安定な細胞クローンを得た。選択の2~3週間後、クローンを、FACSによりスクリーニングした。選択したクローンを、連続継代により拡大し、FACSにおいて再試験し、-150℃まで凍結させた。異種性タンパク質を安定的に発現するクローンの名称は、CHO-S_[標的_名称]細胞又はフリースタイル293F_[標的_名称]細胞である。安定な細胞株を作製するために使用したコンストラクト及びそれらの得られた名称の概要については、TABLE 1(表3)を参照のこと。
免疫化、選択及びスクリーニング
免疫化に使用したマウス
huPD-1及びhuTIM-3へのヒト抗体結合の生成のため、ヒトVK1-39軽鎖(共通軽鎖マウス、国際公開第2009/157771号パンフレットを参照)及びヒト重鎖(HC)小型遺伝子座(ヒトV遺伝子セグメント、全てのヒトD及び全てのヒトJの選択を含む)についての遺伝子導入マウスを、以下で簡単に記載する通り、免疫した。こうしたマウスは、「MeMo(登録商標)」マウスと呼ばれる。下記に手短かに記載されているように、組換えタンパク質抗原又はタンパク質抗原をコードするDNAのいずれかで、マウスを免疫した。
「MeMo(登録商標)」マウスを、組換えタンパク質及びGerbuアジュバントMM(Gerbu Biotechnik社;カタログ番号3001)を用いた皮下注射により免疫した。組換えhuPD-1-Fc(R&D社;カタログ番号1086-PD、huTIM-3-Fc(R&D社;カタログ番号2365-TM)、及びmaTIM-3-Fc(R&D社;カタログ番号7914-TM)を、免疫のため使用した。マウスを、総体積100μlにおいてアジュバント40μlと混合したPBS中の組換えタンパク質40μgを用いて免疫した。続いて、マウスを、14及び28日目に、総体積50μlにおいてアジュバント20μlと一緒にPBS中の組換えタンパク質20μgを用いてブーストした。マウス血清を、35日目に回収して、血清タイターを決定した。ヒト及び/又はマカク標的に対して低血清反応性を示したマウスは、組換えヒト又はマカクタンパク質抗原による追加免疫及び血清分析の追加サイクルを受けた。それぞれの解析は、PBS 50μl中の組換えタンパク質20μgを使用した2回の週1回の免疫、続いて、1週間後、タイター解析のための血清収集からなっていた。ヒト及びマカク標的に対して高い血清タイターを示すマウスは、連続する3日間、PBS 50μl中の組換えタンパク質20μgを用いた毎日の注射からなる最終ブースト免疫を受けた。最後の注射の1日後、マウスリンパ組織を回収した。
MeMo(登録商標)マウスを、マイクロ色素沈着装置を使用したDNA刺青により、免疫した。DNA刺青免疫を、標的抗原(pVAX1_[標的_名称]、Table 1(表1))をコードするプラスミドDNA 20μgを用いて行った。マウスを、ヒト標的をコードするDNAを用いて免疫した。マウスを、0、3、6、14、17、28及び31日目に免疫した。マウス血清を35日目に回収して、血清タイターを決定した。ヒト及び/又はマカク標的に対して低血清反応性を示したマウスは、ヒトDNA抗原による追加免疫及び血清分析の追加サイクルを受けた。それぞれのサイクルは、2回の週1回のDNA免疫、続いて、1週間後、タイター解析のための血清収集からなっていた。ヒト及びマカク標的を発現する細胞に対する強力な血清反応性を示すマウスは、最後のブースト免疫化、続いて、3日間後、リンパ組織の収集を受けた。
血清タイターを、ヒト及びマカク標的抗原を発現する細胞株を使用したFACS解析により決定した。
天然レパートリー及び標準的配列多様性での高頻度使用について選択された生殖系ヒトVH遺伝子のレパートリーに基づき、合成ライブラリーを構築した。PCRを使用して、合成HCDR3領域をこうしたVH遺伝子に付加した。これは、VH遺伝子のフレームワーク1にアニーリングし、クローニング用のSfI制限部位を含むフォワードプライマーを使用して実施した。リバースプライマーは、VH遺伝子のフレームワーク3にアニーリングする配列、その後にHCDR3多様性をコードするランダム化配列、及びクローニング用のBstEII及びXhoI制限部位を更に含む配列をコードするフレームワーク4を含んでいた。合成CDR3領域は、完全にランダムであったか、又はHCDR3内のある位置におけるアミノ酸残基の使用頻度に基づき、より限定された多様性をコードしていたかのいずれかであった。VH遺伝子をコードするPCR産物を、前述の制限酵素を使用して、ファージM13遺伝子3タンパク質が融合されており、共通軽鎖をコードする遺伝子を更に含むファージディスプレイベクターにクローニングした。E'coli TG1の大規模ライゲーション及び形質転換は、ファージに提示された合成Fab断片の大型ライブラリーをもたらした。それらを、抗原又は細胞のパニングに使用して、抗原特異的Fab断片を特定した。
脾臓及び流入リンパ節を、有意な液性応答をそれぞれの標的タンパク質に対して観察したマウスから取り除いた。
作製したファージFabライブラリーを使用して、直接コーティングした組換えタンパク質上のファージディスプレイを使用して標的特異的Fabを選択した。PD-1について、huPD-1-Fc(R&D者;カタログ番号1086-PD)及びhuPD-1ビオチン(BPS bioscience社;カタログ番号71109)を使用した。TIM-3には、huTIM-3-His(CreativeBiomart社;カタログ番号HAVCR2-3166H)、huTIM-3-Fc(R&D社;カタログ番号2365-TM)、及びmaTIM-3-Fc(R&D社;7914-TM)を使用した。
