JP3365885B2 - Assay method for human oxidized lipoprotein - Google Patents

Assay method for human oxidized lipoprotein

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JP3365885B2 JP10615395A JP10615395A JP3365885B2 JP 3365885 B2 JP3365885 B2 JP 3365885B2 JP 10615395 A JP10615395 A JP 10615395A JP 10615395 A JP10615395 A JP 10615395A JP 3365885 B2 JP3365885 B2 JP 3365885B2
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Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、ヒト酸化リポタンパク
質の測定法に関するものである。詳しく述べると、本発
明は、血液成分を酸化リン脂質を認識する抗体と接触さ
せ、該抗体の試料に対する反応性を測定することによっ
て血液成分中に含まれる酸化リポタンパク質を測定する
ことを特徴とする血液中のヒト酸化リポタンパク質の測
定法に関するものである。本発明はまた、上記測定法を
用いて心筋梗塞や狭心症などの冠動脈系疾患、脳梗塞や
脳血管系痴呆などの脳動脈系疾患、あるいは腎症、糖尿
病性腎症などの腎動脈系疾患および末梢動脈閉塞症のよ
うな末梢動脈系疾患などの各種循環器系疾患を診断する
方法に関するものである。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for measuring human oxidized lipoprotein. More specifically, the present invention is characterized by contacting a blood component with an antibody that recognizes oxidized phospholipid, and measuring the reactivity of the antibody with respect to a sample to measure the oxidized lipoprotein contained in the blood component. The present invention relates to a method for measuring human oxidized lipoprotein in blood. The present invention also uses the above-mentioned measurement method to coronary artery disease such as myocardial infarction and angina, cerebral artery disease such as cerebral infarction and cerebrovascular dementia, or nephropathy, renal artery system such as diabetic nephropathy. The present invention relates to a method for diagnosing various cardiovascular diseases such as diseases and peripheral arterial diseases such as peripheral arterial occlusion.

【0002】[0002]

【従来の技術】動脈硬化症は大動脈、冠状動脈、脳動脈
及び頚動脈などの筋型動脈に多く発生し、狭心症、心筋
梗塞、脳梗塞などの主因となる疾患である。その原因と
して血清コレステロールの上昇、血小板凝集、内皮傷害
などが提唱されているが、その成因はほとんど解析され
ていないのが現状である。
BACKGROUND ART Arteriosclerosis frequently occurs in muscular arteries such as aorta, coronary artery, cerebral artery and carotid artery and is a main cause of angina, myocardial infarction, cerebral infarction and the like. Elevated serum cholesterol, platelet aggregation, endothelial damage, etc. have been proposed as the cause, but the cause is hardly analyzed at present.

【0003】変性リポタンパク質の一つである酸化リポ
タンパク質と粥状硬化病巣の進展との関連性が、スタイ
ンバーグ(Steinberg) らにより指摘されて以来、動脈硬
化の進展における酸化リポタンパク質の問題は脚光を浴
びるようになっている(例えば Steinberg,D., Partha
sarathy,S., Carew,T.E., Khoo,J.C., and Witztum,J.
L.,(1989) N. Engl. J. Med. 320:915 )。
Since the association between oxidized lipoprotein, which is one of denatured lipoproteins, and the development of atherosclerotic lesions was pointed out by Steinberg et al., The problem of oxidized lipoproteins in the progression of arteriosclerosis has been highlighted. Bathing (eg Steinberg, D., Partha
sarathy, S., Carew, TE, Khoo, JC, and Witztum, J.
L., (1989) N. Engl. J. Med. 320: 915).

【0004】スカベンジャー受容体など酸化を受けたリ
ポタンパク質に対する受容体の存在が明らかにされ、酸
化LDL が、これらの受容体を介して細胞内に取り込まれ
ることによって、泡沫細胞となり粥腫形成のイニシエー
ションが起こるという仮説、また酸化LDL が内皮細胞を
傷害することで、血小板の粘着凝集や、白血球の集結、
血漿成分の血管内への浸潤がおこり、これらが引き金に
なって、平滑筋細胞の遊走や増殖を引き起こすといった
仮説が提唱されている。
The existence of receptors for oxidized lipoproteins such as scavenger receptors has been clarified, and oxidized LDL is taken up into cells through these receptors to become foam cells and initiate plaque formation. The hypothesis is that oxidative LDL damages endothelial cells, causing platelet adhesion and leukocyte aggregation,
A hypothesis has been proposed that plasma components infiltrate into blood vessels, which trigger the migration and proliferation of smooth muscle cells.

【0005】酸化LDL が病巣に確かに蓄積しているかど
うかについては、例えば1988年にハーバーランド(Haber
land) 等がマロンジアルデヒドで修飾したLDL に対する
抗体;抗MDA-LDL 抗体により動脈硬化病巣部が染色され
ることを示し(Herberland,M. E., Fong ,D., and Chen
g, L., (1988) Science 241:215)、また1989年にイラ
−ハーテュアラ(YLa-Herttuala) 等は、やはり抗MDA-ap
oB抗体によるイムノブロッティング法により、病巣部か
ら抽出されたアポB(apoB)を検索し、酸化変性を受けた
LDL が確かに病巣部から抽出されたと報告している(Yl
a-Herttuala ,S., Parinski ,W., Rosenfeld, M. E., P
arthasarathy, S., Carew, T. E., Butler, S., Witztu
m, J. L., and Steinberg, D., (1989) J. Clin. Inves
t. 84:1086)。しかしここで用いられた抗体はマロンジ
アルデヒドを用いて人工的に修飾したLDL を抗原として
得られたものであるが、LDL の酸化生成物だけでなく他
の酸化蛋白、例えば酸化アルブミンなどとも交叉反応を
示すという性質を有している。
Whether or not oxidized LDL was indeed accumulated in the lesion was examined by, for example, 1988 in Haberland (Haber).
antibody to LDL modified with malondialdehyde; showing that anti-MDA-LDL antibody stains atherosclerotic lesions (Herberland, ME, Fong, D., and Chen)
g, L., (1988) Science 241: 215), and in 1989 YLa-Herttuala et al. also had anti-MDA-ap.
By immunoblotting with oB antibody, we searched for apoB extracted from the lesion and received oxidative modification.
It is reported that LDL was indeed extracted from the lesion (Yl
a-Herttuala, S., Parinski, W., Rosenfeld, ME, P
arthasarathy, S., Carew, TE, Butler, S., Witztu
m, JL, and Steinberg, D., (1989) J. Clin. Inves
t. 84: 1086). However, the antibody used here was obtained by using LDL artificially modified with malondialdehyde as an antigen, but it crosses not only the oxidation product of LDL but also other oxidized proteins such as albumin oxide. It has the property of showing a reaction.

【0006】しかるに、粥状硬化病巣のホモジネートを
抗原としてハイブリドーマを作成し、その中から、酸化
LDL を特異認識する抗体を産生するハイブリドーマを選
択すると、特異性の高いモノクロナル抗体が得られるこ
とが開示されている(Itabe,H., Takeshima, E., Iwasa
ki, H., Kimura, J., Yoshida, Y., Imanaka, T., Taka
no, T., (1994) J. Biol.Chem. 269 (21):15274) 。こ
の抗体は、クローンFOH1a/DLH3が産生することから、FO
H1a/DLH3と名付けられているが、同抗体が、酸化リポタ
ンパク質と特異的に反応し、正常なリポタンパク質、マ
ロンジアルデヒド化LDL 、アセチル化LDL などとは、交
叉反応を示さないことや、同抗体の認識するエピトープ
は、リポタンパク質の構成成分であるフォスファチジル
コリンというリン脂質が酸化されたときに生成すること
が開示されている。また、同抗体が、ヒト粥状硬化病巣
内の泡沫細胞を特異的に認識する抗体であることも開示
されている。
[0006] However, a hybridoma was prepared by using a homogenate of atherosclerotic lesion as an antigen, and a hybridoma was prepared from the hybridoma.
It has been disclosed that a highly specific monoclonal antibody can be obtained by selecting a hybridoma that produces an antibody that specifically recognizes LDL (Itabe, H., Takeshima, E., Iwasa
ki, H., Kimura, J., Yoshida, Y., Imanaka, T., Taka
no, T., (1994) J. Biol. Chem. 269 (21): 15274). Since this antibody is produced by clone FOH1a / DLH3, FO
Although it is named H1a / DLH3, the antibody specifically reacts with oxidized lipoprotein and does not cross-react with normal lipoprotein, malondialdehyde-modified LDL, acetylated LDL, etc. It is disclosed that an epitope recognized by the antibody is generated when phosphatidylcholine, which is a component of lipoprotein, is oxidized. It is also disclosed that the antibody is an antibody that specifically recognizes foam cells in a human atherosclerotic lesion.

