JP6702866B2 - 合成膜−レシーバー複合体 - Google Patents
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Description
本発明は、例えば、以下の項目を提供する。
(項目1)
標的自己抗体の循環濃度を低減する方法であって、自己抗体媒介性疾患、障害又は病態に罹患しているか又はそれを発症するリスクがあるヒト対象に、合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物を投与するステップを含む方法であって、前記医薬組成物が、前記標的自己抗体の前記循環濃度を実質的に低減するのに有効な量で投与される、方法。
(項目2)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、前記対象の血漿量に等しい分布容積を有する、項目1に記載の方法。
(項目3)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が0.09l/kg未満の分布容積を有する、項目1に記載の方法。
(項目4)
前記自己抗体媒介性疾患、障害若しくは病態が治療され又はその症状が軽減されるように前記医薬組成物を治療期間にわたって少なくとも2回投与するステップを含む、項目1〜3のいずれか一項に記載の方法。
(項目5)
前記自己抗体媒介性疾患、障害又は病態が予防されるように前記医薬組成物を治療期間にわたって少なくとも2回投与するステップを含む、項目1〜3のいずれか一項に記載の方法。
(項目6)
前記標的自己抗体の前記循環濃度が治療期間中に実質的に低下するように前記医薬組成物を前記治療期間にわたって十分な回数投与するステップを含む、項目1〜3のいずれか一項に記載の方法。
(項目7)
前記標的自己抗体の前記循環濃度が治療期間中に実質的に低下し、それにより前記自己抗体媒介性疾患、障害又は病態の1つ以上の症状が予防され、軽減され、又は遅延するように、前記医薬組成物を前記治療期間にわたって十分な回数投与するステップを含む、項目1〜3のいずれか一項に記載の方法。
(項目8)
前記標的自己抗体の前記循環濃度が、i)前記ヒト対象による前記標的自己抗体の内因性クリアランス速度、又はii)前記ヒト対象による前記標的自己抗体の内因性産生速度、又はiii)i)及びii)の両方よりも速い速度で低下するように、前記医薬組成物を治療期間にわたって十分な回数投与するステップを含む、項目1〜3のいずれか一項に記載の方法。
(項目9)
前記標的自己抗体の前記循環濃度が、前記治療期間の一部又は全体で少なくとも約1%、5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%、99.5%、99.9%、99.99%、又は99.99%超低下する、項目6〜8のいずれか一項に記載の方法。
(項目10)
前記標的自己抗体の前記循環濃度が、前記投与から約1、5、10、15、20、30、40、若しくは50分間、又は約1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、若しくは23時間、又は1、2、3、4、5、若しくは6日間、又は約1、2、3、4、5、若しくは6週間以内に少なくとも約1%、5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%、99.5%、99.9%、99.99%、又は99.99%超低下する、項目6〜8のいずれか一項に記載の方法。
(項目11)
前記標的自己抗体の前記循環濃度が少なくとも約1週間、2週間、3週間、4週間、1ヵ月、2ヵ月、3ヵ月、4ヵ月、5ヵ月、6ヵ月、又は6ヵ月超にわたり実質的に低下するように、前記医薬組成物を治療期間に十分な回数投与するステップを含む、項目4〜10のいずれか一項に記載の方法。
(項目12)
少なくとも治療期間中である間は前記標的自己抗体の前記循環濃度が実質的に低下するように、前記医薬組成物を前記治療期間に十分な回数投与するステップを含む、項目4〜10のいずれか一項に記載の方法。
(項目13)
前記治療期間が、1年、6ヵ月、3ヵ月、2ヵ月、1ヵ月、2週間、1週間、3日、2日、1日以下である、項目4〜12のいずれか一項に記載の方法。
(項目14)
前記治療期間内の投与間の時間間隔が、循環中の合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の数が前記投与医薬組成物中に存在する合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の数の約5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%、60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、又は95%未満に減少する期間以下である、項目4〜13のいずれか一項に記載の方法。
(項目15)
投与頻度が、前記標的自己抗体の前記循環濃度を、前記自己抗体媒介性疾患、障害又は病態の症状に関連するレベル未満に有効に低減するのに十分である、項目9又は10に記載の方法。
(項目16)
前記医薬組成物を投与するステップにより、前記対象の循環系における未結合標的自己抗体の濃度又は全標的自己抗体の濃度が減少する、項目9又は10に記載の方法。
(項目17)
前記全標的自己抗体の濃度が、前記対象の前記循環系における未結合及び結合標的自己抗体の濃度に略等しい、項目16に記載の方法。
(項目18)
前記医薬組成物が、薬学的に活性な薬剤をさらに含む、項目1〜17のいずれか一項に記載の方法。
(項目19)
薬学的に活性な薬剤を投与するステップをさらに含み、前記薬学的に活性な薬剤が前記医薬組成物の前に、その後に、又はそれと同時に投与される、項目1〜18のいずれか一項に記載の方法。
(項目20)
前記医薬組成物が局所投与又は非経口投与される、項目19に記載の方法。
(項目21)
前記薬学的に活性な薬剤が、生物学的薬剤、小分子薬剤、又は核酸薬剤から選択される、項目18〜20のいずれか一項に記載の方法。
(項目22)
前記医薬組成物が、薬学的に許容可能な担体をさらに含む、項目1に記載の方法。
(項目23)
I型糖尿病、多発性硬化症、潰瘍性大腸炎、ループス、免疫性血小板減少性紫斑病、温式抗体溶血性貧血、寒冷凝集素症、グッドパスチャー症候群、抗リン脂質抗体症候群、及び膜性糸球体腎炎からなる群から選択される自己抗体媒介性疾患、障害又は病態に罹患しているか又はそのリスクがある対象を治療のために選択するステップをさらに含む、項目1に記載の方法。
(項目24)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が前記対象の循環系での短期持続時間用に製剤化される、項目1に記載の方法。
(項目25)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が前記対象の循環系での長期持続時間用に製剤化される、項目1に記載の方法。
(項目26)
レシーバーポリペプチドが前記対象の前記循環系において膜から実質的に解離しない、項目25に記載の方法。
(項目27)
レシーバーポリペプチドが前記循環系に少なくとも21日間存在する、項目25に記載の方法。
(項目28)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、ホスファチジルコリン、スフィンゴミエリン、リゾホスファチジルコリン、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、又はホスファチジン酸を含む、項目25に記載の方法。
(項目29)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、i)CD47、CD55、若しくはCD59ポリペプチド又はその機能断片、又はii)細胞膜ポリペプチド、又はiii)i)及びii)の両方をさらに含む、項目25に記載の方法。
(項目30)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、前記ポリペプチド複合体が長期持続時間にわたり前記循環系に滞留するのに有効な量でCD47、CD55、若しくはCD59ポリペプチド又はその機能断片を含む、項目29に記載の方法。
(項目31)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が実質的な量の複製核酸を含有しない、項目1〜30のいずれか一項に記載の方法。
(項目32)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、少なくとも10コピー、100コピー、1,000コピー、10,000コピー、25,000コピー、50,000コピー、100,000コピー、500,000コピー、1,000,000コピー、又は2,000,000コピーの前記レシーバーポリペプチドを含み、及び/又は前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、少なくとも1:10,000の前記レシーバーポリペプチドと、ホスファチジルコリン、スフィンゴミエリン、リゾホスファチジルコリン、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、又はホスファチジン酸からなる群から選択される膜脂質との比を含む、項目1〜31のいずれか一項に記載の方法。
(項目33)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、前記レシーバーポリペプチドに加えて少なくとも第2のポリペプチドを含む、項目1〜32のいずれか一項に記載の方法。
(項目34)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、前記レシーバーポリペプチドとは無関係に2つ以上の基質に対する触媒活性を有する、項目33に記載の方法。
(項目35)
前記第2のポリペプチドが前記膜に会合している、項目33に記載の方法。
(項目36)
前記レシーバーポリペプチドが外因性核酸によってコードされる、項目1〜35のいずれか一項に記載の方法。
(項目37)
前記外因性核酸が前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体によって実質的に保持されない、項目36に記載の方法。
(項目38)
前記レシーバーポリペプチドの発現が有効に終結される、項目36に記載の方法。
(項目39)
前記レシーバーポリペプチドが前記膜に会合している、項目1〜38のいずれか一項に記載の方法。
(項目40)
前記レシーバーポリペプチドが融合物又はキメラである、項目1〜39のいずれか一項に記載の方法。
(項目41)
前記融合物又はキメラが、Sドメイン、Aドメイン又はUドメインのうちの少なくとも1つを含み、前記Sドメインが前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の周りの環境に露出した表面ドメインであり、前記Aドメインがアンカーであり、前記Uドメインが前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の非露出側に向いており、前記Sドメイン、前記Aドメイン、及び/又は前記Uドメインが異なるポリペプチド由来である、項目40に記載の方法。
(項目42)
前記Sドメイン及び/又は前記Aドメインが少なくとも6個のアミノ酸を含む、項目41に記載の方法。
(項目43)
前記Sドメイン及び/又はAドメインが少なくとも30個のアミノ酸を含む、項目41に記載の方法。
(項目44)
前記標的自己抗体が、糖タンパク質(GP Ib−IX、IIb−IIIa、IV、又はIa−IIa)、コラーゲンα3(IV)のNC1ドメイン、B2グリコプロテイン1、又はホスホリパーゼA2受容体を特異的に認識する、項目1〜43のいずれか一項に記載の方法。
(項目45)
前記レシーバーポリペプチドが、糖タンパク質(GP Ib−IX、IIb−IIIa、IV、又はIa−IIa)、コラーゲンα3(IV)のNC1ドメイン、B2グリコプロテイン1、又はホスホリパーゼA2受容体からなる群から選択される抗原ポリペプチド、又はその抗原断片を含む、項目1〜44のいずれか一項に記載の方法。
(項目46)
前記Sドメインが前記抗原ポリペプチド又はその抗原断片を含む、項目43に記載の方法。
(項目47)
項目1に記載の方法によって投与される医薬組成物。
(項目48)
薬学的に許容可能な担体をさらに含む、項目47に記載の医薬組成物。
(項目49)
合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の集団を含む、項目47又は48に記載の医薬組成物。
(項目50)
少なくとも1×10 5 個の合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む、項目49に記載の医薬組成物。
(項目51)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、約10nl、100nl、1μl、10μl、100μl、1ml、10ml、20ml、又は50mlの容積で提供される、項目50に記載の医薬組成物。
(項目52)
少なくとも1×10 11 個の合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む、項目49に記載の医薬組成物。
(項目53)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、約1ml、10ml、20ml、50ml、100ml、250ml、又は500mlの容積で提供される、項目52に記載の医薬組成物。
(項目54)
長期保存用に製剤化される、項目47〜53のいずれか一項に記載の医薬組成物。
(項目55)
凍結される、項目47〜53のいずれか一項に記載の医薬組成物。
(項目56)
薬学的に活性な薬剤を含む、項目47〜54のいずれか一項に記載の医薬組成物。
(項目57)
前記薬学的に活性な薬剤が、生物学的薬剤、小分子薬剤、又は核酸薬剤から選択される、項目56に記載の医薬組成物。
(項目58)
静脈内注射用の液体懸濁物として製剤化された項目47〜57のいずれか一項に記載の組成物を含む剤形。
(項目59)
項目47〜57のいずれか一項に記載の医薬組成物を保持する容器と、対象への前記医薬組成物の静脈内注射用のアプリケーターとを含む医療器具。
(項目60)
項目47〜57のいずれか一項に記載の医薬組成物と、対象への前記医薬組成物の静脈内注射用の医療器具とを含む医療用キット。
(項目61)
項目1に記載の方法によって投与される医薬組成物の合成膜−レシーバーポリペプチド複合体。
(項目62)
項目61に記載の合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の集団。
(項目63)
液体として製剤化された項目62に記載の合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の集団。
(項目64)
凍結される、項目62に記載の合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の集団。
(項目65)
項目61に記載の合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の単離レシーバーポリペプチド。
(項目66)
項目65に記載のレシーバーポリペプチドをコードする外因性核酸。
(項目67)
標的との相互作用能を有するレシーバーポリペプチドと、
第2のポリペプチドを含む膜と
を含む合成膜−レシーバーポリペプチド複合体であって、
レシーバーとは無関係に触媒活性を有する、合成膜−レシーバーポリペプチド複合体。
(項目68)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、哺乳類対象の循環系への静脈内投与用に製剤化される、項目67に記載の複合体。
(項目69)
前記哺乳類対象がヒトである、項目68に記載の複合体。
(項目70)
前記レシーバーポリペプチドが、前記対象の前記循環系における未結合標的又は全標的の濃度を低減する能力を有する、項目67〜69のいずれか一項に記載の複合体。
(項目71)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、前記対象の血漿量と略等しい又は均等な分布容積を有する、項目68又は69に記載の複合体。
(項目72)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が0.09l/kg未満の分布容積を有する、項目68又は69に記載の複合体。
(項目73)
前記レシーバーポリペプチドが、実質的に前記対象の前記循環系における前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の持続時間にわたり前記循環系に存在する、項目68又は69に記載の複合体。
(項目74)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が前記対象の前記循環系での短期持続時間用に製剤化される、項目68又は69に記載の複合体。
(項目75)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が前記対象の前記循環系での長期持続時間用に製剤化される、項目68又は69に記載の複合体。
(項目76)
前記レシーバーポリペプチドが前記循環系に少なくとも約21日間存在する、項目75に記載の複合体。
(項目77)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、ホスファチジルコリン、スフィンゴミエリン、リゾホスファチジルコリン、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、又はホスファチジン酸を含む、項目75に記載の方法。
(項目78)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、CD47、CD55、若しくはCD59ポリペプチド又はその機能断片をさらに含む、項目75に記載の複合体。
(項目79)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、前記複合体が長期持続時間にわたり前記循環系に滞留するのに有効な量でCD47、CD55、若しくはCD59ポリペプチド又はその機能断片を含む、項目78に記載の複合体。
(項目80)
標的と相互作用することが、前記標的を結合し、分解し、切断し及び/又は隔絶することを含む、項目67〜79のいずれか一項に記載の複合体。
(項目81)
標的と相互作用することが、前記標的の活性を改変することを含む、項目67〜79のいずれか一項に記載の複合体。
(項目82)
標的と相互作用することが、前記標的の活性を低減することを含む、項目67〜79のいずれか一項に記載の複合体。
(項目83)
標的と相互作用することが、前記標的を不活性化することを含む、項目67〜79のいずれか一項に記載の複合体。
(項目84)
前記標的が、自己抗体、補体タンパク質、免疫複合体、血清アミロイドタンパク質、代謝産物又は毒素である、項目67〜83のいずれか一項に記載の複合体。
(項目85)
前記標的が、炎症分子、サイトカイン又はケモカインである、項目67〜83のいずれか一項に記載の複合体。
(項目86)
前記標的が、脂質又は炭水化物、アミノ酸である、項目67〜83のいずれか一項に記載の複合体。
(項目87)
前記標的が、ウイルス、ウイルス抗原、エンベロープ抗原又はカプシド抗原である、項目67〜83のいずれか一項に記載の複合体。
(項目88)
前記標的が、細菌、細菌性抗原、細菌性表面抗原、分泌細菌性毒素、又は分泌細菌性抗原である、項目67〜83のいずれか一項に記載の複合体。
(項目89)
前記標的が、真菌、真菌性抗原、真菌性細胞表面抗原、分泌真菌性毒素、又は分泌真菌性抗原である、項目67〜83のいずれか一項に記載の複合体。
(項目90)
前記標的がDNA又はRNAである、項目67〜83のいずれか一項に記載の複合体。
(項目91)
前記標的が、循環細胞、炎症細胞、腫瘍細胞、又は転移性癌細胞である、項目67〜83のいずれか一項に記載の複合体。
(項目92)
前記レシーバーポリペプチドが、補体受容体1(CR1)ポリペプチド、その変異体又は機能断片である、項目67〜83のいずれか一項に記載の複合体。
(項目93)
前記CR1ポリペプチドが、1つ以上のショートコンセンサスリピート(SCR)、補体制御タンパク質(CCP)及び/又はロング相同リピート(LHR)を含む、項目92に記載の複合体。
(項目94)
前記レシーバーポリペプチドが、ダッフィ抗原受容体複合体(DARC)、その変異体又は機能断片である、項目67〜83のいずれか一項に記載の複合体。
(項目95)
前記レシーバーポリペプチドが、抗体、一本鎖可変断片、ナノボディ、ダイアボディ、又はDARPinである、項目67〜83のいずれか一項に記載の複合体。
(項目96)
前記レシーバーポリペプチドが、リアーゼ、ヒドロラーゼ、プロテアーゼ、又はヌクレアーゼである、項目67〜83のいずれか一項に記載の複合体。
