JP7215774B2 - 多機能標的免疫小分子抗癌薬のクエン酸ベスタゾミブおよびその製造方法と使用 - Google Patents
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Description
本発明は、薬物化学の技術分野に関し、具体的に、多機能標的免疫小分子抗癌薬のクエン酸ベスタゾミブ(Bestazomib)およびその製造方法と使用に関する。
アミノペプチダーゼN(APN/CD13)は、II型膜貫通亜鉛イオン依存性メタロプロテアーゼで、M1ファミリーのグルジンシン(Gluzincins)サブファミリーに属し、ホモ二量体の糖タンパク質の様態で細胞膜と結合する(Nucleic Acids Res.,1999,27(1):325-331)。APNは、多くの組織の細胞表面で発現され、たとえば中枢神経系シナプス細胞、滑液線維芽細胞、活性化内皮細胞、肝細胞、腸粘膜上皮細胞、胎盤、骨髄前駆細胞、単核細胞、破骨細胞など、特に腎臓や腸刷子縁細胞に大量に存在する(Haema.,2003,4(6):453-461)。また、正常細胞と比べ、APNは多くの腫瘍細胞、たとえば多発性骨髄腫、肝臓癌、メラノーマ、卵巣癌、前立腺癌、結腸癌、膵臓腺癌、乳癌、肺癌などの細胞の表面で高発現される。
上記既存技術の不足に対し、本発明の目的は、多機能標的免疫小分子抗癌薬のクエン酸ベスタゾミブ(Bestazomib Citrate)を提供することである。それはAPN/CD13にも、腫瘍のプロテアソームにも抑制活性を有する。
本発明の第一の側面では、式Iで表される化合物、あるいはその光学異性体、ジアステレオマー、ラセミ体または三者の混合物、あるいはその薬学的に許容される塩、あるいはその溶媒和物を提供する。
(2S,3R)-3-アミノ-2-ヒドロキシ-4-フェニル酪酸(AHPA)を原料とし、Cbzで1級アミン基を保護して中間体2を得る工程、中間体2を無水DCMにおいてEDCIとHOBtの触媒下で(R)-1-アミノ-3-メチルブチルボロン酸ピナンジオールエステルトリフルオロ酢酸塩と反応させて中間体3を得る工程、中間体3にイソブチルボロン酸の作用下で保護基を脱離させて中間体4を得る工程、中間体4をPd/Cおよび水素ガスにおいて脱Cbz保護させて中間体5を生成し、最後にクエン酸と作用させて式Iで表される化合物を得る工程を含む。
本発明の第五の側面では、活性成分が式Iで表される化合物、あるいはその光学異性体、ジアステレオマー、ラセミ体または三者の混合物、あるいはその薬学的に許容される塩、あるいはその溶媒和物である薬物組成物を提供する。
好ましくは、前記薬物組成物は経口投与製剤または注射製剤である。
本発明の第六の側面では、腫瘍疾患を治療する方法であって、腫瘍疾患のリスクに面するか、腫瘍疾患と診断された被験者に治療有効量の式Iで表される化合物またはその薬学的に許容される塩を投与する工程を含む方法を提供する。
本発明の化合物は、幅広い投与量の範囲内で有効である。実際の本発明の式Iで表される化合物の投与量は医者によって関連する状況に基づいて決められる。これらの状況は、被験者の身体状態、投与経路、年齢、体重、薬物に対する個体の反応、症状の重篤度などを含む。
(1)本発明の多機能標的免疫小分子抗癌薬のクエン酸ベスタゾミブはAPN/CD13にも、腫瘍のプロテアソームにも抑制活性を有し、悪性腫瘍の治療薬の開発に有用である。
もちろん、以下の詳細な説明はいずれも例示的なもので、本願にさらなる説明を提供するためのものである。別途に明示しない限り、本明細書で用いられるすべての技術・科学用語はいずれも本願が属する技術分野の当業者によって通常理解される意味と同様である。