【0007】一方、これまでの研究ではLDL の酸化は、
血管組織への沈着後の二次的な化学修飾によって引き起
こされると考えられているが、炎症部位で発生する活性
酵素などにより循環血液中に酸化変成を受けたリポタン
パク質が存在する可能性もある。実際に、ヒト血液ある
いはそのLDL 画分から脂質を抽出し、その中に過酸化リ
ン脂質の存在を立証し、心虚血、糖尿病や肝炎などの疾
患時に上昇するとする報告がある(Miyazawa, T., (198
9) Free Radical Biology 7: 209、Hodis, H.N., Krams
ch, D. M., Avogaro, P., Bittolo-Bon, G., Cazzolat
o, G., Hwang,J., Peterson, H., and Sevanian, A.,
(1994) J. Lipids Res. 35: 669)。しかしながら、その
測定法は複雑であり、多数の臨床検体を測定して、血中
酸化リポタンパク質の臨床診断的な意義を明らかにする
には不向きであるため、血液中の酸化リポタンパク質と
疾病との関りについては未だ明確になっていない現状で
ある。酸化LDL が粥状効果病巣の進展と深く関わってい
るならば、循環血液中の酸化LDL 等の酸化リポタンパク
質を高感度にかつ定量的に検出することが、病態進展の
早期診断に役立つことは明らかであり、そのような方法
の開発は強く望まれていた。
[0007] On the other hand, in previous studies, the oxidation of LDL was
It is thought to be caused by secondary chemical modification after deposition in vascular tissue, but there is a possibility that lipoproteins that have undergone oxidative modification are present in circulating blood due to active enzymes etc. generated at inflammatory sites. . In fact, it has been reported that lipids are extracted from human blood or its LDL fraction, the presence of peroxidized phospholipids in them is verified, and that it is elevated during diseases such as cardiac ischemia, diabetes and hepatitis (Miyazawa, T., (198
9) Free Radical Biology 7: 209, Hodis, HN, Krams
ch, DM, Avogaro, P., Bittolo-Bon, G., Cazzolat
o, G., Hwang, J., Peterson, H., and Sevanian, A.,
(1994) J. Lipids Res. 35: 669). However, the measurement method is complicated and unsuitable for measuring a large number of clinical specimens to clarify the clinical diagnostic significance of the oxidized lipoprotein in blood. The relationship is still unclear. If oxidized LDL is deeply involved in the development of atheromatous lesions, highly sensitive and quantitative detection of oxidized lipoproteins such as oxidized LDL in circulating blood would be useful for early diagnosis of disease progression. Obviously, the development of such a method was highly desired.

【0008】[0008]

【発明が解決しようとする課題】従って、本発明は、新
規なヒト酸化リポタンパク質の測定法を提供することを
目的とする。本発明はさらに、比較的簡単な手順によ
り、循環血液中の酸化LDL等の酸化リポタンパク質を高
感度にかつ定量的に検出するヒト酸化リポタンパク質の
測定法を提供することを目的とするものである。本発明
はまた、血液中のヒト酸化リポタンパク質を測定するこ
とにより、心筋梗塞や狭心症などの冠動脈系疾患、脳梗
塞や脳血管系痴呆などの脳動脈系疾患、あるいは腎症、
糖尿病性腎症などの腎動脈系疾患、末梢動脈閉塞症のよ
うな末梢動脈系疾患などを含む、粥状硬化症を主因とす
る各種循環器系疾患を診断する方法を提供することを目
的とするものである。
Therefore, the object of the present invention is to provide a novel method for measuring human oxidized lipoprotein. It is still another object of the present invention to provide a method for measuring human oxidized lipoprotein that detects oxidized lipoprotein such as oxidized LDL in circulating blood with high sensitivity and quantitatively by a relatively simple procedure. is there. The present invention also measures human oxidized lipoprotein in blood, coronary artery disease such as myocardial infarction and angina, cerebral artery disease such as cerebral infarction and cerebrovascular dementia, or nephropathy,
An object is to provide a method for diagnosing various cardiovascular diseases mainly caused by atherosclerosis, including renal arterial diseases such as diabetic nephropathy and peripheral arterial diseases such as peripheral arterial occlusion. To do.

【0009】[0009]

【課題を解決するための手段】上記諸目的は、リン脂質
の酸化により生成する抗原を認識する抗体を用いて血漿
中の酸化リポタンパク質を測定するヒト酸化リポタンパ
ク質の測定法によって達成される。
The above objects are achieved by a method for measuring human oxidized lipoprotein, which comprises measuring an oxidized lipoprotein in plasma using an antibody that recognizes an antigen produced by the oxidation of phospholipids.

【0010】本発明はまた、抗体が、ペプチドの共存下
にホスファチジルコリンの酸化により生成する抗原を認
識するものであるヒト酸化リポタンパク質の測定法であ
る。本発明はまた、リン脂質の酸化により生成する抗原
を認識する抗体が、粥状硬化病巣のホモジネートで適当
な哺乳動物及び/または哺乳動物の抗体産生担当リンパ
球を免疫し、該動物の抗体産生リンパ球とミエローマ細
胞を融合させ、形成された抗ヒト粥腫抗体産生融合細胞
群を単離し、該細胞群の中から酸化したヒトリポタンパ
ク質と特異的に反応するものとして選別された融合細胞
が産生するものであるヒト酸化リポタンパク質の測定法
である。本発明はまた、抗体が、ハイブリドーマセルラ
インFOH1a /DLH3(受託番号 FERM P-14153 )により産
生されるものであるヒト酸化リポタンパク質の測定法で
ある。本発明はさらに、血漿および/またはこれより分
離したリポタンパク質画分を至適な濃度に希釈した後、
リン脂質の酸化により生成する抗原を認識する抗体と接
触させ、当該抗体と結合した酸化リポタンパク質をさら
に当該リポタンパク質を認識する抗体と接触させること
を特徴とするヒト酸化リポタンパク質の測定法である。
本発明はさらに、リン脂質の酸化により生成する抗原を
認識する抗体が、担体に固相化されていることを特徴と
するヒト酸化リポタンパク質の測定法である。
The present invention is also a method for measuring human oxidized lipoprotein in which the antibody recognizes an antigen produced by the oxidation of phosphatidylcholine in the presence of the peptide. The present invention also provides that an antibody that recognizes an antigen produced by the oxidation of phospholipids immunizes a suitable mammal and / or an antibody-producing lymphocyte of the mammal with a homogenate of atherosclerotic lesions to produce antibody of the animal. Fused lymphocytes and myeloma cells, isolated anti-human atheroma antibody-producing fused cell group formed, fusion cells selected as those that react specifically with oxidized human lipoprotein from the cell group It is a method for measuring human oxidized lipoprotein that is produced. The present invention is also a method for measuring human oxidized lipoprotein, wherein the antibody is produced by the hybridoma cell line FOH1a / DLH3 (accession number FERM P-14153). The present invention further provides that after diluting the plasma and / or the lipoprotein fraction separated therefrom to an optimum concentration,
A method for measuring human oxidized lipoprotein, which comprises contacting an antibody that recognizes an antigen produced by the oxidation of phospholipids, and then contacting the oxidized lipoprotein bound to the antibody with an antibody that recognizes the lipoprotein. .
The present invention further provides a method for measuring human oxidized lipoprotein, characterized in that an antibody that recognizes an antigen produced by the oxidation of phospholipids is immobilized on a carrier.

【0011】[0011]

【作用】上記したような問題を解決するためには、エピ
トープが明確でかつ酸化LDL に対する特異性が高く、ま
た各種のリポタンパク質を別々に定量する方法が必要で
ある。本発明者らは、粥状硬化病巣を抗原として得られ
た抗体FOH1a/DLH3は、リン脂質の酸化により生成するエ
ピトープを認識し、酸化リポタンパク質へ特異的に結合
する性質を有することを明らかにした(特許出願番号平
6−51,209号、Itabe, H., Takeshima, E., Iwas
aki, H., Kimura, J., Yoshida, Y., Imanaka, T., Tak
ano, T., (1994) J. Biol.Chem. 269 (21):15274) )。
In order to solve the above-mentioned problems, it is necessary to have a method of separately quantifying various lipoproteins having a clear epitope and high specificity for oxidized LDL. The present inventors have revealed that the antibody FOH1a / DLH3 obtained using an atherosclerotic lesion as an antigen recognizes an epitope generated by the oxidation of phospholipids and has a property of specifically binding to an oxidized lipoprotein. (Patent Application No. 6-51,209, Itabe, H., Takeshima, E., Iwas
aki, H., Kimura, J., Yoshida, Y., Imanaka, T., Tak
ano, T., (1994) J. Biol. Chem. 269 (21): 15274)).

【0012】本発明者らは、このような抗体について鋭
意研究を進めた結果、このような抗体こそが、上記した
要求される測定法を提供できる最も優れた抗体であるこ
とを発見し、本発明に至ったものである。
As a result of intensive studies on such an antibody, the present inventors have found that such an antibody is the most excellent antibody that can provide the required assay method described above. It was the invention.

【0013】すなわち、上記したように、酸化リポタン
パク質を高感度にかつ定量的に検出することは、リン脂
質の酸化により生成する抗原を認識する抗体を用いるこ
とによって行ない得るものである。特に、その抗体が、
実際に粥状硬化病巣を適当な動物に感作させて得られた
ものである場合、また、その認識するエピトープがペプ
チドの共存下にホスファチジルコリンの酸化により生成
する構造に由来する場合、その効果はより確実になる。
That is, as described above, highly sensitive and quantitative detection of oxidized lipoprotein can be performed by using an antibody that recognizes an antigen produced by the oxidation of phospholipids. In particular, the antibody
When the atherosclerotic lesion is actually obtained by sensitizing an appropriate animal, and when the epitope recognized by it is derived from the structure generated by the oxidation of phosphatidylcholine in the coexistence of the peptide, the effect is Become more certain.