(項目97)
前記レシーバーポリペプチドが、前記合成レシーバーポリペプチド複合体の周りの環境に露出している、項目67〜96のいずれか一項に記載の複合体。
(項目98)
前記レシーバーポリペプチドが、前記合成レシーバーポリペプチド複合体の非露出側に位置する、項目67〜96のいずれか一項に記載の複合体。
(項目99)
前記レシーバーポリペプチドが前記膜に会合している、項目97又は98に記載の複合体。
(項目100)
前記レシーバーポリペプチドが融合物又はキメラである、項目67〜99のいずれか一項に記載の複合体。
(項目101)
前記融合物又はキメラが、Sドメイン、Aドメイン又はUドメインのうちの少なくとも1つを含み、前記Sドメインが前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の周りの前記環境に露出した表面ドメインであり、前記Aドメインがアンカーであり、前記Uドメインが前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の前記非露出側に向いており、前記Sドメイン、前記Aドメイン、及び/又は前記Uドメインが異なるポリペプチド由来である、項目100に記載の複合体。
(項目102)
前記Sドメイン及び/又は前記Aドメインが少なくとも6個のアミノ酸を含む、項目101に記載の複合体。
(項目103)
前記Aドメインが少なくとも30個のアミノ酸を含む、項目101に記載の複合体。
(項目104)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、少なくとも10コピー、100コピー、1,000コピー、10,000コピー、25,000コピー、50,000コピー、又は100,000コピー、500,000コピー、1,000,000コピー、又は2,000,000コピーのレシーバーポリペプチドを含み、及び/又は前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、少なくとも1:10,000の前記レシーバーポリペプチドと、ホスファチジルコリン、スフィンゴミエリン、リゾホスファチジルコリン、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、又はホスファチジン酸からなる群から選択される膜脂質との比を含む、項目1に記載の複合体。
(項目105)
前記レシーバーポリペプチドが組換え核酸によってコードされる、項目1〜104のいずれか一項に記載の複合体。
(項目106)
前記組換え核酸が前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体によって保持されない、項目105に記載の複合体。
(項目107)
前記レシーバーポリペプチドの発現が有効に終結される、項目105に記載の複合体。
(項目108)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が実質的な量の複製核酸を含有しない、項目67〜107のいずれか一項に記載の複合体。
(項目109)
項目67〜108のいずれか一項に記載の合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の集団と、薬学的に許容可能な担体とを含む医薬組成物。
(項目110)
少なくとも1×10 5 個の合成膜−レシーバー複合体を含む、項目109に記載の医薬組成物。
(項目111)
前記合成膜−レシーバー複合体が、約10nl、100nl、1μl、10μl、100μl、1ml、10ml、20ml、又は50mlの容積で提供される、項目110に記載の医薬組成物。
(項目112)
少なくとも1×10 11 個の合成膜−レシーバー複合体を含む、項目109に記載の医薬組成物。
(項目113)
前記合成膜−レシーバー複合体が、約1ml、10ml、20ml、50ml、100ml、250ml、又は500mlの容積で提供される、項目112に記載の医薬組成物。
(項目114)
長期保存用に製剤化される、項目109〜113のいずれか一項に記載の医薬組成物。
(項目115)
凍結される、項目109〜113のいずれか一項に記載の医薬組成物。
(項目116)
薬学的に活性な薬剤を含む、項目109〜115のいずれか一項に記載の医薬組成物。
(項目117)
前記薬学的に活性な薬剤が、生物学的薬剤、小分子薬剤、又は核酸薬剤から選択される、項目116に記載の医薬組成物。
(項目118)
静脈内注射用の液体懸濁物として製剤化された項目109に記載の医薬組成物を含む剤形。
(項目119)
項目109に記載の医薬組成物を保持する容器と、対象への前記医薬組成物の静脈内注射用のアプリケーターとを含む医療器具。
(項目120)
項目109に記載の医薬組成物と、対象への前記医薬組成物の静脈内注射用の医療器具とを含む医療用キット。
(項目121)
哺乳類対象の循環系における標的の存在又は濃度に関連する疾患、障害又は病態を治療又は予防する方法であって、項目109〜117のいずれか一項に記載の医薬組成物を疾患、障害又は病態の治療又は予防に有効な量で前記対象に静脈内投与するステップを含む方法。
(項目122)
前記標的が前記疾患、障害又は病態に関連する、項目121に記載の方法。
(項目123)
標的の循環濃度をモジュレートする方法であって、哺乳類対象の循環系における前記標的の存在、非存在、濃度上昇又は濃度低下に関連する疾患、障害又は病態に罹患しているか又はそれを発症するリスクがある前記対象に、合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物を、前記標的の前記循環濃度を実質的にモジュレートするのに有効な量で投与するステップを含む方法。
(項目124)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が、前記対象の血漿量に等しい分布容積を有する、項目123に記載の方法。
(項目125)
循環中の合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の量が、i)初回に投与された前記複合体の濃度の50%、又はii)循環中の前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体のCmaxの50%に減少したとき、投与が繰り返される、項目123に記載の方法。
(項目126)
前記合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が循環中の前記標的と相互作用する、項目123〜125のいずれか一項に記載の方法。
(項目127)
前記標的と相互作用することが、前記標的を結合し、分解し、切断し及び/又は隔絶することを含む、項目126に記載の方法。
(項目128)
前記標的と相互作用することが、前記標的の活性を改変することを含む、項目126に記載の方法。
(項目129)
前記標的と相互作用することが、前記標的の活性を低減することを含む、項目126に記載の方法。
(項目130)
前記標的と相互作用することが、前記標的を不活性化することを含む、項目126に記載の方法。
(項目131)
前記標的と相互作用することが、前記標的を触媒的に変換することを含む、項目126に記載の方法。
(項目132)
モジュレートすることが、前記標的の前記循環濃度を低減することからなる、項目123〜131のいずれか一項に記載の方法。
(項目133)
前記対象の前記循環系における前記標的の存在又はレベル上昇が、前記疾患、障害又は病態に関連する、項目132に記載の方法。
(項目134)
非標的化合物の循環濃度を増加させるステップをさらに含む、項目132に記載の方法。
(項目135)
前記対象の前記循環系における前記非標的化合物の非存在又はレベル低下が、前記疾患、障害又は病態に関連する、項目134に記載の方法。
(項目136)
前記標的が、生物学的化合物、無機化合物、有機化合物、気体化合物又は元素である、項目123〜135のいずれか一項に記載の方法。
(項目137)
前記標的が、1000Da未満、500Da未満、250Da未満、又は100Da未満である、項目123〜135のいずれか一項に記載の方法。
(項目138)
前記標的が1kDaより大きい、項目123〜135のいずれか一項に記載の方法。
(項目139)
前記標的が、ポリペプチド、脂質、炭水化物、核酸、アミノ酸、代謝産物、又は小分子である、項目123〜135のいずれか一項に記載の方法。
(項目140)
前記標的が、抗体、補体因子、免疫複合体、血清アミロイドタンパク質、細菌性病原体、真菌性病原体、ウイルス性病原体、又は感染した、病原性の、アポトーシスを起こした、壊死した、異常な若しくは発癌性の哺乳類細胞である、項目123〜135のいずれか一項に記載の方法。
(項目141)
前記標的がアミロイドポリペプチドである、項目123〜135のいずれか一項に記載の方法。
(項目142)
前記標的が補体ポリペプチドである、項目123〜135のいずれか一項に記載の方法。
(項目143)
前記標的の前記循環濃度の実質的なモジュレーションが可逆的である、項目123〜135のいずれか一項に記載の方法。
(項目144)
前記標的の前記循環濃度の実質的なモジュレーションが時間的に限定されている、項目123〜135のいずれか一項に記載の方法。
(項目145)
前記標的の前記循環濃度の実質的なモジュレーションが空間的に限定されている、項目123〜135のいずれか一項に記載の方法。
(項目146)
本明細書に開示される疾患、障害、又は病態のいずれかの治療において使用される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物。
(項目147)
哺乳類対象の循環系における標的の存在又は濃度に関連する疾患、障害、又は病態の治療において使用される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物。
(項目148)
標的の循環濃度のモジュレーションにおいて使用される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物。
「投与」、「投与する」及びそれらの変形は、組成物、例えば合成膜−レシーバー複合体、又は薬剤を対象に導入することを意味し、組成物又は薬剤の同時の及び逐次的な導入が含まれる。対象への組成物又は薬剤の導入は、経口、経肺、鼻腔内、非経口(静脈内、筋肉内、腹腔内、又は皮下)、経直腸、リンパ内、又は局所を含めた任意の好適な経路による。投与には、自己投与及び他人による投与が含まれる。投与経路が好適であれば、組成物又は薬剤はその意図された機能を果たすことができる。例えば、好適な経路が静脈内である場合、対象の静脈中に組成物又は薬剤を導入することによって組成物が投与される。投与は任意の好適な経路によって実施することができる。
本明細書には、合成膜−レシーバー複合体、集団、医薬組成物、及びその剤形、並びに合成膜−レシーバー複合体の製剤を含む医療器具及びキットが提供される。
1.脂質
一実施形態において、合成膜−レシーバーポリペプチド複合体は、約1×10−12gの質量及び約1.15g/cm3の密度を有する膜を含む。膜成分の質量は、弱アルカリ性緩衝液の低張液を使用してそれを複合体の残りの部分と分離することにより評価し得る。例えば、Dodge et al 1963,Arch Biochem Biophys 100:119のプロトコルを参照されたい。
一実施形態において、合成膜−レシーバーポリペプチド複合体はコレステロールを含む。一実施形態において、コレステロール含量は107個の複合体当たり約3.0〜5.5nmolのコレステロールである。一実施形態において、コレステロール含量は107個の複合体当たり約1.8〜3.5nmolのコレステロールである。一実施形態において、複合体中のコレステロールとリン脂質とのモル比は約0.5〜1.5である。好ましい実施形態において、コレステロールとリン脂質とのモル比は約0.8〜1.2である。好ましい実施形態において、コレステロールとリン脂質とのモル比は約0.84〜0.9である。好ましい実施形態において、コレステロールとリン脂質とのモル比は約0.5〜0.75である。好ましい実施形態において、コレステロールとリン脂質とのモル比は約0.55〜0.6である。
一実施形態において、合成膜−レシーバーポリペプチド複合体は、レシーバーポリペプチド以外のポリペプチドを含む。一実施形態において、膜質量の約52%がタンパク質であり、約40%が脂質であり、及び約8%が炭水化物である。一実施形態において、炭水化物含量の約7%がスフィンゴ糖脂質を含み、及び炭水化物含量の約93%が膜結合ポリペプチド上のO−結合型及びN−結合型オリゴ糖類を含む。
一部の実施形態において、合成膜−レシーバー複合体は、レシーバーでない少なくとも1個のポリペプチドを含む。一部の実施形態において、合成膜−レシーバー複合体は、レシーバーでない少なくとも2個、少なくとも3個、少なくとも4個、少なくとも5個、少なくとも6個、少なくとも7個、少なくとも8個、少なくとも9個又は少なくとも10個のポリペプチドを含む。場合によっては、このポリペプチドは、レシーバーとは無関係に酵素機能又は触媒機能の能力を有する。非レシーバーポリペプチドは合成膜−レシーバー複合体の膜と会合していてもよい。
細胞間接着が媒介され、スーパー抗原依存的T細胞媒介性増殖が増進され、及びT細胞活性化が共刺激される。
本明細書には、合成膜−レシーバー複合体によって呈示されるレシーバーが提供される。一部の実施形態において、レシーバーは標的との相互作用能を有して、例えば標的と会合し、又はそれに結合する。レシーバーはポリペプチドを含むか、又は本質的にポリペプチドからなり得る。一部の実施形態において、レシーバーは、ポリペプチド、炭水化物、核酸、脂質、小分子、又はそれらの組み合わせを含む。一部の実施形態において、レシーバーは標的と相互作用せず、しかし合成膜−レシーバー複合体によって細胞、組織又は対象の体内の他の部位に送達されるペイロードとして機能する。
特定の実施形態において、Aドメインは膜ポリペプチドである。Aドメインは、例えば、内在性膜ポリペプチド又は膜結合ポリペプチドであり得る。
一部の実施形態において、Sドメインはタンパク質又はポリペプチドである。他の実施形態において、Sドメインは核酸である。一部の実施形態において、Sドメインは化学物質である。特定の実施形態において、Sドメインは小分子である。
一部の実施形態において、Uドメインはタンパク質又はポリペプチドである。他の実施形態において、Uドメインは核酸である。一部の実施形態において、Uドメインは化学物質である。特定の実施形態において、Uドメインは小分子である。
レシーバーポリペプチドの例としては、以下が挙げられる:ポリペプチドレシーバーは、N末端にHAエピトープタグを有するグリコホリンAを含む;ポリペプチドレシーバーは、グリコホリンAのリーダー配列、HAエピトープタグ、及びグリコホリンAの本体配列を含む;ポリペプチドレシーバーは、補体受容体1(CR1)を含む;ポリペプチドレシーバーは、CR1のリーダー配列、HAエピトープタグ、CR1の本体配列を含む;ポリペプチドレシーバーは、CR1のリーダー配列、HAエピトープタグ、CR1のLHR−A及びLHR−Bの6つのSCRドメイン、CR1の膜近位の2つのSCRドメイン、CR1の膜貫通領域、及びCR1の細胞内領域を含む;ポリペプチドレシーバーは、CR1のリーダー配列、HAエピトープタグ、CR1のLHR−A及びLHR−B及びLHR−Cの9つのSCRドメイン、CR1の膜近位の2つのSCRドメイン、CR1の膜貫通領域、及びCR1の細胞内領域を含む;ポリペプチドレシーバーは、CR1のリーダー配列、CR1のLHR−A、CR1のLHR−B、CR1のLHR−C、CR1の膜近位の2つのSCRドメイン、CR1の膜貫通領域、及びCR1の細胞内領域を含む;ポリペプチドレシーバーは、CR1のリーダー配列、CR1のLHR−A、CR1のLHR−B、CR1のLHR−C、CR1の膜近位の2つのSCRドメイン、グリコホリンAの膜貫通領域及び細胞内領域を含む;ポリペプチドレシーバーは、グリコホリンAのリーダー配列、B型肝炎表面抗原に対する抗体scFv(scFv)、(Gly3Ser)2可動性リンカー、HAエピトープタグ、及びグリコホリンAの本体を含む;ポリペプチドレシーバーは、Kell、(Gly3Ser)2可動性リンカー、HAエピトープタグ、及びscFvを含む;ポリペプチドレシーバーは、Kell及びHAエピトープタグを含む;ポリペプチドレシーバーは、Kellの71アミノ酸N末端断片及びHAエピトープタグを含む;ポリペプチドレシーバーは、Kellの71アミノ酸N末端断片、(Gly3Ser)2可動性リンカー、及びHAエピトープタグを含む;ポリペプチドレシーバーは、Kellの79アミノ酸N末端断片及びHAエピトープタグを含む;ポリペプチドレシーバーは、Kellの79アミノ酸N末端断片、(Gly3Ser)2可動性リンカー、及びHAエピトープタグを含む;ポリペプチドレシーバーは、Kellの71アミノ酸N末端断片、(Gly3Ser)2可動性リンカー、scFv、及びHAエピトープタグを含む;ポリペプチドレシーバーは、Kellの79アミノ酸N末端断片、(Gly3Ser)2可動性リンカー、scFv、及びHAエピトープタグを含む;ポリペプチドレシーバーは、CD55のリーダー配列、scFv、HAエピトープタグ、及びCD55の末端37アミノ酸を含む;ポリペプチドレシーバーは、CD55のリーダー配列、HAエピトープタグ、及びCD55の本体を含む。一実施形態において、ポリペプチドレシーバーは、CD59のリーダー配列、scFv、HAエピトープタグ、及びCD59の本体を含む;ポリペプチドレシーバーは、CD59のリーダー配列、及びHAエピトープタグ、及びCD59の本体を含む;ポリペプチドレシーバーは、アデノシンデアミナーゼ及びHAエピトープタグを含む;ポリペプチドレシーバーは、フェニルアラニンヒドロキシラーゼ及びHAエピトープタグを含む;ポリペプチドレシーバーは、アデノシンデアミナーゼ、(Gly3Ser)2可動性リンカー、フェニルアラニンヒドロキシラーゼ、及びHAエピトープタグを含む;ポリペプチドレシーバーは、グリコホリンA、細胞質C末端のアデノシンデアミナーゼ、及びHAエピトープタグを含む;ポリペプチドレシーバーは、グリコホリンA、細胞質C末端のフェニルアラニンヒドロキシラーゼ、及びHAエピトープタグを含む。
特定の実施形態において、ポリペプチドレシーバーは合成膜−レシーバーポリペプチド複合体内で発現する。ポリペプチドレシーバーは合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の表面上に呈示されてもよく、又は合成膜−レシーバーポリペプチド複合体内にあってもよい。
合成膜−レシーバー複合体には、ペプチド、タンパク質、DNA、RNA、iRNA、及び他の高分子及び治療用小分子などのペイロードを任意選択で負荷し得る。一部の実施形態において、ペイロードは、細胞に所定の時間にわたり制御された傷害を加えることによって細胞膜に摂動を生じさせ、ペイロードを細胞の内部(例えば細胞質)に送達し得るようにすることで、細胞、例えば赤血球系細胞又は血小板に移入される。
本明細書には、標的との相互作用能を有するレシーバーポリペプチドを含む合成膜−レシーバーポリペプチド複合体が提供される。本明細書にはさらに、標的との相互作用能を有する非ポリペプチドレシーバーを含む合成膜−レシーバー複合体が提供される。合成膜−レシーバー複合体は、対象の循環系に滞留する標的の量又は濃度をモジュレートするため、それを必要としている対象に投与され得る。好適なレシーバーは、特定の標的と相互作用するように選択され得る。好適な標的には、特定の疾患、障害、又は病態に関連する実体が含まれる。しかしながら、標的はまた、特定の疾患、障害、又は病態とは無関係に選択されてもよい。
合成膜−レシーバー複合体は、本明細書に記載される任意の方法によって作成することができる。一部の実施形態において、そのステップには、造血幹細胞に由来する任意選択で培養した単離細胞をレシーバーと接触させるステップが含まれる。造血幹細胞は、ミエロイド(単球及びマクロファージ、好中球、好塩基球、好酸球、赤血球、巨核球/血小板、樹状細胞)及びリンパ球系列(T細胞、B細胞、NK細胞)を含めた、哺乳類血液に見られるあらゆる血液細胞型を生じさせる。造血幹細胞は、例えば、大腿骨、寛骨、肋骨、又は胸骨を含めた成人骨の骨髄から単離され得る。細胞は殿部から直接、例えば針及びシリンジによる吸引を用いて骨髄から細胞を取り出すことによって得られてもよい。或いは、造血幹細胞は、サイトカイン、例えば顆粒球コロニー刺激因子(G−CSF)などによる前処理後の正常末梢血から単離されてもよい。G−CSFは、骨髄コンパートメントから末梢循環への細胞の放出を動員する。他の造血幹細胞源としては、臍帯血及び胎盤が挙げられる。