「薬学的に許容される塩」とは、式Iの化合物の治療効果がありながら、毒性がない塩の形態である。任意の塩基性基(たとえばアミノ基)でカチオン塩になってもよい。本分野で既知のこのような塩の多くは、任意の塩基性基(たとえばアミノ基)に形成したアニオン塩である。これらの塩の多くは本分野で既知のものである。また、相応する酸で塩基性の形態の(I)を処理することによって簡単にアニオン塩を得ることができるが、このような酸は、無機酸、たとえば塩酸、硫酸、硝酸、リン酸など、あるいは有機酸、たとえば酢酸、トリフルオロ酢酸、プロパン酸、グリコール酸、2-ヒドロキシプロパン酸、2-オキソプロパン酸、シュウ酸、マロン酸、コハク酸、マレイン酸、フマル酸、リンゴ酸、酒石酸、2-ヒドロキシ-1,2,3-トリカルバリル酸、メタンスルホン酸、エタンスルホン酸、トルエンスルホン酸、4-メチルベンゼンスルホン酸、シクロヘキシルスルフィン酸、2-ヒドロキシ安息香酸、4-アミノ-2-ヒドロキシ安息香酸などを含む。これらの塩は、当業者に熟知のもので、当業者は本分野の知識で提供される任意の塩を製造することができる。また、当業者は溶解度、安定性、製剤の難易度などの要素からある塩を取るが、もう一つの塩を捨てることができる。これらの測定および最適化は当業者の経験の範囲内である。
光学的に単一の(2S,3R)-3-アミノ-2-ヒドロキシ-4-フェニル酪酸(AHPA)を原料とし、Cbzで1級アミン基を保護して中間体2を得る。無水DCMにおいてEDCIとHOBtの触媒下で(R)-1-アミノ-3-メチルブチルボロン酸ピナンジオールエステルトリフルオロ酢酸塩と反応させて中間体3を得る。中間体3にイソブチルボロン酸の作用下で保護基を脱離させて重要中間体4を得る。中間体4をPd/Cおよび水素ガスにおいて脱Cbz保護させて中間体5を生成し、最後にクエン酸と作用させて式Iで表される化合物6(Bestazomib Citrate)を得る。反応式は、以下の通りである。
本発明の一部の誘導体は遊離の形態または塩の形態で存在してもよい。当業者には、多くの化合物の種類の薬学的に許容される塩およびその製造方法が既知である。薬学的に許容される塩は、通常の無毒性の塩を含むが、このような化合物塩基と無機酸または有機酸で形成する4級アンモニウム塩を含む。
典型的な固体担体は、乳糖、石膏粉、ショ糖、タルク、ゲル、寒天、ペクチン、アラビアゴム、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸などを含む。固体担体は、1つまたは複数の同時に矯味剤、潤滑剤、相溶剤、懸濁剤、フィラー、流動化剤、圧縮助剤、バインダーまたは錠剤-崩壊剤にもなれる物質を含んでもよく、さらにコーティング材料を含んでもよい。粉末において、担体は精細に粉砕された固体で、精細に粉砕された活性成分と混合される。錠剤において、活性成分は必要な圧縮性質を有する担体と適切な比率で混合され、必要な形状と大きさにように圧縮される。粉末および錠剤は好ましくは99%以下の活性成分を含む。適切な固体担体は、たとえば、リン酸カルシウム、ステアリン酸マグネシウム、タルク、糖、乳糖、デキストリン、デンプン、ゲル、セルロース、メチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ポビドン、低融点ワックスやイオン交換樹脂を含む。
本発明の実施例で使用された、具体的に説明されていない試験材料は本分野の通常の試験材料で、いずれも市販品として購入することができる。
実施例1:(2S,3R)-3-((ベンジルオキシカルボニル)アミノ)-2-ヒドロキシ-4-フェニル酪酸(2)
AHPA(1,1.95 g,10.0 mmol)を100 mLのテトラヒドロフランと1mol/L水酸化ナトリウムの混合溶液に溶解させ、氷浴の条件でベンジルオキシカルボニルクロリド(1.88g,11.0 mmol)を滴下した。室温で6時間反応させた後、蒸発で反応液におけるテトラヒドロフランを除去し、水相を1mol/L塩酸でpH=1になるように調整し、酢酸エチルで3回抽出し、有機相を合併し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、蒸発で溶媒を除去して白色の固体2を得た(2.11g,64%)。
