JP2005517036A - セロトニンおよび/またはノルアドレナリン阻害活性を持つドーパミン−d2受容体部分アゴニスト - Google Patents
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Abstract
本発明は、主要なモノアミン作動性(ドーパミン、セロトニンおよび/またはノルアドレナリン)系の異常によって惹起されるか、あるいはそれらの系の操作を介して処置することができる、精神医学的および/または神経学的障害の処置のための製薬学的組成物の製造のための、ドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性ならびにセロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み抑制活性を有する化合物または化合物の組み合わせ物の使用に関する。
Description
本発明は、主要なモノアミン作動性(ドーパミン、セロトニンおよび/またはノルアドレナリン)系の異常(disturbance)によって惹起されるか、あるいはそれらの系の操作を介して処置することができる、精神医学的および/または神経学的障害であって、該障害が精神分裂病および他の精神病性障害;気分障害、例えば双極性I型(bipolar I)障害、双極性II型障害および小鬱病のような単極性抑鬱障害、季節的な感情障害、産後の鬱病 気分変調および大鬱病;パニック障害(臨場恐怖症の有無の下で)、社会恐怖症、強迫障害(OCD、共存性慢性チックまたは分裂型(schizotypal)障害の有無の下で)、外傷後ストレス障害および広範な不安障害(GAD)を含む不安障害;物質使用障害(依存および濫用のような)および物質誘導性障害(物質中止のような)を含む物質に関連する障害;自閉障害およびRett障害を含む拡大発展障害;注意欠陥および破壊的行動障害、例えば注意欠陥多動性障害(ADHD);病的賭博のような衝動制御障害;神経性食欲不振および神経性過食症のような摂食障害;ツーレット疾患のようなチック障害;不休止脚(restless legs)症候群;認識、記憶および/または共存性精神医学的障害および神経更生(外傷後脳病変)の欠陥を特徴とする障害;からなる群から選ばれる障害の処置のための製薬学的組成物の製造のための、ドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性ならびにセロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み抑制(inhibitory)活性を有する化合物または化合物の組み合わせ物の使用に関する。
ドーパミン作動性ニューロン、特に黒質線条体経路のそれらは運動制御の微調節に関与している。この経路の変性は神経学的障害をもたらすであろう。しかしながら、脳におけるドーパミンは皮質縁、扁桃体、側座核、中隔、嗅結節および前頭皮質を含む辺縁系の要素でもある。したがって、これらの系における異常は認知、特に感情的行動の異常に結び付く。
セロトニン作動性およびノルアドレナリン作動性投射は精神医学的障害において撹乱されている多くの行動および感情状態を調節する。セロトニンおよびノルアドレナリン再取り込みインヒビター、およびまた組み合わされたこれら2つの活性を有する化合物は抑鬱および不安障害の処置のために広く使用される。
完全ドーパミン−D2受容体アゴニストもしくはアンタゴニストの使用に対して、ドーパミン−D2受容体部分アゴニストの使用は、患者の内因性状態に対して瞬間・瞬間に基づいて自己調節する動的投薬法を提供する。かくして、それは望ましいドーパミン系の柔軟な調節、ならびにブロモクリプチンのような完全ドーパミン−D2受容体アゴニスト(幻覚、嘔気、嘔吐、運動障害、直立性血圧降下症、催眠)か、またはハロペリドールのような完全ドーパミン−D2受容体アンタゴニスト(感情的鈍感、不快、晩発性運動障害)を使用するいずかの処置によって惹起される多くの副作用の回避を提供する。これらの多くの副作用のために、完全アゴニストおよびアンタゴニストは抑鬱および不安障害の療法において非常に限定された使用しか見いだせなかった。
ドーパミン−D2受容体部分アゴニストは柔軟な調節と望ましい副作用プロファイルを示すだけでなく、またそれらは関連する動物モデルにおいても顕著な抗不安薬プロファイルを有する(非特許文献1)。ノルアドレナリンおよび/またはセロトニン再取り込みインヒビターは比較的顕著な抗うつ薬プロファイルを有する。
Drugs of the Future 2001,26(2):128−132。
Drugs of the Future 2001,26(2):128−132。
両活性が1つの製薬学的調製物において組み合わされる場合、そのような調製物はすべての疾病症候(例えば、精神分裂病のポジティブおよびネガティブ症候)の完全な処置を可能にし、そしてドーパミン作動系の低活性,高活性または上下する活性が関与する精神医学的障害の処置のために特に有用であることがここに見い出された。また、そのような調製物は精神病エピソードと組み合わされた躁病、不安もしくは鬱病に罹患している患者を治療するために使用することができる。