本明細書に記載される合成膜−レシーバー複合体を作成するための供給源には、赤血球系細胞などの循環細胞が含まれる。好適な細胞供給源は、本明細書に記載されるとおり対象から単離するか、患者由来の造血前駆細胞又は赤血球前駆細胞からか、固定化した赤血球系細胞株から誘導するか、又は任意選択で培養して分化させた人工多能性幹細胞から誘導し得る。細胞培養技法を用いて赤血球を生成する方法は、当該技術分野において周知である。例えば、Giarratana et al.,Blood 2011,118:5071、Huang et al.,Mol Ther 2013,epub ahead of print September 3、又はKurita et al.,PLOS One 2013,8:e59890である。プロトコルは、成長因子、出発細胞株、培養期間、及び得られる細胞を特徴付ける形態学的形質に応じて異なる。培養システムはまた、ドナー輸血の代用となり得る血液製造用に確立されている(Fibach et al.1989 Blood 73:100)。最近では、CD34+細胞が網赤血球段階に分化されており、続くヒト対象への輸血が成功した(Giarratana et al.,Blood 2011,118:5071)。
本明細書には、対象への投与に好適な、合成膜−レシーバー複合体を含む医薬組成物が提供される。本医薬組成物は、概して合成膜−レシーバー複合体の集団と薬学的に許容可能な担体とを対象への投与に好適な形態で含む。薬学的に許容可能な担体は、一部には、投与される詳細な組成物によって決まると共に、組成物の投与に用いられる詳細な方法によっても決まる。従って、合成膜−レシーバー複合体の集団を含む医薬組成物の好適な製剤は多種多様である(例えば、Remington’s Pharmaceutical Sciences,Mack Publishing Co.,Easton,Pa.18th ed.(1990)を参照)。本医薬組成物は、概して、無菌で実質的に等張性の、且つ米国食品医薬品局(U.S.Food and Drug Administration)の医薬品の製造管理及び品質管理に関する基準(GMP)の全ての規則に完全に準拠したものとして製剤化される。
一部の実施形態において、膜−レシーバー複合体は、前駆体造血細胞、例えば、CD34+細胞、赤血球、血小板、巨核球、又は好中球を供給源として使用して作成される。一部の実施形態において、前駆体造血細胞はGMPに準拠した方法によってヒトドナーから単離される。一部の実施形態において、出発細胞は自己ドナーから供給される。一部の実施形態において、出発細胞は同種ドナーから供給される。ドナーは血液細胞抗原多型についてタイピングされてもよく、及び/又はドナーは血液細胞抗原について遺伝子型が同定される。ドナーは万能血液ドナーであってもよい。一部の実施形態において、ドナーはボンベイ表現型を有し、即ちH抗原を発現しない。一部の実施形態において、ドナーはABO血液型Oを有し、且つRh陰性である。
本明細書には、標的の循環濃度をモジュレートすることにより、対象の循環系におけるその標的の存在、非存在、濃度上昇又は濃度低下に関連する疾患、障害又は病態を治療又は予防する方法が提供される。対象は疾患、障害又は病態に罹患していてもよく、又は疾患、障害又は病態を発症するリスクを有していてもよい。本明細書に提供される方法は、標的の循環濃度を実質的にモジュレートするのに有効な量で本明細書に記載される好適な合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を投与し、それによって疾患、障害又は病態を予防又は治療することを含む。一部の実施形態において、合成膜−レシーバーポリペプチド複合体は医薬組成物として製剤化される。一部の実施形態において、本医薬組成物は、対象への静脈内注射用に製剤化される。本組成物は対象に1回投与されてもよい。或いは、所定の期間にわたって複数回の投与が行われてもよい。例えば、2回、3回、4回、5回、又はそれを超える投与が対象に提供され得る。一部の実施形態において、投与は、例えば疾患、障害又は病態に関連する症状が持続している限り、必要に応じて提供され得る。一部の実施形態において、対象の生涯にわたって反復投与が指示され得る。治療期間は様々であってよく、例えば、1年以下、6ヵ月、3ヵ月、2ヵ月、1ヵ月、2週間、1週間、3日、2日、又は1日以下であり得る。
一部の実施形態では、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を使用して、自己抗体に関連する疾患、障害又は病態を治療又は予防し得る。
一部の実施形態において、対象は、グッドパスチャー症候群の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。グッドパスチャー症候群に罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態において、対象は、抗リン脂質症候群(APS)の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。APSに罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態において、対象は、膜性糸球体腎炎、膜性腎炎(MN)とも称される膜性糸球体症(MGN)の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。MGNに罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態では、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を使用して、補体調節異常に関連する疾患、障害又は病態が治療又は予防され得る。
一部の実施形態において、対象は、発作性夜間ヘモグロビン尿症(PNH)の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。PNHに罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態において、対象は、非定型溶血性尿毒症症候群(aHUS)の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。aHUSに罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態において、対象は、加齢性黄斑変性症(AMD)の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。AMDに罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態では、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を使用して、免疫複合体又は免疫複合体クリアランス不全に関連する疾患、障害又は病態が治療又は予防され得る。
一部の実施形態において、対象は、全身性エリテマトーデス(SLE)の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。SLEに罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、合成膜−CR1レシーバー複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態において、対象は、IgA腎症の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。IgA腎症に罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、合成膜−CR1レシーバー複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態では、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を使用してアミロイドーシスを治療又は予防し得る。一部の実施形態では、レシーバーポリペプチドを含有しない膜−レシーバー複合体が用いられる。レシーバーは、例えばグリコサミノグリカン(GAG)であってもよい。
一部の実施形態において、対象は、AAアミロイドーシスの治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。AAアミロイドーシスに罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態において、対象は、ALアミロイドーシスの治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。ALアミロイドーシスに罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態において、対象は、β2−ミクログロブリンアミロイドーシスの治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。β2−ミクログロブリンアミロイドーシスに罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態では、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を使用して、感染病原体に関連する疾患、障害又は病態が治療又は予防され得る。
一部の実施形態において、対象は、細菌感染症の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。細菌感染症に罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態において、対象は、真菌感染症の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。真菌感染症に罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態において、対象は、寄生虫感染症の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。寄生虫感染症に罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態において、対象は、ウイルス感染症の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。ウイルス感染症に罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態では、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を使用して、毒素又は毒物によって引き起こされる被毒状態又は中毒を治療又は予防し得る。
一部の実施形態において、対象は、ボツリヌス毒素(BTX)中毒の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。BTX中毒に罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態において、対象は、スクレイピー型(PrPsc)のプリオンタンパク質によって引き起こされるクロイツフェルトヤコブ病(CJD)の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。CJDに罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態において、対象は、敗血症の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。敗血症中毒に罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態では、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を使用して、脂質又はコレステロールの蓄積に関連する疾患及び病態を治療又は予防し得る。
一部の実施形態において、対象は、リポタンパク質リパーゼ欠損症の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。リポタンパク質リパーゼ欠損症に罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態では、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を使用して、例えば癌などの、感染細胞、異常細胞又は発癌性細胞に関連する疾患及び病態を治療又は予防し得る。
一部の実施形態において、対象は、癌の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。癌に罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態では、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を使用して代謝欠陥に関連する疾患及び病態を治療又は予防し得る。合成膜−レシーバーポリペプチド複合体の概略的な例を図13Aに示す。
一部の実施形態において、対象は、アデノシンデアミナーゼ(ADA)欠損症の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。ADA欠損症に罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態において、対象は、フェニルケトン尿症(PKU)の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。PKUに罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態において、対象は、ミトコンドリア神経胃腸脳症(MNGIE)の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。MNGIEに罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
本明細書に記載される合成複合体は、リソソーム蓄積障害の治療に有用であり得る。一実施形態において、合成膜−レシーバーポリペプチド複合体は、細胞リソソームにおいて活性な、且つリソソーム酵素が欠損した細胞のリソソームに蓄積した毒性化合物、例えば、タンパク質、ポリペプチド、炭水化物、又は脂質を分解することのできるレシーバー、例えば酵素を含む。レシーバーはこれらの細胞のリソソームに蓄積した毒性化合物の量を減少させることによって作用し、ひいては疾患の負担を低減する。リソソーム蓄積障害としては、限定はされないが、ムコ多糖症I、ゴーシェ病、ファブリー病、ポンペ病並びに表6及び表8に掲載されるものが挙げられる。
一実施形態において、疾患又は病態はムコ多糖症MPS I H/S(ハーラー・シャイエ症候群;607015)であり、レシーバーはα−l−イズロニダーゼ又はその断片であり、及び標的はグリコサミノグリカンである。一実施形態において、疾患又は病態はムコ多糖症MPS I−H(ハーラー症候群;607014)であり、レシーバーはα−l−イズロニダーゼ又はその断片であり、及び標的はグリコサミノグリカンである。一実施形態において、疾患又は病態はムコ多糖症MPS II(ハンター症候群;309900)であり、レシーバーはイズロン酸硫酸スルファターゼ又はその断片であり、及び標的はグリコサミノグリカンである。一実施形態において、疾患又は病態はムコ多糖症MPS III(サンフィリポ症候群)III−A型(252900)であり、レシーバーはヘパラン−S−硫酸スルファミダーゼ又はその断片であり、及び標的はグリコサミノグリカンである。一実施形態において、疾患又は病態はムコ多糖症MPS III(サンフィリポ症候群)III−B型(252920)であり、レシーバーはN−アセチル−D−グルコサミニダーゼ又はその断片であり、及び標的はグリコサミノグリカンである。一実施形態において、疾患又は病態はムコ多糖症MPS III(サンフィリポ症候群)III−C型(252930)であり、レシーバーはアセチル−CoA−グルコサミニドN−アセチルトランスフェラーゼ又はその断片であり、及び標的はグリコサミノグリカンである。一実施形態において、疾患又は病態はムコ多糖症MPS III(サンフィリポ症候群)III−D型(252940)であり、レシーバーはN−アセチル−グルコサミニン(glucosaminine)−6−硫酸スルファターゼ又はその断片であり、及び標的はグリコサミノグリカンである。一実施形態において、疾患又は病態はムコ多糖症MPS I−S(シャイエ症候群;607016)であり、レシーバーはα−l−イズロニダーゼ又はその断片であり、及び標的はグリコサミノグリカンである。一実施形態において、疾患又は病態はムコ多糖症MPS IV(モルキオ症候群)IV−A型(253000)であり、レシーバーはガラクトサミン−6−硫酸スルファターゼ又はその断片であり、及び標的はグリコサミノグリカンである。一実施形態において、疾患又は病態はムコ多糖症MPS IV(モルキオ症候群)IV−B型(253010)であり、レシーバーはβ−ガラクトシダーゼ又はその断片であり、及び標的はグリコサミノグリカンである。一実施形態において、疾患又は病態はムコ多糖症MPS IX(ヒアルロニダーゼ欠損症;601492)であり、レシーバーはヒアルロニダーゼ又はその断片であり、及び標的はグリコサミノグリカンである。一実施形態において、疾患又は病態はムコ多糖症MPS VI(マロトー・ラミー症候群;253200)であり、レシーバーはN−アセチルガラクトサミンα−4−硫酸スルファターゼ(アリールスルファターゼB)又はその断片であり、及び標的はグリコサミノグリカンである。一実施形態において、疾患又は病態はムコ多糖症MPS VII(スライ症候群;253220)であり、レシーバーはβ−グルクロニダーゼ又はその断片であり、及び標的はグリコサミノグリカンである。一実施形態において、疾患又は病態はムコスルファチドーシス(多種スルファターゼ欠損症;272200)であり、レシーバーはスルファターゼ修飾因子−1又はその断片であり、及び標的はスルファチドである。一実施形態において、疾患又は病態はニーマン・ピック病A型であり、レシーバーはスフィンゴミエリナーゼ又はその断片であり、及び標的はスフィンゴミエリンである。一実施形態において、疾患又は病態はニーマン・ピック病B型であり、レシーバーはスフィンゴミエリナーゼ又はその断片であり、及び標的はスフィンゴミエリンである。一実施形態において、疾患又は病態はニーマン・ピック病C1型/D型(257220)であり、レシーバーはNPC1タンパク質又はその断片であり、及び標的はスフィンゴミエリンである。一実施形態において、疾患又は病態はニーマン・ピック病C2型(607625)であり、レシーバーは精巣上体分泌タンパク質1(HE1;NPC2タンパク質)又はその断片であり、及び標的はスフィンゴミエリンである。一実施形態において、疾患又は病態はプロサポシン欠損症(176801)であり、レシーバーはプロサポシン又はその断片であり、及び標的はスフィンゴ脂質である。一実施形態において、疾患又は病態はピクノディスオストーシス(265800)であり、レシーバーはカテプシンK又はその断片であり、及び標的はキニンである。一実施形態において、疾患又は病態はサンドホフ病;268800であり、レシーバーはβ−ヘキソサミニダーゼB又はその断片であり、及び標的はガングリオシドである。一実施形態において、疾患又は病態はサポシンB欠損症(スルファチドアクチベーター欠損症)であり、レシーバーはサポシンB又はその断片であり、及び標的はスフィンゴ脂質である。一実施形態において、疾患又は病態はサポシンC欠損症(ゴーシェアクチベーター欠損症)であり、レシーバーはサポシンC又はその断片であり、及び標的はスフィンゴ脂質である。一実施形態において、疾患又は病態はシンドラー病I型(乳児重症型;609241)であり、レシーバーはN−アセチル−ガラクトサミニダーゼ又はその断片であり、及び標的は糖タンパク質である。一実施形態において、疾患又は病態はシンドラー病II型(カンザキ病、成人発症型;609242)であり、レシーバーはN−アセチル−ガラクトサミニダーゼ又はその断片であり、及び標的は糖タンパク質である。一実施形態において、疾患又は病態はシンドラー病III型(中間型;609241)であり、レシーバーはN−アセチル−ガラクトサミニダーゼ又はその断片であり、及び標的は糖タンパク質である。一実施形態において、疾患又は病態はシアリドーシス(256550)であり、レシーバーはノイラミニダーゼ1(シアリダーゼ)又はその断片であり、及び標的はムコ多糖及びムコ脂質である。一実施形態において、疾患又は病態はシアル酸尿症フィンランド型(サラ病;604369)であり、レシーバーはリン酸Na共輸送体、シアリン又はその断片であり、及び標的はシアル酸である。一実施形態において、疾患又は病態はシアル酸尿症フランス型(269921)であり、レシーバーはUDP−N−アセチルグルコサミン−2−エピメラーゼ/N−アセチルマンノサミンキナーゼ、シアリン又はその断片であり、及び標的はシアル酸である。一実施形態において、疾患又は病態はスフィンゴリピドーシスI型(230500)であり、レシーバーはガングリオシドβ−ガラクトシダーゼ又はその断片であり、及び標的はスフィンゴ脂質である。一実施形態において、疾患又は病態はスフィンゴリピドーシスII型(若年型;230600)であり、レシーバーはガングリオシドβ−ガラクトシダーゼ又はその断片であり、及び標的はスフィンゴ脂質である。一実施形態において、疾患又は病態はスフィンゴリピドーシスIII型(成人型;230650)であり、レシーバーはガングリオシドβ−ガラクトシダーゼ又はその断片であり、及び標的はスフィンゴ脂質である。一実施形態において、疾患又は病態はテイ・サックス病;272800であり、レシーバーはβ−ヘキソサミニダーゼA又はその断片であり、及び標的はガングリオシドである。一実施形態において、疾患又は病態はウィンチェスター症候群(277950)であり、レシーバーはメタロプロテイナーゼ−2又はその断片であり、及び標的はムコ多糖である。一実施形態において、疾患又は病態はウォルマン病であり、レシーバーはリソソーム酸リパーゼ又はその断片であり、及び標的は脂質及びコレステロールである。一実施形態において、疾患又は病態はα−マンノシドーシス(248500)、I型(重症)又はII型(軽症)であり、レシーバーはα−D−マンノシダーゼ又はその断片であり、及び標的は炭水化物及び糖タンパク質である。一実施形態において、疾患又は病態はβ−マンノシドーシス(248510)であり、レシーバーはβ−D−マンノシダーゼ又はその断片であり、及び標的は炭水化物及び糖タンパク質である。