標的免疫化マウスから作製したファージFabライブラリーを、それぞれの標的を発現する細胞上のファージディスプレイを使用して選択した。PD-1又はTIM-3を発現する安定な細胞株(Table 1(表1))を、1回目のラウンドの選択のため使用した。細胞を、PBS中の10% FBSを用いてブロッキングした。ブロッキング後、救出したファージを、ブロッキングした細胞とインキュベートした。細胞プラスファージを、1時間4℃においてインキュベートした。細胞の洗浄(5回)を、PBS中の10%FBS 1mlを使用して行った。結合したファージを、トリプシンを使用して20分間溶出させ、その後、トリプシンを、AEBSFトリプシン阻害剤(Sigma社)を用いて中和した。溶出液を、大腸菌TG-1に加え、ファージ感染のため37℃においてインキュベートした。続いて、ファージ感染した細菌を、アンピシリン及びグルコースを含有する寒天プレート上に播種し、37℃にて一晩インキュベートした。
単一クローンのうち、溶解性Fab又はファージを、調製した(J Mol Biol.、1991年12月5日;222(3):581~97頁;J Biol Chem.、1999年6月25日;274(26):18218~30頁)。得られた可溶性Fab又はファージ試料を、PBS中4%乾燥スキムミルク(Marvel)(阻止緩衝液)で希釈し(それぞれ1:5又は1:10)、選択に使用したものと同じ抗原でコーティングされたウェルとの結合をELISAで試験した。
それぞれの標的を発現する細胞上の選択した単一クローンのうち、溶解性Fab又はファージを、記載(J Mol Biol.、1991年12月5日;222(3):581~97頁;J Biol Chem.、1999年6月25日;274(26):18218~30頁)される通り調製した。Fab試料を、FACSにおいて、FACSバッファー(PBS中の0.5% HI-FBS)中1:1000希釈した抗myc抗体(Gentaur社;カタログ番号04-CMYC-9E10)との1:5希釈したFab試料の混合液とのインキュベーションにより、ヒト及びマカク標的を発現する細胞(Table 1(表3))への結合について試験した。結合したFab/抗myc複合体を、FACSバッファー中1:500希釈したAPCコンジュゲートヤギ抗マウスIgG抗体(BD Bioscience社;カタログ番号550826)とのインキュベーションにより検出した。
IgGフォーマットのhuTIM-3及びhuPD-1特異的Fabクローンの特徴決定
ヒトTIM-3及びPD-1特異的FabのIgGフォーマットへの再クローニング
細胞上で発現したヒト及びマカク標的タンパク質に結合した、CDR3配列及びVH生殖系列の相異に基づく選択された固有のクローンは次に、標準化した分子生物学的技術に従い、Sfi1-BstEII消化、及び消化したcDNAのプールのライゲーションを使用して、共通軽鎖(図1)を含有する、MV1452(図7)のようなIgG発現プラスミドに再クローニングした。
二重特異性抗体の効率的なヘテロ-二量体化及び形成を確実にするための専用のCH3遺伝子操作テクノロジーを使用して、異なるVHドメインを有するIgGをコードする2つのプラスミドの一過性の同時遺伝子導入により、二重特異性抗体を作製した。重鎖を含有する両方のプラスミドに存在する共通の軽鎖をまた、同じ細胞に同時遺伝子導入する。本発明者らの同時係属出願(例えば、国際公開第2013/157954号パンフレット及び国際公開第2013/157953号パンフレット;参照により本明細書に組み込まれる)において、本発明者らは、単一の細胞から二重特異性抗体を産生する方法及び手段を開示し、これにより、単一特異性抗体の形成より二重特異性抗体の形成を好ましくする手段が提供される。これらの方法はまた、本発明において好ましく用いられ得る。具体的には、本質的には二重特異性全長IgG分子のみを産生する好ましい変異は、第1のCH3ドメイン(「KK変異体」重鎖)における351位及び366位におけるアミノ酸置換、例えば、L351K及びT366K(EUナンバリングに従ったナンバリング)及び第2のCH3ドメイン(「DE変異体」重鎖)における351位及び368位におけるアミノ酸置換、例えば、L351D及びL368Eであり、又は逆も同様である(図2)。本発明者らの同時係属出願において、負に荷電したDE変異体重鎖及び正に荷電したKK変異体重鎖が優先的には対形成して、ヘテロダイマー(いわゆる、「DEKK」二重特異性分子)を形成することを既に実証した。DE変異体重鎖(DE-DEホモダイマー)又はKK変異体重鎖(KK-KKホモダイマー)のホモダイマー形成は、同一の重鎖間でのCH3-CH3干渉における荷電した残基間の強力な反発に起因して、ほとんど生じない。
IgGの精製を、プロテインAアフィニティークロマトグラフィーを使用して、小スケール(<500μg)にて行った。小スケールの精製を、無菌条件下、24ウェルプレートにおいて濾過を使用して行った。まず、培地のpHを、pH8.0に調節し、続いて、IgGを含有する上清を、プロテインAセファロースCL-4Bビーズ(50%v/v)(Pierce社)と共に、2時間、25℃にて、振盪プラットフォーム上、600rpmにおいてインキュベートした。次に、ビーズを、濾過により回収した。ビーズを、PBS pH7.4を用いて2回洗浄した。次に、結合したIgGを、pH3.0において0.1Mクエン酸バッファーを用いて溶出し、溶出液を、トリスpH8.0を使用して直ちに中和した。バッファー交換を、マルチスクリーンUltracel 10マルチプレート(Millipore社)を使用して遠心分離により行った。最後に、試料を、PBS中pH7.4に回収した。IgG濃度を、オクテットを使用して測定した。タンパク質試料を、4℃にて保存した。
精製したIgGの量を決定するために、抗体の濃度を、トータルのヒトIgG(Sigma Aldrich社、カタログ番号I4506)を標準として使用したプロテインAバイオセンサー(Forte-Bio社、供給者の推奨に従い)を使用してオクテット解析により決定した。