本発明によるドーパミン−D2受容体部分アゴニストは、濃度応答範囲において試験された場合、化合物のEC50値の100倍のような非常に高い濃度においてさえ機能的cAMP細胞に基づくアッセイ(下記のような)において少なくとも20%はあるが60%以上ではない活性化を達成する化合物である。この機能的ドーパミン−D2受容体アッセイにおいて20%未満または60%以上の活性化を与える化合物は、それぞれ完全アンタゴニストおよびアゴニストと見なされ、そしてドーパミン−D2受容体アンタゴニストおよびアゴニストが伴う副作用を惹起しがちである。ドーパミン−D2受容体部分アゴニストは、ドーパミンの内因性シナプスのトーン(tone)が低い場合または完全ドーパミン−D2受容体アンタゴニストの存在下ではアゴニストとして作用でき、そしてドーパミンの内因性シナプスのトーンが高い場合または完全ドーパミン−D2受容体アゴニストの存在下ではアンタゴニストとして作用できる。このことは図1で、最初に、大きさ(amplitude)が影響を受けて、低い周囲のドーパミン濃度におけるトーンの増大を確保し、そして高レベルにおけるピークの影響を制限することを示している、部分アゴニストの不在および存在下での内因性アゴニスト(例えば、ドーパミン)の変化するレベル間の仮説に基づく関係の図示において具体的に説明される。
完全アゴニストと同様に、ドーパミン−D2受容体部分アゴニストは一般に感作系において活性がある。それらは黒質緻密層部(substatia nigra pars compacta)に一側性の6−ヒドロキシ−ドーパミン(6−OHDA)病変を有するラットにおいて対側の変化を誘導する。MPTP処置した普通のキヌゲザルにおいて、それらは運動性症候の強力かつ長期間の反転を生じる(Drugs of the Future 2001,26(2):128−132)。しかしながら、完全アゴニストに対して、ドーパミン−D2受容体部分アゴニストは非感作系では実質的に活性が低い:それらはラットにおけるレセルピン誘導性運動低下をほとんど反転しない。
1つの分子においてドーパミン−D2部分活性ならびにセロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み抑制活性を有する化合物、あるいはドーパミン−D2部分活性ならびにセロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み抑制活性を有する化合物の組み合わせ物からなる製薬学的調製物が、微小透析実験によって例証されたように、イン・ビボにおいて全3種の(別々に2種の)活性を同時に示すことがここに見い出された。
過剰活性のドーパミン作動系が関与するCNS障害の処置のために、低い固有の機能的活性を有するドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性と、セロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み抑制活性とを合わせもつ製薬学的調製物が推奨される。ドーパミン不足が関与する障害の場合には、本発明にしたがって、高い固有の機能的活性を有するドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性と、セロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み活性とを合わせもつ製薬学的調製物がかなりの優位性を有する。
驚くべきことに、セロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み活性と組み合わせて少なくとも20%かつ多くとも60%の固有の機能的ドーパミン活性を合わせもつ1種以上の化合物の製薬学的調製物が、ドーパミン系の動的再調節が要求されるすべての精神医学的障害の処置のために有用であることがここに見い出された。
双極性鬱病および嗜癖のようなドーパミン神経伝達における動的変動を特徴とする障害は、製薬学的調製物におけるドーパミン−D2受容体部分アゴニストによるドーパミン系の柔軟な調節から特に利益を受けるであろう。この「ドーパミン作動性神経伝達の安定化(stabilising)活性」と、セロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み抑制活性とを合わせることは、抗鬱病および抗不安の効力を増進するであろう。
結論として、抗精神病、抗鬱病および抗不安活性を予測する動物モデルにおけるドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性とセロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み抑制活性とを合わせもつ製薬学的調製物の広い効力が、多くの共存性(co−morbid)精神医学的障害の処置のための、5−HTおよび/またはNA抑制活性の抗鬱病性作用との組み合わせにおけるドーパミン媒介神経伝達の動的調節の可能性のある用途を明白に示すことを本発明は例証している。
本発明にしたがって使用できる化合物の組み合わせ物は、一般的用語において:
(1)ドーパミン−D2部分アゴニスト(先に定義した)、特異的5−HT再取り込みインヒビターおよび/または特異的ノルアドレナリン再取り込みインヒビター、
(2)ドーパミン−D2部分アゴニストおよび5−HT−とノルアドレナリンの両再取り込み活性を有する化合物、
(3)特異的ノルアドレナリン再取り込みインヒビターを組み合わされた、特異的5−HT再取り込みインヒビターでもあるドーパミン−D2部分アゴニスト、
(4)特異的5−HT再取り込みインヒビターを組み合わされた、特異的ノルアドレナリン再取り込みインヒビターでもあるドーパミン−D2部分アゴニスト、
を含有する調製物である。
(1)ドーパミン−D2部分アゴニスト(先に定義した)、特異的5−HT再取り込みインヒビターおよび/または特異的ノルアドレナリン再取り込みインヒビター、
