JP6320833B2 - Screening method for whitening ingredients - Google Patents

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Description

本発明は、線維芽細胞を用いることを特徴とする美白成分のスクリーニング方法に関するものである。   The present invention relates to a screening method for whitening components, characterized by using fibroblasts.

一般に、シミ、ソバカス、日焼け等にみられる皮膚の色素沈着は、ホルモンの異常や紫外線の刺激により、皮膚内に存在するメラニン色素生成細胞(メラノサイト)がメラニン色素を過剰に生成し、これが皮膚内に沈着することが原因と考えられている。このような色素沈着を防ぐ方法の一つに、メラニンの過剰な生成を抑制する方法が知られている。そして従来から、メラニンの過剰な生成を抑制する目的で、アルブチン、ハイドロキノン、コウジ酸、トラネキサム酸及びこれらの誘導体等が用いられてきた。   In general, skin pigmentation in spots, freckles, sunburn, etc. is caused by excessive melanin pigment produced by melanin pigment cells (melanocytes) present in the skin due to hormonal abnormalities or stimulation of ultraviolet rays. It is thought to be caused by deposition. As one method for preventing such pigmentation, a method for suppressing excessive production of melanin is known. Conventionally, arbutin, hydroquinone, kojic acid, tranexamic acid, and derivatives thereof have been used for the purpose of suppressing excessive production of melanin.

neuregulin1(NRG1)は、中枢神経系において、神経細胞やグリア細胞の増殖、分化を調節している神経栄養因子であるが、近年、真皮の線維芽細胞において、その発現がみられること、又、メラノサイトに作用してメラニン生成を引き起こすことが分かってきた(非特許文献1及び2)。   neurogulin 1 (NRG1) is a neurotrophic factor that regulates proliferation and differentiation of nerve cells and glial cells in the central nervous system, but its expression is recently seen in dermal fibroblasts, It has been found that it acts on melanocytes to cause melanin production (Non-patent Documents 1 and 2).

美白成分のスクリーニング方法としては、B16マウスメラノーマを用いたメラニン生成抑制試験によるスクリーニング方法(特許文献1)、メラノサイト内でのメラノソーム構造タンパク質gp100を指標とするスクリーニング方法(特許文献2)、アドレノメジュリン結合受容体を介するシグナル伝達系への不活性化作用を指標とするスクリーニング方法(特許文献3)等が既に知られている。しかしながら、これらは全て表皮に存在するケラチノサイトやメラノサイトが指標であった。   As a screening method for whitening components, a screening method based on a melanin production inhibition test using B16 mouse melanoma (Patent Document 1), a screening method using melanosome structural protein gp100 in melanocytes as an index (Patent Document 2), adrenomedullin A screening method (Patent Document 3) and the like using an inactivation effect on a signal transduction system via a binding receptor as an index is already known. However, all of these indicators were keratinocytes and melanocytes present in the epidermis.

最近の研究から、皮膚色が濃いほど真皮中のNRG1の発現が高いことが明らかとなり、表皮以外の因子がメラニン生成に関与していることが分かってきた(非特許文献1及び2)。ところが、今までに、真皮に存在する線維芽細胞から産生される因子を指標とする美白成分のスクリーニング方法は開発されていなかった。   Recent studies have revealed that the darker the skin color, the higher the expression of NRG1 in the dermis and that factors other than the epidermis are involved in melanin production (Non-patent Documents 1 and 2). However, until now, no screening method for a whitening component has been developed that uses a factor produced from fibroblasts present in the dermis as an index.

特開2008−280249JP2008-280249 特開2008−232693JP2008-232693 特開2012−255710JP2012-255710A

J.Cell Sci.,123(Pt18),3102−3111(2010)J. et al. Cell Sci. , 123 (Pt18), 3102-3111 (2010) Pigment Cell.Melanoma Res.,25(4),477−481(2012)Pigment Cell. Melanoma Res. , 25 (4), 477-481 (2012)

そこで、本発明は、優れた美白成分の発見に繋がる新規の技術を確立することを課題とする。特に、ケラチノサイトやメラノサイトを用いる既知の作用機序に基づいた美白作用を利用するだけでは、優れた美白成分を発見することは困難であると考えられる。即ち、本発明は、新規の作用機序に基づいた美白作用を評価し得る方法を確立することを課題とする。   Then, this invention makes it a subject to establish the novel technique which leads to discovery of the outstanding whitening component. In particular, it is considered difficult to find an excellent whitening component only by using a whitening action based on a known mechanism of action using keratinocytes and melanocytes. That is, an object of the present invention is to establish a method capable of evaluating a whitening action based on a novel action mechanism.