抗体(二重特異性TIM-3×TT及びPD-1×TT抗体)を、FACSにおいて、関連のヒト及びマカクオルソログ(Table 1(表1))を発現する安定な細胞株及び野生型細胞への結合について試験した。それ故、細胞を回収して、FACSバッファー(PBS/0.5% BSA/0.5mM EDTA)において106個の細胞/mlに希釈した。1~2×105個の細胞を、U底96ウェルプレートにおけるそれぞれのウェルに加えた。細胞を、2分間、300gにおいて4℃にて遠心分離した。プレートを逆さにすることにより、上清を捨てた。濃度10μg/mlのそれぞれのIgG試料50μlを加え、1時間氷上でインキュベートした。細胞を1回遠心分離し、上清を取り除き、細胞をFACSバッファー150μlを用いて2回洗浄した。1:400希釈したヤギ抗ヒトIgG PE(Invitrogen社)50μlを加え、30分間、氷上で暗所にてインキュベートした。FACSバッファーを加えた後、細胞を1回遠心分離し、上清を取り除き、細胞をFACSバッファーを用いて2回洗浄した。細胞を、FACSCantoフローサイトメーター(Becton and Dickinson社)上HTS設定において解析した。抗体の細胞への結合を、染色した細胞集団の平均蛍光強度(MFI)を測定することにより、評価した。MFIが、(陰性対照)非結合抗体(テタヌス毒素に対する)を用いて染色した同じ細胞集団のものの少なくとも5倍であるとき、抗体は、それらの標的に結合するとみなした。
huPD-1結合クローンを、PD-L1のPD-1との相互作用をブロックするそれらの能力について試験した。それ故、PD1-Fc(R&D systems社;カタログ番号1086-PD)を、1μg/mlでマキシソーププレートにコーティングした。コーティングしたウェルを、PBS中の4%BSAを用いてブロックした。その後、0.55μg/mlビオチン化PD-L1(BPS bioscience社;カタログ番号71105)を、0.15~20μg/mlの範囲のIgGの存在又は非存在下で加えた。結合したビオチン化PD-L1を、ブロックバッファーにおいて1:2000希釈したHRPコンジュゲートストレプトアビジン(BD bioscience社:カタログ番号554066)を用いて検出した。それぞれのインキュベーション工程後、ELISAプレートを、PBS-T(PBS-0.05%v/v Tween20)を用いて3回洗浄した。結合したストレプトアビジンを、TMB/H2O2染色により視覚化し、染色を、OD450nm測定により定量化した。ELISAシグナルが、TT特異的競合抗体を加えた対照と比較して、IgG(PD-1×TT)濃度10μg/mlにおいて70%より低減したとき、クローンは、PD-1のPD-L1との相互作用をブロックするとみなした。PD-1×TT二重特異性分子として試験したPD-1抗体パネルの代表的選択を用いて得た結果について、図10を参照。
Maxisorp 96ウェルプレートのウェルを、PBS中5μg/mlの組換えヒトガレクチン-9(R&D社;カタログ番号2045-GA)でコーティングし、4℃で一晩インキュベートした。ウェルを、PBSで3回洗浄し、その後室温にて1時間、PBS中3%のBSA(阻止緩衝液)で阻止した。その後、ウェルを、阻止緩衝液で希釈した0.1875μg/ml huTIM-3 Fc(R&D社;カタログ番号2365-TM)と共に、25μg/ml IgGの存在下又は非存在下で、1時間室温にてインキュベートした。ウェルを、PBST(PBS中0.05v/v%のTween20)で3回洗浄し、阻止緩衝液で1:2000に希釈したビオチンコンジュゲート抗ヒトFc抗体(Invitrogen社;カタログ番号AHI1309)で1時間インキュベートした。次に、洗浄ステップを繰り返し、ウェルを、阻止緩衝液で1:2000に希釈したHRPコンジュゲートストレプトアビジン(Becton Dickinson社;カタログ番号554066)と共に、室温で15分間インキュベートした。結合したストレプトアビジンを検出するために、ウェルをPBSTで3回洗浄し、TMB基質成分A及びB(1:1比)(Becton Dickinson社;それぞれカタログ番号51-2606KC及び51-2607KC)と共にインキュベートした。10分後に1MのH2SO4で反応を停止させ、ELISAプレートリーダーを使用してOD450を測定した。対照の95%未満のELISAシグナルは、阻止活性を表すとみなす(Table 2(表2))。
FACSにおいてそれぞれのヒト及びマカクオルソログに結合することを示した二重特異的抗体を、FACSにおける両方のオルソログについての明らかな親和性についてランキングした。それ故、それぞれのオルソログを発現する安定な細胞株(Table 1(表3))を回収し、FACSバッファー(PBS/0.5% BSA/0.5mM EDTA)中106個の細胞/mlに希釈した。細胞を、2分間、300gにおいて4℃にて遠心分離した。プレートを逆さにすることにより、上清を捨てた。10~0.01μg/mlの範囲にある11段階の2倍連続希釈におけるそれぞれのIgG試料50μlを加え、1時間、氷上でインキュベートした。細胞を1回遠心分離し、上清を取り除き、細胞を、FACSバッファー150μlを用いて2回洗浄した。1:400希釈したヤギ抗ヒトIgG PE(Invitrogen社)50μlを加え、30分間、氷上、暗所でインキュベートした。FACSバッファーを加えた後、細胞を1回遠心分離し、上清を取り除き、細胞を、FACSバッファーを用いて2回洗浄した。細胞を、FACSCantoフローサイトメーター(Becton and Dickinson社)上、HTS設定において解析した。抗体の細胞への結合を、染色した細胞集団の平均蛍光強度(MFI)を測定することにより、評価した。MFIが、(陰性対照)非結合抗体(テタヌス毒素に対する)を用いて染色した同じ細胞集団のものの少なくとも5倍であるとき、抗体は、それらの標的に結合するとみなした。
