RU2827840C1 - Elective-differential nutrient medium for klebsiella species recovery - Google Patents

Elective-differential nutrient medium for klebsiella species recovery Download PDF

Info

Publication number
RU2827840C1
RU2827840C1 RU2024108049A RU2024108049A RU2827840C1 RU 2827840 C1 RU2827840 C1 RU 2827840C1 RU 2024108049 A RU2024108049 A RU 2024108049A RU 2024108049 A RU2024108049 A RU 2024108049A RU 2827840 C1 RU2827840 C1 RU 2827840C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
medium
nutrient medium
agar
klebsiella
elective
Prior art date
Application number
RU2024108049A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Руслан Вячеславович Писанов
Денис Игоревич Каминский
Алексей Александрович Ковалевич
Алексей Сергеевич Водопьянов
Original Assignee
Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека filed Critical Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Application granted granted Critical
Publication of RU2827840C1 publication Critical patent/RU2827840C1/en

Links

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention relates to biotechnology and is an elective differential nutrient medium. Nutrient medium contains fermentative dry peptone (for bacteriological purposes) as a nitrogenous nutrient base; L-arabinose – as a carbon source; urea for detecting urease activity; iron (II) sulphate heptahydrate – as an inhibitor of growth of foreign microflora; cresol red water-soluble – as an indicator of pH change of the medium; microbiological agar-agar, distilled water. Invention allows increasing efficiency of Klebsiella spp. isolation, reducing the period of their identification based on the principle of biochemical activity and specific colony colour.
EFFECT: invention reduces the time for laboratory diagnosis of microorganisms of the genus Klebsiella.
1 cl, 1 tbl, 6 ex

Description

Предлагаемое изобретение относится к области медицинской микробиологии и является элективно-дифференциальной питательной средой, которая может быть использована в лабораторной практике при выделении штаммов Klebsiella spp. (Klebsiella pneumonia, Klebsiella oxytoca) из клинического материала, пищевых продуктов и объектов окружающей среды. Питательная среда содержит в качестве азотистой питательной основы пептон ферментативный сухой (для бактериологических целей); L-Арабинозу - в качестве источника углерода; мочевину для выявления уреазной активности; железо (II) сернокислое семиводное - в качестве ингибитора роста посторонней микрофлоры; крезоловый красный водорастворимый - в качестве индикатора изменения pН среды; агар-агар микробиологический, воду дистиллированную. Изобретение позволяет повысить эффективность выделения Klebsiella spp., сократить срок их идентификации по принципу биохимической активности и специфической окраски колоний. Таким образом, изобретение сокращает время лабораторной диагностики микроорганизмов рода Klebsiella.The proposed invention relates to the field of medical microbiology and is an elective-differential nutrient medium that can be used in laboratory practice for isolating Klebsiella spp. (Klebsiella pneumonia, Klebsiella oxytoca) strains from clinical material, food products and environmental objects. The nutrient medium contains dry enzymatic peptone (for bacteriological purposes) as a nitrogenous nutrient base; L-Arabinose as a carbon source; urea for detecting urease activity; iron (II) sulfate heptahydrate as an inhibitor of foreign microflora growth; water-soluble cresol red as an indicator of a change in the pH of the medium; microbiological agar, and distilled water. The invention makes it possible to increase the efficiency of isolating Klebsiella spp., and reduce the time for their identification based on the principle of biochemical activity and specific coloration of the colonies. Thus, the invention reduces the time for laboratory diagnostics of microorganisms of the genus Klebsiella.

Экологическими резервуарами бактерий рода Klebsiella (в том числе, вирулентных) служат воды поверхностных водоемов, сточные воды, растения, промышленные стоки (Пай Г.В. с соавт., 2020) [10]. Они являются представителями нормальной транзиторной микрофлоры человека, но, в то же время, возбудителями различных инфекционных заболеваний потому, что обладают выработанной устойчивостью ко многим факторам внешней среды, в частности, к большинству антибактериальных препаратов (Меджидов М.М., 2008; Рахманин Ю.А. с соавт., 2016) [5, И]. Это приводит к возникновению острых кишечных инфекций, сепсисов, конъюнктивитов, поражениям легких, печени у людей с ослабленной иммунной системой (Анганова Е.В. с соавт., 2010; Choby J.E. et al., 2020) [1, 14]. Последние обстоятельства указывают на то, что клебсиеллы из окружающей среды могут представлять угрозу для здоровья человека (Lightfoot N., 2003) [15].Environmental reservoirs of Klebsiella bacteria (including virulent ones) include surface waters, wastewater, plants, and industrial effluents (Pai G.V. et al., 2020) [10]. They are representatives of normal transient human microflora, but, at the same time, they are pathogens of various infectious diseases because they have developed resistance to many environmental factors, in particular, to most antibacterial drugs (Medzhidov M.M., 2008; Rakhmanin Yu.A. et al., 2016) [5, I]. This leads to the development of acute intestinal infections, sepsis, conjunctivitis, lung and liver damage in people with a weakened immune system (Anganova E.V. et al., 2010; Choby J.E. et al., 2020) [1, 14]. Recent circumstances indicate that environmental Klebsiella may pose a threat to human health (Lightfoot N., 2003) [15].

Бактериологические исследования, направленные на обнаружение клебсиелл и других энтеробактерий, проводят по одной схеме. При этом используются селективно-дифференциальные среды типа Эндо, Левина, Плоскирева, Мак-Конки. Принцип их работы основан на утилизации бактериями кишечной группы лактозы. Это не позволяет отличить Klebsiella spp. от других представителей Enterobacteriaceae.Bacteriological studies aimed at detecting Klebsiella and other enterobacteria are carried out according to the same scheme. In this case, selective-differential media such as Endo, Levin, Ploskirev, and MacConkey are used. The principle of their operation is based on the utilization of lactose by intestinal bacteria. This does not allow distinguishing Klebsiella spp. from other representatives of Enterobacteriaceae.

Такого же рода обстоятельства возникают при использовании элективно-дифференциальных сред с рамнозой или инозитом, в состав которых наряду с вышеуказанными соединениями входят ингибиторы роста посторонней микрофлоры (желчь, желчные соли, кристаллвиолет, бриллиантовый зеленый, антибиотики), когда, например, дифференциация К. pneumoniae от Serratia spp. очень затруднительна. К тому же эти среды (модифицированный агар Мак-Конки, М-Агар FC для клебсиелл, дифференциально-элективная питательная среда для выделения клебсиелл и др.) являются слабоселективными. В связи с этим требуется постановка дополнительных тестов и манипуляций для выделения чистых культур клебсиелл.The same kind of circumstances arise when using elective-differential media with rhamnose or inositol, which, along with the above-mentioned compounds, contain inhibitors of the growth of foreign microflora (bile, bile salts, crystal violet, brilliant green, antibiotics), when, for example, differentiation of K. pneumoniae from Serratia spp. is very difficult. In addition, these media (modified MacConkey agar, M-Agar FC for Klebsiella, differential-elective nutrient medium for isolating Klebsiella, etc.) are weakly selective. In this regard, additional tests and manipulations are required to isolate pure Klebsiella cultures.