一部の実施形態では、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を使用して癌を治療又は予防し得る。
一部の実施形態において、対象は、急性リンパ芽球性白血病(ALL)の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。ALLに罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態では、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を使用して、例えば血管タンパク質の血管欠損症に関連する疾患及び病態を治療又は予防し得る。本発明のこの態様の概略的な例を図13Bに示す。
一部の実施形態において、対象は、血友病の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。血友病に罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
一部の実施形態において、対象は、血栓性血小板減少性紫斑病(TTP)の治療を受けているか、又はそれを受けることによって利益を得るであろうものとして特定され得る。TTPに罹患しているか又はそれを発症するリスクがある対象には、疾患の治療又は予防のため、本明細書に記載される合成膜−レシーバーポリペプチド複合体を含む医薬組成物が投与され得る。
以下の遺伝子をコードするDNA−グリコホリンA(Uniprot番号P02724)、Kell(Uniprot番号P23276)、B型肝炎表面抗原に対する抗体scFv(Bose et al.2003 Mol Immunol 40(9):617、GenBank番号AJ549501.1)、アデノシンデアミナーゼ(Uniprot番号P00813)、クロモバクテリウム・ビオラセウム(Chromobacterium violaceum)由来のフェニルアラニンヒドロキシラーゼ(GenBank番号AF146711.1)、補体受容体1(Uniprot番号P17927)、CD46(GenBank:BAA12224.1)、CD55(Uniprot番号P08174)、CD59(Uniprot番号P13987)、緑色蛍光タンパク質(Uniprot番号P42212)、チミジンホスホリラーゼ(Uniprot番号P19971)、グルコセレブロシダーゼ(Uniprot番号P04062)、β2グリコプロテイン1(Uniprot番号P02749)、ホスホリパーゼa2受容体(Uniprot番号Q13018)、コラーゲンα3(IV)(Uniprot番号Q01955)、血清アミロイドP(Uniprot番号P02743)、リポタンパク質リパーゼ(Uniprot番号P06858)、アスパラギナーゼ(Uniprot番号P00805)、第IX因子(Uniprot番号F2RM35)、ADAMTS13(Uniprot番号Q76LX8)−をcDNAとしてDharmacon(GE Life Sciences)から購入するか、又はDNA2.0及びGenscriptでデノボ合成した。
当該技術分野において公知の標準的な分子生物学的方法によって遺伝子をアセンブルし、発現ベクターにした。補体受容体1(CR1)の遺伝子は商業的供給業者(DNA2.0)によって合成され、標準クローニングベクター(pJ系列)として供給された。このpJベクターから、非相同末端配列を有するオリゴを使用するポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によって遺伝子を増幅し、哺乳類発現ベクター(System Biosciences、pM系列)への挿入用に調製した:上流オリゴは、上流pM挿入部位に相同の25ntとCR1の始端に相同の25ntとからなった;下流オリゴは、下流pM挿入部位に相同の25ntとCR1の終端に相同の25ntとからなった。増幅産物はゲル電気泳動(Qiagen)によって精製した。上流及び下流挿入部位に相同の尾−尾型オリゴによるPCRでpMベクターを線状化し、PCR精製(Qiagen)によって精製した。Gibson 2011,Methods Enzymology Vol 498,p.394に詳説されるギブソンアセンブリにより、CR1アンプリコンを線状化pMベクターにライゲートした。配列はサンガー塩基配列決定法で確認した。
Kellの遺伝子はcDNAとして購入し、標準クローニングベクター(pJ系列)として供給された。B型肝炎表面抗原に特異的な抗体scFvの遺伝子(scFv、Bose 2003,Molecular Immunology 40:617に記載される)は商業的供給業者(DNA2.0)によって合成され、標準クローニングベクター(pJ系列)として供給された。これらのpJベクターから、非相同末端配列を有するオリゴを使用するポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によって遺伝子を増幅し、哺乳類発現ベクター(System Biosciences、pM系列)への挿入用に調製した。Kellは、上流pM挿入部位に相同の25ntとKellの5’末端に相同の25ntとからなる上流オリゴ、及びscFvの5’末端に相同の25ntとKellの3’末端に相同の25ntとからなる下流オリゴで増幅した。scFvは、Kell挿入部位の3’末端に相同の25ntとscFvの5’末端に相同の25ntとからなる上流オリゴ、及び下流pM挿入部位に相同の25ntとscFvの3’末端に相同の25ntとからなる下流オリゴで増幅した。増幅産物はゲル電気泳動(Qiagen)によって精製した。上流及び下流挿入部位に相同の尾−尾型オリゴによるPCRでpMベクターを線状化し、PCR精製(Qiagen)によって精製した。Gibson 2011,Methods Enzymology Vol 498,p.394に詳説されるワンポットギブソンアセンブリにより、Kell及びscFvアンプリコンを線状化pMベクターにライゲートした。配列はサンガー塩基配列決定法で確認した。
Kellの遺伝子はcDNAとして購入し、標準クローニングベクター(pJ系列)として供給された。B型肝炎表面抗原に特異的な抗体scFvの遺伝子(scFv、Bose 2003,Molecular Immunology 40:617に記載される)は商業的供給業者(DNA2.0)によって合成され、標準クローニングベクター(pJ系列)として供給された。これらのpJベクターから、非相同末端配列を有するオリゴを使用するポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によって遺伝子を増幅し、哺乳類発現ベクター(System Biosciences、pM系列)への挿入用に調製した。Kellは、上流pM挿入部位に相同の25ntとKellの5’末端に相同の25ntとからなる上流オリゴ;及びscFvの5’末端に相同の25ntと(GlyGlyGlySer)x2スペーサーをコードする24ntとKellの3’末端に相同の25ntとからなる下流オリゴで増幅した。scFvは、Kell挿入部位の3’末端に相同の25ntと(GlyGlyGlySer)x2スペーサーをコードする24ntとscFvの5’末端に相同の25ntとからなる上流オリゴ;及び下流pM挿入部位に相同の25ntとscFvの3’末端に相同の25ntとからなる下流オリゴで増幅した。増幅産物はゲル電気泳動(Qiagen)によって精製した。上流及び下流挿入部位に相同の尾−尾型オリゴによるPCRでpMベクターを線状化し、PCR精製(Qiagen)によって精製した。Gibson 2011,Methods Enzymology Vol 498,p.394に詳説されるワンポットギブソンアセンブリにより、Kell及びscFvアンプリコンを線状化pMベクターにライゲートした。配列はサンガー塩基配列決定法で確認した。
Kellの遺伝子はcDNAとして購入し、標準クローニングベクター(pJ系列)として供給された。B型肝炎表面抗原に特異的な抗体scFvの遺伝子(scFv、Bose 2003,Molecular Immunology 40:617に記載される)は商業的供給業者(DNA2.0)によって合成され、標準クローニングベクター(pJ系列)として供給された。これらのpJベクターから、非相同末端配列を有するオリゴを使用するポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によって遺伝子を増幅し、哺乳類発現ベクター(System Biosciences、pM系列)への挿入用に調製した。Kellは、上流pM挿入部位に相同の25ntとKellの5’末端に相同の25ntとからなる上流オリゴ;及びscFvの5’末端に相同の25ntと(GlyGlyGlySer)x2スペーサーをコードする24ntとKellの3’末端に相同の25ntとからなる下流オリゴで増幅した。scFvは、Kell挿入部位の3’末端に相同の25ntと(GlyGlyGlySer)x2スペーサーをコードする24ntとscFvの5’末端に相同の25ntとからなる上流オリゴ;及び下流pM挿入部位に相同の25ntとHAエピトープタグをコードする27nt配列tacccctatgacgtgcccgactatgcc(配列番号8)とscFvの3’末端に相同の25ntとからなる下流オリゴで増幅した。増幅産物はゲル電気泳動(Qiagen)によって精製した。上流及び下流挿入部位に相同の尾−尾型オリゴによるPCRでpMベクターを線状化した。下流プライマーには、HAエピトープタグをコードする27nt配列tacccctatgacgtgcccgactatgcc(配列番号8)がさらに含まれた。線状化したベクターをPCR精製(Qiagen)によって精製した。Gibson 2011,Methods Enzymology Vol 498,p.394に詳説されるワンポットギブソンアセンブリにより、Kell及びscFvアンプリコンを線状化pMベクターにライゲートした。配列はサンガー塩基配列決定法で確認した。
補体受容体1(CR1)及び緑色蛍光タンパク質(GFP)の遺伝子は商業的供給業者(DNA2.0)によって合成され、標準クローニングベクター(pJ系列)として供給された。このpJベクターから、非相同末端配列を有するオリゴを使用するポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によってCR1遺伝子を増幅し、哺乳類発現ベクター(System Biosciences、pM系列)への挿入用に調製した:上流オリゴは上流pM挿入部位に相同の25ntとCR1の始端に相同の25ntとからなった;下流オリゴはウイルス由来のT2A配列gagggcagaggaagtcttctaacatgcggtgacgtggaggsgsstcccggccct(配列番号7)に相同の54ntからなった。pJベクターから、非相同末端配列を有するオリゴを使用するポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によってGFP遺伝子を増幅し、哺乳類発現ベクター(System Biosciences、pM系列)への挿入用に調製した:上流オリゴは、ウイルス由来のT2A配列gagggcagaggaagtcttctaacatgcggtgacgtggaggsgsstcccggccct(配列番号7)に相同の54ntとGFPの始端に相同の25ntとからなった;下流オリゴは、下流pM挿入部位に相同の25ntとGFPの終端に相同の25ntとからなった。増幅産物はゲル電気泳動(Qiagen)によって精製した。上流及び下流挿入部位に相同の尾−尾型オリゴによるPCRでpMベクターを線状化し、PCR精製(Qiagen)によって精製した。Gibson 2011,Methods Enzymology Vol 498,p.394に詳説されるギブソンアセンブリにより、CR1及びGFPアンプリコンを共に線状化pMベクターにライゲートした。配列はサンガー塩基配列決定法で確認した。
標準的な分子生物学的方法を用いて目的の遺伝子をpSP64ベクター(Promega)の多重クローニング部位にクローニングする。ベクターをEcoRI(NEB)で消化して、SP6プロモーターと目的の遺伝子と30ヌクレオチド長のポリAテールとを含む線状化dsDNAベクターを作成する。SP6 RNAポリメラーゼ(Promega)との反応によって、キャップ付加mRNA転写物を合成するための5’キャップ類似体(ARCA)の推奨濃度を含めて製造者の指示に従いmRNAを合成する。次に反応混合物をDNアーゼで処理して鋳型ベクター(Promegaのリボプローブ(Riboprobe))を消化し、EZNA MicroElute RNAクリーンアップキット(Omega)を使用してmRNAを精製する。
1.ヒト赤血球(RBC)
Mini−MACSカラム(Miltenyi Biotec;94%±3%純度)の使用による超磁気マイクロビーズ選択法により、末梢血からCD34細胞を単離する。細胞は、安定化グルタミン、330μg/mLホロヒトトランスフェリン、10μg/mL組換えヒトインスリン、2IU/mLヘパリン、及び5%溶剤/界面活性剤ウイルス不活化血漿を補充したIMDMをベースとする赤血球分化培地(EDM)で培養する。拡大手順には3つのステップが含まれる。第1のステップでは(0日目〜7日目)、EDM中、1μMヒドロコルチゾン、100ng/mL SCF、5ng/mL IL−3、及び3IU/mL EPOの存在下で104個/mLのCD34+細胞を培養する。4日目に、SCF、IL−3、EPO、及びヒドロコルチゾンを含有する4容積の新鮮培地中に1容積の細胞培養物を希釈する。第2のステップでは(7日目〜11日目)、SCF及びEPOを補充したEDM中に105個/mLで細胞を再懸濁する。第3のステップでは(11日目〜18日目)、EPOのみを補充したEDM中で細胞を培養する。細胞数は11日目及び15日目にそれぞれ7.5×105〜1×106及び5〜10×106細胞/mLに調整する。18日目を過ぎたら、EPOを含有する培養培地を週2回取り替える。培養物は5%CO2の空気中37℃に維持する。
マウス胎仔肝赤血球前駆体からマウス赤血球系細胞を培養する方法は当該技術分野において公知であり、例えば、Shi et al.2014,PNAS 2014 111(28):10131を参照されたい。
Fred Hutchinson Cancer Research Centerから、提供されたCD34+細胞を入手する。CD34+濃縮細胞を2〜4×104細胞/mLで無血清培地にプレーティングし、4日目に等容積の培地を加えて培地のリフレッシュを行う。6日目、細胞をカウントして分析する:1.5×105細胞を洗浄し、TPO 30ng/mL、SCF 1ng/mL、インターロイキン(IL)−6 7.5ng/mL及びIL−9 13.5ng/mL]からなるサイトカインカクテルを補充した1mLの同じ培地に入れて巨核球分化を誘導する。10日目に1/2〜1/4の浮遊培養液を新鮮培地に交換する。サイトカインは全て、Peprotechから購入する。加湿雰囲気中(10%CO2)、培養の最初の6日間は39℃で及び最後の8日間は37℃で培養物をインキュベートする。血球計算器(0.4%トリパンブルー;Invitrogen、Burlington,ON,カナダ)で生存有核細胞をカウントする。
1.初代RBC
無菌法を用いて、低分子量ヘパリン、ダルテパリンナトリウム(9単位/mL血液)が入ったチューブに全血を収集する。血液を5000×gで5分間遠心し、血漿及びバフィーコートを除去した後(両方とも後に使用するため取り置かれ得る)、赤血球を冷(4℃)リン酸緩衝生理食塩水(PBS)中で遠心して2回洗浄する。得られた赤血球集団は、長期保存のためCPDA−1抗凝固剤又はグリセロール溶液中4℃で保存する。
適切なIRBプロトコルに基づき健常人から全血(40ml)を3.8%クエン酸ナトリウム(1:9クエン酸塩対血液vol/vol)中に収集する。血液を200gで15分間遠心して多血小板血漿(PRP)を単離する。次に、1μMプロスタグランジンI2の存在下、変性タイロード緩衝液(138mM NaCl、5.5mM デキストロース、12mM NaHCO3、0.8mM CaCl2、0.4mM MgCl2、2.9mM KCl2、0.36mM Na2HPO4及び20mM Hepes含有、pH7.4)中で血小板を洗浄し、同じ緩衝液に再懸濁する。
合成膜−レシーバー複合体の集団の照射を実施して、それらが複製不能であることを確実にし得る。かかるプロトコルは、細胞、例えば初代赤血球の照射について当該技術分野で公知のものと同様である。簡潔に言えば、1単位(350ml)の全血を取り、各175mlの2つのアリコートに分け、従ってかかる10単位を20のアリコートに分ける。各単位血液の一方のアリコート(175ml)を、自蔵式ガンマ線細胞照射器(GammaCell 1000、Theratronics)によって25Gyの、但し50Gy以下のγ線照射に供する。次に血液を従来の血液貯蔵条件下に4℃で保存する。これらの10個の照射済み血液バッグ及び10個の非照射血液バッグから、0、7、14、及び21日目にサンプリングサイトカプラー(Fenwal、USA)を用いてサンプリングを行う。潜在的な有糸分裂能を定量化するチミジン取込みアッセイを含め、細胞増殖試験を実施する。遊離ヘモグロビンに関しては吸光度分光法、及び遊離乳酸デヒドロゲナーゼに関しては比色アッセイ(Pierce)で上清をアッセイし、細胞溶解レベルを評価する。
コラーゲンでコーティングした直径12mmのカバーガラス上で、100単位/miのペニシリン及び100単位/mlのストレプトマイシンを補充したIMDM培地中において赤血球系細胞をセミコンフルエンス(1〜4×104細胞毎cm2)になるまで成長させる。コラーゲンは、遠心中に全細胞がカバーガラスから落ちることを防止するために必要である。細胞を同じ培地中か又は10%仔ウシ血清含有ダルベッコ変法イーグル培地中においてカバーガラス上に単層(5×104細胞毎cm2)に成長させる。この細胞カバーガラスをコラーゲンでコーティングする必要はない。細胞を除核するため、カバーガラスを反転させ(細胞側を下にして)、10g/mlのサイトカラシンBを含む2〜5mlの培地が入った15ml Corex遠心管の底に置く。このカバーガラスが入った遠心管を直ちに、(SS 34)ローターをヘッドを所定位置にして10,000rpmで約1時間スピンさせることにより37℃に加温したSorvall RC−2遠心機に置く(温度調節装置は37〜39度に設定)。遠心の時間の長さ及び速度は除核の成功に重大な要素である。細胞を37±20で9000rpmで1時間スピンし、及び細胞を37±−20で6500rpmで50分間スピンする。遠心後、遠心機からカバーガラスを取り出し、3mlのサイトカラシンB不含培地が入った35mm(Falcon)組織培養皿(Biolquest)に細胞側を上にして置く。370で30〜60分以内に細胞は形態学的に正常となり、90〜99%が核を欠く。トリプシン−EDTA(Grand Island Biological Co.)で処理することによりカバーガラスから除核細胞を取り外し、通常の培地に細胞を懸濁する。次に35mm組織培養皿に保持した22mm2カバーガラスに除核細胞を小滴で再度プレーティングし、インキュベーターに置く。再度プレーティングした後時間間隔を置いてスライド(12)上にカバーガラスをマウントし、Zeiss位相コントラスト、偏光、及びノマルスキー光学系で除核物の観察を行う。
1.核酸−トランスフェクション
目的の核酸をスケールアップして、負荷する105個の複合体、例えば細胞、赤血球系細胞、血小板、又は造血前駆細胞当たり約5ugの核酸を提供する。核酸はOpti−MEM培地(Life Technologies)中に1ug対50uL培地の比で希釈する。次に希釈した核をトランスフェクション試薬(DNAについてはTrans−IT、mRNAについてはTrans−IT mRNA、siRNAについてはTrans−IT siRNA、Mirus Bio)と1:1容積比で合わせ、室温で5分間複合体を形成させる。この核酸複合体を細胞に12〜24時間加える。任意選択で、この時間が経った後、トランスフェクション試薬がそれ以上存在することのないよう、培地を新鮮培地に交換してもよい。