PD-1の機能を阻害する抗体は、当該技術分野において公知である。モノクローナル二価抗体を、公開された情報に従い構築し、CHO-S細胞において発現させた。抗PD-1抗体ニボルマブを、CA 02607147に開示された情報に基づき作製した。
Promega社が、使用したPD-1/PD-L1遮断レポーターアッセイを開発し、それは、2つの細胞系;PD-L1、及びT細胞活性化因子を発現するCHO細胞並びにPD-1を過剰発現するジャーカット/NFAT-REレポーター細胞株に基づく。PD-1/PD-L1遮断レポーターアッセイを、解凍物を使用して行い、Promegaのフォーマットを使用した。PD-L1発現細胞(カタログ番号C187103)を、細胞回復培地(10% FBSを含有するDMEM/F12)14.5mlにおいて解凍した。次に、細胞懸濁液50μlを、96ウェルハーフエリアプレート(Corning社、カタログ番号3688)の内部ウェルに加えた。プレートを、一晩、37℃、5% CO、95%相対湿度においてインキュベートした。翌日、培養培地を除去し、連続希釈(開始濃度10μg/ml)でのアッセイ培地(4% FBSを含有するRPMI1640)の試験抗体20μlを、それぞれのウェルに加えた。それぞれのプレートは、参照対照として働く陰性(Ctrl Ab)及び陽性対照抗体(ニボルマブ)の連続希釈液を含有していた。PD-1エフェクター細胞(カタログ番号C187105)を、アッセイ培地5.9mlにおいて解凍し、細胞懸濁液20μlを、それぞれのウェルに加えた。プレートを、6時間又は一晩、37℃、5% CO、95%相対湿度においてインキュベートした。ルシフェラーゼ(Bio-Glo社ルシフェラーゼアッセイシステム、カタログ番号G794L)40μlを、翌日加え、ルシフェラーゼ活性の量を、BioTek社シナジー2マルチモードマイクロプレートリーダーを使用して測定した。効力を、陰性対照抗体との比較におけるルシフェラーゼ活性として測定した。
PD-1抗体パネルに由来するVHを、24ウェルフォーマットで産生し、片対数系列希釈した(開始濃度10μg/ml)二価抗体としてPD-1/PD-L1阻止レポーターアッセイで試験して、抗体を、ニボルマブと比較した効力阻止で順位付けした。活性データに基づき、抗体を、続くPD1×LAG-3二重特異性スクリーニングのためPD-1抗体パネルから選択した。レポーターアッセイにおいて選択した候補の活性を、Table 3(表3)において示す。PD-1 Fabパネルは、2種の抗体クラスター内の機能的活性変異体、即ち、A及びBで構成されていた。
二重特異的PD-1×TIM-3抗体は混合リンパ球反応においてCD4+T細胞によるIFNγ産生を増強する
混合リンパ球反応(MLR)アッセイを共通して使用して、T細胞活性化及び増殖に対する抗体の作用を理解する。かかるアッセイは、かかる化合物が、腫瘍微小環境における応答を開始するT細胞の能力に影響するかどうかの理解を目的とする。故に、本発明者らは、未成熟のDCを用いる同種MLRプロトコールを使用して、ベンチマーク参照抗体のものと比較して、CD4+T細胞によるIFNγ産生を増強する二重特異性PD-1×TIM-3抗体の能力を決定した。T細胞の応答性を、培養上清におけるIFNγのレベルを測定することにより、定量化した。
MLR研究は、Tim3/PD1二重特異性の実験群((PB16465 = MF7677 × MF6930)及び3つのアイソタイプ対照群(TIM-3サロゲート抗体に対する単一特異性抗体、破傷風、及びmIgG1)で構成されていた。単一細胞対照及び媒体対照群も含まれていた。
Claims (29)
- PD-1及び/又はTIM-3陽性細胞でのプログラム細胞死1タンパク質(PD-1)及びT細胞免疫グロブリン及びムチンドメイン含有-3(TIM-3)媒介性阻害を妨害するためのインビトロ方法であって、前記細胞を、
- PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメイン、及び
- TIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメイン
を含む抗体と接触させ、それにより前記細胞でのPD-1及び/又はTIM-3媒介性活性を阻害する工程を含み、
前記PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメインは、
それぞれ配列FYFWS、YIYYSGSANFNPSLKS及びGGYTGYGGDWFDPを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列YYFWS、YVYYSGSNNLNPSLKS及びGGYSGYGGDSFDLを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列YYFWS、YIYYSGSTNFNPSLKS及びGGYTGHGGDWFDPを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列SYVIS、MIIPVFDTSSYEKKFQG及びGTVEATLLFDFを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列NYVIS、MIIPVFETATYEKKFQG及びGTVEATLLFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列SYAIS、MIIPFFDTANYAQKFQG及びGTVSATLVFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列SYVIS、MIIPIFDTANYAQKFQG及びGTVSGTLVFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列NYVIN、MIIPVFDTTSYERKFQG及びGTVGATLLFDNを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列TYFWS、YIIYSGSTNYNPSLKS及びGGYSGYGGDDFDIを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列SYAMS、TISGGGANIYYADSVKG及びPYGSGYFDVを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、あるいは