(2)ドーパミン−D2部分アゴニストおよび5−HT−とノルアドレナリンの両再取り込み活性を有する化合物、
(3)特異的ノルアドレナリン再取り込みインヒビターを組み合わされた、特異的5−HT再取り込みインヒビターでもあるドーパミン−D2部分アゴニスト、
(4)特異的5−HT再取り込みインヒビターを組み合わされた、特異的ノルアドレナリン再取り込みインヒビターでもあるドーパミン−D2部分アゴニスト、
を含有する調製物である。
本発明による組み合わせ調製物において使用できる化合物の特定の例は、限定されるものではないが、特異的セロトニン再取り込みインヒビター(SSRI):アラプロクレート、シタロプラム、フルオキセチン、フルボキサミン、リトキセチン、ネファゾドン、パロキセチン、セルトラリン、トラゾドンおよびジメリジン;特異的ノルアドレナリン再取り込みインヒビター(SNRI):アモキサピン、デシプラミン、マプロチリン、マジンドール、ニソキセチン、ノミフェンシン、ノルトリプチリン、プロトリプチリン、レボキセチンおよびトモキセチン;セロトニンとノルアドレナリン再取り込み抑制活性を合わせもつ化合物:クロリミプラミン、ヅロキセチン、イミプラミン、インダトラリン、ミルナシプラン、S−33005、シブトラミンおよびベンラファキシン;およびドーパミン−D2アゴニスト:BP897、ジヒドロエルゴクリスチン、ジヒドロエルゴタミン、プレクラモル((S)−(−)−3−PPP)、テルグリド、ビフェプルノックスおよびSLV308(R=CH3である例の構造(1))である。
本発明にしたがって使用できる単一化合物は、ドーパミン−D2部分アゴニストと特異的5−HT再取り込みインヒビターの両方である化合物、例えば、式(I):
[式中、Rは部分(a),(b),(c),(d)または(e)からなる]
を有するフェニルピペラジン誘導体およびその塩である。
を有するフェニルピペラジン誘導体およびその塩である。
本発明にしたがって使用できる単一化合物は、さらに、全3種の活性:ドーパミン−D2部分アゴニスト活性、5−HT再取り込み抑制性およびNA再取り込み抑制性を有する化合物、例えば、下記構造を有するフェニルピペラジン誘導体である:
本発明の化合物が適当な酸付加塩を形成できる薬物学的に許容しうる酸は、例えば、塩酸、硫酸、リン酸、硝酸、ならびに有機酸、例えばクエン酸、フマール酸、マレイン酸、酒石酸、酢酸、安息香酸、p−トルエンスルホン酸、メタンスルホン酸およびナフタレンスルホン酸である。
本化合物およびそれらの酸付加塩は、液状および固形担体材料のような補助物質を用いて適当な方法によって投与に適当な形態物にもたらすことができる。
例1a〜1eおよび2a〜2cはWO00EP08190に記述されるように合成することができる。
薬理学的試験
本発明にしたがって使用できる化合物ならびに関連する参照化合物の固有の活性(ε)を含む、ドーパミン−D2受容体におけるイン・ビトロの機能的活性がフォルスコリン−誘導[3H]−cAMP蓄積を抑制するそれらの能力によって測定された。セロトニンおよびノルアドレナリン再取り込み抑制活性はラットの脳シナプトソームにおいて測定された。プロトコールは以下に記述され、そして得られた結果を表1に示す。
本発明にしたがって使用できる化合物ならびに関連する参照化合物の固有の活性(ε)を含む、ドーパミン−D2受容体におけるイン・ビトロの機能的活性がフォルスコリン−誘導[3H]−cAMP蓄積を抑制するそれらの能力によって測定された。セロトニンおよびノルアドレナリン再取り込み抑制活性はラットの脳シナプトソームにおいて測定された。プロトコールは以下に記述され、そして得られた結果を表1に示す。
フォルスコリン−誘導[ 3 H]−cAMP蓄積の阻害
ヒトのドーパミンD2,L受容体は繊維芽細胞系CHO−K1細胞においてクローン化され、そしてDr.Grandy,Vollum Institute,Portland,Oregon,USAから得られた。10%熱失活胎児ウシ血清、2mMグルタミン、1mMピルビン酸塩、5000単位/mlストレプトマイシンおよび200μg/mlを補足したDulbecco改変Eagle培地で、93%空気/7%CO2において37℃でCHO細胞を増殖させた。試験化合物とのインキュベーションでは、24穴プレートで増殖した集密培養物を使用した。各条件または物質は日常的に4並列で試験した。細胞には0.5ml培地/ウェル中1μCiの[3H]−アデニンを添加した。2時間後、培養物をホスホジエステラーゼ阻害剤イソブチルメチルキサンチン(IBMX)の1mMを含有する0.5mlのPBSで洗浄し、そして試験化合物の存在または不在下で1mMIBMXおよびフォルスコリンを含有する0.5mlPBSとともに20分間インキュベートした。吸引の後、5%(w/v)トリクロロ酢酸1mlで反応を停止した。細胞抽出物中の[3H]−ATPおよび形成した[3H]−cAMPをSolomon Y,Landos C,Rodbell M,1974,A highly selective adenylyl cyclase assay,Anal Biochem 58:541−548およびWeiss S,Sebben M,Bockaert JJ,1985,Corticotropin−peptide regulation of intracellular cyclic AMP production in cortical neurons in primary culture,J Neurochem 45:869−874による記述のようにアッセイした。0.8mlの抽出物をDowex(50WX−4 200〜400メッシュ)および酸化アルミニウムカラムを通過させ、水および0.1Mイミダゾールで溶出した。溶出液を7mlのInsta−gelと混合し、そして放射能を液体シンチレーションカウンターでカウントした。[3H]−ATPの[3H]−cAMPへの変換を両cAMPおよびATPフラクションにおける合わせた放射能に比較してcAMPフラクション中の放射能パーセンテージにおける比として表し、そして基礎放射能を差し引いて自然の放射能について校正した。