【0014】このような抗体が上記課題を解決するに優
れていることは以下のような性質を持つ抗体が得られる
ことによる。このような抗体の抗原は、実際にヒト組織
中で起こるリポタンパク質の生成によって発現し、しか
も血漿蛋白質の中でペプチドとリン脂質を両方備えたリ
ポタンパク質の酸化によって生じる可能性が非常に高
い。ハイブリドーマFOH1a/DLH3の産生する抗体は、まさ
にその性質を備えている。
The fact that such an antibody is excellent in solving the above problems is due to the fact that an antibody having the following properties can be obtained. The antigen of such an antibody is highly likely to be expressed by the production of lipoprotein that actually occurs in human tissues, and is very likely to be generated by the oxidation of lipoprotein having both peptides and phospholipids in plasma proteins. The antibody produced by the hybridoma FOH1a / DLH3 has exactly that property.

【0015】なお、このような抗体を用いて測定する場
合、血漿および/または血清を直接抗体と接触させるこ
とで目的は達成されるが、後述するサンドイッチELI
SA法などを用いる場合、その測定法に起因する非特異
的な吸着などを防ぐため、前もって試料を適当な方法
(例えば、超遠心分離)により、あらかじめリポタンパ
ク質画分まで分画して用いてもよい。
When measuring with such an antibody, the object can be achieved by directly contacting plasma and / or serum with the antibody.
When using the SA method or the like, in order to prevent nonspecific adsorption and the like due to the measurement method, the sample is fractionated in advance to a lipoprotein fraction by an appropriate method (for example, ultracentrifugation) and then used. Good.

【0016】第二に、このような抗体は、その認識する
エピトープがアポ蛋白に依存しないため、血液中の異な
るリポタンパク質の酸化物を別々に評価するための方法
を提供することができる。このためには、酸化リン脂質
特異抗体と当該リポタンパク質特異的な抗体の2種類の
組み合わせによることが必要である。この際、どちらか
の抗体をプラスチックプレートやガラスビーズなどの平
板状または球状等の担体に固相化した、いわゆるサンド
イッチELISA法とするのが簡便である。
Second, since the epitope recognized by such an antibody does not depend on the apoprotein, it can provide a method for separately evaluating the oxides of different lipoproteins in blood. For this purpose, it is necessary to combine two types of oxidized phospholipid-specific antibody and the lipoprotein-specific antibody. At this time, it is convenient to use a so-called sandwich ELISA method in which either antibody is immobilized on a flat or spherical carrier such as a plastic plate or glass beads.

【0017】この際、どちらかの抗体を固相化するかに
制限はないが、酸化リン脂質を認識する抗体の抗体価が
高い場合、そちらを固相化した方が抗原を濃縮でき、高
感度化できる点で有利である。実施例には、ハイブリド
ーマFOH1a/DLH3の産生する抗体を固相化して作製したE
LISA法の例を示すが、本発明がこの実施例に限定さ
れるものではないことはいうまでもないことである。
At this time, there is no limitation on which of the antibodies is immobilized, but when the antibody titer of the antibody that recognizes the oxidized phospholipid is high, it is preferable to immobilize either of them because the antigen can be concentrated. It is advantageous in that the sensitivity can be increased. In the examples, E prepared by immobilizing the antibody produced by the hybridoma FOH1a / DLH3
An example of the LISA method will be shown, but it goes without saying that the present invention is not limited to this example.

【0018】第三に、このような抗体を用いることによ
って、実施例に示すように、例えば、人工的に作製した
酸化LDL を標準物質として用いることにより、その値
を、例えば、LDL 蛋白1μg当たりの酸化LDL のng量
などの形で定量的に評価することができる。
Thirdly, by using such an antibody, as shown in the examples, for example, by using an artificially prepared oxidized LDL as a standard substance, its value can be measured, for example, per 1 μg of LDL protein. It can be quantitatively evaluated in the form of ng amount of oxidized LDL.

【0019】このように、特異性が高く、高感度で、個
々のリポタンパク質毎の酸化度を識別可能であり、定量
化が可能な血液中の酸化LDL の測定をELISA法のよ
うな簡便な、それ故、多数の臨床検体について測定可能
な形で提供し得たのは、本発明が初めてのことである。
As described above, highly specific and highly sensitive, the degree of oxidation of each lipoprotein can be discriminated, and quantifiable oxidizable LDL in blood can be measured by a simple method such as an ELISA method. It is, therefore, the first time that the present invention has provided a measurable form for a large number of clinical specimens.

【0020】以下、本発明を実施態様に基づきより詳細
に説明する。
Hereinafter, the present invention will be described in more detail based on the embodiments.

【0021】本発明の測定法は、被験体の血液成分を上
記したようなリン脂質の酸化により生成する抗原を認識
する抗体と接触させ、該抗体と特異的に反応した抗原量
を定量することにより血液中に含まれる酸化リポタンパ
ク質を特徴とするものである。測定は、RIA法、EL
ISA法、イムノブロット法、免疫沈降法等の公知の方
法に基づき行なうことができる。
The assay method of the present invention comprises contacting a blood component of a subject with an antibody that recognizes an antigen produced by the oxidation of phospholipids as described above, and quantifying the amount of the antigen specifically reacted with the antibody. Is characterized by the oxidized lipoprotein contained in blood. Measurement is RIA method, EL
It can be performed based on a known method such as ISA method, immunoblotting method, immunoprecipitation method and the like.

【0022】さらに、前記したように本発明に係る上記
したようなリン脂質の酸化により生成する抗原を認識す
る抗体が認識するエピトープがアポ蛋白に依存しないた
め、当該リポタンパク質に特異的な抗体を組合せること
により、血液中の異なるリポタンパク質の酸化物を別々
に評価することできる。このようなリポタンパク質に特
異的な抗体としては、特にカイロミクロン、VLDL、LDL
、HDL2、HDL3、Lp(a)などの1つないし2つ以上を認識
する抗体を用いることができる。特にこの中で、酸化LD
L の評価は、酸化LDL と粥状硬化症との関連から重要で
あるが、これに加えて最近、動脈硬化の独立した危険因
子として注目されているLp(a) (例えば、Scanu,A.M.,L
awn,R.M.,and Berg,K.,(1991) Lipoprotein(a) and ath
erogenesis, Ann, Int. Med. 115:209-218) の酸化変成
の有無を評価することは重要である。これらのリポタン
パク質に対する抗体は市販品として、あるいは公知の手
法により容易に入手ないし調製可能である。このように
血液中の異なるリポタンパク質の酸化物を別々に評価す
る場合には、上記したような酸化リン脂質特異抗体とリ
ポタンパク質特異抗体のいずれか、望ましくは抗体価が
高い方を、平板状または球状等に固相化することが望ま
しく、特にサンドイッチELISA法を用いることが好
ましい。例えば、固相化において用いられる担体として
は、多穴プレートなどのプレートやビーズといったこれ
らの分野において常用されるプラスチック製ないしガラ
ス製の器具等が例示できる。
Further, as described above, since the epitope recognized by the antibody recognizing the antigen produced by the oxidation of the phospholipid according to the present invention does not depend on the apoprotein, an antibody specific to the lipoprotein is selected. By combining, the oxides of different lipoproteins in blood can be evaluated separately. Antibodies specific for such lipoproteins include chylomicron, VLDL, LDL
, HDL2, HDL3, Lp (a) and the like can be used. Especially in this, oxide LD
The evaluation of L is important because of its association with oxidized LDL and atherosclerosis, and in addition to this, Lp (a) (eg, Scanu, AM, L
awn, RM, and Berg, K., (1991) Lipoprotein (a) and ath
erogenesis, Ann, Int. Med. 115: 209-218). Antibodies to these lipoproteins can be easily obtained or prepared as commercial products or by known methods. When separately evaluating different lipoprotein oxides in blood in this manner, either the oxidized phospholipid-specific antibody or the lipoprotein-specific antibody as described above, preferably the one with a higher antibody titer, is used as a plate-shaped sample. Alternatively, it is desirable to solidify into a spherical shape or the like, and it is particularly preferable to use the sandwich ELISA method. For example, examples of the carrier used in the solid phase include a plate such as a multi-well plate and beads, which are commonly used in these fields, such as plastic or glass instruments.

【0023】被測定試料としての血液成分は、被験体よ
り採血、好ましくはヘパリン等の抗凝固剤を添加して採
血して得た血液試料を、遠心分離法等の常法に基づき成
分分離して得られた血漿ないし血清成分である。また、
測定法に起因する非特異的吸着を抑制し、より高精度の
測定とするために、この血漿成分をさらに超遠心分離に
より分離してリポタンパク質画分としてもよい。
A blood component as a sample to be measured is collected from a subject, preferably a blood sample obtained by adding an anticoagulant such as heparin to obtain a blood sample, which is separated by a conventional method such as a centrifugation method. It is the plasma or serum component obtained by Also,
This plasma component may be further separated by ultracentrifugation to obtain a lipoprotein fraction in order to suppress non-specific adsorption due to the measurement method and to perform measurement with higher accuracy.