それぞれ配列SYAMS、TISGGGTNIYYADSVKG及びPYGSGYLDVを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域
を有する重鎖可変領域を含み、
前記TIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメインは、
それぞれ配列TSKVGVG、LIYWNDDKRYSPSLKS及びRRGWGPFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列TSGVGVG、FIYSNDDKRYSPSLKS及びRRGWGPFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、あるいは
それぞれ配列TSGVGVG、LIYWNDDKRYSPSLKS及びRRGWGPFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域
を有する重鎖可変領域を含み、
PD-1及びTIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、CDR1配列QSISSY、CDR2配列AAS、及びCDR3配列QQSYSTPPTを有する軽鎖可変領域を含む方法。 - 前記PD-1結合可変ドメインとPD-1との結合は、PD-1とPD-L1及び/又はPD-L2との結合を阻止する、請求項1に記載の方法。
- 免疫シナプスの形成、安定性、及び/又は活性を刺激するためのインビトロ方法であって、免疫シナプスにより互いに会合することが可能な少なくとも2つの細胞を含む系を準備する工程、及び前記系に、
- PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメイン、及び
- TIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメイン
を含む抗体を提供し、それにより前記少なくとも2つの細胞間の免疫シナプスの形成、安定性、及び/又は活性を刺激する工程を含み、
前記PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメインは、
それぞれ配列FYFWS、YIYYSGSANFNPSLKS及びGGYTGYGGDWFDPを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列YYFWS、YVYYSGSNNLNPSLKS及びGGYSGYGGDSFDLを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列YYFWS、YIYYSGSTNFNPSLKS及びGGYTGHGGDWFDPを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列SYVIS、MIIPVFDTSSYEKKFQG及びGTVEATLLFDFを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列NYVIS、MIIPVFETATYEKKFQG及びGTVEATLLFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列SYAIS、MIIPFFDTANYAQKFQG及びGTVSATLVFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列SYVIS、MIIPIFDTANYAQKFQG及びGTVSGTLVFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列NYVIN、MIIPVFDTTSYERKFQG及びGTVGATLLFDNを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列TYFWS、YIIYSGSTNYNPSLKS及びGGYSGYGGDDFDIを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列SYAMS、TISGGGANIYYADSVKG及びPYGSGYFDVを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、あるいは
それぞれ配列SYAMS、TISGGGTNIYYADSVKG及びPYGSGYLDVを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域
を有する重鎖可変領域を含み、
前記TIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメインは、