ヒトのドーパミンD2,L受容体は繊維芽細胞系CHO−K1細胞においてクローン化され、そしてDr.Grandy,Vollum Institute,Portland,Oregon,USAから得られた。10%熱失活胎児ウシ血清、2mMグルタミン、1mMピルビン酸塩、5000単位/mlストレプトマイシンおよび200μg/mlを補足したDulbecco改変Eagle培地で、93%空気/7%CO2において37℃でCHO細胞を増殖させた。試験化合物とのインキュベーションでは、24穴プレートで増殖した集密培養物を使用した。各条件または物質は日常的に4並列で試験した。細胞には0.5ml培地/ウェル中1μCiの[3H]−アデニンを添加した。2時間後、培養物をホスホジエステラーゼ阻害剤イソブチルメチルキサンチン(IBMX)の1mMを含有する0.5mlのPBSで洗浄し、そして試験化合物の存在または不在下で1mMIBMXおよびフォルスコリンを含有する0.5mlPBSとともに20分間インキュベートした。吸引の後、5%(w/v)トリクロロ酢酸1mlで反応を停止した。細胞抽出物中の[3H]−ATPおよび形成した[3H]−cAMPをSolomon Y,Landos C,Rodbell M,1974,A highly selective adenylyl cyclase assay,Anal Biochem 58:541−548およびWeiss S,Sebben M,Bockaert JJ,1985,Corticotropin−peptide regulation of intracellular cyclic AMP production in cortical neurons in primary culture,J Neurochem 45:869−874による記述のようにアッセイした。0.8mlの抽出物をDowex(50WX−4 200〜400メッシュ)および酸化アルミニウムカラムを通過させ、水および0.1Mイミダゾールで溶出した。溶出液を7mlのInsta−gelと混合し、そして放射能を液体シンチレーションカウンターでカウントした。[3H]−ATPの[3H]−cAMPへの変換を両cAMPおよびATPフラクションにおける合わせた放射能に比較してcAMPフラクション中の放射能パーセンテージにおける比として表し、そして基礎放射能を差し引いて自然の放射能について校正した。
参照および試験化合物はすべて100%DMSO中10mM保存液として得て、最終濃度までPBS/IBMXで希釈した。典型的には、化合物は10−10M〜10−5Mの範囲の濃度で使用した。4並列のデータカウントから平均値を、対照値(基礎放射能を差し引いたフォルスコリン−刺激によるcAMP蓄積)のパーセンテージとして表した、特定の第2メッセンジャーの蓄積における薬物誘導の受容体媒介効果についての評価値として採用した。非線形曲線フィッティング(non−linear curve−fitting)プログラムINPLOTまたはExcel−add−in XL−Fitを使用して、平均値を薬物濃度(モル)に対してプロットし、S字形曲線(4パラメーター算定曲線)を構築した。最大のフォルスコリンで誘導刺激した変換を最大値として取り、最大阻害(通常、薬物濃度10−6Mもしくは10−5Mにおいて)を最小値として取り、そしてこれらの値をあてはめプロセスの間は固定した。かくして、フォルスコリン誘導cAMP蓄積の得られる最大阻害の50%を惹起する化合物の濃度を数回の実験にわたって平均し、グラフおよび表において平均pEC50±SEMとして示した。アンタゴニストの効力(potency)は固定アゴニスト濃度および特定アンタゴニスト濃度を用いる同時培養細胞によって調査した。曲線フィッティング操作はEC50値について使用した操作と同じである。かくして、IC50値、すなわち、この化合物によって達成できる最大拮抗作用の50%を達成できる濃度。IC50値はCheng−Prussoffの式を用いて校正されて、同じ実験で得られるアゴニスト濃度およびEC50値についてそれを校正する。かくして、Kb=IC50/(1+ [アゴニスト]/EC50,アゴニスト)。対応するpA2値は−log(Kb)である。濃度応答曲線のフィッティングはpEC50値および最大達成可能効果(固有の活性または効力(ε))の評価を可能にする。完全受容体アゴニストはε=1をもち、完全受容体アンタゴニストはε=0をもち、そして受容体部分アゴニストは中間の固有活性をもつ。したがって、ドーパミンD2部分受容体アゴニストの化合物選別は、CHO−D2,L細胞でのcAMP蓄積によって測定されるような濃度応答関係ならびに所望の範囲0,20〜0,60をもつεの評価に完全に依存する。