Изобретение относится к области медицинской микробиологии и может быть использовано для выделения Klebsiella spp. из клинического материала, пищевых продуктов и объектов окружающей среды.The invention relates to the field of medical microbiology and can be used to isolate Klebsiella spp. from clinical material, food products and environmental objects.

В основе предлагаемого способа лежит применение питательной среды, которая содержит в %:The proposed method is based on the use of a nutrient medium that contains in %:

1. Пептон сухой ферментативный для бактериологических целей - 0,9-1,4;1. Dry enzymatic peptone for bacteriological purposes - 0.9-1.4;

2. L-Арабиноза - 0,2-1,0;2. L-Arabinose - 0.2-1.0;

3. Железо (II) сернокислое семиводное - 0,01-0,06;3. Iron (II) sulfate heptahydrate - 0.01-0.06;

4. Мочевина - 0,2-1,0;4. Urea - 0.2-1.0;

5. Крезоловый красный водорастворимый - 0,00005-0,004;5. Cresol red water-soluble - 0.00005-0.004;

6. Агар-агар микробиологический - 1,0-1,5;6. Microbiological agar-agar - 1.0-1.5;

7. Вода дистиллированная - до 100%,7. Distilled water - up to 100%,

pН готовой среды 7,2±0,2.The pH of the prepared medium is 7.2±0.2.

Бактерии рода Klebsiella - грамотрицательные микроорганизмы, принадлежащие к семейству Enterobacteriaceae порядка Enterobacterial. Род Klebsiella представлен более чем 12 видами, из которых чаще встречаются К. pneumoniae и К. oxytoca (Бардашева А.В. с соавт., 2021) [2].Bacteria of the genus Klebsiella are gram-negative microorganisms belonging to the Enterobacteriaceae family of the order Enterobacterial. The genus Klebsiella is represented by more than 12 species, of which K. pneumoniae and K. oxytoca are the most common (Bardasheva A.V. et al., 2021) [2].

Известна питательная среда «Хромогенная питательная среда для выделения и идентификации клебсиелл», предложенная М.М. Меджидовым с соавт. [6]. Данная среда имеет следующий состав (г/л):The nutrient medium “Chromogenic nutrient medium for the isolation and identification of Klebsiella” proposed by M.M. Medzhidov et al. [6] is known. This medium has the following composition (g/l):

1. Питательный агар сухой - 35,0-40,0;1. Dry nutrient agar - 35.0-40.0;

2. Глюкоза - 5,0-6,0;2. Glucose - 5.0-6.0;

3. 5-аминосалициловая кислота - 2,0-3,0;3. 5-aminosalicylic acid - 2.0-3.0;

4. Экстракт кормовых дрожжей - 3,0-5,0;4. Feed yeast extract - 3.0-5.0;

5. Парааминобензойная кислота - 0,01-0,02;5. Para-aminobenzoic acid - 0.01-0.02;

6. Бромтимоловый синий - 0,08-0,09;6. Bromothymol blue - 0.08-0.09;

7. Трис-буфер - 1,0-1,5;7. Tris buffer - 1.0-1.5;

8. Натрий углекислый - 0,6-0,7;8. Sodium carbonate - 0.6-0.7;

9. Бриллиантовый зеленый - 0,0001-0,0002;9. Brilliant green - 0.0001-0.0002;

10. Агар микробиологический - 2,5-3,0;10. Microbiological agar - 2.5-3.0;

11. Вода дистиллированная - до 1 литра.11. Distilled water - up to 1 liter.

pН 7,4±0,2. Данную питательную среду получают следующим образом. В 1 литр дистиллированной воды вносят навески сухого питательного агара, экстракта кормовых дрожжей, парааминобензойной кислоты, трис-буфера, натрия углекислого, бриллиантового зеленого. Смесь тщательно перемешивают, троекратно кипятят 1-2 мин при помешивании, не допуская пригорания агара, до появления крупнопузырчатой пены. Среду охлаждают до 45-50°С и разливают в стерильные чашки Петри. После застывания и подсушивания чашек со средой на нее наносят исследуемый материал, затем инкубируют при 37°С в течение 24 ч. Через 24 ч от начала культивирования K. pneumoniae, K. oxytoca, K. mobilis образуют типичные колонии коричневого цвета, диаметром 1,5-2,0 мм в S-форме с коричневым преципитатом вокруг них из-за воздействия на 5-аминосалициловую кислоту фермента 5-аминосалицилатдекарбоксилазы, наличие которого характерно только для Klebsiella spp. Остальные энтеробактерии вырастают в виде типичных для каждого вида колоний желтого цвета на фоне бутылочно-зеленого цвета питательной среды. Коричневый преципитат вокруг этих колоний отсутствует. Рост грамположительных микроорганизмов подавляется благодаря внесению в эту среду бриллиантового зеленого. Данная питательная среда является хромогенной и не может позволить выделить только лишь представителей рода Klebsiella, а также имеет довольно сложный с дорогостоящими ингредиентами состав, в который необходимо вводить стимуляторы роста - экстракт кормовых дрожжей и парааминобензойную кислоту. Таким образом, назначение указанной среды не совпадает с назначением (решением задач) предлагаемой нами.pH 7.4±0.2. This nutrient medium is obtained as follows. In 1 liter of distilled water, add weighed portions of dry nutrient agar, fodder yeast extract, para-aminobenzoic acid, tris buffer, sodium carbonate, and brilliant green. The mixture is thoroughly mixed, boiled three times for 1-2 minutes while stirring, preventing the agar from burning, until coarse-bubble foam appears. The medium is cooled to 45-50°C and poured into sterile Petri dishes. After the medium has solidified and dried, the test material is applied to the medium and incubated at 37°C for 24 hours. After 24 hours of cultivation, K. pneumoniae, K. oxytoca, and K. mobilis form typical brown colonies, 1.5–2.0 mm in diameter, in the S-shape with a brown precipitate around them due to the effect of the enzyme 5-aminosalicylate decarboxylase on 5-aminosalicylic acid, the presence of which is characteristic only of Klebsiella spp. The remaining enterobacteria grow as yellow colonies typical for each species against the background of the bottle-green color of the nutrient medium. There is no brown precipitate around these colonies. The growth of gram-positive microorganisms is suppressed by adding brilliant green to this medium. This nutrient medium is chromogenic and cannot allow to isolate only representatives of the genus Klebsiella, and also has a rather complex composition with expensive ingredients, which requires the introduction of growth stimulants - fodder yeast extract and para-aminobenzoic acid. Thus, the purpose of this medium does not coincide with the purpose (problem solving) of the one proposed by us.

Разработанная нами среда является хромогенной, содержит селективную добавку ввиде соли железа валентностью 2, позволяющую задерживать, блокировать рост посторонней микрофлоры и других энтеробактерий кроме представителей рода Klebsiella, а также являющуюся стимулятором гиперкапсулообразования у K. pneumoniae, что позволяет разделять гипермукоидные и классические варианты клинических штаммов K. pneumoniae, что невозможно на других селективных средах.The medium we developed is chromogenic, contains a selective additive in the form of iron salt with a valence of 2, which allows to delay and block the growth of foreign microflora and other enterobacteria except for representatives of the genus Klebsiella, and is also a stimulator of hypercapsule formation in K. pneumoniae, which allows to separate hypermucoid and classical variants of clinical strains of K. pneumoniae, which is impossible in other selective media.