化合物2 (3.29 g, 10.0 mmol)を50 mLの無水DCMに溶解させ、氷浴の条件でHOBt (1.49 g, 11 mmol)およびEDCI(2.10 g, 11.0 mmol)を入れ、0.5 h後、(R)-1-アミノ-3-メチルブチルボロン酸ピナンジオールエステルトリフルオロ酢酸塩(4.07 g, 11.0 mmol)、1.5 mLのトリエチルアミンを入れた。氷浴を撤去し、室温で5h反応させた。反応完了後、有機層をそれぞれ水、1Mクエン酸、飽和炭酸水素ナトリウム、飽和塩化ナトリウムで洗浄した。無水硫酸マグネシウムで乾燥し、ろ過し、蒸発で溶媒を除去し、白色の固体3を得た(3.05g,53%)。1H-NMR(400 MHz DMSO-d6): 0.82 (s, 3H), 0.88-0.90 (m, 6H), 1.24-1.27 (m, 3H), 1.37 (s, 3H), 1.40-1.50 (m, 2H), 1.60-1.65 (m, 1H), 1.72 (s, 1H), 1.83 (d, J=14.88 Hz, 1H), 1.89 (s, 1H), 1.99-2.01 (m, 1H), 2.16-2.20 (m, 1H), 2.28-2.32 (m, 1H), 2.99-3.05 (m, 2H), 3.26-3.27 (m, 1H), 4.05-4.07 (m, 1H), 4.17 (s, 1H), 4.29 (d, J=14.88 Hz, 1H), 4.98-5.09 (m, 3H), 5.45 (d, J=8.28 Hz, 1H), 6.89 (s, 1H), 7.17-7.36 (m, 10H). ESI-MS m/z:577.34 (M+H)+。
化合物3(2.88 g, 5.0mmol)を50 mLの無水メタノールとn-ヘキサンの1:1の混合溶媒に溶解させ、そしてそれにイソブチルボロン酸(1.27 g, 12.5 mmol)を入れた。氷浴の条件で、1 mol/Lの塩酸溶液を入れて室温で撹拌を6h続けた。静置して分液させた後、下層に2 mol/Lの水酸化ナトリウム溶液を入れ、ジクロロメタンで3回抽出した。水相をさらに1N塩酸でpH=5になるように調整し、DCMで3回抽出し、DCM相を合併し、飽和食塩水で洗浄し、無水硫酸マグネシウムで乾燥し、蒸発で溶媒を除去して白色の固体4を得た(0.77g,35%)。
化合物4(1.10 g, 2.5 mmol)を50 mLの無水メタノールに溶解させ、10%パラジウム炭素を0.1g入れ、水素ガスの雰囲気において室温で6h反応させ、ろ過後、蒸発で溶媒を除去して白色の固体5を得た(1.26g,42%)。
化合物5(0.62 g, 2.0 mmol)を20 mLの酢酸エチルに溶解させ、65℃の油浴においてクエン酸(0.38 g, 2.0 mmol)を入れた。0.5h反応させた後、室温に冷却して続いて2 h撹拌した。蒸発で溶媒を除去して粗製品を得たが、酢酸エチルで再結晶させて白色の固体6を得た(0.36g,40%)。1H-NMR(400 MHz DMSO-d6): 0.77-0.87 (m, 6H), 1.18-1.30 (m, 2H), 1.65-1.75 (m, 1H), 2.20-2.36 (m, 1H), 2.56-2.84 (m, 4H), 2.96-3.06 (m, 1H), 3.18 (s, 1H), 3.49-3.71 (m, 1H), 3.86-3.96 (m, 1H), 7.22-7.36 (m, 5H), 7.60-7.97 (m, 3H), 11.93 (s, 2H). ESI-MS m/z:465.20 (M+H)+;つまり、目的化合物6(Bestazomib Cirtate)であった。
アミノペプチダーゼNはその商品化された基質のL-ロイシル-p-ニトロアニリン(Sigma社から購入)と相互作用すると、405nmに吸収があるp-ニトロアニリンが生成し、そしてp-ニトロアニリンの濃度が酵素活性の大きさと正関連する。405nmにおいて吸収度を測定し、阻害薬群および対照群の吸収度から抑制率を計算し、そしてIC50値を算出した。実験結果は表1に示す。
20Sプロテアソーム検出キット(Calbiochems, EMD Millipore Co., USA)によって体外プロテアソーム活性試験を行った(Clinical Cancer Research,2011,17:5311-5321)。プロテアソームはその基質と相互作用すると、蛍光物質である7-アミノ-4-メチルクマリン(7-AMC)が生成し、そして7-AMCの濃度がプロテアソーム活性の大きさと正関連する。380/460nmにおいて蛍光強度を測定し、阻害薬群および対照群の吸収度から抑制率を計算し、そしてIC50値を算出した。実験結果は表1に示す。