目的の遺伝子をSystem BiosciencesのMSCVプロモーター配列と共にレンチウイルスベクターpCDHの多重クローニング部位にクローニングする。
目的のトランス遺伝子をコードする、且つ上流プロモーター配列及び下流ポリAテールを含むmRNAは、複数の商業的供給業者(例えば、IDT−DNA、Coralville IA)から購入することができる。RNAトランスフェクションは、RNAIMax(Invitrogen、Carlsbad、Calif.)又はTRANSIT−mRNA(Mims Bio、Madison,Wis.)カチオン性脂質送達媒体を使用して行う。RNA及び試薬は、初めにOpti−MEM基本培地(Invitrogen、Carlsbad、Calif.)に希釈する。100ng/uL RNAを5倍希釈し、RNA1μg当たり5μLのRNAIMaxを10倍希釈する。希釈した構成成分をプールし、室温で15分間インキュベートした後、それらを培養培地に分注する。TRANSIT−mRNAトランスフェクションについては、100ng/uL RNAをOpti−MEM中に10倍希釈し、ブースト試薬を(RNA1μg当たり2μLの濃度で)加え、TRANSIT−mRNAを(RNA1μg当たり2μLの濃度で)加え、次に、室温で2分間インキュベートした後、このRNA−脂質複合体を培養培地に供給する。RNAトランスフェクションは、Nutristem異物不含hES培地(STEMGENT(登録商標)、Cambridge,Mass.)又は2%FBS含有Opti−MEMで実施する。宿主細胞へのmRNA転写物の導入の成功は、蛍光標識又はレポータータンパク質、例えば緑色蛍光タンパク質(GFP)など、様々な公知の方法を用いてモニタすることができる。修飾mRNAのトランスフェクションの成功はまた、標的ポリペプチドのタンパク質発現レベルを例えばウエスタンブロッティング又は免疫細胞化学で計測することによっても判断し得る。同様のRNA−脂質複合体比に従うマルチリットル(5〜10,000L)培養フォーマットへの大容積スケールアップについても、同様の方法に従い得る。
目的のトランス遺伝子をコードする、且つ上流プロモーター配列及び下流ポリAテールを含むmRNAは、複数の商業的供給業者(例えば、IDT−DNA、Coralville IA)から購入することができる。赤血球系統細胞をmRNA転写物でトランスフェクトし、及び外因性転写物を特異的に検出するように設計されたプライマーによる定量的RT−PCRによってトランスフェクション効率を計測することにより、電気穿孔パラメータを最適化する。ある種の細胞の調製には、2mm間隙の標準電気穿孔キュベット内において50μlのOpti−MEM(Invitrogen、Carlsbad、Calif.)中に懸濁した2.5×106細胞に150uFキャパシタンスを放電することが、検量線法を用いて判断するとき、高い生存能(>70%)を維持しながら1細胞当たり10,000コピーを上回る修飾mRNA転写物を繰り返し送達するのに十分である。細胞密度は1×106細胞/50μl〜2.5×106細胞/500の密度で様々であり、1細胞当たりの転写物コピー数で計測して同程度の効率で細胞をトランスフェクトするためには110V〜145Vが必要である。上述の制約を伴い記載される方法と同様の大容積流動電気穿孔戦略と同様に、大量マルチリットル(5〜10,000L)電気穿孔を実施し得る(Li et al.,2002;Geng et al.,2010)。
細胞は、初代最終分化細胞、例えば赤血球を含め、その表面上及びその細胞質に外因性タンパク質を負荷することができる。タンパク質の負荷はリポソームを使用して実施することができる。
細胞は、1μm、2μm、3μm、4μm、5μm、10μm幅のチャネルを含むマイクロ流体装置を使用して負荷してもよく、チャネルが細胞を一過性に穿孔して、細胞がそのシステムに押し通されるときにペイロードが侵入することを可能にする。
細胞表面をトラウト試薬(2−イミノチオランHCl、Pierce)で処理して第一級アミンをチオール化する。EDTA含有トリス緩衝液pH8にトラウト試薬を溶解し、スルフヒドリルの酸化を防止する。約1pmolのトラウト試薬を使用して106細胞を処理する。トラウト試薬を細胞と共に室温で1時間インキュベートする。過剰の又は未反応の試薬を遠心によって除去して細胞を洗浄する。利用可能なスルフヒドリル基の数は、エルマン試薬を使用して計測することができる。その一方で、好適なレシーバーポリペプチドをSMCC(Pierce)などのアミン−スルフヒドリルクロスリンカーで製造者の指示に従い処理する。過剰の架橋結合試薬を脱塩によって除去する。次にマレイミド官能化タンパク質をチオール化した細胞と共に数時間インキュベートする。コンジュゲート細胞から遠心及び洗浄によって未反応のタンパク質を分離する。
哺乳類発現ベクター(Genlantis)において、B型肝炎表面抗原に対する抗体scFvの遺伝子(scFv、Bose 2003,Molecular Immunology 40:617に記載される)を6−ヒスチジンアフィニティータグと、マウスグリコホリンAに結合するポリペプチド配列、HWMVLPWLPGTLDGGSGCRGをコードする遺伝子とに融合する。標準方法を使用したHEK−293T細胞の一過性のトランスフェクションによって完全融合タンパク質を作製し、製造者の指示に従いNi−NTAアフィニティー樹脂(Pierce)で精製する。精製した融合タンパク質を100nM超の濃度のマウス赤血球と共にインキュベートし、迅速な平衡化及びペプチドとグリコホリンAの結合を可能にする。
製造者のプロトコルに従いトラウト試薬(Thermo Fisher)を使用してアミン含有の好適なレシーバーポリペプチド分子にスルフヒドリル基を作成する。反応混合物を振盪機において室温(RT)で1時間インキュベートし、製造者の指示に従いスピン脱塩カラム(Zeba、MWCO 7K、Thermo Scientific)に通して洗浄して未反応のトラウト試薬を除去する。修飾ポリペプチドへのスルフヒドリル基の作成は、製造者のプロトコルに基づきエルマン試薬(Pierce)を使用して定量化する。
好適なレシーバーポリペプチド、この場合マウスIgGをAbcamから購入し、70%のヘマトクリット(Hct)の等張液中のRBC懸濁液に0.25mg/mLで加えた。この懸濁液を10mMリン酸ナトリウムpH7.4、10mM重炭酸ナトリウム、及び20mMグルコースを含有する250mLの低張液に透析し、4℃、15rpmで1時間撹拌した。次に、5mMアデニン、100mMイノシン、100mMピルビン酸ナトリウム、100mMリン酸ナトリウム、100mMグルコース、12%(w/v)NaClを含むpH7.4の1/10容積の再密閉溶液を加えることにより、細胞を等張的に再密閉した。次に細胞を37℃で30分間インキュベートした。
プロタミンコンジュゲートポリペプチドの製造は当該技術分野において公知である。例えば、Kwon et al.2009 J Contr Rel 139(3):182を参照されたい。50mM HEPES緩衝液(pH8)中5mg/mlの低分子量プロタミン(LMWP)をヘテロ二官能性架橋剤3−(2−ピリジルジチオ)プロピオン酸N−ヒドロキシスクシンイミド(SPDP、Sigma−Aldrich)と1:10モル比でDMSO中に混合し、室温で1時間振盪する。次にこの反応混合物を50mMジチオスレイトール(DTT、Sigma−Aldrich)で処理し、チオール化したLMWPをヘパリンアフィニティーカラムでのHPLCによって精製する。生成物を限外ろ過によって回収し、凍結乾燥し、後に使用するまで−20℃で保存する。
3×108個のRBCをリンゲル溶液中200μMのクロルプロマジン(Sigma Aldrich)と共に30分間プレインキュベートした。その後、好適なレシーバーポリペプチドをリンゲル溶液に(1〜4μM)最終容積が400μlとなるように加え、穏やかな撹拌下、室温で30分間インキュベートした。インキュベーション後、細胞を2回洗浄し、リンゲルに再懸濁し、分析用に回収した。
ソルターゼによる酵素的細胞表面コンジュゲーションは当該技術分野において公知である。例えば、Shi et al PNAS 2014 111(28):10131を参照されたい。GPA N末端をポリペプチドで標識するため、30uLの500uM黄色ブドウ球菌(S aureus)ソルターゼ及びC末端にLPETGGを有する1mMポリペプチドを50mMトリス、pH7.5、150mM NaCl中、氷上で15分間プレインキュベートし、DMEM中5×107個のRBCに加える。このソルターゼと細胞との混合物を時折穏やかに混合しながら氷上で30分間インキュベートし、次に4℃、500×gで2分間スピンして緩衝液/DMEMを除去し、次に1mLの氷冷PBSで3回洗浄する。
以下のステップは、赤血球系細胞に一酸化窒素(NO)を負荷するために行う。S−ニトロシステイン(CSNO)によるHb以外の赤血球タンパク質の酸化副反応又はS−ニトロシル化を回避するため、(i)完全に脱酸素化されたRBCにNO水溶液を加えることによるFe−ニトロシルHb[HbFe(II)NO]の生成;(ii)嫌気的条件下での洗浄;及び(iii)再酸素化によって、インタクトなRBCにS−ニトロソチオール(SNO)Hbを合成し、ヘム[Fe(II)NO]からCys−B93へのNOの赤血球内分子内移動を生じさせる。1%(wt/vol)HgCl2含有及び/又は不含で0.4MHCl中にスルファニルアミド[SA;3.4%(wt_vol)]を調製し、0.1%(wt/vol)のN−(1−ナフチル)エチレンジアミン(NED)も調製する。HgCl2含有又は不含のSAに等容積のSNOHbを加え、次にNEDと反応させる。比色定量法を用いて吸光度(540nm)の差から[SNO]を決定する。
リポソームProJect試薬(Pierce)をガラスシンチレーションバイアルにおいて窒素下で乾燥させて薄膜にする。105細胞につき約2uL試薬が必要である。この乾燥リポソーム試薬にPBS中の目的の小分子の溶液を加える。この溶液を数回ピペッティングし、室温で5分間インキュベートし、次に激しくボルテックスして封入リポソームを作成する。無血清培地を加えて総容積を105細胞当たり500uLにする。このリポソーム混合物を細胞と共に37℃で3〜4時間インキュベートする。
化学官能基を使用した細胞の表面に対する小分子のコンジュゲーションは当該技術分野において周知である。例えば、Hermanson GT,Bioconjugation Techniques 2nd Ed,ISBN 978−0123705013を参照されたい。簡潔に言えば、目的の小分子にNHSエステル、例えばNHSエステルビオチン(Pierce)などのアミン反応性官能基を提供する。目的の小分子は有機溶媒中に保存して、NHSエステル官能基の加水分解を防止する。目的の小分子を大モル過剰(106細胞に少なくとも10pmol)で水性媒体中の細胞とインキュベートして、細胞表面上の第一級アミンとのコンジュゲーションを促進する。1時間インキュベートした後、過剰の未反応分子を細胞の遠心及び洗浄によって除去する。
1.蛍光トランス遺伝子
本明細書に記載されるとおり赤血球系細胞を培養した。C末端上のHAタグがウイルス性T2Aペプチドの介在を伴いGFPに融合したグリコホリンAをコードするトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりギブソンアセンブリによって構築した。このトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりレンチウイルス形質導入によって赤血球系細胞に導入した。形質導入の2日後、細胞を回収し、PBS緩衝液で洗浄し、及びフローサイトメーター(Attune、Life Technologies)で分析した。形質導入効率は、集団中におけるGFP陽性細胞の割合として評価した。
細胞表面タンパク質について、タンパク質発現レベルは、タンパク質又は共発現するエピトープタグに特異的な抗体によるフローサイトメトリーによって、早くもトランスフェクションの2日後には検出することができる。本明細書に記載されるとおり赤血球系細胞を培養した。N末端にHAタグを有するグリコホリンAをコードするトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりギブソンアセンブリによって構築した。このトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりレンチウイルス形質導入によって赤血球系細胞に導入した。形質導入の2日後、細胞を回収し、PBS緩衝液で洗浄し、及びマウス抗HA抗体(Abcam)の1:50希釈物で1時間染色した。細胞を洗浄し、次にalexa 488標識ヤギ抗マウス二次抗体(Life Technologies)の1:100希釈物によって氷上で30分間染色した。細胞を洗浄し、フローサイトメーター(Attune、Life Technologies)で分析した。形質導入効率は、集団中におけるalexa 488陽性細胞の割合として評価した。
細胞内タンパク質について、タンパク質発現レベルは、ウエスタンブロットによって早くもトランスフェクションの8〜12時間後には検出することができる。本明細書に記載されるとおり赤血球系細胞を培養した。C末端にHAタグを有するアデノシンデアミナーゼをコードするトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりギブソンアセンブリによって構築した。このトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりレンチウイルス形質導入によって赤血球系細胞に導入した。形質導入の2日後、細胞を回収し、PBS緩衝液で洗浄し、及びRIPA細胞溶解緩衝液(Pierce)中で溶解させた。細胞溶解物を100mM DTT中で煮沸することにより変性させ、次にNuPage SDS−PAGEプレキャストゲル上にロードした。電気泳動及びニトロセルロース膜への転写後、マウス抗HA抗体(Abcam)の1:5000希釈物、続いてヤギ抗マウスHRP(Pierce)の1:5000希釈物で染色することによりタンパク質バンドを発色させ、続いてHRP基質(SuperSignal、Pierce)で処理した。Amershamイメージャ(GE healthcare)を使用して画像を取得した。
正常ヒトドナー由来の赤血球を購入した(Research Blood Components)。次に細胞を、0.02倍容積の2mMストックビオチン試薬を使用して製造者の指示に従いNHS−ビオチン(Sigma)によって室温で30分間ビオチン化した。抗ビオチン抗体(Abcam)をDylight 650(Pierce)で蛍光標識した。標識抗ビオチン抗体を検出マーカーとして使用して、細胞の標識効率を本明細書に記載されるとおりフローサイトメトリーによって評価した。
標準プロトコルを使用して3種の血液成分のNO2レベル及びNO3レベルを決定する。例えば、Yang et al.2003,Free Radic Res 37(1):1を参照されたい。簡潔に言えば、血液に「停止液」(K3Fe(CN)6、N−エチルマレイミド、水、NP40)を加えて試料分析時まで亜硝酸塩レベルを維持する。「停止液」と血液との1:4希釈物をボルテックスし、ドライアイス上に置く。試料分析時、99.9%純メタノール及び解凍した試料の1:1希釈物を13,000rpmで2分間遠心する;直ちに、キャリアガスとしてヘリウムを使用する化学発光一酸化窒素分析計(NOA、Sievers、モデル280 NO分析計、Boulder,CO)に上清を入れる。三ヨウ化物(I3−)オゾンベースの化学発光アッセイを用いて亜硝酸塩レベルを分析する。硝酸塩を分析するには、血液に脱イオン水(Millipore CQ−Gard、Bedford,MA)を加えて細胞を溶解させる。脱イオン水と血液との9:1希釈物をボルテックスし、ドライアイス上に置く。試料分析時、純HPLCグレードエタノール及び解凍した試料の3:1希釈物を遠心し、直ちに塩化バナジウム(III)化学発光アッセイを用いて上清を分析する。例えば、Ewing and Janero,1998 Free Radic Biol Med 25(4−5):621を参照されたい。ヘリウムをキャリアガスとしてVCl3反応液を90℃に維持する。1μM亜硝酸塩及び硝酸塩溶液を使用して、試料の亜硝酸塩及び硝酸塩濃度の比較及び調整用の検量線を作成する。
培養細胞内及びその上での外因性タンパク質の発現は、フローサイトメトリーによるか(タンパク質が表面上で発現する場合)又はウエスタンブロットによって(細胞質内で発現するタンパク質用)、定量的に評価することができる。
抗マウスFc結合定量的フローサイトメトリービーズ(Simply Cellular Calibration)はBangs Labsから購入した。関連性のある細胞表面受容体−グリコホリンA、Ckit、及びトランスフェリン受容体−に対する蛍光標識マウス抗体はBioLegendから購入した。HAエピトープタグに対する蛍光標識マウス抗体はLife Technologiesから購入した。本明細書に記載されるとおり赤血球系細胞を培養した。N末端にHAタグを有するグリコホリンAをコードするトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりギブソンアセンブリによって構築した。このトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりレンチウイルス形質導入によって赤血球系細胞に導入した。形質導入の少なくとも2日後、2×105細胞を回収し、PBS緩衝液で洗浄し、及び上記に挙げた抗体のうちの1つの1:100希釈物で1時間染色した。細胞を洗浄し、フローサイトメーター(Attune、Life Technologies)で分析した。上記に挙げる4つの抗体の各々について、このプロトコルを繰り返した。製造者の指示に従い定量化を実施した。簡潔に言えば、5つのビーズ試料の各々の一滴を、上記に挙げた抗体の1:100希釈物とインキュベートした。ビーズを1時間インキュベートし、PBS中で洗浄し、及びフローサイトメーター(Attune、Life Technologies)で分析した。上記に挙げる4つの抗体の各々について、このプロトコルを繰り返した。製造者提供のexcelスプレッドシートを使用して検量線をフィットし、そこから細胞ベースシグナルの蛍光強度の定量化を導出した。
本明細書に記載されるとおり赤血球系細胞を培養した。C末端にHAタグを有するアデノシンデアミナーゼをコードするトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりギブソンアセンブリによって構築した。このトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりレンチウイルス形質導入によって赤血球系細胞に導入した。形質導入の2日後、細胞を回収し、PBS緩衝液で洗浄し、及びRIPA細胞溶解緩衝液(Pierce)に溶解させた。
外因性トランスフェクトmRNAから翻訳される外因性タンパク質の血小板における発現を、フローサイトメトリーによって計測した。端的には、多血小板血清を190gで15分間遠心して赤血球及び白血球を除去した。次に上清を2500gでさらに5分間スピンして血小板をペレット化した。血小板を5mLの1uMプロスタグランジン含有タイロード緩衝液に再懸濁し、洗浄し、750uLの1uMプロスタグランジン含有タイロード緩衝液に再懸濁した。目的の遺伝子、この例ではGFPをコードするmRNAを、リポフェクタミンと1:1mg/mL比で混合した。この混合物を5分間インキュベートし、次に洗浄した血小板集団に加えた。この混合物をゆっくりと揺らしながら室温で24時間インキュベートした。トランス遺伝子の血小板発現を、フローサイトメトリーによってGFP蛍光を計測してアッセイした。表面タンパク質もまたフローサイトメトリーによってアッセイすることができる。細胞質タンパク質又は他の細胞内発現したタンパク質はまた、ウエスタンブロットによってもアッセイすることができる。
図5は、赤血球系細胞に含まれる酵素の活性を実証する。分化の過程にわたるタンパク質の保持について、細胞質酵素の生化学的活性をウエスタンブロットによって評価した。細胞質酵素の生物学的活性はインビトロ酵素活性アッセイによって評価した。