Кроме того, в состав среды не входят ионы натрия и калия (в отличии большинства сред), что также является селективным фактором для роста посторонней микрофлоры и других энтеробактерий, нуждающихся в этих ионах, за исключением представителей рода Klebsiella. В качестве индикатора и селективного фактора нами использован крезоловый красный блокирующий рост других энтеробактерий, но не активный в отношении представителей рода Klebsiella.In addition, the medium does not contain sodium and potassium ions (unlike most media), which is also a selective factor for the growth of foreign microflora and other enterobacteria that need these ions, with the exception of representatives of the genus Klebsiella. As an indicator and selective factor, we used cresol red, which blocks the growth of other enterobacteria, but is not active against representatives of the genus Klebsiella.

Известен способ выделения и идентификации бактерий рода Klebsiella с помощью среды, предложенной Сиволодским Е.П. [12]. Данная среда имеет следующий состав (г/л):A method for isolating and identifying bacteria of the genus Klebsiella is known using a medium proposed by E.P. Sivolodsky [12]. This medium has the following composition (g/l):

1. L-пролин - 2,0-2,5;1. L-proline - 2.0-2.5;

2. L-глутамат натрия - 5,0-6,0;2. Sodium L-glutamate - 5.0-6.0;

3. L-арабиноза - 10,0;3. L-arabinose - 10.0;

4. 5-аминосалициловая кислота - 3,0-5,0;4. 5-aminosalicylic acid - 3.0-5.0;

5. Na2CO3⋅10H2O - 2,0-3,3;5. Na 2 CO 3 ⋅10H 2 O - 2.0-3.3;

6. NaCl - 5,0;6. NaCl - 5.0;

7. КН2РО4 - 0,5;7. KN 2 RO 4 - 0.5;

8. MgSO4 - 0,l;8. MgSO4 - 0.l;

9. Агар микробиологический - 12,0;9. Microbiological agar - 12.0;

10. Вода дистиллированная - до 1 литра;10. Distilled water - up to 1 liter;

pН 7,2±0,2.pH 7.2±0.2.

Эту питательную среду приготовляют путем внесения порошка смеси ингредиентов кроме суплементов 5-аминосалициловой кислоты и углекислого натрия в дистиллированную воду, растворяют при нагревании, добавляют суплементы, кипятят в течение 5 минут, разливают в стерильные чашки Петри. Посевы инкубируют при 35°С в аэробных условиях 24-48 ч, после чего определяют принадлежность выросших колоний микроорганизмов к роду Klebsiella по образованию вокруг последних зоны темно-коричневой окраски питательной среды. Хотя, по заявлению автора, данная среда позволяет выделять клебсиеллы с высокой долей вероятности и на ней подавляется рост грамположительных бактерий (например, рода Bacillus); она является хромогенной и синтетической. Применение этой питательной среды не дает возможности выявлять исключительно Klebsiella spp. из-за штаммовых различий по питательным потребностям последних. Некоторые ингредиенты, входящие в ее состав (L-пролин, L-глутамат натрия, 5-аминосалициловая кислота) дороги. Таким образом, назначение указанной среды не совпадает с назначением (решением задач) предлагаемой нами.This nutrient medium is prepared by adding a powder mixture of ingredients except for 5-aminosalicylic acid and sodium carbonate supplements to distilled water, dissolving with heating, adding supplements, boiling for 5 minutes, pouring into sterile Petri dishes. The cultures are incubated at 35°C under aerobic conditions for 24-48 hours, after which the grown colonies of microorganisms are determined to belong to the genus Klebsiella by the formation of a dark brown zone of the nutrient medium around them. Although, according to the author, this medium allows for the isolation of Klebsiella with a high degree of probability and the growth of gram-positive bacteria (e.g., Bacillus) is suppressed on it; it is chromogenic and synthetic. The use of this nutrient medium does not make it possible to identify exclusively Klebsiella spp. due to strain differences in the nutritional needs of the latter. Some of the ingredients included in its composition (L-proline, L-sodium glutamate, 5-aminosalicylic acid) are expensive. Thus, the purpose of this medium does not coincide with the purpose (problem solving) of the one we offer.

Наиболее близкой к предлагаемой питательной среде является питательная среда К-2 (Калина Г.П., 1980) [4]. В состав этой среды входят натрий хлористый, магний сернокислый, двузамещенный фосфат калия, однозамещенный фосфат калия, сульфат калия, раффиноза, мочевина, бромтимоловый синий, кристаллический фиолетовый, агар микробиологический, дистиллированную воду. На этой среде Klebsiella spp. образуют округлые, блестящие слизистые, желтые, зеленые с желтым центром или голубые колонии.The closest to the proposed nutrient medium is the K-2 nutrient medium (Kalina G.P., 1980) [4]. This medium contains sodium chloride, magnesium sulfate, dibasic potassium phosphate, monobasic potassium phosphate, potassium sulfate, raffinose, urea, bromothymol blue, crystal violet, microbiological agar, and distilled water. On this medium, Klebsiella spp. form round, shiny, slimy, yellow, green with a yellow center, or blue colonies.

Недостатком прототипа является слабая селективность в отношении бактерий родов Enterobacter, Citrobacter и других представителей семейства Enterobacteriaceae; отсутствие четкого отличия колоний клебсиелл по цвету.The disadvantage of the prototype is weak selectivity for bacteria of the genera Enterobacter, Citrobacter and other representatives of the Enterobacteriaceae family; lack of clear distinction of Klebsiella colonies by color.

Технической задачей предлагаемого изобретения является создание новой питательной среды для выделения чистых культур Klebsiella spp. из клинического материала, пищевых продуктов и объектов окружающей среды путем применения элективно-дифференциальной питательной среды, позволяющей сократить сроки дифференциации клебсиелл.The technical task of the proposed invention is to create a new nutrient medium for isolating pure cultures of Klebsiella spp. from clinical material, food products and environmental objects by using an elective-differential nutrient medium, which makes it possible to reduce the time for differentiation of Klebsiella.

Поставленная задача достигается путем применения элективно-дифференциальной питательной среды, позволяющей дифференцировать клебсиеллы по наличию ферментации L-арабинозы и уреазной активности.The set task is achieved by using an elective-differential nutrient medium, which allows differentiation of Klebsiella by the presence of L-arabinose fermentation and urease activity.

Цель изобретения достигается при использовании питательной среды, содержащей (в %):The aim of the invention is achieved by using a nutrient medium containing (in %):

1. Пептон ферментативный для бактериологических целей - 0,9-1,4;1. Enzymatic peptone for bacteriological purposes - 0.9-1.4;

2. L-Арабиноза ЧДА или ХЧ - 0,2-1,0;2. L-Arabinose analytical grade or chemical purity - 0.2-1.0;

3. Мочевина ЧДА или ХЧ - 0,2-1,0;3. Urea, analytical grade or chemically pure - 0.2-1.0;

4. Железо (II) сернокислое семиводное - 0,01-0,06;4. Iron (II) sulfate heptahydrate - 0.01-0.06;

5. Крезоловый красный водорастворимый ЧДА или ХЧ - 0,0005-0,004;5. Cresol red water-soluble analytical grade or chemically pure - 0.0005-0.004;

6. Агар-агар микробиологический - 1-1,5;6. Microbiological agar-agar - 1-1.5;

7. Вода дистиллированная - до 1 литра.7. Distilled water - up to 1 liter.