それぞれ配列TSKVGVG、LIYWNDDKRYSPSLKS及びRRGWGPFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列TSGVGVG、FIYSNDDKRYSPSLKS及びRRGWGPFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、あるいは
それぞれ配列TSGVGVG、LIYWNDDKRYSPSLKS及びRRGWGPFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域
を有する重鎖可変領域を含み、
PD-1及びTIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、CDR1配列QSISSY、CDR2配列AAS、及びCDR3配列QQSYSTPPTを有する軽鎖可変領域を含む方法。 - PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメイン、及びTIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメインを含み、
前記PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメインは、
それぞれ配列FYFWS、YIYYSGSANFNPSLKS及びGGYTGYGGDWFDPを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列YYFWS、YVYYSGSNNLNPSLKS及びGGYSGYGGDSFDLを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列YYFWS、YIYYSGSTNFNPSLKS及びGGYTGHGGDWFDPを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列SYVIS、MIIPVFDTSSYEKKFQG及びGTVEATLLFDFを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列NYVIS、MIIPVFETATYEKKFQG及びGTVEATLLFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列SYAIS、MIIPFFDTANYAQKFQG及びGTVSATLVFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列SYVIS、MIIPIFDTANYAQKFQG及びGTVSGTLVFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列NYVIN、MIIPVFDTTSYERKFQG及びGTVGATLLFDNを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列TYFWS、YIIYSGSTNYNPSLKS及びGGYSGYGGDDFDIを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列SYAMS、TISGGGANIYYADSVKG及びPYGSGYFDVを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、あるいは
それぞれ配列SYAMS、TISGGGTNIYYADSVKG及びPYGSGYLDVを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域
を有する重鎖可変領域を含み、
前記TIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメインは、
それぞれ配列TSKVGVG、LIYWNDDKRYSPSLKS及びRRGWGPFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列TSGVGVG、FIYSNDDKRYSPSLKS及びRRGWGPFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、あるいは
それぞれ配列TSGVGVG、LIYWNDDKRYSPSLKS及びRRGWGPFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域
を有する重鎖可変領域を含み、
PD-1及びTIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、CDR1配列QSISSY、CDR2配列AAS、及びCDR3配列QQSYSTPPTを有する軽鎖可変領域を含む、抗体。 - PD-1に結合する前記可変ドメインは、PD-1とPD-L1及び/又はPD-L2との結合を阻止する、請求項4に記載の抗体。
- TIM-3に結合する前記可変ドメインは、TIM-3とガレクチン-9との結合を阻止する、請求項4又は請求項5に記載の抗体。
- PD-1の細胞外部分に結合する前記可変ドメインは、PD-1に結合する前記可変ドメインを2つ含む二価単一特異性抗体中に存在する場合、ジャーカット細胞のPD-1/PD-L1阻害を、ジャーカット細胞に対して抗体ニボルマブで得られる阻害と比較して20~150%の範囲で阻害する可変領域であると定義される、請求項4~6のいずれか一項に記載の抗体。
- PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、重鎖可変領域のアミノ酸配列に対して、最大で15個、好ましくは0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、又は10個、及び好ましくは0、1、2、3、4、又は5個のアミノ酸挿入、欠失、置換、又はそれらの組合せを有する、配列番号43から53のいずれか1つのアミノ酸配列を含む重鎖可変領域を含む、請求項4~7のいずれか一項に記載の抗体であって、