数種の化合物、例えば、テルグリド、プレクラモル((S)−(−)−3−PPP)およびSLV308は、cAMPの形成を部分的にのみ阻害することが分かった。ヒト・ドーパミンD2受容体を安定に発現するCHO細胞において濃度依存様式でこれらの化合物を試験し、これらの化合物のどれもキンピロール(100%)に較べて60%以上cAMP形成を減退することができなかった。かくして、これらの化合物は部分アゴニストと同定された。SLV308が真の部分アゴニストであることは、ドーパミン受容体においてまたは完全アゴニスト・キンピロールの存在下で、SLV308それ自体を適用することによって見い出された。かくして、SLV308は効果(cAMP形成の阻害)を誘導できるので、それはまた、濃度依存様式で完全アゴニストの作用を遮断することができる(pEC50 8.0;pA2 8.4)。図2では、ヒト・ドーパミンD2受容体におけるSLV308および他の参照化合物の効果を示す。上パネルは化合物のアゴニスト特性を具体的に説明している:かくして、キンピロールおよびタリペクソールは完全アゴニストであり、一方、SLV308およびテルグリドは部分アゴニストである。下パネルは参照アゴニスト・キンピロールに対するアンタゴニスト効果を具体的に説明している。かくして、ハロペリドールはD2受容体における完全アンタゴニストであり、一方両SLV308およびテルグリドは最大生物学的効果の半分のみを遮断する「部分アンタゴニスト」として見いだされる。作動作用および拮抗作用が平衡している。
[ 3 H]−セロトニン再取り込みのイン・ビトロの機能的抑制
オスのラット(Wistar Hsd/Cpb:WU;175〜200g)を断頭し、大脳半球を素早く除去し、そしてP2−シナプトソーム画分を調製した。シナプトソームを試験化合物の不在もしくは存在下で15分間37℃で、モノアミンオキシダーゼ阻害剤パルギリン(7μM)を含有する培地中でプレインキュベートした。続いて、シナプトソームを10分間[3H]−セロトニン(0.2mM最終濃度)に曝露した。
オスのラット(Wistar Hsd/Cpb:WU;175〜200g)を断頭し、大脳半球を素早く除去し、そしてP2−シナプトソーム画分を調製した。シナプトソームを試験化合物の不在もしくは存在下で15分間37℃で、モノアミンオキシダーゼ阻害剤パルギリン(7μM)を含有する培地中でプレインキュベートした。続いて、シナプトソームを10分間[3H]−セロトニン(0.2mM最終濃度)に曝露した。
[3H]−セロトニンの取り込みをハーベスターを用いる濾過によって停止し、そして取り込まれなかった放射能を広範な洗浄プログラムによって除去した。シナプトソームを有するフィルタープレートを脱水し、存在する[3H]−セロトニン量をBetaplete液体シンチレーション計測によって決定した。[3H]−セロトニンの取り込みに及ぼす抑制効果はpIC50値として表され、それは放射能標識した神経伝達物質の取り込みの最大抑制の半分が達成される濃度の負の対数である。表2に示されるpIC50値は2並列で実施された2〜9実験の平均値である。DMSO中に10−2Mに溶解した試験化合物をKrebs Ringerバッファー中で10−8〜10−5Mの試験濃度に希釈した。さらなる実験の詳細(例えば、バッファー組成)は、J.T.Colyle and S.H.Snyder,1969,Catecholamine uptake by synaptosomes in homogenates of rat brain;stereospecificity in different areas,J.Pharmacol.Exp.Ther.170,221−231によって記述されている。
[ 3 H]−ノルアドレナリン再取り込みのイン・ビトロの機能的抑制
オスのラット(Wistar Hsd/Cpb:WU;175〜200g)を断頭し、視床下部を素早く除去し、そして粗シナプトソーム画分を調製した。シナプトソームを試験化合物の不在もしくは存在下で10分間37℃で、モノアミンオキシダーゼ阻害剤パルギリン(7μM)を含有する培地中でプレインキュベートした。続いて、シナプトソームを15分間[3H]−ノルアドレナリン(0.4mM最終濃度)に曝露した。
[ 3 H]−ノルアドレナリン再取り込みのイン・ビトロの機能的抑制
オスのラット(Wistar Hsd/Cpb:WU;175〜200g)を断頭し、視床下部を素早く除去し、そして粗シナプトソーム画分を調製した。シナプトソームを試験化合物の不在もしくは存在下で10分間37℃で、モノアミンオキシダーゼ阻害剤パルギリン(7μM)を含有する培地中でプレインキュベートした。続いて、シナプトソームを15分間[3H]−ノルアドレナリン(0.4mM最終濃度)に曝露した。
[3H]−ノルアドレナリンの取り込みをハーベスターを用いる濾過によって停止し、そして取り込まれなかった放射能を広範な洗浄プログラムによって除去した。シナプトソームを有するフィルタープレートを脱水し、存在する[3H]−ノルアドレナリン量をBetaplete液体シンチレーション計測によって決定した。[3H]−ノルアドレナリンの取り込みに及ぼす抑制効果はpIC50値として表され、それは放射能標識した神経伝達物質の取り込みの最大抑制の半分が達成される濃度の負の対数である。表2に示されるpIC50値は2並列で実施した2〜9実験の平均値である。DMSO中に10−2Mに溶解した試験化合物をKrebs Ringerバッファー中で10−8〜10−5Mの試験濃度に希釈した。さらなる実験の詳細(例えば、バッファー組成)は、J.T.Colyle and S.H.Snyder,1969,Catecholamine uptake by synaptosomes in homogenates of rat brain;stereospecificity in different areas,J.Pharmacol.Exp.Ther.170,221−231によって記述されている。