РН 7,2±0,2.pH 7.2±0.2.

Колонии округлые, полупрозрачные, выпуклые, с ровным краем, слизистые, малиновые. Цвет среды в области роста колоний становится малиновым.The colonies are round, translucent, convex, with a smooth edge, slimy, crimson. The color of the medium in the area of colony growth becomes crimson.

Способ приготовления питательной среды осуществляется по следующей технологии.The method of preparing the nutrient medium is carried out according to the following technology.

В стеклянную термостойкую вносят навески пептона сухого ферментативного для бактериологических целей, мочевины, крезолового красного водорастворимого, агар-агара. Добавляют дистиллированную воду до 1000 мл. Устанавливают pН 7,2±0,2 при помощи 20% водного раствора гидроокиси натрия и 12% водного раствора соляной кислоты. Нагревают в паровом стерилизаторе текучим паром в течение 45-65 минут или кипятят на электроплитке при постоянном помешивании, не допуская пригорания агаровых частиц, в течение 2-3 минут после полного растворения агара. Вносят навески L-арабинозы и железа (II) сернокислого семиводного с последующим перемешиванием до их полного растворения. Питательную среду стерилизуют кипячением в течение 2-3 минут.Add weighed amounts of dry enzymatic peptone for bacteriological purposes, urea, water-soluble cresol red, and agar to a heat-resistant glass container. Add distilled water to make 1000 ml. Adjust pH to 7.2±0.2 using a 20% aqueous solution of sodium hydroxide and a 12% aqueous solution of hydrochloric acid. Heat in a steam sterilizer with flowing steam for 45-65 minutes or boil on an electric stove with constant stirring, preventing the agar particles from burning, for 2-3 minutes after the agar has completely dissolved. Add weighed amounts of L-arabinose and iron (II) sulfate heptahydrate, stirring until completely dissolved. Sterilize the nutrient medium by boiling for 2-3 minutes.

Питательную среду асептично разливают в стерильные чашки Петри по 20-30 мл и оставляют застывать на ровной поверхности. Цвет питательной среды - желтый. Готовая питательная среда, разлитая в чашки Петри может храниться не более 15 дней при температуре от 2 до 8°С.The nutrient medium is aseptically poured into sterile Petri dishes of 20-30 ml and left to solidify on a flat surface. The color of the nutrient medium is yellow. The finished nutrient medium poured into Petri dishes can be stored for no more than 15 days at a temperature of 2 to 8 ° C.

Качество предлагаемого способа выделения Klebsiella spp. из объектов окружающей среды и биологического материала проверяют следующим образом.The quality of the proposed method for isolating Klebsiella spp. from environmental objects and biological material is tested as follows.

Перед проверкой качества предлагаемого способа тест-штаммы К. pneumoniae 3446, К. pneumoniae 3347, К. oxytoca 3955, К. aerogenes 4206, Е. coli 18, P. aeruginosa АТСС 27853, P. aeruginosa Р-5810, S. aureus АТСС 25925, P. vulgaris НХ19 (222) подготавливают к контролю в соответствии с требованиями МУК 4.2.2316-08 [].Before checking the quality of the proposed method, the test strains K. pneumoniae 3446, K. pneumoniae 3347, K. oxytoca 3955, K. aerogenes 4206, E. coli 18, P. aeruginosa ATCC 27853, P. aeruginosa P-5810, S. aureus ATCC 25925, P. vulgaris HX19 (222) are prepared for control in accordance with the requirements of MUK 4.2.2316-08 [].

Пример 1Example 1

Готовят питательную среду следующего состава: в чистую 2-литровую колбу вносят:Prepare a nutrient medium of the following composition: add the following to a clean 2-liter flask:

1. Пептон ферментативный для бактериологических целей - 0,9%;1. Enzymatic peptone for bacteriological purposes - 0.9%;

2. L-Арабиноза ЧДА или ХЧ - 0,2%;2. L-Arabinose, analytical grade or reagent grade - 0.2%;

3. Мочевина ЧДА или ХЧ - 0,2%;3. Urea, analytical grade or chemically pure - 0.2%;

4. Железо (II) сернокислое семиводное - 0,01%;4. Iron (II) sulfate heptahydrate - 0.01%;

5. Крезоловый красный водорастворимый ЧДА или ХЧ - 0,0005%;5. Cresol red water-soluble analytical grade or chemically pure - 0.0005%;

6. Агар-агар микробиологический - 1,0%;6. Microbiological agar-agar - 1.0%;

7. Вода дистиллированная - до 1 литра.7. Distilled water - up to 1 liter.

Устанавливают pН 7,2±0,2 при помощи 20% водного раствора гидроокиси натрия и 12% водного раствора соляной кислоты. Смесь кипятят на электроплитке при постоянном помешивании, не допуская пригорания агаровых частиц, в течение 2-3 минут после полного растворения агара или в паровом стерилизаторе (в режиме текучего пара) в течение 45 - 65 мин. Затем добавляют навески L-арабинозы - 0,2% и железа (II) сернокислого семиводного - 0,01% с последующим перемешиванием до полного растворения ингредиентов. Питательную среду асептично разливают в стерильные чашки Петри по 20-30 мл и оставляют застывать на ровной поверхности. Цвет полученной питательной среды - желтый.The pH is adjusted to 7.2±0.2 using a 20% aqueous solution of sodium hydroxide and a 12% aqueous solution of hydrochloric acid. The mixture is boiled on an electric stove with constant stirring, preventing the agar particles from burning, for 2-3 minutes after the agar has completely dissolved, or in a steam sterilizer (in the flowing steam mode) for 45-65 minutes. Then add the weighed portions of L-arabinose - 0.2% and iron (II) sulfate heptahydrate - 0.01%, followed by stirring until the ingredients are completely dissolved. The nutrient medium is aseptically poured into sterile Petri dishes of 20-30 ml and left to harden on a flat surface. The color of the resulting nutrient medium is yellow.