目的化合物の体外における細胞増殖に対する抑制活性試験はMTT法を使用した。ヒト白血病K562細胞株、ヒト骨髄腫U266細胞株、ヒト肺癌A549細胞、ヒト前立腺癌PC-3 細胞株、ヒトリンパ腫U937細胞株およびヒト肝臓癌PLC/PRF/5細胞株、ヒト胚胎腎臓細胞HEK293、ヒト正常肝細胞HL7702を取り、いずれも通常の培養を使用した。実験時、いずれも対数期の細胞を使用した。上記細胞の細胞懸濁液を取って倒立顕微鏡において細胞数を計数し、培地を入れて細胞数が1×105/mLになるように調整した。96ウェル細胞培養プレートで細胞接種および薬物実験を行い、周縁のウェルを使用せず(無菌PBSを充填)、ブランク対照群、陰性対照群、陽性対照群および薬物実験群を設け、ここで、ブランク対照群では、細胞培養液のみを150μL/ウェル入れ、陰性対照群では、細胞懸濁液を100μL/ウェル接種して細胞培養液を50μL/ウェル入れ、陽性対照群では、細胞懸濁液を100μL/ウェル接種して陽性対照薬溶液を50μL/ウェル入れ、薬物実験群では、細胞懸濁液を100μL/ウェル接種して被験化合物溶液を50μL/ウェル入れ、陽性対照群および薬物実験群はそれぞれ5つの異なる薬物最終濃度:0.01、0.1、1、10、100μmol・L-1を設け、各薬物濃度に3つの平行重複ウェルを設けた。薬物添加が終了した後、96ウェル細胞培養プレートを37℃、5% CO2および飽和湿度の条件で48h培養し、各ウェルに10 μLの0.5%のMTT染色液を入れ、続いて4 hインキュベートした後、2500 rpmで30 min遠心し、さらにウェルにおける培地を捨て、各ウェルに100 μLのDMSOを入れ、シェーカーにおいて15 min振とうし、ホルマザン結晶が完全に溶解するようにした。マイクロプレートリーダーによって波長570nmにおいて各ウェルのOD値を測定し、細胞生長抑制率は以下の公式で計算された。
1.マウス移植性腫瘍モデルの構築
良好に生長した肝臓癌H22担持マウスを取り、腹水を取り出し、無菌PBS溶液を入れて濃度が2.5×107個/mLになるように希釈し、尾静脈から昆明マウスを200 μL/匹で接種した。体重が高すぎたか、低すぎた昆明マウスを除き、ランダムに分け、投与プランに従って投与を開始した。
H22腫瘍を接種された昆明マウスを、体重を測定した後、ランダムに以下の6群に7匹/群で分けた。(1) 陰性対照:PBS;(2) イキサゾミブ高投与量群:4 mg/kg/4d;(3) イキサゾミブ低投与量群:2 mg/kg/4d;(4)クエン酸ベスタゾミブ低投与量群:2.69 mg/kg/4d;(5)クエン酸ベスタゾミブ中投与量群:3.59 mg/kg/4d;(4)クエン酸ベスタゾミブ高投与量群:4.48 mg/kg/d。クエン酸ベスタゾミブは毎日1回で投与し、5日投与すると2日投与を止め、7日を1サイクルとし、計2サイクルで(投与体積:200 μL/20g/匹/回、投与形態:胃内投与)、陽性対照のイキサゾミブは4日に1回投与し、各サイクルの開始時と終了時に電子天秤でマウスの体重を測定し、平均値を求めた。接種から13日目にマウスを殺処分した。肺癌肺転移抑制率の計算式は、以下の通りである。
各群の肺結節数を図1に、肝臓癌H22の肺転移を抑制する抑制率の試験結果を図2に、各群の動物体重の変化曲線を図3に、各群の肺の器官写真および肺結節を図4に示す。
実施例10:カーボンクリアランステスト
1.実験原理
単核のマクロファージ系は非常に重要な防御システムで、強い異種粒子の貪食クリアランス能を有する。一定の濃度のカーボン粒子がマウスの尾静脈を経て体内に入った後、血液の流れで肝臓、脾臓などに連れられ、これらの器官のマクロファージがこれらのカーボン粒子をクリアランスすることができる。一定の濃度範囲内で、マクロファージのカーボン粒子に対するクリアランス速度がその投与量と指数関数関係にあり、すなわち、貪食速度が血液におけるカーボン粒子の濃度と正比例する。そのため、マウス血液におけるカーボン粒子濃度の対数値を縦座標に、時間を横座標にブロットすると、その傾きKはマクロファージの貪食速度を表すが、これは校正されていない貪食指数である。実際に、その貪食活性はさらにマウスの肝臓、脾臓の重量に関連し、重量が異なると、K値が異なるため、一般的に、校正された貪食指数αで表すが、これは単位重量の組織の貪食活性を反映する。Kおよびαの計算式は、以下の通りである。