前記挿入、欠失、又は置換が重鎖可変領域のCDR1、CDR2及びCDR3中にない、抗体。 - TIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、重鎖可変領域のアミノ酸配列に対して、最大で15個、好ましくは0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、又は10個、及び好ましくは0、1、2、3、4、又は5個のアミノ酸挿入、欠失、置換、又はそれらの組合せを有する、配列番号54から57のいずれか1つのアミノ酸配列を含む重鎖可変領域を含む、請求項4~8のいずれか一項に記載の抗体であって、
前記挿入、欠失、又は置換が重鎖可変領域のCDR1、CDR2及びCDR3中にない、抗体。 - 請求項4~9のいずれか一項に記載の抗体であって、
PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、
それぞれ配列FYFWS、YIYYSGSANFNPSLKS及びGGYTGYGGDWFDPを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列SYVIS、MIIPVFDTSSYEKKFQG及びGTVEATLLFDFを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、
それぞれ配列NYVIS、MIIPVFETATYEKKFQG及びGTVEATLLFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域、あるいは
それぞれ配列SYAMS、TISGGGANIYYADSVKG及びPYGSGYFDVを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域
を有する重鎖可変領域を含み、ならびに
TIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、
それぞれ配列TSGVGVG、FIYSNDDKRYSPSLKS及びRRGWGPFDYを有するCDR1、CDR2、及びCDR3領域
を含み、
PD-1及びTIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、CDR1配列QSISSY、CDR2配列AAS、及びCDR3配列QQSYSTPPTを有する軽鎖可変領域を含む、抗体。 - PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、配列番号43から53のいずれか1つのアミノ酸配列を含む重鎖可変領域を含む、請求項4~10のいずれか一項に記載の抗体。
- TIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、配列番号54から57のいずれか1つのアミノ酸配列を含む重鎖可変領域を含む、請求項4~11のいずれか一項に記載の抗体。
- TIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、重鎖可変領域のアミノ酸配列に対して、最大で15個、好ましくは0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、又は10個、及び好ましくは0、1、2、3、4、又は5個のアミノ酸挿入、欠失、置換、又はそれらの組合せを有する、配列番号55または56のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域を含み、前記挿入、欠失、又は置換が重鎖可変領域のCDR1、CDR2及びCDR3中になく、かつ
PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、重鎖可変領域のアミノ酸配列に対して、最大で15個、好ましくは0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、又は10個、及び好ましくは0、1、2、3、4、又は5個のアミノ酸挿入、欠失、置換、又はそれらの組合せを有する、配列番号47のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域を含み、前記挿入、欠失、又は置換が重鎖可変領域のCDR1、CDR2及びCDR3中にない、
請求項4~10のいずれか一項に記載の抗体。 - TIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、重鎖可変領域のアミノ酸配列に対して、最大で15個、好ましくは0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、又は10個、及び好ましくは0、1、2、3、4、又は5個のアミノ酸挿入、欠失、置換、又はそれらの組合せを有する、配列番号55または56のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域を含み、前記挿入、欠失、又は置換が重鎖可変領域のCDR1、CDR2及びCDR3中になく、かつ
PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、重鎖可変領域のアミノ酸配列に対して、最大で15個、好ましくは0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、又は10個、及び好ましくは0、1、2、3、4、又は5個のアミノ酸挿入、欠失、置換、又はそれらの組合せを有する、配列番号46アミノ酸配列を含む重鎖可変領域を含み、前記挿入、欠失、又は置換が重鎖可変領域のCDR1、CDR2及びCDR3中にない、