Для контроля качества полученной элективной питательной среды используют тест-штаммы К. pneumoniae 3446, К. pneumoniae 3347, К. oxytoca 3955, К. aerogenes 4206, Е. coli 18, P. aeruginosa АТСС 27853, P. aeruginosa Р-5810, S. aureus АТСС 25925, P. vulgaris НХ19 (222), хранящиеся и подготовленные к посеву согласно МУК 4.2.2316-08 [7]. Суточную культуру каждого из них суспендируют в стерильном 0,9% растворе хлорида натрия, забуференного 1/150 М калий-натрий фосфатным буфером pН (7,1±0,1) до концентрации 1 × 109 м.к./мл по стандартному образцу мутности ОСО-42-28-85П (ФГБУ «НЦЭСМП» Минздрава России). Приготовленные взвеси тест-штаммов К. pneumoniae 3446, К. pneumoniae 3347, К. oxytoca 3955, К. aerogenes 4206 последовательно разводят в стерильном 0,9% растворе хлорида натрия, забуференного 1/150 М калий-натрий фосфатным буфером pН (7,1±0,1) с десятикратным интервалом до разведения 10-6 (1000 м.к./мл). Взвеси тест-штаммов, используемые в качестве микробов-ассоциантов: Е. coli 18, P. aeruginosa АТСС 27853, P. aeruginosa Р-5810, S. aureus АТСС 25925, P. vulgaris НХ19 (222) также разводят с десятикратным интервалом последовательно до разведений 10-2 (1000000 м.к./мл) и до 10-3 (1000000 м.к./мл) - P. vulgaris НХ19 (222).To control the quality of the obtained elective nutrient medium, the following test strains are used: K. pneumoniae 3446, K. pneumoniae 3347, K. oxytoca 3955, K. aerogenes 4206, E. coli 18, P. aeruginosa ATCC 27853, P. aeruginosa P-5810, S. aureus ATCC 25925, P. vulgaris HX19 (222), stored and prepared for sowing according to MUK 4.2.2316-08 [7]. A daily culture of each of them is suspended in a sterile 0.9% sodium chloride solution buffered with 1/150 M potassium-sodium phosphate buffer pH (7.1±0.1) to a concentration of 1 × 10 9 m.c./ml according to the standard turbidity sample OSO-42-28-85P (Federal State Budgetary Institution “National Center for Expertise and Management of Microorganisms” of the Ministry of Health of Russia). Prepared suspensions of test strains K. pneumoniae 3446, K. pneumoniae 3347, K. oxytoca 3955, K. aerogenes 4206 are successively diluted in sterile 0.9% sodium chloride solution buffered with 1/150 M potassium-sodium phosphate buffer pH (7.1±0.1) at ten-fold intervals until a dilution of 10 -6 (1000 m.c./ml) is achieved. Suspensions of test strains used as microbial associates: E. coli 18, P. aeruginosa ATCC 27853, P. aeruginosa P-5810, S. aureus ATCC 25925, P. vulgaris HX19 (222) are also diluted successively at tenfold intervals to dilutions of 10 -2 (1,000,000 m.c./ml) and to 10 -3 (1,000,000 m.c./ml) - P. vulgaris HX19 (222).

Посев тест-штаммов осуществляют по 0,1 мл из каждого разведения с последующей инкубацией при (37±1)°С в течение 18-24 ч, затем проводят учет результатов.The test strains are sown at 0.1 ml from each dilution, followed by incubation at (37±1)°C for 18-24 hours, after which the results are recorded.

Как видно из таблицы 1, осуществление предлагаемого способа при применении среды указанного состава не соответствует требованиям Методических указаний по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями МУ 04-723/3 [9], МУК 4.2.3115-13 «Лабораторная диагностика внебольничных пневмоний» [8], т.к. присутствует рост микробов-ассоциантов. Искомые микроорганизмы выявить практически невозможно.As can be seen from Table 1, the implementation of the proposed method using the medium of the specified composition does not meet the requirements of the Methodological Guidelines for Microbiological Diagnostics of Diseases Caused by Enterobacteria MU 04-723/3 [9], MUK 4.2.3115-13 "Laboratory Diagnostics of Community-Acquired Pneumonia" [8], since there is growth of associated microbes. It is practically impossible to detect the desired microorganisms.

Пример 2Example 2

Готовят питательную среду следующего состава: в чистую 2-литровую колбу вносят:Prepare a nutrient medium of the following composition: add the following to a clean 2-liter flask:

1. Пептон ферментативный для бактериологических целей - 1,0%;1. Enzymatic peptone for bacteriological purposes - 1.0%;

2. L-Арабиноза ЧДА или ХЧ - 0,3%;2. L-Arabinose, analytical grade or reagent grade - 0.3%;

3. Мочевина ЧДА или ХЧ - 0,3%;3. Urea of analytical grade or chemical grade - 0.3%;

4. Железо (II) сернокислое семиводное - 0,015%;4. Iron (II) sulfate heptahydrate - 0.015%;

5. Крезоловый красный водорастворимый ЧДА или ХЧ - 0,001%;5. Cresol red water-soluble analytical grade or chemically pure - 0.001%;

6. Агар-агар микробиологический - 1,1%;6. Microbiological agar-agar - 1.1%;

7. Вода дистиллированная - до 1 литра.7. Distilled water - up to 1 liter.

Устанавливают pН 7,2±0,2 при помощи 20% водного раствора гидроокиси натрия и 12% водного раствора соляной кислоты.The pH is adjusted to 7.2±0.2 using a 20% aqueous solution of sodium hydroxide and a 12% aqueous solution of hydrochloric acid.

В ходе приготовления и испытания среды использованы методические приемы, как в примере 1.During the preparation and testing of the medium, the same methodological techniques were used as in Example 1.

Как видно из таблицы 1, осуществление предлагаемого способа при применении среды указанного состава не соответствует требованиям Методических указаний по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями МУ 04-723/3 [9], МУК 4.2.3115-13 «Лабораторная диагностика внебольничных пневмоний» [8], т.к. присутствует рост микробов-ассоциантов. Искомые микроорганизмы выявить было практически невозможно.As can be seen from Table 1, the implementation of the proposed method using the medium of the specified composition does not meet the requirements of the Methodological Guidelines for Microbiological Diagnostics of Diseases Caused by Enterobacteria MU 04-723/3 [9], MUK 4.2.3115-13 "Laboratory Diagnostics of Community-Acquired Pneumonia" [8], since there is growth of associated microbes. It was practically impossible to detect the desired microorganisms.

Пример 3Example 3

Готовят питательную среду следующего состава: в чистую 2-литровую колбу вносят:Prepare a nutrient medium of the following composition: add the following to a clean 2-liter flask:

1. Пептон ферментативный для бактериологических целей - 1,1%;1. Enzymatic peptone for bacteriological purposes - 1.1%;

2. L-Арабиноза ЧДА или ХЧ - 0,4%;2. L-Arabinose, analytical grade or reagent grade - 0.4%;

3. Мочевина ЧДА или ХЧ - 0,4%;3. Urea of analytical grade or chemical grade - 0.4%;

4. Железо (II) сернокислое семиводное - 0,025%;4. Iron (II) sulfate heptahydrate - 0.025%;

5. Крезоловый красный водорастворимый ЧДА или ХЧ - 0,0015%;5. Cresol red water-soluble analytical grade or chemically pure - 0.0015%;

6. Агар-агар микробиологический - 1,2%;6. Microbiological agar-agar - 1.2%;

7. Вода дистиллированная - до 1 литра.7. Distilled water - up to 1 liter.

Устанавливают pН 7,2±0,2 при помощи 20% водного раствора гидроокиси натрия и 12% водного раствора соляной кислоты.The pH is adjusted to 7.2±0.2 using a 20% aqueous solution of sodium hydroxide and a 12% aqueous solution of hydrochloric acid.

В ходе приготовления и испытания среды используют методические приемы, как в примере 1.During the preparation and testing of the medium, the same methodological techniques are used as in Example 1.

Как видно из таблицы 1, осуществление предлагаемого способа при применении среды указанного состава соответствует требованиям Методических указаний по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями МУ 04-723/3 [9], МУК 4.2.3115-13 «Лабораторная диагностика внебольничных пневмоний [8]» и позволяет выявлять Klebsiella spp.As can be seen from Table 1, the implementation of the proposed method using a medium of the specified composition complies with the requirements of the Methodological Guidelines for the Microbiological Diagnosis of Diseases Caused by Enterobacteria MU 04-723/3 [9], MUK 4.2.3115-13 “Laboratory Diagnostics of Community-Acquired Pneumonia [8]” and allows the detection of Klebsiella spp.