C末端にHAタグを有するアデノシンデアミナーゼをコードするトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりギブソンアセンブリによって構築した。このトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりリポフェクタミントランスフェクション(Life Technologies)によってHEK−293T細胞に導入した。酵素活性は、Helenius 2012,Biochim Biophys Acta 1823(10):1967に基づくプロトコルを用いてアッセイされ、このプロトコルでは、特定の酵素混合物がプリンを尿酸及びH2O2に変換した後、続いて生成されたH2O2を蛍光定量的に検出する。端的には、トランスフェクションの2日後、細胞を回収し、培地を吸引し、細胞にクレブス・リンゲルリン酸グルコース(KRPG;含有物:145mM NaCl、5.7mMリン酸ナトリウム、4.86mM KCl、0.54mM CaCl2、1.22mM MgSO4、及び5.5mMグルコース;pH7.35)を2×105細胞/mLで加えた。アデノシンを50uMで加えた。6時間反応させた後、上清を回収し、60℃で5分間熱失活させた。上清のアリコートを、0.25U/ml細菌性プリンヌクレオシドホスホリラーゼ(PNP)及び0.15U/ml微生物性キサンチンオキシダーゼ(XO)(いずれもSigmaから)が入った白色96ウェルマイクロプレートのウェルに移した。室温で20分間インキュベートした後、マイクロウェルにHRP(最終濃度1U/ml、Sigma)及びAmplex Red試薬(60μM、Invitrogen、Molecular Probes)を含有する30μlのH2O2検出混合物を加え、続いてそれぞれ545及び590nmの発光波長及び励起波長で蛍光強度を計測した(Tecan Infinite M200)。
本明細書に記載されるとおり赤血球系細胞を培養した。C末端にHAタグを有するフェニルアラニンヒドロキシラーゼをコードするトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりギブソンアセンブリによって構築した。このトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりレンチウイルス形質導入によって赤血球系細胞に導入した。形質導入の2日後、細胞を回収し、PBS緩衝液で洗浄し、及びRIPA細胞溶解緩衝液(Pierce)に溶解させた。細胞溶解物(64ug総タンパク質)を、100mMトリス−HCl、pH7.5、4mM DTT、4mMフェニルアラニン、33μgカタラーゼ、及び0.4mM DMPH4(全てSigma)を含有する1mL反応緩衝液に加えた。反応を37℃で一晩実行した。インキュベーション後、試料をAmicon Ultra−4遠心フィルタ10KD(Millipore UFC801024)において3700rpmで10分間スピンさせて遠心ろ過することにより脱タンパク質化した。試料を回収し、チロシン濃度に関して540nmの吸光度によってアッセイした。
図6は、培養赤血球系細胞の表面上で過剰発現した補体受容体1(CR1)の生化学的活性及び生物学的活性の両方を示す。CR1の生化学的活性は、免疫複合体との結合に関してフローサイトメトリーによって評価した。CR1の生物学的活性は、共培養アッセイにおけるマクロファージへの免疫複合体のトランスファーによって評価した。
本明細書に記載されるとおり赤血球系細胞を培養した。補体受容体1(CR1)をコードするトランス遺伝子コンストラクトを、本明細書に記載されるとおりギブソンアセンブリによって構築した。このトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりレンチウイルス形質導入によって赤血球系細胞に導入した。トランス遺伝子発現レベルは、抗CR1抗体(Abcam)を使用して本明細書に記載されるとおりフローサイトメトリーによって評価した。この細胞を本明細書に記載されるとおり培養して最終分化させた。
100nMホルボールミリステートアセテート(PMA)と共に37℃で24時間インキュベートすることにより、培養U937単球を活性化した。免疫複合体で被覆された細胞(上記参照)を活性化U937マクロファージと共に37℃で30分間インキュベートした。この共培養物をフローサイトメトリーによって分析した。FSC/SSCゲーティングによってマクロファージを同定した。マクロファージ集団のDylight 650蛍光を検出することにより、マクロファージにおける免疫複合体の存在を分析した。
図7は、膜貫通タンパク質GPAとの融合物として培養赤血球系細胞の表面上で外因的に発現する抗体scFvの生化学的活性及び生物学的活性を示す。
図8は、標的の循環クリアランスに使用される表面分子捕捉剤の生化学的活性及び生物学的活性の両方を示す。
正常ヒトドナー由来の赤血球を購入した(Research Blood Components)。細胞をCFSE(Sigma)によって製造者の指示に従い37℃で20分間標識した。次に、0.02容積の2mMストックビオチン試薬を使用して細胞を製造者の指示に従いNHS−ビオチン(Sigma)で室温で30分間ビオチン化した。抗ビオチン抗体(Abcam)をDylight 650(Pierce)で蛍光標識した。標識抗ビオチン抗体及びCFSE蛍光を検出マーカーとして使用してフローサイトメトリーによって細胞の標識効率を評価した。250ugの標識抗体をNSGマウス(Jackson Labs)に尾静脈から静脈内注射した。4時間後、1×108個のビオチン化細胞を尾静脈から静脈内注射した。一定の間隔で血液を顎下穿刺によってEDTA入りチューブに採取した。採取した血液細胞を洗浄し、本明細書に記載されるとおりフローサイトメトリーによって分析した。ヒト細胞はCFSE陽性であると特定された。ヒト細胞におけるDylight 650蛍光として抗ビオチン抗体の捕捉を検出した。採血からの血漿をELISAによってビオチン被覆マイクロプレート(Pierce)を使用して製造者の指示に従い分析し、循環中の抗体レベルを検出した。
本明細書に記載されるとおり赤血球系細胞を培養した。グリコホリンAシグナル配列、HAエピトープタグ、グリコホリンAコード配列、ウイルスT2A切断可能配列及びGFPをコードするトランス遺伝子コンストラクトを、本明細書に記載されるとおりギブソンアセンブリによってアセンブルした。このトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりレンチウイルス形質導入によって赤血球系細胞に導入した。この細胞を本明細書に記載されるとおり培養して最終分化させた。Dylight 650(Pierce)及びGFP蛍光で蛍光標識した抗HA抗体(Life Technologies)を使用して、本明細書に記載されるとおりフローサイトメトリーによって細胞を分析し、両方のトランス遺伝子の発現を検出した。250ugの標識抗HA抗体をNSGマウス(Jackson Labs)に尾静脈から静脈内注射した。4時間後、1×108個の培養細胞を尾静脈から静脈内注射した。一定の間隔で血液を顎下穿刺によってEDTA入りチューブに採取した。採取した血液細胞を洗浄し、本明細書に記載されるとおりフローサイトメトリーによって分析した。ヒト細胞はCFSE陽性であると特定された。ヒト細胞におけるDylight 650蛍光として抗HA抗体の捕捉を検出した。採血からの血漿をELISAによってHAペプチド被覆マイクロプレート(Pierce)を使用して製造者の指示に従い分析し、循環中の抗体レベルを検出した。
合成膜−レシーバー複合体の補体調節活性は、当該技術分野において公知の標準CH50及びAH50アッセイによって評価する(例えば、Kabat et al.1961 Exp Immunochem pp.133−239及びPlatts−Mills et al.1974 J Immunol 113:348を参照)。
C末端にHAタグを有するチミジンホスホリラーゼをコードするトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりギブソンアセンブリによって構築する。本明細書に記載されるとおり前駆細胞から血小板を培養する。本明細書に記載されるとおりレンチウイルス形質導入によってトランス遺伝子を培養血小板前駆細胞に導入する。培養血小板内でのチミジンホスホリラーゼの発現を、本明細書に記載されるとおり、抗HA検出抗体を使用してウエスタンブロッティングにより評価する。
介在するHAタグを有してCD42b(GP1B、genbank AAH27955.1)のN末端に融合したコラーゲンα3(IV)(COL4A3)NC1ドメイン抗原をコードするトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりギブソンアセンブリによって構築する。血小板を本明細書に記載されるとおり前駆細胞から培養する。本明細書に記載されるとおりレンチウイルス形質導入によってトランス遺伝子を培養血小板前駆細胞に導入する。培養血小板における外因性抗原の発現を、本明細書に記載されるとおり抗HA検出抗体を使用するフローサイトメトリーによって評価する。
本明細書に記載されるとおりマウス赤血球系細胞を培養する。赤血球系前駆細胞に、本明細書に記載されるとおりレンチウイルスを使用して、好適な、例えば補体受容体1(CR1)をコードするレシーバーポリペプチドトランス遺伝子を形質導入する。本明細書に記載されるとおり細胞を培養して最終分化させる。細胞における外因性タンパク質の存在を、本明細書に記載されるとおりフローサイトメトリーによって評価する。細胞の検出を促進するため、細胞を蛍光色素、例えばCFSE(Sigma Aldrich)で製造者の指示に従い標識する。ループスのNZBWF1/Jマウスモデル、又は好適なレシーバーポリペプチドに対応する他の適切な疾患若しくは活性モデルに細胞を注射し、約1×108個の細胞を尾静脈から注射する。複数の時点で顎下穿刺によって血液を採取する。ラジ細胞アッセイによって血漿中の免疫複合体レベルを検出する。例えば、Theofilopoulos et al.976,J Clin Invest 57(1):169を参照されたい。採取した血液試料中のCFSE蛍光細胞の割合をトラッキングすることにより、培養細胞の薬物動態を本明細書に記載されるとおりフローサイトメトリーによって評価する。マウスの全般的な健康を、免疫複合体沈着及び炎症媒介性の損傷をトラッキングするための腎組織の組織学を含め、肉眼的剖検によって評価する。
細胞株、例えば293T及びK562は、発現及び培養サイクル(約1日)が培養赤血球系細胞(数日〜数週間)と比較して短い。これらの細胞株を使用して、好適なレシーバーポリペプチドをコードする遺伝子ライブラリを高速で繰り返し適用し、最も高い発現又は活性を有するレシーバーポリペプチドを同定することができる。
免疫不全マウスモデルにおいてインビボで赤血球系細胞のクリアランス速度を評価した。−1日目にNSGマウスを100uLのクロルドネートリポソーム(clordonate liposome)(Clodrosomes.com)溶液で処置し、マクロファージを選択的に枯渇させた。細胞を蛍光タグCFSEで標識し、約1×108個の細胞を各マウスに尾静脈から注射した。一定の間隔で血液を顎下穿刺によって採取し、血液細胞を回収した。細胞を抗ヒトGPA抗体で共染色し、フローサイトメトリーによって分析した。ヒト赤血球系細胞は、CFSEシグナルによって、及びヒトGPAシグナルによってマウス赤血球系細胞と区別された。
循環中の培養赤血球系細胞によって引き起こされる有害事象の発生を、培養赤血球系細胞を注射した動物における血中のフィブリノゲン崩壊産物の検出及び組織学によって評価した。
培養除核赤血球系細胞内及びその上での外因性タンパク質の保持をフローサイトメトリー及びウエスタンブロッティングによって評価した。
本明細書に記載されるとおり赤血球系細胞を培養した。グリコホリンAシグナル配列、B型肝炎表面抗原に特異的な抗体scFv、HAエピトープタグ、及びグリコホリンAコード配列をコードするトランス遺伝子コンストラクトを、本明細書に記載されるとおりギブソンアセンブリによってアセンブルした。このトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりレンチウイルス形質導入によって赤血球系細胞に導入した。この細胞を本明細書に記載されるとおり培養して最終分化させた。細胞をCFSEで蛍光標識し、免疫不全NSGマウス(Jackson Labs)に尾静脈から注射した(1マウス当たり1×108細胞)。一定の間隔で血液を顎下穿刺によって採取した。採取した細胞を蛍光抗HA抗体(Abcam)で染色し、フローサイトメトリーによって分析した。ヒト細胞をCFSE+細胞と同定し、エピトープタグに関しても陽性染色されたCFSE+細胞の画分によって外因性タンパク質保持を評価した。
本明細書に記載されるとおり赤血球系細胞を培養した。アデノシンデアミナーゼ及びHAエピトープタグをコードするトランス遺伝子コンストラクトを、本明細書に記載されるとおりギブソンアセンブリによってアセンブルした。このトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりレンチウイルス形質導入によって赤血球系細胞に導入した。この細胞を本明細書に記載されるとおり培養して最終分化させた。細胞をCFSEで蛍光標識し、免疫不全NSGマウス(Jackson Labs)に尾静脈から注射した(1マウス当たり1×108細胞)。一定の間隔で血液を顎下穿刺によって採取した。採取した細胞を洗浄し、溶解し、HAエピトープタグに対する検出抗体で本明細書に記載されるとおりウエスタンブロットによって分析した。
本明細書に記載されるとおり赤血球系細胞を培養した。アデノシンデアミナーゼ及びHAエピトープタグをコードするトランス遺伝子コンストラクトを、本明細書に記載されるとおりギブソンアセンブリによってアセンブルした。このトランス遺伝子を、本明細書に記載されるとおりレンチウイルス形質導入によって赤血球系細胞に導入した。この細胞を本明細書に記載されるとおり培養して最終分化させた。細胞をCFSEで蛍光標識し、免疫不全NSGマウス(Jackson Labs)に尾静脈から注射した(1マウス当たり1×108細胞)。一定の間隔で血液を顎下穿刺によって採取した。採取した細胞を洗浄し、溶解し、HAエピトープタグに対する検出抗体で本明細書に記載されるとおりウエスタンブロットによって分析した。
外因性チミジンホスホリラーゼを発現する血小板の集団を、本明細書に詳説される手順を用いて培養し、CFSEで標識し、NSGマウスに尾静脈から注射する。ヒト供給源の天然血小板の集団を同様にCFSEで標識し、別のマウスに注射する。両方のマウスから10分、1時間、4時間、8時間、24時間、及び48時間の時点で試料を採取し、フローサイトメトリーを用いて血小板循環レベルを定量化する。天然血小板と培養血小板の半減期を比較する。
治療上の適用には、培養血小板及び外因性タンパク質を(細胞内又は表面上のいずれかに)含む培養血小板が凝固カスケードの活性化及び組織血栓形成などの有害事象を誘導しないことが重要である。培養血小板をNSGマウスに尾静脈から注射した後、ELISAによって製造者のプロトコルに従い(MyBiosource)マウス血漿中のフィブリノゲン崩壊産物フィブリノペプチドA及びフィブリノペプチドBを検出する。死体解剖後、NSGマウスの組織試料を採取する。組織はトリミングし、パラフィンワックスに包埋して切片化する。組織切片をH&E染色及びトリクロム染色によって染色する。10倍及び20倍の拡大率で顕微鏡像を撮り、病原性の特徴について熟練の病理学者が評価する。
培養血小板内及びその上における外因性タンパク質の保持を、フローサイトメトリー及びウエスタンブロッティングによって評価する。
インフォームドコンセントを得た後、健康CD34+幹細胞ドナーが末梢血幹細胞動員のためrhG−CSF(Granocyte又はNeupogen)、10ug/kg/日s.c.を5日間受け、次に2日連続でアフェレーシスを受けて、動員されたCD34+HSCが収集される。動員された末梢血からFicoll密度勾配遠心法によって単核細胞(MNC)を単離し、2部に分ける。1部は、Miltenyiプロトコルに関連して、抗CD34被覆磁気ビーズ(Miltenyi Biotec,Inc.、Germany)を使用したCD34+細胞の精製に使用する。CD34+画分の純度を制御する。次にCD34+濃縮HSCを二段階培養法で直ちに使用するか、又は一段階培養法における使用時まで凍結する。
静置培養で細胞を1×105〜2×106細胞/mLの密度に維持して、赤血球系細胞の容積を漸進的にスケールアップする。拡大段階は105/mlで播種し、3〜7回の漸進的な容積替えを含む;100ml、500ml、1L、10L、50L、100L、100L。生成の過程において、細胞培地はIMDM、FBS、BSA、ホロトランスフェリン、インスリン、グルタミン、デキサメタゾン、βエストラジオール、IL−3、SCF、及びエリスロポエチンの組み合わせを含む。細胞が生成バイオリアクターに播種するのに適切な容積に達したところで、最終的なスケールアップ及び分化のため細胞を生成バイオリアクターに移し替える。
WAVEバイオリアクター2/10システムを操作マニュアルに従いセットアップする。端的には、Cellbagをロッキングユニットに組み付け、それを灌流モジュールに置く。このバッグを空気で膨張させた後、ウエイトをゼロに設定する。続いてバッグに適切な量の培養培地を充填し、少なくとも2時間インキュベートして培地を37℃に到達させる。2つのポートを有する特別な設計のDURANガラスボトルであるトランスファーフラスコでこのバッグに培地及び細胞を移し替える。フラスコの上部においてポートにフィルタを接続する。フラスコの底の近くの他方のポートにはチューブを組み付ける。トランスファーフラスコのチューブをCellbagの供給接続部と結合する。トランスファーフラスコはLAFフード内に維持し、汚染のリスクを低下させる。
インビトロ分化細胞の拡大、分化、及び除核を評価して、トランス遺伝子の導入が培養下の細胞の品質に悪影響を及ぼさないよう確実にすることは重要である。拡大は、細胞計数によって評価する。分化は、フローサイトメトリー、ウエスタンブロット、及びRT−PCRによって評価する。除核は、フローサイトメトリーによって評価する。
1.全ヘモグロビン
赤血球ヘモグロビン含量をドラブキン試薬(Sigma−Aldrich、製品D5941)によって製造者の指示に従い決定した。簡潔に言えば、血液細胞をこの試薬と水性緩衝液中に合わせ、徹底的に混合し、標準的な分光光度計を使用して波長540nmの光の吸光度を計測した。可溶性ヘモグロビン検量線を使用して細胞中のヘモグロビン含量を定量化した。
細胞を溶解したと共に、全RNAを回収する。SuperScript RT−PCR用第一鎖合成システム(First−Strand Synthesis System for RT−PCR)(Life Technologies)によって製造者のプロトコルに従い逆転写を実施した。簡潔に言えば、全RNA(5ug)を10uL H2O中の150ngランダムヘキサマープライマー及び10nmol dNTPミックスと共に65℃で5分間、次に氷上で1分間インキュベートした。反応マスター混合物を、2uL 10×RT緩衝液、4uLの25mM MgCl2、2uLの0.1M DTT、及び1uLのRNAseOUTと共に調製した。この反応混合物をRNA/プライマー混合物に加え、素早く混合し、次に室温に2分間置いた。各チューブに1uL(50単位)のSuperScript II RTを加え、混合し、25℃で10分間インキュベートした。この反応物を42℃で50分間インキュベートし、70℃で15分間熱失活させ、次に氷上で保存した。1uLのRNアーゼHを加え、37℃で20分間インキュベートした。次にこの反応産物、第1鎖cDNAを、RT−PCR反応に必要になるまで−20℃で保存した。
培養下の血小板の分化状態は、フローサイトメトリーによって評価することができる。巨核球(MK)は、最終的な血小板分化に先行する特徴的な細胞形態を表す。MKに向かう成熟の程度を決定するため、1×106個の培養細胞(LAMA−84及びCD34+細胞)を洗浄し、次に(a)抗CD41−FITC(GpIIb/IIIa;BD Bioscience、San Jose、CA、USA)又は抗CD71−FITC又は(b)抗CD33−FITC、抗CD41−PE、抗CD45−PerCp及びCD34−APC(Beckman Coulter、Fullerton、CA、USA)で標識し、作成されたCD41細胞のパーセンテージを分析する。
培養下の血小板の分化状態は、定量的PCRによって評価することができる。血小板RNAを抽出して培養細胞をさらに特徴付ける。全RNAはTRIzol試薬(Invitrogen)を使用して抽出する。各血小板調製物の純度は血小板(GPIIIa)及び白血球(CD45)マーカーのPCR解析によって評価する。さらなる分析の前に、Bioanalyzer 2100(Agilent)を使用して血小板RNAの完全性を評価する。
培養細胞画分は遠心によって精製し、核及び夾雑代替密度細胞型(contaminating alternate−density cell types)から分離することができる。細胞を200gで15分間遠心して赤血球及び網赤血球リッチ画分を単離する。上清をピペットで取り除き、次に望ましい細胞画分を、1μMプロスタグランジンI2の存在下で変性タイロード緩衝液(138mM NaCl、5.5mMデキストロース、12mM NaHCO3、0.8mM CaCl2、0.4mM MgCl2、2.9mM KCl2、0.36mM Na2HPO4及び20mM Hepes含有、pH7.4)で洗浄し、同じ緩衝液に再懸濁する。
培養細胞の除核は、培養物に対する化学添加剤によって刺激することができ、これは精製前に細胞の除核画分の増加を促進し得る。本明細書に記載されるとおり赤血球系細胞を培養する。回収の48時間前、細胞を210mM Me2SOと共にインキュベートする。次に350×g、室温で5分間遠心することによって細胞を回収し、210mM Me2SO及び5ug/mLのサイトカラシンB(又は他のアクチン又は核操作分子、即ちp38 MAPK、ソラレン)を含有する新鮮培地に3×105細胞/mlのレベルで再懸濁し、37℃でインキュベートする。核のない細胞の割合を、DRAQ5を核酸染色剤及びグリコホリンAに対する抗体を赤血球表面分化マーカーとして使用して、本明細書に記載されるとおりフローサイトメトリーによって評価する。