【0024】また、測定に当っては、このような血漿お
よび/またはリポタンパク質画分を、至適な濃度に希釈
する。その濃度は測定条件によっても左右されるため一
概には規定できないが、例えば、0〜500μg/m
l、より好ましくは0〜100μg/mlへと希釈す
る。希釈媒体としては、特に限定されるものではない
が、例えば、生理食塩水、EDTAを含むリン酸緩衝液
(PBS)等が用いられ得る。
In the measurement, such plasma and / or lipoprotein fraction is diluted to an optimum concentration. The concentration depends on the measurement conditions and cannot be specified unconditionally, but, for example, 0 to 500 μg / m
Dilute to 1, preferably 0-100 μg / ml. The dilution medium is not particularly limited, but physiological saline, phosphate buffer (PBS) containing EDTA, etc. may be used.

【0025】至適な濃度とされた血漿および/またはリ
ポタンパク質画分と上記したような酸化リン脂質特異抗
体との接触は、このような血液成分中に含まれる酸化リ
ン脂質と酸化リン脂質特異抗体との特異的反応が十分に
進行するものであればよく特に限定されるものではない
が、例えば、4〜30℃、より好ましくは25℃の下、
1〜24時間、より好ましくは1〜2時間程度静置反応
させることが望ましい。また、その際の酸化リン脂質特
異抗体の濃度としては、血液試料中に存在すると思われ
るリン脂質の量よりも十分に過飽和な量であればよく、
またこの抗体の抗体価、測定方法のタイプによっても左
右されるが、例えば、血漿1μg当りに存在する酸化LD
L 量が0〜1ng程度であると想定される場合にあっ
て、酸化リン脂質特異抗体として後述するようなDLH
3抗体を用いる場合、当該血漿1μg当りに0.2〜
1.0μg、より好ましくは0.5μg前後であること
が望ましい。
The contact between the plasma and / or lipoprotein fraction at an optimum concentration and the above-mentioned oxidized phospholipid-specific antibody is carried out by contacting the oxidized phospholipid and the oxidized phospholipid-specific antibody contained in such a blood component. It is not particularly limited as long as the specific reaction with the antibody sufficiently proceeds, but for example, at 4 to 30 ° C, more preferably at 25 ° C,
It is desirable to allow the reaction to stand for 1 to 24 hours, more preferably 1 to 2 hours. In addition, the concentration of the oxidized phospholipid-specific antibody at that time may be a sufficiently supersaturated amount than the amount of phospholipid that is considered to be present in the blood sample,
Although it depends on the antibody titer of this antibody and the type of measurement method, for example, oxidized LD present in 1 μg of plasma
In the case where the amount of L is assumed to be about 0 to 1 ng, DLH as described below as an oxidized phospholipid-specific antibody
When 3 antibodies are used, 0.2 ~
It is desirable that the amount is 1.0 μg, and more preferably around 0.5 μg.

【0026】次に本発明の測定法において用いられるリ
ン脂質の酸化により生成する抗原を認識する抗体につい
て詳述する。
Next, the antibody that recognizes the antigen produced by the oxidation of phospholipid used in the assay method of the present invention will be described in detail.

【0027】このような抗体を得る方法としては、特に
限定されるものではないが、好ましくは以下に述べるよ
うに粥状硬化病巣を適当な動物に感作する方法であり、
一般的な細胞融合法に基づき次のような手法により得ら
れるハイブリドーマセルラインにより産生される。
The method for obtaining such an antibody is not particularly limited, but is preferably a method for sensitizing atherosclerotic lesions to an appropriate animal as described below,
It is produced by a hybridoma cell line obtained by the following method based on a general cell fusion method.

【0028】ハイブリドーマ作製に用いられる動物種と
しては、特に限定されるものではなく、従来使用されて
いるマウス、ラット、ハムスター等が使用可能である
が、特に入手および取扱いの容易性からBalb/cマ
ウスが好ましく、主にこれらの動物の脾細胞が用いられ
る。また、ヒトのリンパ節細胞や末梢リンパ球を用いる
こともできる。
The animal species used for preparing the hybridomas are not particularly limited, and conventionally used mice, rats, hamsters and the like can be used. Especially, Balb / c is easy to obtain and handle. Mice are preferred, and splenocytes of these animals are mainly used. In addition, human lymph node cells and peripheral lymphocytes can also be used.

【0029】これらの動物に対する免疫用の抗原は、粥
状硬化病巣より調製される。例えば、動脈硬化症患者の
死亡直後における剖検あるいはバイパス手術等において
取出された病変血管を入手し、この病変血管から粥状硬
化病巣を含む血管部を切出し、緩衝液中で血管外膜部を
剥離除去した後、病巣の内膜と中膜部(intima and med
ia) をホモジナイザーを用いて冷却下、好ましくは氷冷
下にホモジナイズし、静置後得られる上清を抗原液とす
る。さらに必要に応じて、静置後に遠心処理を行ない、
得られたペレットに緩衝液を加えて同様の操作を行な
い、得られる上清を前の上清と合せて抗原液とすること
もできる。このようにして調製された抗原液は、例えば
アルゴン等の不活性ガスで置換の後、使用直前まで凍結
保存することが望ましい。
Antigens for immunization against these animals are prepared from atherosclerotic lesions. For example, obtain a diseased blood vessel taken out by autopsy or bypass surgery immediately after the death of an arteriosclerosis patient, cut out a blood vessel part including atherosclerotic lesions from this diseased blood vessel, and exfoliate the adventitia part in a buffer solution. After removal, the intima and media of the lesion (intima and med
ia) is homogenized under cooling with a homogenizer, preferably under ice-cooling, and the supernatant obtained after standing is used as the antigen solution. If necessary, centrifuge after standing,
It is also possible to add a buffer solution to the obtained pellet and perform the same operation, and combine the obtained supernatant with the previous supernatant to obtain an antigen solution. The antigen solution thus prepared is preferably frozen and stored immediately before use after being replaced with an inert gas such as argon.

【0030】次いで、このようにして調製された粥状硬
化病巣のホモジェネートからなる抗原を、所定蛋白(抗
原)濃度として、前記したような動物種に免疫する。な
おこの際、必要に応じて、フロイント完全アジュバン
ト、フロイント不完全アジュバント等のアジュバントを
添加してもよい。
Next, the above-prepared animal species are immunized with the antigen composed of homogenate of atherosclerotic lesion at a predetermined protein (antigen) concentration. At this time, if necessary, an adjuvant such as Freund's complete adjuvant or Freund's incomplete adjuvant may be added.

【0031】投与量は、動物種によって左右されるが、
マウスの場合、初回免疫で2.0〜60μg(蛋白)/
匹、より好ましくは40μg(蛋白)/匹程度である。
The dose depends on the animal species,
In the case of mice, the initial immunization is 2.0-60 μg (protein) /
The number is about 40 μg (protein) / animal, and more preferably about 40 μg (protein) / animal.

【0032】さらに、初回免疫の後、例えば、2週間お
よび4週間程度の間隔で、初回免疫と同量ないしそれ以
下の蛋白量で、追加免疫を行なうことが望ましい。
Furthermore, after the initial immunization, it is desirable to carry out booster immunization at an interval of about 2 weeks and 4 weeks, for example, with the same or less amount of protein than the initial immunization.

【0033】最終免疫の後、2〜3日後に免疫動物から
採血し、ELISA(enzyme-linkedimmunosorbent assa
y) 法、イムノブロット法等の検定法により、血清抗体
価上昇の確認を行ない、抗体価上昇の認められた免疫動
物をスクリーニングする。
Two to three days after the final immunization, blood was collected from the immunized animals and subjected to ELISA (enzyme-linked immunosorbent assa).
y) The increase in serum antibody titer is confirmed by assay methods such as immunoblotting and immunoblotting, and immunized animals with an increase in antibody titer are screened.

【0034】スクリーニングされた免疫動物から脾細
胞、あるいはリンパ節などから抗体産生細胞を採取し、
約37℃に加温したRPMI培地、DMEM培地等の維
持培地で洗浄、懸濁し、生細胞数を計測する。
From the immunized animal screened, splenocytes, or antibody-producing cells from lymph nodes, etc. are collected,
The cells are washed and suspended in a maintenance medium such as RPMI medium or DMEM medium heated to about 37 ° C, and the number of viable cells is counted.

【0035】一方、HGPRT(hypoxanthine-guanine
phosphoribosyl transferase) 欠損株の腫瘍細胞を、胎
児ウシ血清(FCS)添加RPMI培地、FCS添加DME
M培地等の増殖培地において増殖させ、対数増殖期にな
るように培養しておく。なお、HGPRT 欠損株の腫瘍細胞
としては、例えば、P3/X63-Ag8(X63) (カッコ内は略名
以下同じ)、P3/NSI-1-Ag4-1(NS-1)、P3/X63-Ag8.U1
(P3/U1)、Sp2/O-Ag14(Sp2/O) 、FO、210.RCY3.Ag 1.2.
3.(Y3)、U-266AR1(SKO-007) 、LICR-LON-HMy2(HMy2) 、
8226AR/NIP4-1(NP41)などの公知の腫瘍細胞を、使用す
る動物種に応じて用いることができる。対数増殖期にあ
る腫瘍細胞を、前記抗体産生細胞の細胞数に対して腫瘍
細胞の細胞数が1:1〜1:10となるように調整し、
約37℃に加温したRPMI培地、DEME培地等の維持培地で
洗浄して細胞融合を阻害するFCS 成分を除去する。
On the other hand, HGPRT (hypoxanthine-guanine
Tumor cells of phosphoribosyl transferase) -deficient strain were treated with fetal calf serum (FCS) -added RPMI medium and FCS-added DME.
The cells are grown in a growth medium such as M medium and cultivated in a logarithmic growth phase. The tumor cells of the HGPRT-deficient strain include, for example, P3 / X63-Ag8 (X63) (the names in parentheses are the same below), P3 / NSI-1-Ag4-1 (NS-1), P3 / X63- Ag8.U1
(P3 / U1), Sp2 / O-Ag14 (Sp2 / O), FO, 210.RCY3.Ag 1.2.
3. (Y3), U-266AR1 (SKO-007), LICR-LON-HMy2 (HMy2),
Known tumor cells such as 8226AR / NIP4-1 (NP41) can be used depending on the animal species used. The tumor cells in the logarithmic growth phase are adjusted so that the number of tumor cells is 1: 1 to 1:10 with respect to the number of antibody-producing cells,
FCS components that inhibit cell fusion are removed by washing with a maintenance medium such as RPMI medium and DEME medium heated to about 37 ° C.