本発明者らは、上記課題の解決に向け鋭意検討を行った結果、神経栄養因子NRG1を指標にし、表皮に存在するケラチノサイトやメラノサイトではなく、真皮に存在する線維芽細胞に着目した新規の美白成分のスクリーニング方法を完成するに至った。NRG1は、真皮由来のメラニン生成促進因子であると考えられ、メラノサイトにおけるメラニンの過剰な生成を抑制するには、この真皮由来メラニン生成促進因子の制御も重要である。更に、かかる方法により評価し、選択した成分を含有した組成物が、色素沈着の予防又は改善効果を発揮することを確認した。   As a result of intensive studies aimed at solving the above problems, the present inventors have made a novel whitening using the neurotrophic factor NRG1 as an index and focusing on fibroblasts present in the dermis rather than keratinocytes and melanocytes present in the epidermis. It came to complete the screening method of an ingredient. NRG1 is considered to be a dermal-derived melanin production-promoting factor, and control of this dermis-derived melanin production-promoting factor is also important for suppressing excessive production of melanin in melanocytes. Furthermore, it evaluated by this method and it confirmed that the composition containing the selected component exhibited the prevention or improvement effect of pigmentation.

即ち、本発明は以下の(1)〜(5)から成る。   That is, the present invention comprises the following (1) to (5).

(1)線維芽細胞を用いることを特徴とする美白成分のスクリーニング方法。
(2)線維芽細胞における神経栄養因子の産生量を指標とする(1)記載の方法。
(3)神経栄養因子がneureglin1(NRG1)であることを特徴とする(2)記載の方法。
(4)神経栄養因子の産生抑制効果を指標とする(2)又は(3)記載の方法。
(5)予め酸化ストレスを負荷した線維芽細胞を用いることを特徴とする(1)〜(4)のいずれか一項記載の方法。
(1) A screening method for whitening components, comprising using fibroblasts.
(2) The method according to (1), wherein the production amount of neurotrophic factor in fibroblasts is used as an index.
(3) The method according to (2), wherein the neurotrophic factor is neuroglin1 (NRG1).
(4) The method according to (2) or (3), wherein the production inhibitory effect of neurotrophic factor is used as an index.
(5) The method according to any one of (1) to (4), wherein fibroblasts previously loaded with oxidative stress are used.

本発明によれば、線維芽細胞における神経栄養因子NRG1を指標とすることにより、化粧料や皮膚外用剤等に用いる美白成分の評価又はスクリーニングが可能となる。   According to the present invention, by using the neurotrophic factor NRG1 in fibroblasts as an index, it is possible to evaluate or screen for whitening components used in cosmetics, skin external preparations and the like.

ヒト皮膚線維芽細胞におけるNRG1タンパク質の免疫染色の図である。一つの紡錘形が一つの細胞である。It is a figure of the immuno-staining of NRG1 protein in a human skin fibroblast. One spindle shape is one cell.

本発明における美白成分のスクリーニング方法とは、美白効果のある成分を選抜する方法である。本発明の方法によりスクリーニングされた美白成分は、化粧料又は皮膚外用剤等に配合及び調製することができる。   The whitening component screening method in the present invention is a method for selecting a component having a whitening effect. The whitening component screened by the method of the present invention can be blended and prepared in cosmetics or skin external preparations.

本発明における神経栄養因子とは、神経細胞へ栄養を送り届け、神経の機能維持や成長等の要因となっている因子のことである。代表的なものとして、neuregulin、neurotrophin、brain−derived neurotrophic factor、nerve growth factor、ciliary neurotrophic factor等が挙げられる。好ましくは、neuregulinである。   The neurotrophic factor in the present invention refers to a factor that delivers nutrients to nerve cells and is a factor for maintaining the function and growth of nerves. Typical examples include neurogulin, neurotrophin, brain-derived neurotrophic factor, nave growth factor, and linear neurotrophic factor. Preferably, it is neurogulin.

本発明におけるneureglin(NRG)とは神経細胞の軸索成長因子であり、神経やグリアの増殖・転移・運命決定に重要な役割を果たしている。今までのところ、NRGのサブタイプとしてNRG1、2、3及び4が知られている。最近の研究から、NRG1は神経系だけではなく皮膚の線維芽細胞にも発現しており、皮膚色が濃いほどその発現が高く、NRG1タンパク質をメラノサイトに作用させるとメラニン生成に影響を及ぼすことが報告されている。   In the present invention, neuroglin (NRG) is an axon growth factor for nerve cells, and plays an important role in determining proliferation, metastasis and fate of nerves and glia. So far, NRG 1, 2, 3, and 4 are known as subtypes of NRG. From recent studies, NRG1 is expressed not only in the nervous system but also in the fibroblasts of the skin. The darker the skin color, the higher the expression, and the effect of NRG1 protein on melanocytes can affect melanin production. It has been reported.