幾つかの機械的分離システムを使用して一様な細胞集団を得ることができる。フリーフロー音響泳動は、1つの機械的分離方法に相当する(Petersson 2007,American Chemical Society)。CsCl(0.22g/mL)を含めて、栄養素添加剤と共に生理食塩水(0.9mg/mL)中に懸濁しながら、生理食塩水に加える。培養赤血球系細胞を含有する試料懸濁液を、2つの能動的出口(1つの出口につき流量0.10mL/分)を有する音響泳動チップ(Cell−Care)を使用して処理する。
完全には成熟していない赤血球系細胞は、天然のインビボ成熟トリガーを模倣するシステムにおいてエキソビボでインキュベートすることにより、成熟に至るよう促進することができる。
培養の最終段階において、赤血球系細胞をサイトカイン不含の新鮮培地中の付着間質細胞層上で培養する。培養物は37℃で5%CO2空気中に維持する。付着細胞層は、10%ウシ胎仔血清を補充したRPMI(Invitrogen)中の、正常成人全骨髄から樹立されたMS−5間質細胞株又は間葉間質細胞(MSC)のいずれかからなる(Prockop,DJ(1997)Science 276:71を参照)。付着MSCは、共培養で使用する前に、少なくとも2代の連続継代で拡大及び精製する。
培養の最終段階において、ヒトフィブロネクチンを吸着させたプレートで赤血球系細胞を培養する。このようなプレートを作製するには、フィブロネクチン(Sigma Aldrich)を1mL滅菌H2O/mgタンパク質で再構成し、37℃で少なくとも30分間溶解させる。少量の不溶材料が残り得る。これが産物のパフォーマンスに影響を与えることはない。フィブロネクチン溶液を滅菌平衡塩類溶液中に100倍希釈し、最少容積で培養表面に加える。培養表面を室温で少なくとも45分間風乾させる。過剰のフィブロネクチンを吸引によって取り除く。
赤血球系細胞を磁気泳動によって分離し、濃縮し、及び/又は精製する戦略は当該技術分野において公知であり、例えば、Zborowski et al.,2003,Biophys J 84(4)2638及びJin&Chalmers 2012,PLOS One 2012 7(8):e39491を参照されたい。市販の磁気分離システム(4つのMidiMACS(商標)分離ユニット及びLDカラムを組み合わせるQuadroMACS(商標)セパレーター、Miltenyi Biotec、Auburn、CA)を使用してHSC由来の赤血球培養物から赤血球を磁気的に濃縮する。窒素(Medipure(商標)窒素、濃度>99%、Praxair,Inc.、Danbury、CT)を充満させたGlove−Bag(商標)膨張式グローブチャンバ(Cole Parmer、Vernon Hills、IL)において細胞を脱酸素化する。脱酸素化前に全ての材料及び機器を、分離システム、脱気した滅菌緩衝液(PBS+2mM EDTA+0.5%BSA)、及び滅菌コレクションチューブを含めてグローブバッグに置き、次にバッグをきつく密閉する。N2ガスを充満させた膨張式グローブチャンバの内部で酸素欠乏条件下に保たれているQuadroMACS(商標)セパレーターに置かれたMACS(登録商標)LDカラムに、脱酸素化培養物を直接ロードする。磁石内に入ったカラムを通り抜ける細胞は陰性画分と分類され、これは「非磁性」と予想され、HSC及び最終的な成熟前の赤血球系細胞が含まれる。分離カラムに保持される細胞は陽性画分と分類され、これは「磁性」であり、機能性ヘモグロビンで略充満した成熟RBC様細胞からなる。これらの細胞は、LDカラムを磁石から取り外した後にそこから溶出する。分離終了後、回収された細胞を曝気することにより、酸素化した細胞が可逆的に回復する。
Becton−Dickinson Aria IIuセルソーターを使用して赤血球培養細胞の集団を選別する。選別前に細胞を回収し、PBSで洗浄し、グリコホリンA(Life Technologies)に対する蛍光抗体及び核酸染色剤DRAQ5(Pierce)によって製造者の推奨する希釈度で染色する。28,000滴/秒の滴下駆動周波数で100μmノズルを使用する。試料閾値速度は約4000イベント/秒である。全選別時間にわたり温度制御オプションを使用して試料及びコレクションチューブを4℃に維持する。加えて、選別の間中試料撹拌機能を200rpmで使用して、試料の沈降を防止する。試料は、シリンジから分注される約750μのアリコートに選別される。一方、これらの中断中はコレクションチューブを4℃に保ち、遮光し、穏やかに混合した後に選別を再開する。選別した試料は、10%FCSを補充した250μl DMEMが入った12×75mmホウケイ酸ガラスコレクションチューブに回収する。
同種赤血球を供給源とするにおいては、A及びB抗原を除去して万能に適合する産物を生成することが有益であり得る。これは、ガラクトース基を選択的に切断して赤血球系細胞を免疫原性の点でより有利なものにする能力を有する一組の酵素によって促進し得る。
血小板は、混合細胞懸濁液から遠心によって精製することができる。約40mlの全血を、抗凝固薬として使用される3.2%のクエン酸ナトリウムと共に採血チューブに分配する。このチューブを400×gで10分間遠心する。この段階後、3層の境界が明確に画定される:血漿、赤血球、及び中間域。血漿が上にあり、血小板、赤血球は密度が高いため、下にある;及び微細な白みがかった中間域は、より大きい血小板及び白血球からなり、バフィーコートと呼ばれる。Jelco 18G針を使用して、血小板を含む血漿の上部を抜き取り、バフィーコートを、ここでは添加剤無しに2本の別のチューブに入れる:一方のチューブは血漿を作製するため(Pチューブ)及び他方はトロンビンを作製するため(Tチューブ)である。僅か1.5mlの血漿のみを使用してトロンビンを作製し、そこに10%で0.5mlのグルコン酸カルシウムを加え、37℃で15分間ダブルボイラーに置く。次に2本のチューブを、ここでは800×gで、同じ長さの時間にわたり(T=10分)再度遠心する。この最後の遠心後、Tチューブにはトロンビンリッチの液体が含まれ、一方、Pチューブには血小板沈渣及びいくらかの赤血球(赤血球−血小板凝集塊)が含まれる。この段階で、総血漿容積の3分の2を取り除いて容積を減らす。取り除く部分は乏血小板性であり、一方、沈降した血小板(撹拌することによって容易に分散し得る)を含む残りの部分は多血小板性である。
細胞集団の自己複製能力は、当該技術分野において公知のチミジン取込みアッセイを用いて評価することができる。例えば、Harkonen et al.1991 Exp Cell Res 186L288及びTanaka et al.1992 PNAS 89:8928を参照されたい。
DNAを含有する混合集団中の細胞の数を、DNA染色剤DRAQ5(Pierce)を使用したフローサイトメトリーによって評価する。細胞を染色剤と共に製造者の指示に従いインキュベートし、フローサイトメーター、例えばAttuneサイトメーター(Life Technologies)で分析する。所定の核物質含量閾値を上回る細胞の割合を定量化する。
細胞の複製能を評価するには、軟寒天コロニー形成アッセイを実施することができる。端的には、0.5%寒天+1×RPMI+10%FCS溶液を作ることによって基本寒天層が作り、全成分を40℃に加温し、1.5mLのこの溶液を35mmペトリ皿に加える。使用前にこの寒天を室温で30分間凝固させる。
最終分化した培養赤血球系細胞を様々な動物モデルに移植して潜在的な腫瘍原性を評価する。様々なモデルから幾つかの組織を採取し、組織学的、免疫化学的、及び蛍光アッセイで分析して腫瘍原性を定量化する。
本明細書に記載されるとおり培養した赤血球系細胞を、変形能特性に関してエクタサイトメトリーによって天然赤血球試料と比べて評価する。
精製cRBC集団の変形能をレーザー回折法(LORCA、レーザー支援旋光セルアナライザー、R&R Mechanotrics)によって計測する。端的には、細胞の高度希釈懸濁液を、2つのシリンダ間が0.3mm間隙の、シリンダの一方が回転してずり応力を生じさせることが可能なクエットシステムでせん断する。レーザービームが懸濁液を通過し、37℃で回折パターンが計測される。低ずり応力では細胞は円板であるが、一方、高ずり応力では細胞は楕円になる。細胞変形能は伸び指数(EI)を単位として表され、EIは変形細胞の楕円率に依存する。12.5uLのペレット化したRBCペレットを含有するアリコートを5mLのポリビニルピロリドン溶液(分子量360000)に希釈する。種々のずり応力における試料間での比較を容易にするため、30PaにおけるEI値(EImaxと称される)及び3PaにおけるEI値が変形能の代表値として選択される。
赤血球系細胞の血管閉塞の可能性は、当該技術分野において公知の方法を用いて単離人工灌流ラット血管系で評価することができる。例えば、Kaul et al.1983,J Clin Invest 72:22を参照されたい。簡潔に言えば、ウィスター系の麻酔下(ペントバルビトール(pentabarbitol)ナトリウム30mg/kg)ラット、120〜150gにおいて、右回結腸動脈及び静脈を、回結腸接合部から3cm離れた部位でヘパリン添加(100uL/mL)シラスティックチュービングによってカニューレ挿入する。1%ウシ血清アルブミンを含有するリンゲル液による定常状態の灌流下で、上行結腸及び回腸末端(各3cm)を結紮間で区切る。全ての血管接続部の止血結紮を達成した後、組織を単離する。顕微鏡ステージ上の光学的に透明なルーサイトブロックに単離虫垂間膜を穏やかに広げる。カニューレの出口及び顕微鏡対物レンズを除き、調製物全体をプラスチックサランラップ(登録商標)で被覆する。
漸進的高さのインビトロフローチャンバを使用して赤血球系細胞の血管閉塞を評価する方法は当該技術分野において公知である。例えば、Zennadi et al 2004,Blood 104(12):3774を参照されたい。
生体顕微鏡法を使用して赤血球系細胞の血管閉塞を評価する方法は当該技術分野において公知である。例えば、Zennadi et al.2007 Blood 110(7):2708を参照されたい。
ヒト血管内皮細胞(HUVEC)を使用して血小板の血管閉塞を評価する方法は、赤血球に関する同様の方法を適用することができる。簡潔に言えば、2mL容積の0.05%ヘマトクリット懸濁液を組織培養ペトリ皿上のコンフルエントなHUVECに加える。血小板を加えて1分以内にコーンアンドプレート器具を組み立て、Nikon Diaphot−TMD倒立位相差顕微鏡(Southern Micro Instruments、Atlanta、GA)に置く。モータを始動させてコーンを回転させ、0.1又は1ダイン/cm2のずり応力で30分間、付着を継続的にモニタする。温度は、付着器具に吹き付けるエアカーテンインキュベーター(Nicholson Precision Instruments,Inc.、Bethesda、MD)によって37℃に一定に維持する。血小板付着を可視化し、5分毎に、各時点各視野につき8つの異なる視野に20秒間焦点を合わせることにより記録する。実験全体はCCD−72シリーズカメラ(Dage−MTI,Inc.、Michigan City、IN)によって400倍の総倍率下で観察し、SVO 2000ビデオカセットレコーダー(Sony Electronics、San Jose、CA)でビデオテープに記録する。各実験終了時に、記録したビデオ画像を手動再生する間に個々の付着細胞をカウントすることにより、付着をオフラインで定量化する。各時点につき8つの視野の細胞数を平均し、内皮1平方ミリメートル当たりの付着赤血球に対して正規化する。
Bryan et al,LabChip,2014に基づきデュアル懸濁マイクロチャネル共振器(SMR)システムを使用して最終分化型赤血球系細胞集団の質量、容積、及び密度を特徴付ける。細胞密度計測の開始時、初めにシステムをPercollろ過媒体でフラッシュし、これが高密度流体としての役割を果たす。次に、試料バイパスに希釈細胞試料を充填し、試料入口及び出口のバイアル高さを調整して流体フローが最初のSMRに入るように導く。高密度流体入口の圧力が流体2の密度を設定するために使用され、廃棄物出口の圧力が装置における全体の流速を制御する。より重い細胞が試料バイアル又はチュービングの底に沈降することに起因してサイズバイアスがかかる可能性を最小限に抑えるため、一定の間隔で試料バイパスチャネルをフラッシュすることにより、新鮮な試料を導入する。LabVIEWによってデータを取得し、MATLABで処理する。
本明細書に記載されるとおり赤血球系細胞を培養する。5mM CaCl2を含有するリンゲル溶液中で50μL細胞懸濁液を洗浄し、次にこの溶液中のアネキシン−V−FITC(1:200希釈;ImmunoTools、Friesoythe、Germany)によって遮光下37℃で20分間染色する。細胞を洗浄し、本明細書に記載されるとおりフローサイトメトリーによって染色し、488nmの励起波長及び530nmの発光波長でアネキシン−V蛍光強度を計測する。アネキシン−V蛍光から相対ホスファチジルセリン露出を評価する。
抗酸化剤BHT(Sigma Aldrich)の存在下、室温でメタノール−クロロホルム1:1によって3回抽出することにより、洗浄した合成膜−レシーバー複合体から脂質を抽出する。プールした抽出物を、Folch,Lees and Sloane Stanley1957,J Biol Chem 226:497の方法において0.05M KClで洗浄する。簡潔に言えば、最初の抽出については、遠心管内の洗浄した複合体に0.05mg/mL BHT含有15mLメタノールを加え、沈降物を散らせるため時折撹拌しながら30分間静置する。次に15mLのクロロホルムを加え、凝集塊を散らせるため時折撹拌しながら混合物を30分間静置する。チューブを1500gで5分間遠心し、上清画分をTeflon活栓付きの分液漏斗にデカントする。2回目及び3回目の抽出も同様に、15mLのメタノール−BHTを残渣に加え、続いて15mLのクロロホルムを加えて実施し、但し毎回加えた後に抽出物は時折撹拌しながら10分間だけ静置する。遠心後、上清画分を分液漏斗にプールし、次に48mLのクロロホルム及び28mLの0.05M KClを加え、混合する。この混合物を4℃で一晩暗所に静置して相分離させる。再び室温に加温した後、2つクリアな相の下の方を回収し、ロータリー真空エバポレーターにおいて真空中40℃で蒸発乾固させる。脂質をクロロホルムと共に定量的に10mLメスフラスコに移し、−22℃で保存する。
細胞の集団の膜粘度は、蛍光退色アッセイによって評価することができる。赤血球系細胞の0.5ml試料を収集し、HEPES緩衝生理食塩水(132mM NaCl、4.7mM KCl、2.0mM CaCl2、1.2mM MgSO4、20mM HEPES、pH7.4に調整)で1回洗浄する。次にこの濃厚血球を145mM NaCl−10mM NaHCO3、pH9.5で1回洗浄し、1mg/ml DTAF(Research Organics、Cleveland、Ohioから入手)を含有する同じ緩衝液に再懸濁する。細胞を氷上で1時間インキュベートし、次に50mMグリシン−95mM NaCl−10mM NaHCO3、pH9.5で2回洗浄して、タンパク質に共有結合的に結合しなかった色素を全て取り除く。最後に、細胞を2回洗浄し、1mg/mlウシ血清アルブミン含有HEPES緩衝生理食塩水中の−2%ヘマトクリットに再懸濁する。対照陰性赤血球にも同じ処理を適用する。
Advia 120血液アナライザー(Siemens Healthcare)において電気インピーダンスを使用して培養赤血球系細胞の平均赤血球容積(MCV)を計測する。その結果を天然ヒト赤血球と比較する。
RT−PCRを用いて培養赤血球系細胞集団における外来性ウイルスの存在を定量化し、非汚染を確認する(アッセイ番号003000.BSV、BioReliance)。未処理バルク及び最終バルク、最終バイアル、貯蔵前細胞、並びに細胞及びウイルスバンクの無菌検査を、それぞれ好気性及び嫌気性細菌の成長を支持する2つの異なる種類の培地に赤血球集団を直接接種することにより実施する。試料を14日間インキュベートし、続いてBioReliance無菌試験プロトコルUSP 71に従い汚染微生物に関して試験する。
低張液に曝露されたときの赤血球系細胞の溶解に対する抵抗性を計測するため、浸透圧脆弱性を評価する。0%〜1%にわたる濃度でNaCl水溶液を作製した。これらの塩溶液の各々で細胞を15分間インキュベートした。試料を遠心してインタクトな細胞をペレット化した。分光光度計を使用して540nmの光の吸収によるヘモグロビン含量に関して上清をアッセイした。50%溶血が起こる点を計算し、初代赤血球について得られる値と比較する。
クームス試験としても知られる直接抗グロブリン試験は、血清のポリクローナル抗体が細胞の表面抗原に結合することにより引き起こされる赤血球系細胞の凝集又はロゼット形成を評価する。これは、一般的な同種免疫原性評価のためのヒトプール血清で行うか、又は特定の免疫原性予測のための意図されるレシピエントの血清で行うことができる。
1cm経路長キュベットに連結したトノメーターにおいて37℃での平衡酸素結合曲線を決定する。分光光度計(Cary 50;Variant Inc)でスペクトル計測を実施し、ペルチェモジュールで温度を制御する。分析は、140mM NaCl及び2mMグルコースを含有する50mMビストリス緩衝液(pH7.2)中で実施する。窒素下で完全に脱酸素化した後、既知の容積の純酸素をHamiltonシリンジでゴムキャップを介してトノメーターに注入することにより、赤血球懸濁液を種々の酸素分圧で平衡化する。最小二乗回帰によってRBC懸濁液の完全脱酸素化及び酸素化スペクトルの一次結合として可視及びソーレー領域における吸収スペクトルをシミュレーションすることにより、飽和度を推定する。
赤血球系細胞集団は、種々の異なる酵素ベースのアッセイを用いて重要な代謝最終産物を定量化して、代謝的に活性であると確かめ得る。能動的解糖は、評価するのに決定的な代謝経路であり、以下のアッセイ(解糖細胞ベースのアッセイキット、Cayman Chemical、品目600450)で計測し得る。
培養又は初代供給源の血小板の凝集傾向をモニタすることができる。血小板を光源の前で振盪することにより血小板をスワーリング分析にかけ、結果は複屈折の存在又は非存在として表す。50〜70mLの容積で生じる濃縮血小板の単位を1時間静置しておき、22±2℃(71.6±3.6°F)の制御された温度で70rpmの直線振盪機(C−Mar(登録商標))に置く。
自家供給源の前駆体CD34+細胞を使用した赤血球系細胞の培養を行い、患者に対する細胞免疫適合性を最適化する。患者において本明細書に記載されるとおりGM−CSFを使用して骨髄由来のCD34+細胞を末梢に動員する。106〜108個のCD34+細胞を採取し、限定培地を使用する前述の22日間プロトコルを用いて培養する。4日目の間に、治療剤の発現をコードする遺伝子を含有するレンチウイルスベクターで細胞をトランスフェクトする。培養プロトコルの完了後、細胞を精製し、循環生存能、免疫原性、複製能、純度、及び治療用量と相関する物理的特性を含めた幾つかの品質管理尺度に関して評価する。次に細胞を適切な安定化溶液に保存し、シリンジ又は適切な送達媒体に製剤化する。次にこの細胞を、最初のCD34+細胞を提供したのと同じ患者に注入する。
好適なレシーバーが負荷された治療用赤血球系細胞を調製するため、自家供給源の赤血球を使用して患者に対する細胞免疫適合性を最適化することができる。患者から血液を採取し、5000gで20分間遠心する。バフィーコートを取り除き、残りの赤血球を抗凝固薬緩衝液中に108細胞/mlの密度で再懸濁し、合計1010細胞とする。上記に記載される方法の1つによって細胞に目的の治療用レシーバーを負荷する。負荷プロトコルの完了後、細胞を精製し、循環生存能、免疫原性、複製能、純度、及び治療用量と相関する物理的特性を含めた幾つかの品質管理尺度に関して評価する。次に細胞を適切な安定化溶液に保存し、シリンジ又は適切な送達媒体に製剤化する。この細胞を、最初の赤血球を提供したのと同じ患者に注入する。
拡張性のある万能な治療薬を作るため、同種供給源から赤血球系細胞を培養することができる。同種供給源の前駆体CD34+細胞を使用した赤血球系細胞の培養を行い、プロセスを合理化して、規模を拡大して患者を治療する能力を有するある容積の治療薬を培養する。ドナーのA、B、Rhを含めた主要血液抗原の血液型を決定し、万能ドナー(例えば、O Rh−又はボンベイRh−)を同定する。好適なドナーにおいて本明細書に記載されるとおりGM−CSFを使用して骨髄由来のCD34+細胞を末梢に動員する。106〜108個のCD34+細胞を採取し、限定培地を使用する前述の22日間プロトコルを用いて培養する。4日目の間に、治療剤の発現をコードする遺伝子を含有するレンチウイルスベクターで細胞をトランスフェクトする。培養プロトコルの完了後、細胞を精製し、循環生存能、免疫原性、複製能、純度、及び治療用量と相関する物理的特性を含めた幾つかの品質管理尺度に関して評価する。次に細胞を適切な安定化溶液に保存し、シリンジ又は適切な送達媒体に製剤化する。次にこの細胞を患者に対し、その主要血液型とは無関係に注入する。