【0036】そして、細胞数を調整された抗体産生細胞
と腫瘍細胞を、例えばガラスチューブ等の容器内で混和
し、遠心してペレットを得、上清をなるべく除去する。
なお、この操作を含めて以下の操作は、20〜37℃、
より好ましくは約37℃の温度条件下で行なうことが望
ましい。
Then, the antibody-producing cells whose number of cells has been adjusted and the tumor cells are mixed in a container such as a glass tube and centrifuged to obtain a pellet, and the supernatant is removed as much as possible.
In addition, the following operations including this operation are 20 to 37 ° C.,
More preferably, it is desirable to carry out under a temperature condition of about 37 ° C.

【0037】次いで、得られたペレットに対して、0〜
37℃、より好ましくは約37℃に加温された細胞凝集
性媒体を、ペレットをほぐしながら、ゆっくりと添加す
る。細胞凝集性媒体としては、ポリエチレングリコール
(PEG)、リゾレシチン、グリセロールオレイン酸エ
ステルなどの化合物、あるいは不活化されたセンダイウ
ィルス(HVJ)、麻疹ウィルス、ニューカッスル病ウ
ィルス等のパラミクソウィルスなどが使用可能である
が、このうち特にPEG が好ましい。PEG を使用する場合
には、例えば、RPMI培地、DMEM培地等で、その平均分子
量にもよるがPEG4000 の場合は45〜50重量%程度の
濃度に希釈して用いることが望ましい。
Then, the obtained pellets are
Cell aggregating medium warmed to 37 ° C, more preferably about 37 ° C, is slowly added while loosening the pellet. As the cell aggregating medium, compounds such as polyethylene glycol (PEG), lysolecithin, glycerol oleate, or inactivated Sendai virus (HVJ), measles virus, Paramyxovirus such as Newcastle disease virus, etc. can be used. Of these, PEG is particularly preferable. When PEG is used, it is desirable to dilute it to a concentration of about 45 to 50% by weight in the case of PEG4000, although it depends on the average molecular weight of the medium, such as RPMI medium and DMEM medium.

【0038】細胞凝集性媒体の添加後、さらに1〜2分
間程度攪拌した後、RPMI培地等の維持培地を、2〜3回
に別けてゆっくりと添加する。
After the addition of the cell-aggregating medium, the mixture is further stirred for about 1 to 2 minutes, and then a maintenance medium such as RPMI medium is slowly added in 2 to 3 times.

【0039】その後、PEG 等の細胞凝集性媒体を除去す
るため、例えば800〜1200×g、3〜5分間とい
う弱い条件で遠心し、上清を除去する。
Then, in order to remove the cell aggregating medium such as PEG, centrifugation is performed under weak conditions of, for example, 800 to 1200 × g and 3 to 5 minutes, and the supernatant is removed.

【0040】続いて、得られたペレットをほぐしなが
ら、FCS 添加HAT 培地等の選択培地を、脾臓細胞濃度が
1×106 〜1×107 細胞/mlとなるように、ゆっ
くりと添加し、96穴プレートのような多穴プレートの
各ウェルに分注し、温度約37℃、CO2 濃度約7%、
湿度100%の条件下で培養する。なお、培養期間中、
細胞の状態にもよるが、2〜3日程度の間隔で、液替え
を行なう。なお、培地条件としては、上記に例示したよ
うなものに限定されるものではなく、これ以外にも、例
えば、最初にFCS 添加RPMI培地等の増殖培地をペレット
に添加し、培養開始後、選択培地を各ウェルに添加する
といった態様とすること等も可能である。融合しなかっ
た細胞は、3日目あたりから急速に死滅しはじめ、7日
程度で完全に死滅する。一方、融合に成功した細胞、す
なわち、ハイブリドーマはこのころよりコロニーを形成
しはじめる。ハイブリドーマコロニーの形成が認められ
たウェルより次に述べるようなスクリーンニングを開始
し、必要に応じて24穴プレート等のより大きなプレー
トに継代していく。
Subsequently, while loosening the obtained pellet, a selective medium such as FCS-added HAT medium was slowly added so that the spleen cell concentration was 1 × 10 6 to 1 × 10 7 cells / ml, Dispense into each well of a multi-well plate such as a 96-well plate, at a temperature of about 37 ° C., a CO 2 concentration of about 7%,
Incubate under the condition of 100% humidity. During the culture period,
Although it depends on the state of the cells, the liquid is changed at intervals of about 2 to 3 days. The medium conditions are not limited to those exemplified above, but in addition to this, for example, a growth medium such as FCS-added RPMI medium is first added to the pellet, and after the culture is started, selection is performed. A mode in which a medium is added to each well is also possible. The unfused cells begin to die rapidly from around the 3rd day, and completely die in about 7 days. On the other hand, cells that have been successfully fused, that is, hybridomas, start forming colonies around this time. Screening as described below is started from the wells in which formation of hybridoma colonies was observed, and subcultured to a larger plate such as a 24-well plate as needed.

【0041】スクリーニングは、RIA法、ELISA
法、イムノブロット法等によって行なうことができる
が、このうち好ましくはELISA法である。抗原とし
ては、CuSO4 と3時間以上反応させることにより得
られた酸化LDL を使用する。必要に応じて、未変性のLD
L を併用してもよい。特に好ましくはホスファチジルコ
リンの酸化により生成する抗原であり、これをペプチド
の共存下に認識するものが望ましい。各アッセイ法に基
づき、ハイブリドーマコロニーの形成が認められたウェ
ルから採取した培養上清を、スクリーニングし、酸化LD
L との反応で陽性(かつ未変性LDL との反応で陰性)と
なる細胞株を選択する。
Screening is carried out by RIA method and ELISA.
Method, immunoblot method, etc., of which the ELISA method is preferred. As the antigen, oxidized LDL obtained by reacting with CuSO4 for 3 hours or more is used. Native LD as required
L may be used in combination. Particularly preferred is an antigen produced by the oxidation of phosphatidylcholine, and an antigen that recognizes this in the presence of a peptide is desirable. Based on each assay method, the culture supernatant collected from the wells in which the formation of hybridoma colonies was observed was screened and oxidized LD
Select a cell line that becomes positive in the reaction with L (and negative in the reaction with native LDL).

【0042】そして、スクリーニングで陽性となったウ
ェルから直ちにクローニングを行なう。クローニング
は、限界希釈法(limiting dilution) 、単個細胞マニピ
ュレーション法(single cell manipulation)などを用い
て行なうことができるが、限界希釈法の方が技術的に容
易であるため好ましい。
Then, cloning is immediately carried out from the wells positive in the screening. Cloning can be performed by using limiting dilution, single cell manipulation, etc., but the limiting dilution method is technically easy and is preferable.

【0043】クローニングした細胞が再び増殖してきた
ら、上記と同様にしてスクリーニングを行ない、再度ク
ローニングを繰り返し、未変性LDL とは反応せず、酸化
LDLとのみ反応する高産生細胞株を同定する。
When the cloned cells grow again, screening is carried out in the same manner as described above, cloning is repeated again, and a high-producing cell line which does not react with native LDL but reacts only with oxidized LDL is identified.

【0044】なお、得られたハイブリドーマの保存法と
しては、特に限定されるものではないが、例えば、凍結
保存用のバイアルになるべく多くの細胞、例えば1×1
〜2×107 個程度を、90%FCS 、10%ジメチ
ルスルフォキシド(DMSO)1〜2ml程度に懸濁して、液
体窒素中に凍結保存する方法が適当である。
The method for preserving the obtained hybridomas is not particularly limited, but for example, as many cells as 1 vial for cryopreservation, for example, 1 × 1 may be used.
The 0 7 ~2 × 10 7 or so, were suspended in 90% FCS, 10% dimethyl sulfoxide (DMSO) of about 1 to 2 ml, is suitable method for cryopreservation in liquid nitrogen.