Пример 4Example 4

Готовят питательную среду следующего состава: в чистую 2-литровую колбу вносят:Prepare a nutrient medium of the following composition: add the following to a clean 2-liter flask:

1. Пептон ферментативный для бактериологических целей - 1,2%;1. Enzymatic peptone for bacteriological purposes - 1.2%;

2. L-Арабиноза ЧДА или ХЧ - 0,5%;2. L-Arabinose, analytical grade or reagent grade - 0.5%;

3. Мочевина ЧДА или ХЧ - 0,5%;3. Urea of analytical grade or chemical grade - 0.5%;

4. Железо (II) сернокислое семиводное - 0,03%;4. Iron (II) sulfate heptahydrate - 0.03%;

5. Крезоловый красный водорастворимый ЧДА или ХЧ - 0,002%;5. Cresol red water-soluble analytical grade or chemically pure - 0.002%;

6. Агар-агар микробиологический - 1,3%;6. Microbiological agar-agar - 1.3%;

7. Вода дистиллированная - до 1 литра.7. Distilled water - up to 1 liter.

Устанавливают pН 7,2±0,2 при помощи 20% водного раствора гидроокиси натрия и 12% водного раствора соляной кислоты.The pH is adjusted to 7.2±0.2 using a 20% aqueous solution of sodium hydroxide and a 12% aqueous solution of hydrochloric acid.

В ходе приготовления и испытания среды используют методические приемы, как в примере 1.During the preparation and testing of the medium, the same methodological techniques are used as in Example 1.

Как видно из таблицы 1, осуществление предлагаемого способа при применении среды указанного состава соответствует требованиям Методических указаний по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями МУ 04-723/3 [9], МУК 4.2.3115-13 «Лабораторная диагностика внебольничных пневмоний [8]» и позволяет выявлять Klebsiella spp.As can be seen from Table 1, the implementation of the proposed method using a medium of the specified composition complies with the requirements of the Methodological Guidelines for the Microbiological Diagnosis of Diseases Caused by Enterobacteria MU 04-723/3 [9], MUK 4.2.3115-13 “Laboratory Diagnostics of Community-Acquired Pneumonia [8]” and allows the detection of Klebsiella spp.

Пример 5Example 5

Готовят питательную среду следующего состава: в чистую 2-литровую колбу вносят:Prepare a nutrient medium of the following composition: add the following to a clean 2-liter flask:

1. Пептон ферментативный для бактериологических целей - 1,3%;1. Enzymatic peptone for bacteriological purposes - 1.3%;

2. L-Арабиноза ЧДА или ХЧ - 0,7%;2. L-Arabinose, analytical grade or reagent grade - 0.7%;

3. Мочевина ЧДА или ХЧ - 0,7%;3. Urea, analytical grade or chemically pure - 0.7%;

4. Железо (II) сернокислое семиводное - 0,05%;4. Iron (II) sulfate heptahydrate - 0.05%;

5. Крезоловый красный водорастворимый ЧДА или ХЧ - 0,003%;5. Cresol red water-soluble analytical grade or chemically pure - 0.003%;

6. Агар-агар микробиологический - 1,4%;6. Microbiological agar-agar - 1.4%;

7. Вода дистиллированная - до 1 литра.7. Distilled water - up to 1 liter.

Устанавливают рН 7,2±0,2 при помощи 20% водного раствора гидроокиси натрия и 12% водного раствора соляной кислоты.The pH is adjusted to 7.2±0.2 using a 20% aqueous solution of sodium hydroxide and a 12% aqueous solution of hydrochloric acid.

В ходе приготовления и испытания среды используют методические приемы, как в примере 1.During the preparation and testing of the medium, the same methodological techniques are used as in Example 1.

Как видно из таблицы 1, осуществление предлагаемого способа при применении среды указанного состава не соответствует требованиям Методических указаний по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями МУ 04-723/3 [9], МУК 4.2.3115-13 «Лабораторная диагностика внебольничных пневмоний» [8]. Происходит снижение значений диаметра колоний и показателя прорастания (из посевной дозы 100 м.к.) элективно-дифференциальной питательной среды в отношении использованных для контроля штаммов К. pneumoniae, К. oxytoca, К. aerogenes.As can be seen from Table 1, the implementation of the proposed method using the medium of the specified composition does not meet the requirements of the Methodological Guidelines for the Microbiological Diagnostics of Diseases Caused by Enterobacteria MU 04-723/3 [9], MUK 4.2.3115-13 "Laboratory Diagnostics of Community-Acquired Pneumonia" [8]. There is a decrease in the values of the colony diameter and the germination rate (from a seed dose of 100 m.c.) of the elective differential nutrient medium in relation to the strains of K. pneumoniae, K. oxytoca, K. aerogenes used for control.

Пример 6Example 6

Готовят питательную среду следующего состава: в чистую 2-литровую колбу вносят:Prepare a nutrient medium of the following composition: add the following to a clean 2-liter flask:

1. Пептон ферментативный для бактериологических целей - 1,3%;1. Enzymatic peptone for bacteriological purposes - 1.3%;

2. L-Арабиноза ЧДА или ХЧ - 0,7%;2. L-Arabinose, analytical grade or reagent grade - 0.7%;

3. Мочевина ЧДА или ХЧ - 0,7%;3. Urea, analytical grade or chemically pure - 0.7%;

4. Железо (II) сернокислое семиводное - 0,05%;4. Iron (II) sulfate heptahydrate - 0.05%;

5. Крезоловый красный водорастворимый ЧДА или ХЧ - 0,003%;5. Cresol red water-soluble analytical grade or chemically pure - 0.003%;

6. Агар-агар микробиологический - 1,4%;6. Microbiological agar-agar - 1.4%;

7. Вода дистиллированная - до 1 литра.7. Distilled water - up to 1 liter.

Устанавливают рН 7,2±0,2 при помощи 20% водного раствора гидроокиси натрия и 12% водного раствора соляной кислоты.The pH is adjusted to 7.2±0.2 using a 20% aqueous solution of sodium hydroxide and a 12% aqueous solution of hydrochloric acid.

В ходе приготовления и испытания среды используют методические приемы, как в примере 1.During the preparation and testing of the medium, the same methodological techniques are used as in Example 1.

Как видно из таблицы 1, осуществление предлагаемого способа при применении среды указанного состава не соответствует требованиям Методических указаний по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями МУ 04-723/3 [9], МУК 4.2.3115-13 «Лабораторная диагностика внебольничных пневмоний» [8]. Происходит снижение значений диаметра колоний и показателя прорастания (из посевной дозы 100 м.к.) элективно-дифференциальной питательной среды в отношении использованных для контроля штаммов К. pneumoniae, К. oxytoca, К. aerogenes за счет возрастания содержания ингибитора - железа (II) сернокислого семиводного и повышения плотности агарового геля.As can be seen from Table 1, the implementation of the proposed method using the medium of the specified composition does not meet the requirements of the Methodological Guidelines for Microbiological Diagnostics of Diseases Caused by Enterobacteria MU 04-723/3 [9], MUK 4.2.3115-13 "Laboratory Diagnostics of Community-Acquired Pneumonia" [8]. There is a decrease in the values of the colony diameter and the germination index (from a seed dose of 100 m.c.) of the elective-differential nutrient medium in relation to the strains of K. pneumoniae, K. oxytoca, K. aerogenes used for control due to an increase in the content of the inhibitor - iron (II) sulfate heptahydrate and an increase in the density of the agar gel.