微小透析は、覚醒した自由に運動する動物の別々の脳領域における脳の細胞外間隙での神経伝達物質の変化およびそれらの代謝への洞察を可能にする。神経伝達物質の細胞外レベルはこれらの脳領域におけるニューロンの活性を反映し、そして選択的受容体アゴニストおよびアンタゴニスト、取り込みインヒビターなどによって影響を受ける。本発明の化合物(の混合物)のドーパミン、セロトニンおよびノルアドレナリンレベルに及ぼすイン・ビボの効果を下記プロトコールにしたがって微小透析によって決定した。
イン・ビボの微小透析によるドーパミンおよびセロトニンの測定
外科手術. オスのWistarラット、体重280〜300gをハロタン麻酔(NO2中1.5%ハロタン/O2 2:1)によって麻酔した。手術前(バイトリル(Baytril)(150μl/ラットi.m.))と手術後(テムゲシック(Temgesic)(0.005〜0.01mg/kg i.m.無希釈/ラット))、抗菌剤および鎮痛薬を投与した。定位フレームへの配置後、頭骨を露出し、そして透析液のドーパミンおよびセロトニンレベルの決定が必要なそれらの動物において、側座核(両耳間のポイントからの座標(mm):前後 +10.5、中外側 −2.1および背腹方向 −6.5、(硬膜から)8°の角度で)上の骨を通して1mmの貫通孔をドリルで空ける。より小さい貫通孔を作成し、3個のネジを頭骨内に挿入した。大脳内ガイドカニューレ(CMA,Carnegie)を穴を通して降ろして先端を側座核もしくは前頭葉前方皮質の直ぐ上に位置させる。ネジと一緒にガイドを歯科用セメントで骨の上に接着し、周囲の皮膚を縫合する。微小透析実験前少なくとも6日間動物を回復させる。
外科手術. オスのWistarラット、体重280〜300gをハロタン麻酔(NO2中1.5%ハロタン/O2 2:1)によって麻酔した。手術前(バイトリル(Baytril)(150μl/ラットi.m.))と手術後(テムゲシック(Temgesic)(0.005〜0.01mg/kg i.m.無希釈/ラット))、抗菌剤および鎮痛薬を投与した。定位フレームへの配置後、頭骨を露出し、そして透析液のドーパミンおよびセロトニンレベルの決定が必要なそれらの動物において、側座核(両耳間のポイントからの座標(mm):前後 +10.5、中外側 −2.1および背腹方向 −6.5、(硬膜から)8°の角度で)上の骨を通して1mmの貫通孔をドリルで空ける。より小さい貫通孔を作成し、3個のネジを頭骨内に挿入した。大脳内ガイドカニューレ(CMA,Carnegie)を穴を通して降ろして先端を側座核もしくは前頭葉前方皮質の直ぐ上に位置させる。ネジと一緒にガイドを歯科用セメントで骨の上に接着し、周囲の皮膚を縫合する。微小透析実験前少なくとも6日間動物を回復させる。
微小透析実験. 実験当日に微小透析プローブ(CMA12、外径0.5mm、Stockholm,Sweden)をガイドカニューレを通して側座核(膜の長さ2mm)または前頭葉前方(膜の長さ4mm)中に挿入する。プローブの入口を、平衡アーム上のリキッド−スウィベル(liquid−swivel(2重チャンネル;Instech,UK)を介してシリンジ−ポンプ(Harvard,10 channel)に低容量の配管で連結する。シリンジ−ポンプは透析液(147mM NaCl,4mM KCl,1,2mM CaCl2および0.7mM MgCl2)を2μl/分の一定流速で送達する。プローブの出口を、リキッド−スウィベルを介してCMA140フラクションコレクターに低容量の配管で連結する。配管はスウィベルから動物の首の周囲のカラーに固定するクリップまで下に導くステンレス鋼ワイヤーで支持する。ドーパミン、セロトニンおよびノルアドレナリンレベルはプローブ挿入後16時間安定であり、この後透析サンプリングを開始する。サンプルは化合物の酸化を防ぐためにHCOOH/システイン溶液(0.02M/0.2w/v%)の50μlを含有するバイアル中に20分間隔(40μlの容量)で2μl/分の流速で回収する。5サンプルの基礎期間に続いて、薬物を全身的に投与し、少なくともさらに8サンプルを回収する。全サンプルを回収後ドライアイス上で保存し、そして下記の電気化学的検出に共役する高速液体クロマトグラフィー(HPLC)による分析まで−80℃で凍結する。
透析液ドーパミンおよびセロトニンの分析. サンプルは、カラム−オーブン(Mistral;Spark,The Netherlands)により45℃で維持する逆相カラム(Supelcosyl LC−8DB,25cmx4.6mm,粒径5μm,Supelco)、および冷却装置(10℃)を有するGilson(モデル231−401もしくは232−401)またはHP1100オート−インジェクターを用いて分析する。ポンプ(Hewlett Packard,モデル1050もしくはHP1100)は1ml/分の流速で運転する。移動相は(mM)50HAc/NaAc(3:1)、1.46HSA,0.27EDTAおよび16%(v/v)メタノールからなった。最終pHを1NNaOHにより4.9に調節した。ドーパミンおよびセロトニンはガラス質カーボンのワーキング電極(VT−03;Antec,Leiden,the Netherlands)を備えたEG&G(モデル400,Princeton Applied Research)コントローラーを用いて電気化学的に検出する。電位はAg/AgCl参照電極に対して600mVに設定する。出力は最高の値を測定するHyperchemTM(Hewlett−Packard Inc.)を備えたコンピューターに記録する。ドーパミンとセロトニンの既知量を含有する分析用標準溶液の最高値を用いて計算値(pg/20分)を作成する。