本発明における神経栄養因子の産生抑制効果とは、真皮に存在する線維芽細胞にて産生される神経栄養因子NRG1を指標とし、何らかの成分によりその産生を抑制する効果のことである。この目的のために、NRG1を測定する必要がある。この測定に用いられる方法は特に限定されず、何れかの方法を用いることができる。代表的なものとして、リアルタイムRT−PCR法によりNRG1 mRNA発現量の測定を行う方法、ウェスタンブロッティング法によりNRG1タンパク質量の測定を行う方法、ELISA法によりNRG1タンパク質量の測定を行う方法等が挙げられる。好ましくは、リアルタイムRT−PCR法によりNRG1 mRNA発現量の測定を行う方法である。   The production inhibitory effect of the neurotrophic factor in the present invention is an effect of inhibiting the production by some component using the neurotrophic factor NRG1 produced in fibroblasts existing in the dermis as an index. For this purpose, NRG1 needs to be measured. The method used for this measurement is not particularly limited, and any method can be used. Representative examples include a method for measuring NRG1 mRNA expression level by real-time RT-PCR, a method for measuring NRG1 protein level by Western blotting, a method for measuring NRG1 protein level by ELISA, and the like. . Preferably, the NRG1 mRNA expression level is measured by a real-time RT-PCR method.

本発明における酸化ストレスとは、酸化反応により引き起こされる生体にとって有害な作用のことである。細胞を用いた試験においては、紫外線、活性酸素、過酸化脂質等で曝露することにより酸化ストレスを負荷する手法が用いられている。好ましくは、過酸化水素(H)を用いた手法である。 The oxidative stress in the present invention is an action harmful to a living body caused by an oxidative reaction. In a test using cells, a technique of applying oxidative stress by exposure to ultraviolet rays, active oxygen, lipid peroxide, or the like is used. A method using hydrogen peroxide (H 2 O 2 ) is preferable.

次に、本発明を詳細に説明するため、具体的な実施例を挙げて説明する。これらの実施例は効果を具体的に説明するもので、発明の範囲を限定するものではない。実施例中の配合量は重量%である。   Next, in order to describe the present invention in detail, specific examples will be given and described. These examples specifically illustrate the effect and do not limit the scope of the invention. The compounding quantity in an Example is weight%.

スクリーニング対象薬剤として、月下美人抽出物を使用した。月下美人とは、サボテン科クジャクサボテンの原種(Epiphyllum oxypetalum Haw.)及びその近縁種であり、その園芸品種の全草や花の乾燥物等を利用することができる。   Tsukishita Bijin Extract was used as a screening target drug. The beauty of the moon is a genus of cactiaceae peafowl cactus (Epiphyllum oxypetalum Haw.) And related species thereof, and the whole cultivar and dried flowers can be used.

月下美人の製造例として、下記の抽出を行うことができる。   The following extraction can be performed as an example of the production of a moonlight beauty.

製造例1 月下美人抽出物
月下美人の花の乾燥物100gに精製水3Lを加え、95〜100℃で2時間抽出した。濾過した後、濾液を減圧濃縮し、更に凍結乾燥して月下美人抽出物48gを得た。
Production Example 1 Tsukishita Bijin Extract 3 g of purified water was added to 100 g of the dried ginger flower, and extracted at 95-100 ° C. for 2 hours. After filtration, the filtrate was concentrated under reduced pressure and further freeze-dried to obtain 48 g of a moon moon beauty extract.

スクリーニング対象薬剤として用いる月下美人抽出物は、処方例として下記の製剤化を行うことができる。   As a prescription example, the beauty of the moon moon extract used as a screening target drug can be formulated as follows.