Таким образом, приведенные данные позволяют сделать вывод, что осуществление предлагаемого способа выделения Klebsiella spp. с применением сред, составленных по примерам №1, №2, №5 и №6 не удовлетворяет требованиямThus, the presented data allow us to conclude that the implementation of the proposed method for isolating Klebsiella spp. using media prepared according to examples No. 1, No. 2, No. 5 and No. 6 does not meet the requirements

Осуществление указанного выше способа удовлетворяет требованиям МУ 04-723/3, МУК 4.2.3115-13 с применением сред, состав которых приведен в примерах №3 и №4. Использование среды, указанной в примере №3, является экономически более выгодным.The implementation of the above method satisfies the requirements of MU 04-723/3, MUK 4.2.3115-13 using the media, the composition of which is given in examples No. 3 and No. 4. The use of the medium specified in example No. 3 is more economically advantageous.

Источники информацииSources of information

1. Анганова, Н.В. Характеристика условно-патогенных возбудителей острых кишечных инфекций / Е.В. Анганова, Н.Н. Чемезова, Н.В. Ермолаева, Л.А. Распопина // Журнал инфекционной патологии. 2010. - №19. - С. 12-23.1. Anganova, N.V. Characteristics of opportunistic pathogens causing acute intestinal infections / E.V. Anganova, N.N. Chemezova, N.V. Ermolaeva, L.A. Raspopina // Journal of Infectious Pathology. 2010. - No. 19. - P. 12-23.

2. Бардашева, А.В. Генетическая характеристика клинических изолятов клебсиелл, циркулирующих в Новосибирске / А.В. Бардашева, Н.В. Фоменко, Т.В. Калимбетова, И.В. Бабкин, С.О. Кретьен, Е.В. Жираковская, Н.В. Тикунова, В.В. Морозова // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2021. Т.25. - №2. - С. 234-245.2. Bardasheva, A.V. Genetic characteristics of clinical isolates of Klebsiella circulating in Novosibirsk / A.V. Bardasheva, N.V. Fomenko, T.V. Kalimbetova, I.V. Babkin, S.O. Chretien, E.V. Zhirakovskaya, N.V. Tikunova, V.V. Morozova // Vavilov Journal of Genetics and Breeding. 2021. Vol. 25. - No. 2. - P. 234-245.

3. Ибрагимов Ф.Х., Журавлева Л.А., Бочановский В.А., Резаев А.А. Селективная питательная среда для выделения клебсиелл. Патент РФ № RU 2265056. Опубл. 27.11.2005. Бюл. №33.3. Ibragimov F.Kh., Zhuravleva L.A., Bochanovsky V.A., Rezaev A.A. Selective nutrient medium for the isolation of Klebsiella. RF Patent No. RU 2265056. Publ. 27.11.2005. Bull. No. 33.

4. Калина, Г.П. Среды узконаправленного действия для обнаружения клебсиелл / Г.П. Калина // ЖМЭИ. 1980. - №6. - С. 28-32.4. Kalina, G.P. Narrowly targeted action media for detection of Klebsiella / G.P. Kalina // ZhMEI. 1980. - No. 6. - P. 28-32.

5. Меджидов, М.М. Региональные проблемы антибиотикорезистентности микроорганизмов // Антибиотикорезистентность и антимикробная химиотерапия: Материалы 2-ой Всероссийской практической конференции. - Махачкала, 2008. С. 5-7.5. Medzhidov, M.M. Regional problems of antibiotic resistance of microorganisms // Antibiotic resistance and antimicrobial chemotherapy: Proceedings of the 2nd All-Russian practical conference. - Makhachkala, 2008. P. 5-7.

6. Меджидов М.М., Степанова Э.Д., Юнусова Р.Ю. Хромогенная питательная среда для выделения и идентификации клебсиелл. Патент РФ № RU 2416635. Опубл. 20.04.2011. Бюл. №11.6. Medzhidov M.M., Stepanova E.D., Yunusova R.Yu. Chromogenic nutrient medium for the isolation and identification of Klebsiella. RF Patent No. RU 2416635. Publ. 04/20/2011. Bull. No. 11.

7. Методические указания: Методы контроля бактериологических питательных сред: МУК 4.2.2316 - 08 (утверждены Главным санитарным врачом Российской Федерации 18.01.2008) М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2008. - 52 с.7. Guidelines: Methods of control of bacteriological nutrient media: MUK 4.2.2316 - 08 (approved by the Chief Sanitary Doctor of the Russian Federation on 18.01.2008) Moscow: Federal Center for Hygiene and Epidemiology of Rospotrebnadzor, 2008. - 52 p.

8. Методические указания: 4.2. Методы контроля. Биологические и микробиологические факторы. Лабораторная диагностика внебольничных пневмоний: МУК 4.2.3115-13 (утверждены Главным санитарным врачом Российской федерации 21.10.2013). М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2014. - 39 с.8. Guidelines: 4.2. Control methods. Biological and microbiological factors. Laboratory diagnostics of community-acquired pneumonia: MUK 4.2.3115-13 (approved by the Chief Sanitary Doctor of the Russian Federation on 21.10.2013). Moscow: Federal Center for Hygiene and Epidemiology of Rospotrebnadzor, 2014. - 39 p.

9. Методические указания по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями: МУ 04-723/3 (утверждены зам. министра здравоохранения СССР 17.12.1984). М.: МЗ СССР, 1985. - 32 с.9. Guidelines for microbiological diagnostics of diseases caused by enterobacteria: MU 04-723/3 (approved by the Deputy Minister of Health of the USSR on 17.12.1984). Moscow: USSR Ministry of Health, 1985. - 32 p.

10. Пай, Г.В. сравнение патогенного потенциала изолятов Klebsiella pneumonia, выделенных из кишечной микробиоты человека, из поверхностных сточных вод //Г.В. Пай, Д.В. Ракитина, Н.Н. Пенькова, СМ. Юдин, А.В. Загайнова // Гигиена и санитария. 2020. Т. 99. - №19. - С. 1360-1364.10. Pai, G.V. Comparison of the pathogenic potential of Klebsiella pneumonia isolates isolated from human intestinal microbiota from surface wastewater // G.V. Pai, D.V. Rakitina, N.N. Penkova, S.M. Yudin, A.V. Zagaynova // Hygiene and Sanitation. 2020. Vol. 99. - No. 19. - P. 1360-1364.