【0045】Balb/cマウスを用いて上記したような細胞
融合操作により、未変性のLDL とは反応せず、酸化LDL
とのみ反応する細胞株を得ることができることが、前述
の論文(Itabe, H., Takeshima, E., Iwasaki, H., Kim
ura, J., Yoshida, Y., Imanaka, T., Takano, T., (19
94) J. Biol.Chem. 269 (21):15274) に開示されてい
る。特に、同論文に記載されている抗体FOH1a/D
LH3は、マロンジアルデヒド修飾LDL(MDA-LDL)、アセ
チル化LDL(AcLDL)とは、反応しない点で、特に好ましい
モノクローナル抗体である。この抗体を産生するマウス
−マウス ハイブリドーマセルライン FOH1a/DLH3は、
工業技術院生命工学工業技術研究所に寄託し、受託番号
FERM P-14153を付与されている。
By the cell fusion operation as described above using Balb / c mice, there was no reaction with native LDL, and oxidized LDL
It is possible to obtain a cell line that reacts only with (Itabe, H., Takeshima, E., Iwasaki, H., Kim.
ura, J., Yoshida, Y., Imanaka, T., Takano, T., (19
94) J. Biol. Chem. 269 (21): 15274). In particular, the antibody FOH1a / D described in the same article
LH3 is a particularly preferred monoclonal antibody in that it does not react with malondialdehyde-modified LDL (MDA-LDL) or acetylated LDL (AcLDL). The mouse-mouse hybridoma cell line FOH1a / DLH3 that produces this antibody is
Deposited at the Institute of Biotechnology, Industrial Technology Institute of Industrial Technology, deposit number
Granted FERM P-14153.

【0046】モノクローナル抗体FOH1a/DLH3
は、LDL を銅イオンを用いて人工的に酸化したLDL に反
応するが、未変性のLDL には反応せず、他の方法(たと
えばマロンジアルデヒド化や、アセチル化など)でLDL
を修飾したものにも反応しない。また他の血清蛋白質た
とえばアルブミンやグロブリンを酸化させたものにも反
応しない。しかし、LDL とは異なるリポタンパク質であ
る高比重リポタンパク質質(HDL )を酸化したものには
反応する。
Monoclonal antibody FOH1a / DLH3
Reacts with LDL, which is an artificially oxidized LDL using copper ion, but does not react with unmodified LDL, and other methods (eg malondialdehyde, acetylation, etc.)
It does not react to the modified one. It also does not react with other serum proteins such as those obtained by oxidizing albumin or globulin. However, it reacts with oxidized high-density lipoprotein (HDL), which is a lipoprotein different from LDL.

【0047】しかしながら、本発明に係るリン脂質の酸
化により生成する抗原を認識する抗体を得る方法として
は、上記のごとき粥状硬化病巣を適当な動物に感作する
方法に限定されるものではなく、これ以外にも例えば酸
化LDL を免疫源とする方法、アポタンパク質あるいは、
その構成ペプチドの一部の共存下で、リン脂質を酸化さ
せたものを免疫源とする方法などが考えられる。
However, the method for obtaining the antibody recognizing the antigen produced by the oxidation of phospholipid according to the present invention is not limited to the method for sensitizing atherosclerotic lesions as described above to an appropriate animal. Other than this, for example, a method of using oxidized LDL as an immunogen, apoprotein, or
A method of using an phospholipid-oxidized substance as an immunogen in the presence of a part of its constituent peptides is considered.

【0048】なお、本発明の測定方法、ないし測定方法
に用いられる抗体を産生するハイブリドーマを得るにお
いて必要とされる人工的な酸化リポタンパク質の生成条
件としては、次のようなものが考えられる。すなわち、
ヒト正常血清から、例えば遠心沈降法などによりリポタ
ンパク質分画を得、この分画を必要により透析、脱塩に
よって精製処理した後、蛋白濃度0.1〜1mg/m
l、より好ましくは0.2mg/ml、CuSO4 濃度
2.5〜25μM、より好ましくは5μMの割合で、リ
ポタンパク質分画にCuSO4 を添加し、約37℃の下
に、3〜24時間反応させるものである。
The following conditions can be considered as the conditions for producing the artificial oxidized lipoprotein required for obtaining the assay method of the present invention or the hybridoma producing the antibody used in the assay method. That is,
A lipoprotein fraction is obtained from normal human serum by, for example, a centrifugal precipitation method, and this fraction is purified by dialysis and desalting, if necessary, and then the protein concentration is 0.1 to 1 mg / m 2.
l, more preferably 0.2 mg / ml, CuSO 4 concentration 2.5~25MyuM, more preferably at a rate of 5 [mu] M, was added CuSO 4 in lipoprotein fractions, under about 37 ° C., 3 to 24 hours To react.

【0049】[0049]

【実施例】次に、実施例を示して本発明による酸化リポ
タンパク質のサンドイッチELISA分析法をより具体
的に説明する。
EXAMPLES Next, the sandwich ELISA analysis method for oxidized lipoprotein according to the present invention will be described more specifically with reference to Examples.

【0050】実施例1 酸化LDL のサンドイッチELISA分析法 (1)ヒト血漿中のLDL画分の調製 ヘパリン採血で得られたヒト血漿に最終濃度で0.25
mMとなるようにEDTAを加えて、その0.75ml
ずつを超遠心分離用試験管(1〜4ml容)に採り、
0.3mM EDTAを含む0.15M NaClを2
50μl重層して185,000×gにて10℃で2.
5時間遠心する。上層150μlを捨て、下層750μ
lを分取して、KBr溶液(50w/v%)150μl
を加えて、比重1.063とする。超遠心分離用試験管
(1〜4ml容)の底に比重調整した血漿を移して24
4,000×gにて10℃で16時間遠心する。上層の
橙色バンド(約100〜150μl)を注意深く回収
し、0.25mM EDTAを含むPBSに対して4
℃、6時間(3リットルを2時間間隔で2回交換)透析
する。得られたLDL試料は、蛋白質およびコレステロ
ールの定量を行なう。
Example 1 Sandwich ELISA analysis method of oxidized LDL (1) Preparation of LDL fraction in human plasma Human plasma obtained by heparin blood sampling had a final concentration of 0.25.
Add EDTA to bring the concentration to mM and add 0.75 ml
Collect each into a test tube for ultracentrifugation (1 to 4 ml volume),
2 0.15M NaCl containing 0.3 mM EDTA
1. Overlay 50 μl at 185,000 × g at 10 ° C.
Centrifuge for 5 hours. Discard 150 μl of the upper layer and 750 μm of the lower layer
1 aliquot, 150 μl of KBr solution (50 w / v%)
To give a specific gravity of 1.063. Transfer the specific gravity adjusted plasma to the bottom of the ultracentrifugation test tube (1 to 4 ml volume).
Centrifuge at 4,000 xg for 16 hours at 10 ° C. The upper orange band (about 100-150 μl) was carefully collected and 4 times against PBS containing 0.25 mM EDTA.
Dialyze at 6 ° C. for 6 hours (3 liters are changed twice at 2-hour intervals). The obtained LDL sample is quantified for protein and cholesterol.

【0051】(2)サンドイッチELISA分析 プレートにPBSで希釈下DLH3抗体および非免疫マ
ウスIgM抗体(各0.6μg/ウェル)を加えて、室
温で2時間放置する。続けて、1%BSA−TBS溶液
(pH7.4)200μlを加えて、室温で2時間放置
してブロッキングする。ブロッキング溶液を捨て、その
まま酸化LDL標準品およびヒトLDL画分を分注(酸
化LDL標準品は0.1〜20ng LDL蛋白質/ウ
ェル、ヒトLDL画分は2μg LDL蛋白質/ウェ
ル)し、4℃,18時間放置する。0.05% ツィー
ン20−TBS(pH7.4)で3回洗浄した後、5,
000倍希釈ヒツジ抗ヒトアポB抗体(Bindind Site
社)100μlを加えて、室温で2時間放置する。0.
05% ツィーン20−TBS(pH7.4)で3回洗
浄した後、2%スキムミルク−TBSで2,000倍に
希釈したアルカリホスファターゼ標識ロバ抗ヒツジIg
G抗体(ケミコン(Chemicon)社製)100μlを加え、
室温で2時間放置した後、0.05% ツィーン20−
TBS(pH7.4)で3回洗浄した。0.1%p−ニ
トロフェニルリン酸溶液(pH8.8)100μlを加
えて発色させ、10〜60分後の405nmの吸光度を
測定する。 (3)ヒト血漿(健常人および腎透析患者)を用いた分
析結果 酸化LDLを標準品とした典型的な検量線および臨床検
体について分析した結果を図1および図2にそれぞれ示
した。
(2) DLH3 antibody and non-immunized mouse IgM antibody (0.6 μg / well each) diluted with PBS were added to the sandwich ELISA analysis plate, and the plate was left at room temperature for 2 hours. Subsequently, 200 μl of 1% BSA-TBS solution (pH 7.4) is added, and the mixture is left standing at room temperature for 2 hours for blocking. The blocking solution was discarded, and the oxidized LDL standard product and the human LDL fraction were directly dispensed (0.1 to 20 ng LDL protein / well for the oxidized LDL standard product, 2 μg LDL protein / well for the human LDL fraction), and the mixture was placed at 4 ° C. Leave for 18 hours. After washing three times with 0.05% Tween 20-TBS (pH 7.4),
000-fold diluted sheep anti-human apo B antibody (Bindind Site
100 μl) and left at room temperature for 2 hours. 0.
Alkaline phosphatase-labeled donkey anti-sheep Ig diluted 2,000-fold with 2% skim milk-TBS after washing 3 times with 05% Tween 20-TBS (pH 7.4).
Add 100 μl of G antibody (Chemicon),
After standing at room temperature for 2 hours, 0.05% Tween 20-
It was washed 3 times with TBS (pH 7.4). 100 μl of 0.1% p-nitrophenylphosphate solution (pH 8.8) is added to develop color, and the absorbance at 405 nm after 10 to 60 minutes is measured. (3) Analysis Results Using Human Plasma (Healthy Subjects and Renal Dialysis Patients) Results obtained by analyzing a typical calibration curve using oxidized LDL as a standard and clinical samples are shown in FIGS. 1 and 2, respectively.