処方例1 クリーム
処方 配合量(%)
1.月下美人抽出物(製造例1) 0.1
2.スクワラン 5.5
3.オリーブ油 3.0
4.ステアリン酸 2.0
5.ミツロウ 2.0
6.ミリスチン酸オクチルドデシル 3.5
7.ポリオキシエチレンセチルエーテル(20E.O.) 3.0
8.ベヘニルアルコール 1.5
9.モノステアリン酸グリセリン 2.5
10.香料 0.1
11.パラオキシ安息香酸メチル 0.25
12.1,3‐ブチレングリコール 8.5
13.精製水にて全量を100とする
[製造方法]成分2〜9を加熱溶解して混合し、70℃に保ち油相とする。成分1及び11〜13を加熱溶解して混合し、75℃に保ち水相とする。油相に水相を加えて乳化して、かき混ぜながら冷却し、45℃で成分10を加え、更に30℃まで冷却後、製品とする。
Formulation Example 1 Cream Formulation Amount (%)
1. Moonlight Beauty Extract (Production Example 1) 0.1
2. Squalane 5.5
3. Olive oil 3.0
4). Stearic acid 2.0
5. Beeswax 2.0
6). Octyldodecyl myristate 3.5
7). Polyoxyethylene cetyl ether (20E.O.) 3.0
8). Behenyl alcohol 1.5
9. Glycerol monostearate2.5
10. Fragrance 0.1
11. Methyl paraoxybenzoate 0.25
12.1,3-Butylene glycol 8.5
13. [Manufacturing method] Components 2 to 9 are heated and dissolved and mixed with purified water to a total amount of 100, and kept at 70 ° C to obtain an oil phase. Ingredients 1 and 11 to 13 are heated and dissolved and mixed, and kept at 75 ° C. to obtain an aqueous phase. The aqueous phase is added to the oil phase to emulsify, and the mixture is cooled while stirring. The component 10 is added at 45 ° C., and further cooled to 30 ° C. to obtain a product.

比較例1 従来のクリーム1
処方例1において、月下美人抽出物(製造例1)をシラカバ抽出物(一丸ファルコス)に置き換えたものを従来のクリーム1とした。
Comparative Example 1 Conventional cream 1
In Formulation Example 1, a conventional cream 1 was obtained by replacing the moon beauty extract (Production Example 1) with a birch extract (Ichimaru Falcos).

比較例2 従来のクリーム2
処方例1において、月下美人抽出物(製造例1)を精製水に置き換えたものを従来のクリーム2とした。
Comparative Example 2 Conventional Cream 2
In Formulation Example 1, a conventional cream 2 was prepared by replacing the beautiful moon extract (Production Example 1) with purified water.

次に、本発明を詳細に説明するため、具体的な実験例を挙げて説明する。本発明はこれら実験例に何ら制約されるものではない。   Next, in order to describe the present invention in detail, a specific experimental example will be described. The present invention is not limited to these experimental examples.

実験例1 線維芽細胞におけるNRG1タンパク質の検出
ヒト皮膚線維芽細胞(NB1RGB)を10%ホルマリンにて固定後、NRG1タンパク質の免疫染色を行った。使用した一次抗体はNRG1(R&D SYSTEMS)、二次抗体はAlexa Fluor594 Donkey Anti−Goat IgG(H+L)(Molecular Probes)である。染色後、蛍光顕微鏡にて観察した。
Experimental Example 1 Detection of NRG1 protein in fibroblasts Human skin fibroblasts (NB1RGB) were fixed with 10% formalin and then immunostained for NRG1 protein. The primary antibody used was NRG1 (R & D SYSTEMS), and the secondary antibody was Alexa Fluor 594 Donkey Anti-Goat IgG (H + L) (Molecular Probes). After staining, it was observed with a fluorescence microscope.

実験結果を図1に示した。その結果、線維芽細胞において、NRG1タンパク質が検出された。従って、線維芽細胞において、確かにNRG1が発現していることが示された。   The experimental results are shown in FIG. As a result, NRG1 protein was detected in fibroblasts. Therefore, it was shown that NRG1 is certainly expressed in fibroblasts.