11. Рахманин, Ю.А. Распространение бактерий рода Klebsiella в водных объектах и их значение в возникновении водообусловленных острых кишечных инфекций / Ю.А. Рахманин, Л.В. Иванова, Т.З. Артемова, Е.К. Гипп, А.В. Загайнова, Т.Н. Максимкина, А.В. Красняк, П.В. Журавлев, В.В. Алешня, О.В. Панасовец // Гигиена и санитария. 2016. Т.95.- №4.- С. 397-406.11. Rakhmanin, Yu. A. Spread of Klebsiella bacteria in water bodies and their importance in the occurrence of water-related acute intestinal infections / Yu. A. Rakhmanin, L. V. Ivanova, T. Z. Artemova, E. K. Gipp, A. V. Zagaynova, T. N. Maksimkina, A. V. Krasnyak, P. V. Zhuravlev, V. V. Aleshnya, O. V. Panasovets // Hygiene and Sanitation. 2016. Vol. 95.- No. 4.- P. 397-406.

12. Сиволодский Е.П. Способ выделения и идентификации бактерий рода Klebsiella. Патент РФ № RU 2535881. Опубл. 20.12.2014. Бюл. №35.12. Sivolodskiy E.P. Method for isolation and identification of bacteria of the genus Klebsiella. Russian Federation Patent No. RU 2535881. Published 20.12.2014. Bulletin No. 35.

13. Шепелин А.П., Марчихина И.И., Полосенко О.В., Шолохова Л.П. Дифференциально-элективная питательная среда для выделения клебсиелл. Патент РФ № RU 2704854. Опубл. 31.10.2019. Бюл. №31.13. Shepelin A.P., Marchikhina I.I., Polosenko O.V., Sholokhova L.P. Differential-selective nutrient medium for the isolation of Klebsiella. Russian Federation Patent No. RU 2704854. Published 10/31/2019. Bulletin No. 31.

14. Choby, J.E. Hypervirulent Klebsiella pneumoniae - clinical and molecular perspectives (Review) / J.E. Choby, J. Howard-Anderson, D.S. Weiss // J. Intern. Med. - 2020, № 287. - P. 283-300.14. Choby, J.E. Hypervirulent Klebsiella pneumoniae - clinical and molecular perspectives (Review) / J.E. Choby, J. Howard-Anderson, D.S. Weiss // J. Intern. Med. - 2020, No. 287. - P. 283-300.

15. Lightfoot, N. Bacteria of potential health concern. In: World Health Organization (WHO). Heterotrophic Plate Counts and Drinking Water Safety. London; 2003:61-79.15. Lightfoot, N. Bacteria of potential health concern. In: World Health Organization (WHO). Heterotrophic Plate Counts and Drinking Water Safety. London; 2003:61-79.

Claims (9)

Элективно-дифференциальная питательная среда для выделения Klebsiella spp., содержащая в качестве азотистой питательной основы пептон сухой ферментативный для бактериологических целей, мочевину, агар-агар микробиологический, воду дистиллированную, отличающаяся тем, что в качестве источника углерода она дополнительно содержит L-Арабинозу, железо (II) сернокислое семиводное - в качестве ингибитора роста посторонней микрофлоры, крезоловый красный водорастворимый - в качестве индикатора изменения рН среды при следующем содержании компонентов:An elective-differential nutrient medium for isolating Klebsiella spp., containing dry enzymatic peptone for bacteriological purposes, urea, microbiological agar, distilled water as a nitrogenous nutrient base, characterized in that it additionally contains L-Arabinose as a carbon source, iron (II) sulfate heptahydrate as an inhibitor of the growth of extraneous microflora, water-soluble cresol red as an indicator of changes in the pH of the medium with the following content of components: Пептон сухой ферментативный для бактериологических целей - 0,9-1,4%;Dry enzymatic peptone for bacteriological purposes - 0.9-1.4%; L-Арабиноза - 0,2-1,0%;L-Arabinose - 0.2-1.0%; Железо (II) сернокислое семиводное - 0,01-0,06%;Iron (II) sulfate heptahydrate - 0.01-0.06%; Мочевина - 0,2-1,0%;Urea - 0.2-1.0%; Крезоловый красный водорастворимый - 0,00005-0,004%;Cresol red water-soluble - 0.00005-0.004%; Агар-агар микробиологический - 1,0-1,5%;Microbiological agar-agar - 1.0-1.5%; Вода дистиллированная - до 100%,Distilled water - up to 100%, pН готовой среды 7,2±0,2.The pH of the prepared medium is 7.2±0.2.
RU2024108049A 2024-03-26 Elective-differential nutrient medium for klebsiella species recovery RU2827840C1 (en)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2827840C1 true RU2827840C1 (en) 2024-10-02

Family

ID=

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2265056C2 (en) * 2003-03-27 2005-11-27 Ибрагимов Фарис Харисович Selective nutrient medium for isolation of klebsiella

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2265056C2 (en) * 2003-03-27 2005-11-27 Ибрагимов Фарис Харисович Selective nutrient medium for isolation of klebsiella

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
CHOBY, J.E. Hypervirulent Klebsiella pneumoniae - clinical and molecular perspectives (Review), J. Intern. Med, 2020, N 287, p. 283-300. *
КАЛИНА, Г.П. Среды узконаправленного действия для обнаружения клебсиелл, ЖМЭИ. 1980, N 6, c. 28-32. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN103282513B (en) For detecting goods and the method for target microorganism
US5786167A (en) Method and culture medium for identification of salmonellae
US5726031A (en) Test media and quantitative method for identification and differentiation of biological materials in a test sample
JPH09512438A (en) Microbiological medium
CN110129406A (en) A kind of pseudomonas aeruginosa chromogenic culture medium and the method quickly detected using it
US4279995A (en) Selective salmonella carbohydrate and medium constructed therefrom
RU2342435C2 (en) Selective culture medium for separatng and detecting types of streptococcus
MX2014007888A (en) Method of detecting a salmonella microorganism.
CN101970682A (en) Method for detecting and/or identifying clostridium difficile
Torzewska et al. Influence of various uropathogens on crystallization of urine mineral components caused by Proteus mirabilis
RU2827840C1 (en) Elective-differential nutrient medium for klebsiella species recovery
EP1300471A1 (en) Nutritional mixture and method for early identification and count of gram-negative organisms
US9404141B2 (en) Method for detecting the presence or absence of a target microbe in a test sample
AL-Rubaye et al. Isolation and Diagnosis of Multi Drug Resistance Pseudomonas Aeruginosa from Wound and Burnpatients in Baghdad City
Arroyo et al. Selective action of inhibitors used in different culture media on the competitive microflora of Salmonella
Magalhães et al. Traditional methods of analysis for Listeria monocytogenes
CN106086159B (en) A kind of zymolyte culture medium that can detect two kinds of fecal pollution indicator bacterias simultaneously and its application
RU2416635C2 (en) Chromogenic culture medium for detecting and identifying klebsiella
Arshad et al. Manipulation of different media and methods for cost-effective characterization of Escherichia coli strains collected from different habitats
Aziz Isolation and Identification of MDR Solmonella Typhi from Different Food Products in District Peshawar, KPK, Pakistan
RU2827845C1 (en) Elective nutrient medium for pseudomonas aeruginosa recovery
RU2778997C1 (en) Nutrient medium for differentiation of parahemolytic vibrios
Zhumakayeva et al. Microbial composition of livestock buildings is the basis for the creation of a biological preparation to stabilize the microbial background
RU2715329C1 (en) Nutrient medium for separation and identification of non-fermenting bacteria
RU2709136C1 (en) Nutrient medium for pseudomonas aeruginosa release