透析液ドーパミンおよびノルアドレナリンの分析. サンプルは、カラム−オーブン(Mistral;Spark,The Netherlands)により25℃で維持する逆相カラム(Supelcosyl LC−18DB,150mmx4.6mm,dp=3μm,Supelco)、および冷却装置(10℃)を有するGilson(モデル231−401もしくは232−401)またはHP1100オートインジェクターを用いて分析する。ポンプ(Hewlett Packard,モデル1050もしくはHP1100)は1ml/分の流速で運転する。基礎移動相は50mMNaAcおよび0.27mMEDTAからなる。1−オクタンスルホン酸(NOS)およびメタノールの最終濃度、ならびに最終pH(HAcにより調節)は試験下の種々の脳領域により変化する。化合物はガラス質カーボンのワーキング電極(VT−03;Antec,Leiden,the Netherlands)を備えたEG&G(モデル400,Princeton Applied Research)コントローラーを用いて電気化学的に検出する。電位はHyref参照電極に対して450mVに設定する。出力は最高の値において濃度を計算するHewlett Packard Chemstationを用いて分析、記録する。化合物の既知量を含有する分析用標準溶液の最高値を用いて計算値を作成する(外部標準法)。
得られた結果を表2に示す:
Claims (32)
- ドーパミン、セロトニンおよび/またはノルアドレナリン系の異常によって惹起されるか、あるいはそれらの系の操作を介して処置することができる障害の処置のための製薬学的組成物の製造のための、ドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性ならびにセロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み抑制活性を有する化合物または化合物の組み合わせ物の使用。
- 該化合物または化合物の組み合わせ物が、ドーパミンおよびセロトニン系の異常によって惹起されるか、あるいはそれらの系の操作を介して処置することができる障害の処置のための製薬学的組成物の製造のための、ドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性およびセロトニン再取り込み抑制活性を有することを特徴とする、請求項1に記載の使用。
- 該化合物または化合物の組み合わせ物が、ドーパミンおよびノルアドレナリン系の異常によって惹起されるか、あるいはそれらの系の操作を介して処置することができる障害の処置のための製薬学的組成物の製造のための、ドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性およびノルアドレナリン再取り込み抑制活性を有することを特徴とする、請求項1に記載の使用。
- 該化合物が1つの分子中に組み合わされたドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性ならびにセロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み抑制活性を有することを特徴とする、請求項1に記載の使用。
- 化合物の該組み合わせ物がドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性ならびにセロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み抑制活性を有することを特徴とする、請求項1に記載の使用。
- 該化合物が1つの分子において組み合わされたドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性およびセロトニン再取り込み抑制活性を有することを特徴とする、請求項2に記載の使用。
- 化合物の該組み合わせ物がドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性およびセロトニン再取り込み抑制活性を有することを特徴とする、請求項2に記載の使用。
- 該化合物が1つの分子中に組み合わされたドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性およびノルアドレナリン再取り込み抑制活性を有することを特徴とする、請求項3に記載の使用。
- 化合物の該組み合わせ物がドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性およびノルアドレナリン再取り込み抑制活性を有することを特徴とする、請求項3に記載の使用。
- 該組成物が、主要なモノアミン作動性(ドーパミン、セロトニンおよび/またはノルアドレナリン)系の異常によって惹起されるか、あるいはそれらの系の操作を介して処置することができる、精神医学的および/または神経学的障害であって、該障害が統合失調症および他の精神病性障害;気分障害、例えば双極性I型障害、双極性II型障害および小鬱病のような単極性抑鬱障害、季節的な感情障害、産後の鬱病、気分変調および大鬱病;パニック障害(臨場恐怖症を伴なうもの又は伴なわないもの)、社会恐怖症、強迫障害(OCD、共存性慢性チックまたは分裂型障害を伴なうもの又は伴なわないもの)、外傷後ストレス障害および広範な不安障害(GAD)を含む不安障害;物質使用障害(依存および濫用のような)および物質誘導性障害(物質中止のような)を含む物質に関連する障害;自閉障害およびRett障害を含む拡大発展障害;注意欠陥および破壊的行動障害、例えば注