【0052】実施例2 酸化Lp(a)のサンドイッチELISA分析法 (1)ペルオキシダーゼ標識抗Lp(a)抗体の調製 ヘパリン採血で得たヒト血漿に最終濃度で0.25mM
となるようにEDTAを加え、0.3mM EDTA
を含む0.15M NaCl 250μlを重層して
105,000×g にて8℃で20時間遠心する。上
層を捨て、下層に予め乳鉢で粉末化したKBrを加え
て、4℃にて泡立てないようにして溶解し、比重を1.
125に調製し105,000×g にて8℃で20時
間遠心する。上層の橙色バンドを注意深く回収しバイオ
ゲルA−5mを用いて1MNaCl,2mMEDTA,
10mMリン酸緩衝液を展開溶媒として、ゲル濾過す
る。得られた各フラクションをテルモ株式会社製Lp
(a)測定キットにより測定しLp(a)画分を回収す
る。この画分をファルマシア製リジンセファロース4B
にかけ、吸着画分を0.2Mε−アミノカプロンサンを
含む緩衝液により溶出させ、0.25mM EDTAを
含むPBSに対して透析して、Lp(a)画分を得た。
得られたLp(a)0.5mgをウサギに免疫して抗血
清を作成した。得られた抗Lp(a)血清をファルマシ
ア製プロテインGカラムを用いて、IgGに精製し、別
に調製した、LDLカラムを通して、抗LDL抗体を除
去し、抗Lp(a)抗体とした。精製した抗Lp(a)
抗体をマレイミド法を用いてペルオキシダーゼで標識し
た。
Example 2 Sandwich ELISA Assay for Oxidized Lp (a) (1) Preparation of Peroxidase-Labeled Anti-Lp (a) Antibody Human plasma obtained by heparin blood sampling had a final concentration of 0.25 mM.
EDTA was added so that
250 μl of 0.15M NaCl containing
Centrifuge at 105,000 xg for 20 hours at 8 ° C. The upper layer is discarded, KBr powdered in a mortar in advance is added to the lower layer, and the mixture is dissolved at 4 ° C. without bubbling, and the specific gravity is 1.
Adjust to 125 and centrifuge at 105,000 xg for 20 hours at 8 ° C. The orange band in the upper layer was carefully collected, and 1 M NaCl, 2 mM EDTA,
Gel filtration is performed using 10 mM phosphate buffer as a developing solvent. Each obtained fraction is Lp manufactured by Terumo Co., Ltd.
(A) The Lp (a) fraction is collected by measurement with a measurement kit. This fraction was added to Pharmacia Lysine Sepharose 4B.
Then, the adsorbed fraction was eluted with a buffer containing 0.2 Mε-aminocapronsan and dialyzed against PBS containing 0.25 mM EDTA to obtain an Lp (a) fraction.
An antiserum was prepared by immunizing a rabbit with 0.5 mg of the obtained Lp (a). The obtained anti-Lp (a) serum was purified to IgG using a Protein G column manufactured by Pharmacia, and the anti-LDL antibody was removed through a separately prepared LDL column to obtain an anti-Lp (a) antibody. Purified anti-Lp (a)
The antibody was labeled with peroxidase using the maleimide method.

【0053】(2)ヒト血漿中のリポプロテイン画分の
調製 ヘパリン採血で得たヒト血漿に最終濃度で0.25 m
MとなるようにEDTAを加え、その0.75mlずつ
を超遠心分離用試験管(1ml容)に採り、0.3mM
EDTA を含む0.15M NaClを250μl
重層して185,000×g にて10℃で2.5時間
遠心する。上層150μlを捨て、下層750μlを分
取して予め乳鉢で粉末化したKBr(70.0mg)を
加えて、4℃にて泡立てないようにして溶解する。超遠
心分離用試験管(1ml容)の底に比重調整した血漿
(d=1.12)を移して244,000×gにて10
℃で16時間遠心する。上層の橙色バンド(約100〜
150μl)を注意深く回収し、0.25mM EDT
Aを含むPBSに対して4℃、6時間(3リッターを2
時間間隔で2回交換)透析する。得られたリポプロテイ
ン画分は、タンパク質およびコレステロールの定量を行
う。
(2) Preparation of Lipoprotein Fraction in Human Plasma Human plasma obtained by heparin blood sampling had a final concentration of 0.25 m.
Add EDTA to give M, and add 0.75 ml of each to a test tube for ultracentrifugation (1 ml volume) to obtain 0.3 mM.
250 μl of 0.15 M NaCl containing EDTA
Overlay and centrifuge at 185,000 xg for 2.5 hours at 10 ° C. 150 μl of the upper layer is discarded, 750 μl of the lower layer is collected, KBr (70.0 mg) powdered in a mortar in advance is added, and the mixture is dissolved at 4 ° C. without foaming. Transfer the specific gravity-adjusted plasma (d = 1.12) to the bottom of the ultracentrifugation test tube (1 ml volume) and transfer it to 244,000 × g for 10
Centrifuge for 16 hours at ° C. The upper orange band (about 100 ~
150 μl) was carefully collected and 0.25 mM EDT
PBS containing A at 4 ° C for 6 hours (3 liters of 2
Change twice at time intervals) Dialyze. The resulting lipoprotein fraction is quantified for protein and cholesterol.

【0054】(3)サンドイッチELISA分析 プレ−トにPBSで希釈した部分精製したFOH1a/
DLH3抗体および非免疫ラットIgM 抗体(各0.
6μg/well)を加えて、室温で2時間放置する。
続けて、1%BSA−TBS溶液(pH7.4)200
μlを加えて室温で2時間放置してブロッキングする。
ブロッキング溶液を捨て、そのまま酸化Lp(a)標準
品およびヒトリポプロテイン画分を分注し(酸化Lp
(a)標準品は0.1〜10ng/well、ヒトリポ
プテイン画分はPBS20倍希釈液)、室温で2時間放
置する。0.05%Tween20−TBS(pH7.
4)で3回洗浄した後、2% スキムミルク溶液で20
00倍希釈したペルオキシダーゼ標識抗Lp(a)ポリ
クローナル抗体100μlを加えて、室温で1時間放置
する。0.05%Tween20−TBS(pH7.
4)で3回洗浄した後、o−フェニレンジアミン 3m
g/mlを含む0.03%過酸化水素水100μlを加
えて発色させ、10〜15分後に2N硫酸 50μlで
反応を停止させて492nmの吸光度を測定する。
(3) Sandwich ELISA analysis Partially purified FOH1a / diluted with PBS in a plate
DLH3 antibody and non-immunized rat IgM antibody (0.
6 μg / well) and then left at room temperature for 2 hours.
Continuously, 1% BSA-TBS solution (pH 7.4) 200
Add μl and leave at room temperature for 2 hours for blocking.
The blocking solution is discarded, and the oxidized Lp (a) standard and the human lipoprotein fraction are dispensed as they are (oxidized Lp (a)).
(A) The standard product is 0.1 to 10 ng / well, the human lipoptein fraction is a 20-fold diluted PBS solution, and the mixture is allowed to stand at room temperature for 2 hours. 0.05% Tween 20-TBS (pH 7.
After washing 3 times with 4), 20 with 2% skim milk solution
100 μl of peroxidase-labeled anti-Lp (a) polyclonal antibody diluted with 00 times is added, and the mixture is allowed to stand at room temperature for 1 hour. 0.05% Tween 20-TBS (pH 7.
After washing 3 times with 4), o-phenylenediamine 3m
100 μl of 0.03% hydrogen peroxide solution containing g / ml is added to develop color, and after 10 to 15 minutes, the reaction is stopped with 50 μl of 2N sulfuric acid, and the absorbance at 492 nm is measured.

【0055】(4)ヒト血漿(腎血管系疾患患者)を用
いた分析結果 酸化Lp(a)を標準品とした典型的な検量線および臨
床検体について分析した結果を図3および図4にそれぞ
れ示した。
(4) Analysis Results Using Human Plasma (Patients with Renal Vascular Disease) Typical calibration curves using oxidized Lp (a) as a standard and analysis results of clinical samples are shown in FIGS. 3 and 4, respectively. Indicated.