請求項4~10のいずれか一項に記載の抗体。 - TIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、重鎖可変領域のアミノ酸配列に対して、最大で15個、好ましくは0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、又は10個、及び好ましくは0、1、2、3、4、又は5個のアミノ酸挿入、欠失、置換、又はそれらの組合せを有する、配列番号55または56のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域を含み、前記挿入、欠失、又は置換が重鎖可変領域のCDR1、CDR2及びCDR3中になく、かつ
PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、重鎖可変領域のアミノ酸配列に対して、最大で15個、好ましくは0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、又は10個、及び好ましくは0、1、2、3、4、又は5個のアミノ酸挿入、欠失、置換、又はそれらの組合せを有する、配列番号43のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域を含み、前記挿入、欠失、又は置換が重鎖可変領域のCDR1、CDR2及びCDR3中にない、
請求項4~10のいずれか一項に記載の抗体。 - TIM-3の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、重鎖可変領域のアミノ酸配列に対して、最大で15個、好ましくは0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、又は10個、及び好ましくは0、1、2、3、4、又は5個のアミノ酸挿入、欠失、置換、又はそれらの組合せを有する、配列番号55または56のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域を含み、前記挿入、欠失、又は置換が重鎖可変領域のCDR1、CDR2及びCDR3中になく、かつ
PD-1の細胞外部分に結合することができる可変ドメインが、重鎖可変領域のアミノ酸配列に対して、最大で15個、好ましくは0、1、2、3、4、5、6、7、8、9、又は10個、及び好ましくは0、1、2、3、4、又は5個のアミノ酸挿入、欠失、置換、又はそれらの組合せを有する、配列番号52のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域を含み、前記挿入、欠失、又は置換が重鎖可変領域のCDR1、CDR2及びCDR3中にない、
請求項4~10のいずれか一項に記載の抗体。 - 軽鎖可変領域が、配列番号25のアミノ酸配列と少なくとも90%同一である配列を含み、CDR1配列QSISSY、CDR2配列AAS、及びCDR3配列QQSYSTPPTを含む、請求項1~16のいずれか一項に記載の抗体。
- 軽鎖可変領域が、配列番号25のアミノ酸配列を含む、請求項1~17のいずれか一項に記載の抗体。
- 前記抗体は、請求項4~18のいずれか一項に記載の抗体である、請求項1~3のいずれか一項に記載のインビトロ方法。
- 薬剤として使用するための、請求項4~18のいずれか一項に記載の抗体。
- がん、又は病原体、好ましくはウイルス若しくは寄生虫による感染症を治療するための方法で使用するための、請求項4~18のいずれか一項に記載の抗体。
- 請求項4~18のいずれか一項に記載の少なくとも1つの抗体を含む組成物又はキットオブパーツ。
- 請求項4~18のいずれか一項に記載の少なくとも1つの抗体、及び薬学的に許容される担体、希釈剤、又は賦形剤を含む医薬組成物。
- 請求項4~18のいずれか一項に記載の抗体をコードする核酸分子又は核酸分子のコレクション。
- 請求項24に記載の核酸分子又は核酸分子のコレクションを含む1つまたは複数のベクター。
- 請求項24に記載の核酸分子又は請求項25に記載のベクターを含む単離若しくは組換え細胞又は非ヒト動物。
- 請求項4~18のいずれか一項に記載の抗体を単一細胞から産生するための方法であって、前記抗体は、インターフェースを形成することが可能な2つのCH3ドメインを含み、前記方法は、
- a)PD-1の細胞外部分を特異的に認識し、第1のCH3ドメインを含むIgG重鎖をコードする核酸配列を有する第1の核酸分子、及びb)TIM-3の細胞外部分を特異的に認識し、第2のCH3ドメインを含むIgG重鎖をコードする核酸配列を有する第2の核酸分子を有する細胞を準備する工程を含み、前記核酸分子は、前記第1及び第2のCH3ドメインの優先的対合のための残基をコードする核酸配列を有し、前記方法は、前記細胞を培養する工程、及び前記核酸配列を有する核酸分子の発現を可能にする工程、及び前記抗体を前記培養から回収する工程を更に含む方法。 - 前記細胞は、共通軽鎖、好ましくは再編成された生殖系ヒトカッパ軽鎖IgVκ1-39*01/IGJκ1*01をコードする核酸配列を有する第3の核酸分子を有する、請求項27に記載の方法。
- 前記第1の核酸分子は、アミノ酸置換L351K及びT366K(EU付番による付番)を含む前記第1のCH3ドメインをコードする核酸配列を有し、前記第2の核酸分子は、アミノ酸置換L351D及びL368E(EU付番による付番)を含む前記第2のCH3ドメインをコードする核酸配列を有し、前記方法は、前記細胞を培養する工程、及び前記核酸分子の発現を可能にする工程、及び前記抗体を前記培養から回収する工程を更に含む、請求項27又は28に記載の方法。
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