意欠陥多動性障害(ADHD);病的賭博のような衝動制御障害;神経性食欲不振および神経性過食症のような摂食障害;ツーレット疾患のようなチック障害;不休止脚症候群;認識、記憶および/または共存性精神医学的障害および神経更生(外傷後脳病変)の欠陥を特徴とする障害;からなる群から選ばれる障害の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物が統合失調症および他の精神病性障害の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物が気分障害、例えば双極性I型障害および双極性II型障害の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物が小鬱病のような単極性抑鬱障害、季節的な感情障害、産後の鬱病、気分変調および大鬱病の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物がパニック障害(臨場恐怖症を伴なうもの又は伴なわないもの)を含む不安障害の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物が社会恐怖症の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物が強迫障害(OCD、共存性慢性チックまたは分裂型障害を伴なうもの又は伴なわないもの)の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物が外傷後ストレス障害の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物が広範な不安障害(GAD)の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物が物質使用障害(依存および濫用のような)および物質誘導性障害(物質中止のような)を含む物質に関連する障害の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物が自閉障害およびRett障害を含む拡大発展障害の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物が注意欠陥および破壊的行動障害、例えば注意欠陥多動性障害(ADHD)の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物が病的賭博のような衝動制御障害の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物が神経性食欲不振および神経性過食症のような摂食障害の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物がツーレット疾患のようなチック障害の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物が不休止脚症候群の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- 該組成物が認識、記憶および/または共存性精神医学的障害および神経更生(外傷後脳病変)の欠陥を特徴とする障害の処置のために使用されることを特徴とする、請求項1〜9に記載の使用。
- ドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性ならびにセロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み抑制活性を有する化合物、あるいはドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性ならびにセロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み抑制活性を有する化合物の組み合わせ物を、投与のために適当な形態物にもたらすことを特徴とする、組成物の製造方法。
- ドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性ならびにセロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み抑制活性を有する化合物、あるいはドーパミン−D2受容体部分アゴニスト活性ならびにセロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み抑制活性を有する化合物の組み合わせ物を、投与のために適当な形態物中に含んでなる組成物。
- 該ドーパミン−D2作動活性が、本質的に、フォルスコリン誘導[3H]−cAMP蓄積の阻害において完全アゴニストの活性の20%〜60%であることを特徴とする、請求項1〜26に記載の使用。
- 該組成物が、イン・ビボ微小透析実験においてドーパミン−D2部分活性ならびにセロトニンおよび/またはノルアドレナリン再取り込み抑制活性を同時に示すことを特徴とする、請求項1〜28に記載の使用。
- 該組成物が、イン・ビボ微小透析実験においてドーパミン−D2部分活性およびセロトニン再取り込み抑制活性を同時に示すことを特徴とする、請求項1〜28に記載の使用。
- 該組成物が、イン・ビボ微小透析実験においてドーパミン−D2部分活性およびノルアドレナリン再取り込み抑制活性を同時に示すことを特徴とする、請求項1〜28に記載の使用。
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