材料:昆明マウス(雌、4-5週齢)、インディアンインク、生理食塩水、Na2CO3溶液(0.1% g/v)、UV紫外可視分光光度計。
良好に生長した肝臓癌H22担持マウスを取り、腹水を取り出し、無菌PBS溶液を入れて濃度が2.5×107個/mLになるように希釈し、昆明マウスの腹腔に200 μL/匹で接種した。5日後、ランダムに群分けして投与し、接種当日は1日目で、投与時、動物の体重を記録した。ランダムに体重を測定して以下の6群に10匹/群で分けた。 (1) 陰性対照:PBS;(2) イキサゾミブ高投与量群:4 mg/kg/4d;(3) イキサゾミブ低投与量群:2 mg/kg/4d;(4)クエン酸ベスタゾミブ低投与量群:2.69 mg/kg/4d;(5)クエン酸ベスタゾミブ中投与量群:3.59 mg/kg/4d;(6)クエン酸ベスタゾミブ高投与量群:4.48 mg/kg/d。所定の投与量でマウスに投与し、それぞれ体重を測定して記録した。
対数期にあるB16F10メラノーマ細胞を取り、無菌PBS溶液を入れて濃度が1.5×107個/mLになるように希釈し、C57マウスの皮下に150 μL/匹で接種した。5日後、ランダムに群分けして投与し、接種当日は1日目で、投与時、動物の体重を記録した。ランダムに体重を測定して以下の5群に分けた。 (1) 陰性対照:PBS;(2) イキサゾミブ高投与量群:4 mg/kg/4d;(3) クエン酸ベスタゾミブ低投与量群:4 mg/kg/4d;(4)クエン酸ベスタゾミブ中投与量群:6 mg/kg/4d;(5)クエン酸ベスタゾミブ高投与量群:9 mg/kg/4d。所定の投与量でマウスに投与し、それぞれ体重を測定して記録した。マウスの死亡を観察の終点として連続して観察し、各マウスの死亡時間を記録した。各群のマウスの死亡時間を統計した。
Origin7.5ソフトの一元配置分散分析(One-Way ANOVA)機能によって全体差を算出し、t検定でそれぞれ各投与群とブランク群を両者比較し、そして以下の式で各群の薬物の延命率を計算した。
Claims (11)
- 式Iで表される化合物の製造方法であって、
(2S,3R)-3-アミノ-2-ヒドロキシ-4-フェニル酪酸を原料とし、Cbzで1級アミン基を保護して中間体2を得る工程、中間体2を無水DCMにおいてEDCIとHOBtの触媒下で(R)-1-アミノ-3-メチルブチルボロン酸ピナンジオールエステルトリフルオロ酢酸塩と反応させて中間体3を得る工程、中間体3にイソブチルボロン酸の作用下で保護基を脱離させて中間体4を得る工程、中間体4をPd/Cおよび水素ガスにおいて脱Cbz保護させて中間体5を生成し、最後にクエン酸と作用させて式Iで表される化合物を得る工程を含むことを特徴とし、前記式Iで表される化合物は、
- 多機能標的阻害薬の製造における、請求項1に記載の式Iで表される化合物、あるいはその光学異性体、ジアステレオマー、ラセミ体または光学異性体、ジアステレオマー、ラセミ体の混合物、あるいはその薬学的に許容される塩、あるいはその溶媒和物の使用であって、
前記多機能標的阻害薬はアミノペプチダーゼNにもプロテアソームにも抑制活性を有する使用。 - 腫瘍を予防または治療する薬物の製造における、請求項1に記載の式Iで表される化合物、あるいはその光学異性体、ジアステレオマー、ラセミ体または光学異性体、ジアステレオマー、ラセミ体の混合物、あるいはその薬学的に許容される塩、あるいはその溶媒和物の使用。
- 前記腫瘍は、骨髄腫、白血病および固形腫瘍を含むことを特徴とする請求項6に記載の使用。
- 前記薬物組成物は、さらに、1つまたは複数の薬学的に許容される担体または賦形剤を含むことを特徴とする請求項8に記載の薬物組成物。
- 前記薬物組成物は経口投与製剤または注射製剤であることを特徴とする請求項8または9に記載の薬物組成物。
- 腫瘍疾患を治療する薬物製剤の製造における請求項8または9に記載の薬物組成物の使用。
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