同種供給源の前駆体CD34+細胞を使用した赤血球系細胞の培養を行い、規模を拡大して患者を治療する能力を有するより大容積の治療用細胞の調製方法を合理化する。ドナーのA、B、Rhを含めた主要血液抗原の血液型を決定し、万能ドナー(例えば、O Rh−又はボンベイRh−)を同定する。上記に記載される方法の1つによって細胞に目的の治療用レシーバーを負荷する。負荷プロトコルの完了後、細胞を精製し、循環生存能、免疫原性、複製能、純度、及び治療用量と相関する物理的特性を含めた幾つかの品質管理尺度に関して評価する。次に細胞を適切な安定化溶液に保存し、シリンジ又は適切な送達媒体に製剤化する。次にこの細胞を患者に対し、その主要血液型とは無関係に注入する。
1.冷蔵緩衝溶液中での保存
赤血球の標準保存プロトコルは当該技術分野において公知である。例えば、Meryman and Hornblower 1986,Transfusion 26(6):500を参照されたい。赤血球の標準保存プロトコル(最長42日間)は、抗凝固薬溶液(クエン酸−デキストロース−リン酸)への採血である。本明細書に記載されるとおり赤血球系細胞を培養する。遠心によって血漿を取り除くことにより、濃縮赤血球を調製する。細胞をやや高張の添加剤溶液、SAGM(ナトリウム、アデニン、グルコース、マンニトール、376mOsm/L)中に4±2℃で保存する。
赤血球系細胞のグリセロール処理、凍結、及び解凍方法は当該技術分野において公知である。例えば、Meryman and Hornblower 1977 Transfusion 17(5):4348を参照されたい。採取から4日以内にクエン酸リン酸デキストロース中のヒト血液をグリセロール処理し、凍結する。グリセロール処理RBCの調製には、初めに約10mLの全血を1,400gで10〜15分遠心し、血漿を取り除く。次に得られた濃厚血球に、以下の組成のグリセロール水溶液を使用して2段階でグリセロール処理する:57.1gグリセロール、0.03g塩化カリウム、0.085g塩化マグネシウム六水和物、0.08gリン酸二ナトリウム、及び1.6g乳酸ナトリウム、総容積100mL中、pHは6.8に調整42。第1のステップでは、濃厚血球に1.5mLのこのグリセロール溶液を穏やかに撹拌しながら3分間かけて滴下して加える。次に混合物を少なくとも5分間そのままにして平衡化させる。第2のグリセロール処理ステップでは、混合物を穏やかに撹拌しながら3分間かけて5mLのグリセロール溶液を滴下して加え、約40%w/vの最終グリセロール組成物を得る。グリセロール処理プロセス全体は室温で行う。次にグリセロール処理RBCを低温用バイアルに0.6〜1.1mLのアリコートに分け、NalgeneVR Cryo「Mr.Frosty」凍結容器(Thermo Scientific、NC)に入れ、−80℃のフリーザーに少なくとも12時間、最長10年保存する。凍結RBCは、低温用バイアルを37℃の水浴中に1分間置くことにより解凍する。全てのグリセロール処理血液試料は解凍後2時間以内に脱グリセロール化実験で使用する。
細胞集団はシリンジによって静脈内投与し得る。100mlの容積、又は109細胞が送達されるように、37℃の標準生理食塩緩衝液を使用して治療用細胞を107細胞/mlの密度に希釈する。細胞溶液を150ccシリンジ、20ゲージ針に装填し、尺側皮静脈から5cc/分で患者に注射する。注射中、免疫原性反応又は凝固反応がないか患者のバイタルをモニタする。
細胞集団は、バッグ及び点滴チャンバに接続したシリンジによって静脈内投与し得る(即ちIV点滴)。100mlの容積、又は109細胞が送達されるように、37℃の標準生理食塩緩衝液を使用して治療用細胞を107細胞/mlの密度に希釈する。細胞溶液を1Lプラスチックバッグに装填し、カテーテルに接続し、重力によって尺側皮静脈から患者体内に送液する。注入中、免疫原性反応又は凝固反応がないか患者のバイタルをモニタする。
最終細胞産物が1細胞当たり表面上に>1×105コピーのb2GPIレシーバーを発現するように、グリコホリンAのN末端に融合した外因性トランス遺伝子β2グリコプロテインI(b2GPI)(GenBank:X53595.1)をコードするレンチウイルスの存在下で細胞を培養する。レシーバーが機能的に発現することを確実にするため、インビトロ活性をフローサイトメトリーによって評価する。簡潔に言えば、以前にELISAによる抗b2GPI抗体試験で陽性を示した抗リン脂質症候群患者の血清と共に細胞をインキュベートする。この細胞を洗浄し、その表面に結合したヒト一次抗体を検出するため二次抗体で標識し、フルオロフォアの存在についてフローサイトメトリーによって分析する。
フローサイトメトリーによって評価するとき最終細胞産物が1細胞当たり表面上に>1×105コピーのNC1−COL4A3レシーバーを発現するように、グリコホリンAのN末端に融合した外因性トランス遺伝子COL4A3、NC1−COL4A3(ID:NM_000091.4)の非コラーゲン性C末端ドメインをコードするレンチウイルスの存在下で細胞を培養する。レシーバーが機能的に発現することを確実にするため、インビトロ活性をフローサイトメトリーによって評価する。簡潔に言えば、以前にELISAによる抗NC1−COL4A3抗体試験で陽性を示したグッドパスチャー症候群患者の血清と共に細胞をインキュベートする。この細胞を洗浄し、その表面に結合したヒト一次抗体を検出するため二次抗体で標識し、フルオロフォアの存在についてフローサイトメトリーによって分析する。
フローサイトメトリーによって評価するとき最終細胞産物が1細胞当たり表面上に>1×105コピーのPLA2Rレシーバーを発現するように、グリコホリンAのN末端に融合した外因性トランス遺伝子ホスホリパーゼA2受容体(PLA2R)(ID:MGC:178179)の4番目〜6番目の細胞外ドメインをコードするレンチウイルスの存在下で細胞を培養する。レシーバーが機能的に発現することを確実にするため、インビトロ活性をフローサイトメトリーによって評価する。簡潔に言えば、以前にELISAによる抗PLA2R抗体試験で陽性を示した膜性糸球体腎炎(MGN)患者の血清と共に細胞をインキュベートする。この細胞を洗浄し、その表面に結合したヒト一次抗体を検出するため二次抗体で標識し、フルオロフォアの存在についてフローサイトメトリーによって分析する。
フローサイトメトリーによって評価するとき最終細胞産物が1細胞当たり>1×105コピーのCR1外部ドメインレシーバーを発現するように、グリコホリンAのN末端に融合した外因性トランス遺伝子補体受容体1(CR1)(配列番号2)の細胞外ドメインをコードするレンチウイルスの存在下で細胞を培養する。レシーバーが機能的に発現することを確実にするため、免疫複合体と結合し、且つその複合体をマクロファージにトランスファーするその能力に関して細胞をアッセイする。
フローサイトメトリーによって評価するとき最終細胞産物が1細胞当たり>1×105コピーのCR1外部ドメインレシーバーを発現するように、グリコホリンAのN末端に融合した外因性トランス遺伝子補体受容体1(CR1)(配列番号2)の細胞外ドメインをコードするレンチウイルスの存在下で細胞を培養する。レシーバーが機能的に発現することを確実にするため、免疫複合体と結合し、且つその複合体をマクロファージにトランスファーするその能力に関して細胞をアッセイする。
フローサイトメトリーによって評価するとき最終細胞産物が1細胞当たり>1×105コピーのCD59レシーバーを発現するように、N末端エピトープタグを有する外因性トランス遺伝子CD59(NCBI参照配列:NM_203330.2)をコードするレンチウイルスの存在下で細胞を培養する。レシーバーが機能的に発現することを確実にするため、共培養下でヒツジ赤血球に対する膜侵襲複合体を阻害するその能力に関して細胞をアッセイする。
フローサイトメトリーによって評価するとき最終細胞産物が1細胞当たり>1×105コピーのCD59レシーバーを発現するように、N末端エピトープタグを有する外因性トランス遺伝子CD59(NCBI参照配列:NM_203330.2)をコードするレンチウイルスの存在下で細胞を培養する。レシーバーが機能的に発現することを確実にするため、共培養下でヒツジ赤血球に対する膜侵襲複合体を阻害するその能力に関して細胞をアッセイする。
フローサイトメトリーによって評価するとき最終細胞産物が1細胞当たり>1×105コピーのCD59レシーバーを発現するように、N末端エピトープタグを有する外因性トランス遺伝子CD59(NCBI参照配列:NM_203330.2)をコードするレンチウイルスの存在下で細胞を培養する。レシーバーが機能的に発現することを確実にするため、共培養下でヒツジ赤血球に対する膜侵襲複合体を阻害するその能力に関して細胞をアッセイする。
全長抗CD20抗体をベースとして抗体scFvを生成する。スプライスオーバーラップ伸長PCR(SOE−PCR)を用いて、マウス2B8のV遺伝子配列をベースとして完全合成抗CD20可変(V)遺伝子を作成する(米国特許第5,736,137号明細書)。次に全長2B8VL及びVH遺伝子をSOE−PCRによってアセンブルして、VL−VHの向きで18残基長リンカー(Whitlow 218リンカー;GSTSGSGKPGSGEGSTKG)を有する単鎖Fv(scFv)を作製する。5’末端(上流)にシグナルペプチドも含んで分泌を可能にするSOE−PCRに続き、このコンストラクトをpCR(登録商標)−2.1−TOPOベクター(Invitrogen Corp.、Carlsbad、CA)にクローニングし、シーケンシングによって確認する。
フローサイトメトリーによって評価するとき最終細胞産物が1細胞当たり>1×105コピーのSAPレシーバーを発現するように、グリコホリンAのN末端に融合した外因性トランス遺伝子血清アミロイドP(SAP)成分(GenBank:D00097.1)をコードするレンチウイルスの存在下で細胞を培養する。レシーバーが機能的に発現することを確実にするため、インビトロ活性をフローサイトメトリーによって評価する。簡潔に言えば、抗軽鎖ELISAでアミロイド斑が陽性である軽鎖アミロイドーシス患者の血清と共に細胞をインキュベートする。フルオロフォアで直接標識されている抗λ軽鎖抗体(Abcam)で二次標識することにより、軽鎖アミロイド斑とSAP提示細胞の結合を検出する。インキュベートした細胞を洗浄し、フルオロフォアの存在についてフローサイトメトリーによって分析する。
フローサイトメトリーによって評価するとき最終細胞産物が1細胞当たり>1×105コピーの抗体scFvレシーバーを発現するように、B型肝炎表面抗原(HBsAg)に対する外因性トランス遺伝子抗体scFv(配列番号1)をコードするレンチウイルスの存在下で細胞を培養する。レシーバーが機能的に発現することを確実にするため、インビトロ活性をフローサイトメトリーによって評価する。簡潔に言えば、様々な濃度のDylight 650フルオロフォアで直接標識されている標的タンパク質HBsAg(Abcam)と共に細胞をインキュベートする。インキュベートした細胞を洗浄し、フルオロフォアの存在についてフローサイトメトリーによって分析する。
HPLCプロトコルを用いてアデノシン及びイノシンレベルを検出することにより、アデノシンデアミナーゼ活性をインビトロでモニタする。前述のトランスフェクションプロトコルを用いて作製した、外因性の細胞内アデノシンデアミナーゼを発現する約105個の赤血球系細胞を、1mlウェルにアリコートに分ける。各ウェルに1mMのアデノシンを投与し、1時間インキュベートする。細胞を遠心し、冷メタノール沈殿を用いて上清から可溶性タンパク質を取り除く。次に上清試料を、イノシン及びアデノシン検量線を使用するAgilent 1100 HPLCにかけて、天然細胞と比較したヌクレオシドの相対量及び細胞内酵素活性を決定する。
HPLCプロトコルを用いてチミジン及びチミンレベルを検出することにより、チミジンホスホリラーゼ(TP)活性をインビトロでモニタする。前述のトランスフェクションプロトコルを用いて作製した、外因性の細胞内チミジンホスホリラーゼを発現する約105個の赤血球系細胞を、1mlウェルにアリコートに分ける。各ウェルに1mMのチミジンを投与し、1時間インキュベートする。細胞を遠心し、冷メタノール沈殿を用いて上清から可溶性タンパク質を取り除く。次に上清試料を、チミジン及びチミン検量線を使用するAgilent 1100 HPLCにかけて、天然細胞と比較したヌクレオシドの相対量及び細胞内酵素活性を決定する。
GCを負荷した、又はGCを発現する赤血球系細胞を使用したマクロファージへのβ−グルコセレブロシダーゼ(GC)の送達を実証するため、インビトロアッセイを実施する。送達の成功は、ゴーシェ病の治療薬としての潜在的な機構的作用を示す。U937細胞株を使用してマクロファージの初代培養物を調製する。トランス遺伝子発現方法及び標準的な小分子負荷プロトコルを使用して赤血球系細胞にGC及びCFSEを負荷し、アルセバー液で洗浄し、カバーガラス上のマクロファージに10:1の比で加える。プレートを2600gで5分間遠心し、37℃で30分間インキュベートする。非貪食赤血球系細胞を低張緩衝液で溶解させる。マクロファージをPBSで洗浄し、ベンジジン及びギムザで染色する。次にインターナライズされたGC及びCFSEに関してマクロファージをFACSで分析し、並びに蓄積セラミドレベルをジアシルグリセロール(DAG)キナーゼアッセイを用いて分析する。
HPLCプロトコルを用いてL−アスパラギン及びアスパラギン酸レベルを検出することにより、アスパラギナーゼ活性をインビトロでモニタする。標準トランスフェクションプロトコルを用いて作製した、外因性の細胞内アスパラギナーゼを発現する約105個の赤血球系細胞を、1mlウェルにアリコートに分ける。各ウェルに1mMのアスパラギンを投与し、1時間インキュベートする。細胞を遠心し、冷メタノール沈殿を用いて上清から可溶性タンパク質を取り除く。次に上清試料を、アスパラギン及びアスパラギン酸検量線を使用するAgilent 1100 HPLCにかけて、天然細胞と比較したアミノ酸の相対量及び細胞内酵素活性を決定する。
培養赤血球系細胞の膜上で発現するADAMTS13の活性を実証するため、インビトロアッセイを実施する。ADAMTS13アッセイは、合成の73アミノ酸ペプチド、FRETS−VWF73に頼るFRET誘導性システムである。この基質が2つの修飾残基間で切断されると、インタクトなペプチドにおける蛍光クエンチが解消される。FRETS−VWF73を培養赤血球系細胞と共にインキュベートすると、天然赤血球と比較して、時間の経過に伴う蛍光の定量的増加が示される。定量分析は、共通のフィルタを有する市販のプレートリーダーの96ウェルフォーマットを使用して1時間以内に達成する(Kokame、Br J Haematol、2005)。
培養赤血球系細胞の膜上で発現する第IX因子(FIX)の活性を実証するため、インビトロアッセイを実施する。第IXa因子アッセイプロトコル(活性化第IX因子、BIOPHEN Factor IXa、参照A221812)を使用して赤血球系細胞の試料の定量的な発色読取り値を提供する。赤血球系細胞のFIXa活性を天然赤血球及びヒト血漿の両方と比較する。
白血病抗原、ウィルムス腫瘍(WT1)に対するscFvを発現する赤血球系細胞を、初代供給源のWT1陽性白血病細胞とのロゼット形成に関してインビトロでアッセイする。Russell et al.2011 Blood 118(13):e74により記載される方法を用いて、20%同種血清濃縮マッコイ5A培地を使用して3%ヘマトクリットで細胞を培養する。ロゼットの存在を検出し、van Driessche,Leukemia 2005で適用される技法を改良した新規ギムザ低活性染色法を使用して定量化する。サンプリングした培養懸濁液をギムザで(最終染色濃度は5%である)15分間染色する。少量のこの懸濁液(7.5μl)を使用して、22×32mm(0.17mm厚)カバーガラスで湿式マウントを作る。この湿式マウントを光学顕微鏡で油浸拡大下に直ちに調べる。20%同種血清濃縮マッコイ5A培地の赤血球系細胞を調べることにより、ロゼット形成率を決定する。
Claims (39)
- フェニルアラニンアンモニアリアーゼ(PAL)またはフェニルアラニンアンモニアヒドロキシラーゼ(PAH)またはその機能断片を含む外因性ポリペプチドを含む、単離された除核赤血球系細胞であって、前記除核赤血球系細胞は、
赤血球系前駆細胞を、前記外因性ポリペプチドをコードする外因性核酸と接触させる工程;および
前記赤血球系前駆細胞が除核赤血球系細胞に分化するのを可能にする工程
を含む方法により調製される、除核赤血球系細胞。 - 前記外因性ポリペプチドがPALまたはその機能断片を含む、請求項1に記載の除核赤血球系細胞。
- 前記外因性ポリペプチドがPAHまたはその機能断片を含む、請求項1に記載の除核赤血球系細胞。
- 前記外因性ポリペプチドがPALからなる、請求項1に記載の除核赤血球系細胞。
- 前記外因性ポリペプチドがPAHからなる、請求項1に記載の除核赤血球系細胞。
- 前記外因性ポリペプチドが細胞内にある、請求項1〜5のいずれかに記載の除核赤血球系細胞。
- 前記外因性ポリペプチドが前記除核赤血球系細胞の表面上にある、請求項1〜5のいずれかに記載の除核赤血球系細胞。
- 前記細胞が、1細胞当たり少なくとも1,000コピーまたは少なくとも10,000コピーの前記外因性ポリペプチドを含む、請求項1〜7のいずれかに記載の除核赤血球系細胞。
- 表面に局在し、かつ、フェニルアラニン輸送体を含む第2の外因性ポリペプチドをさらに含む、請求項1〜8のいずれかに記載の除核赤血球系細胞。
- 前記細胞がABO型Oである、請求項1〜9のいずれかに記載の除核赤血球系細胞。
- 網赤血球である、請求項1〜10のいずれかに記載の除核赤血球系細胞。
- 赤血球である、請求項1〜10のいずれかに記載の除核赤血球系細胞。
- ヒト細胞である、請求項1〜12のいずれかに記載の除核赤血球系細胞。
- 前記外因性核酸がDNAを含む、請求項1〜12のいずれかに記載の除核赤血球系細胞。
- 前記外因性核酸がRNAを含む、請求項1〜12のいずれかに記載の除核赤血球系細胞。
- 単離された非修飾の非培養赤血球系細胞と実質的に同じ浸透圧膜脆弱性を呈する、請求項1〜15のいずれかに記載の除核赤血球系細胞。
- 請求項1〜16のいずれかに記載の除核赤血球系細胞の集団を含む医薬組成物。
- 前記除核赤血球系細胞の集団が、70%超除核されている、請求項17に記載の医薬組成物。
- 前記組成物が1×108の前記除核赤血球系細胞を含む、請求項17または18に記載の医薬組成物。
- 前記医薬組成物中の除核赤血球系細胞の少なくとも約90%が前記外因性ポリペプチドを含む、請求項17〜19のいずれかに記載の医薬組成物。
- 疾患または状態の処置または予防方法において使用するための請求項17〜20のいずれかに記載の医薬組成物。
- 前記疾患または状態がフェニルケトン尿症である、請求項21に記載の医薬組成物。
- 対象の血中のフェニルアラニン濃度を低減する方法において使用するための、請求項17〜20のいずれかに記載の医薬組成物。
- 静脈投与のために製剤化される、請求項17〜23に記載の医薬組成物。
- 除核赤血球系細胞を作製する方法であって、
赤血球系前駆細胞を、フェニルアラニンアンモニアリアーゼ(PAL)またはフェニルアラニンアンモニアヒドロキシラーゼ(PAH)またはその機能断片を含む外因性ポリペプチドをコードする外因性核酸と接触させる工程;および
前記赤血球系前駆細胞が除核赤血球系細胞に分化するのを可能にする工程
を含む、方法。 - 前記外因性ポリペプチドがPALまたはその機能断片を含む、請求項25に記載の方法。
- 前記外因性ポリペプチドがPAHまたはその機能断片を含む、請求項25に記載の方法。
- 前記外因性ポリペプチドがPALからなる、請求項25に記載の方法。
- 前記外因性ポリペプチドがPAHからなる、請求項25に記載の方法。
- 前記外因性ポリペプチドが細胞内にある、請求項25〜29のいずれかに記載の方法。
- 前記外因性ポリペプチドが前記除核赤血球系細胞の表面上にある、請求項25〜29のいずれかに記載の方法。
- 前記除核赤血球系細胞が、表面に局在し、かつ、フェニルアラニン輸送体を含む第2の外因性ポリペプチドをさらに含む、請求項25〜29のいずれかに記載の方法。
- 前記外因性核酸がDNAを含む、請求項25〜32のいずれかに記載の方法。
- 前記外因性核酸がRNAを含む、請求項25〜33のいずれかに記載の方法。
- 前記細胞が、1細胞当たり少なくとも1,000コピーまたは少なくとも10,000コピーの前記外因性ポリペプチドを含む、請求項25〜34のいずれかに記載の方法。
- 前記除核赤血球系細胞が網赤血球である、請求項25〜35のいずれかに記載の方法。
- 前記除核赤血球系細胞が赤血球である、請求項25〜35のいずれかに記載の方法。
- 前記除核赤血球系細胞がヒト細胞である、請求項25〜37のいずれかに記載の方法。
- 前記除核赤血球系細胞が単離された非修飾の非培養赤血球系細胞と実質的に同じ浸透圧膜脆弱性を呈する、請求項25〜38のいずれかに記載の方法。
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