【0056】[0056]

【発明の効果】以上述べたように本発明は、血液成分と
酸化リン脂質を認識する抗体を接触させ、該抗体の該試
料に対する反応性を測定することを特徴とする血液中の
酸化リポタンパク質の検出法に関し、また、その検出法
を用いて、粥状硬化症を主因とする各種循環器系疾患を
診断する方法に関するものである。このような循環器系
疾患としては、心筋梗塞や狭心症などの冠動脈系疾患、
脳梗塞や脳血管系痴呆などの脳動脈系疾患、あるいは腎
症、糖尿病性腎症などの腎動脈系疾患、末梢動脈閉塞症
のような末梢動脈系疾患まで、全ての循環器系疾患があ
る。実施例に示すように、本発明により、糖尿病性腎症
により血液透析に移行した患者の血液中に高濃度の酸化
LDL 及び酸化Lp(a) が検出され、このような疾患と酸化
LDL 酸化Lp(a) の因果関係が明確になった。しかし、本
発明の効果は、これに限定されるものではなく、およそ
酸化リポタンパク質が関与する全ての疾患が適用になる
のであり、その疾患の範囲は、本発明を用いた今後の臨
床的検討により拡大するものであることはいうまでもな
い。
Industrial Applicability As described above, the present invention is characterized in that a blood component is brought into contact with an antibody that recognizes oxidized phospholipid, and the reactivity of the antibody with respect to the sample is measured. And a method for diagnosing various cardiovascular diseases mainly caused by atherosclerosis using the detection method. Such cardiovascular diseases include coronary artery diseases such as myocardial infarction and angina,
There are all cardiovascular diseases such as cerebral arterial diseases such as cerebral infarction and cerebrovascular dementia, renal arterial diseases such as nephropathy and diabetic nephropathy, and peripheral arterial diseases such as peripheral arterial occlusion. . As shown in the examples, according to the present invention, a high concentration of oxidization in the blood of a patient who has undergone hemodialysis due to diabetic nephropathy.
LDL and oxidized Lp (a) were detected, and such diseases and oxidation were detected.
The causal relationship of LDL-oxidized Lp (a) was clarified. However, the effect of the present invention is not limited to this, and it is applied to all the diseases in which oxidized lipoprotein is involved, and the range of the disease is the future clinical study using the present invention. It goes without saying that it will be expanded by.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】 本発明の実施例1において得られた酸化LDL
を標準品とした検量線、
FIG. 1 Oxidized LDL obtained in Example 1 of the present invention
Is a standard curve,

【図2】 本発明の実施例1において臨床検体について
分析した結果を示すグラフ、
FIG. 2 is a graph showing the results of analysis of clinical samples in Example 1 of the present invention,

【図3】 本発明の実施例2において得られた酸化Lp
(a) を標準品とした検量線、
FIG. 3 Oxidized Lp obtained in Example 2 of the present invention
Calibration curve using (a) as a standard product,

【図4】 本発明の実施例2において臨床検体について
分析した結果を示すグラフ。
FIG. 4 is a graph showing the results of analysis of clinical samples in Example 2 of the present invention.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 島村 京子 東京都町田市旭町3丁目6番6号 株式 会社ベッセルリサーチ・ラボラトリー内 (72)発明者 高野 達哉 東京都八王子市寺田町432番地 グリー ンヒル寺田 44−3 (56)参考文献 Hiroyuki Itabe e t.al,” A Monoclona l Antibody agains (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) G01N 33/53 JICSTファイル(JOIS)─────────────────────────────────────────────────── ─── Continued Front Page (72) Inventor Kyoko Shimamura 3-6-6 Asahimachi, Machida-shi, Tokyo Inside Vessel Research Laboratory, Inc. (72) Inventor Tatsuya Takano 432 Terada-cho, Hachioji-shi, Tokyo Green Hill Terada 44-3 (56) References Hiroyuki Itabet et. al, "A Monoclonal Antibody gains (58) Fields investigated (Int.Cl. 7 , DB name) G01N 33/53 JISC file (JOIS)

Claims (12)

(57)【特許請求の範囲】(57) [Claims] 【請求項1】 血漿中の酸化リポタンパク質を固相に直
接固定化することなく、リン脂質の酸化により生成する
抗原を認識する抗体を用いて血漿中の酸化リポタンパク
質を測定することを特徴とする酸化リポタンパク質の測
定法。
1. A method of directly converting oxidized lipoprotein in plasma to a solid phase
A method for measuring oxidized lipoprotein, which comprises measuring oxidized lipoprotein in plasma using an antibody that recognizes an antigen produced by oxidation of phospholipids without immobilization .
【請求項2】 血漿および/またはこれより分離したリ
ポタンパク質画分を固相に直接固相化することなく、
ン脂質の酸化により生成する抗原を認識する抗体と接触
させることを特徴とする酸化リポタンパク質の測定法。
2. Oxidation characterized in that plasma and / or a lipoprotein fraction separated therefrom is brought into contact with an antibody that recognizes an antigen produced by the oxidation of phospholipids, without directly immobilizing it on a solid phase. A method for measuring lipoproteins.
【請求項3】 血漿中の酸化リポタンパク質を固相に直
接固定化することなく、リン脂質の酸化により生成する
抗原を認識する抗体とリポタンパク質を認識する抗体と
を用いて血漿中の酸化リポタンパク質を測定することを
特徴とする酸化リポタンパク質の測定法。
3. The oxidized lipoprotein in plasma is directly transferred to a solid phase.
It is possible to measure oxidized lipoproteins in plasma using an antibody that recognizes an antigen produced by oxidation of phospholipids and an antibody that recognizes lipoproteins without immobilization.
Measurement of oxidative lipoprotein characterized.
【請求項4】 血漿および/またはこれより分離したリ
ポタンパク質画分を固相に直接固定化することなく、
ン脂質の酸化により生成する抗原を認識する抗体と接触
させ、当該抗体と結合した酸化リポタンパク質をさらに
当該リポタンパク質を認識する抗体と接触させることを
特徴とする酸化リポタンパク質の測定法。
4. A plasma and / or a lipoprotein fraction separated therefrom are brought into contact with an antibody that recognizes an antigen produced by the oxidation of phospholipids without directly immobilizing it on a solid phase, and the oxidation bound to the antibody. A method for measuring oxidized lipoprotein, which comprises contacting the lipoprotein with an antibody that recognizes the lipoprotein.
【請求項5】 リン脂質の酸化により生成する抗原を認
識する抗体が、担体に固相化されている請求項1〜4
いずれかに記載の酸化リポタンパク質の測定法。
5. recognize antigens which are produced by the oxidation of the phospholipid antibody, measurement of oxidation lipoproteins according to any one of claims 1 to 4 is immobilized on a carrier.
【請求項6】 リン脂質の酸化により生成する抗原を認
識する抗体が、ホスファチジルコリンの酸化により生成
する抗原を認識するものである請求項1〜4のいずれか
に記載の酸化リポタンパク質の測定法。
6. antigen recognizing antibody produced by the oxidation of phospholipids, measurement of oxidation lipoproteins according to any one of claims 1 to 4 is intended to recognize the antigens produced by the oxidation of phosphatidylcholine .
【請求項7】 リン脂質の酸化により生成する抗原を認
識する抗体が、粥状硬化病巣のホモジュネートで適当な
哺乳動物及び/または哺乳動物の抗体産生担当リンパ球
を免役し、該動物の抗体産生リンパ球とミエローマ細胞
を融合させ、形成された抗ヒト粥腫抗体産生細胞融合細
胞群を単離し、該細胞群の中から酸化したリポタンパク
質と特異的に反応するものとして選別された融合細胞が
産生するものである請求項1〜4のいずれかに記載の酸
化リポタンパク質の測定法。
7. An antibody which recognizes an antigen produced by the oxidation of phospholipids, immunizes a suitable mammal and / or a lymphocyte in charge of antibody production of the mammal with a homogenate of atherosclerotic lesion, and produces the antibody of the animal. Fused lymphocytes and myeloma cells, isolated anti-human atheroma antibody-producing cell fusion cell group formed, the fusion cells selected as those that react specifically with the oxidized lipoprotein from the cell group The method for measuring oxidized lipoprotein according to claim 1 , which is produced.
【請求項8】 リン脂質の酸化により生成する抗原を認
識する抗体が、ハイブリドーマセルラインFOH1a/
DLH3(受託番号FERM BP-7171)により生産される
ものである請求項1〜4のいずれかに記載の酸化リポタ
ンパク質の測定法。
8. An antibody that recognizes an antigen produced by the oxidation of phospholipids is a hybridoma cell line FOH1a /
The method for measuring oxidized lipoprotein according to any one of claims 1 to 4 , which is produced by DLH3 (accession number FERM BP-7171).
【請求項9】 該リポタンパク質を認識する抗体が、抗
アポB抗体であり、酸化リポタンパク質が酸化低密度リ
ポタンパク質(LDL)である請求項3〜8のいずれか
に記載の酸化リポタンパク質の測定法。
9. An antibody that recognizes the lipoprotein is an anti-antibody.
It is an apo B antibody and oxidized lipoprotein
9. The protein according to claim 3, which is poprotein (LDL).
The method for measuring oxidized lipoprotein according to 1.
【請求項10】 該リポタンパク質を認識する抗体が、
抗Lp(a)抗体であり、酸化リポタンパク質が酸化L
p(a)である請求項3〜8のいずれかに記載の酸化リ
ポタンパク質の測定法。
10. An antibody that recognizes the lipoprotein is
Anti-Lp (a) antibody, in which oxidized lipoprotein is oxidized L
The oxidized lithium according to any one of claims 3 to 8, which is p (a).
Method for measuring poprotein.
【請求項11】 血漿および/またはこれより分離した
リポタンパク質画分を希釈して用いる請求項1〜10の
いずれかに記載の方法。
11. Plasma and / or separated therefrom
The lipoprotein fraction is used by diluting it.
The method described in either.
【請求項12】 該測定が、サンドイッチELISA法
である請求項3〜11のいずれかに記載の測定法。
12. The sandwich ELISA method is used for the measurement.
The method according to any one of claims 3 to 11, wherein
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