実験例2 NRG1タンパク質のメラニン生成促進効果
メラニン生成においては、チロシナーゼ(TYR)、チロシナーゼ関連タンパク質1(TRP1)及びチロシナーゼ関連タンパク質2(TRP2)が主要な酵素として関与し、これら酵素の発現制御には小眼球症関連転写因子(MITF)が重要な役割を担っている。コンフルエントな状態のヒト正常メラノサイト(NHEM)に、最終濃度が100及び200ng/mLになるように調製したNRG1(PROSPEC)を添加して24時間培養後、RNAiso plus(TAKARA)を用いて総RNAの抽出を行った。総RNAを基に、リアルタイムRT−PCR法により、TYR、TRP1、TRP2及びMITF mRNA発現量の測定を行った。リアルタイムRT−PCR法にはSYBR Select Master Mix(ライフテクノロジーズ)を用い、TYR、TRP1、TRP2及びMITF用のプライマーは以下に示すものを用いた。内部標準として、β−アクチンを用いた。リアルタイムRT−PCRの操作は定められた方法に従い、TYR、TRP1、TRP2及びMITF mRNAの発現量を内部標準であるβ−アクチン mRNAの発現量に対する割合として求めた。TYR、TRP1、TRP2及びMITFの発現率は、未添加のmRNA発現量に対するNRG1添加群のmRNA発現量の比率として算出した。
Experimental Example 2 Effect of NRG1 Protein on Promoting Melanin Production In melanin production, tyrosinase (TYR), tyrosinase-related protein 1 (TRP1) and tyrosinase-related protein 2 (TRP2) are involved as major enzymes, and the expression control of these enzymes is involved. Microphthalmia-related transcription factor (MITF) plays an important role. NRG1 (PROSPEC) prepared to a final concentration of 100 and 200 ng / mL is added to human normal melanocytes (NHEM) in a confluent state, cultured for 24 hours, and then total RNA is extracted using RNAiso plus (TAKARA). Extraction was performed. Based on the total RNA, TYR, TRP1, TRP2, and MITF mRNA expression levels were measured by real-time RT-PCR. SYBR Select Master Mix (Life Technologies) was used for the real-time RT-PCR method, and the following primers were used for TYR, TRP1, TRP2, and MITF. Β-actin was used as an internal standard. The operation of real-time RT-PCR was determined according to a predetermined method, and the expression levels of TYR, TRP1, TRP2, and MITF mRNA were determined as a ratio with respect to the expression level of β-actin mRNA as an internal standard. The expression rate of TYR, TRP1, TRP2, and MITF was calculated as the ratio of the mRNA expression level of the NRG1 added group to the unadded mRNA expression level.

TYR用のプライマーセット
TGCGGTGGGAACAAGAAATC(配列番号1)
GAAGAATGATGCTGGGCTGAGT(配列番号2)
TRP1用のプライマーセット
CGAAACACAGTGGAAGGTTACAGT(配列番号3)
CTCCTCAGCCATTCATCAAAGACT(配列番号4)
TRP2用のプライマーセット
GGAATGCTTTGGAAGGGTTTG(配列番号5)
AAAGCGTTTGTCCCGTTCAG(配列番号6)
MITF用のプライマーセット
GAGGCAGTGGTTTGGGCTT(配列番号7)
AATTCTGCACCCGGGAATC(配列番号8)
β―アクチン用のプライマーセット
CACTCTTCCAGCCTTCCTTCC(配列番号9)
GTGTTGGCGTACAGGTCTTTG(配列番号10)
Primer set TGCGGTGGGAACAAGAAATC for TYR (SEQ ID NO: 1)
GAAGAATGATGCTGGGCTGAGT (SEQ ID NO: 2)
Primer set CGAAACACAGTGGAAGGTTACAGT for TRP1 (SEQ ID NO: 3)
CTCCTCAGCCCTTCATCAAAAGACT (SEQ ID NO: 4)
Primer set GGAATGCTTTGGAAGGGTTTG for TRP2 (SEQ ID NO: 5)
AAAGCGTTTGTCCCGTTCAG (SEQ ID NO: 6)
Primer set GAGGCAGTGGTTTGGGCTT for MITF (SEQ ID NO: 7)
AATTCTGCACCCGGGAATC (SEQ ID NO: 8)
Primer set CACTCTCCCAGCCTCTCTCCC for β-actin (SEQ ID NO: 9)
GTGTTGCGCGTACAGGTCTTTG (SEQ ID NO: 10)

実験結果を表1〜4に示した。その結果、NRG1タンパク質は、メラノサイトにおけるTYR、TRP1、TRP2及びMITFの発現を促進した。従って、NRG1は、メラノサイトに作用してメラニン生成促進効果を有することが示された。   The experimental results are shown in Tables 1-4. As a result, NRG1 protein promoted the expression of TYR, TRP1, TRP2, and MITF in melanocytes. Therefore, it was shown that NRG1 acts on melanocytes and has a melanin production promoting effect.

実験例3 酸化ストレスによるNRG1生成促進効果
コンフルエントな状態のヒト皮膚線維芽細胞(NB1RGB)に、最終濃度が250及び500μMになるように調製した過酸化水素(H)を添加して24時間培養後、RNAiso plus(TAKARA)を用いて総RNAの抽出を行った。総RNAを基に、リアルタイムRT−PCR法により、NRG1 mRNA発現量の測定を行った。リアルタイムRT−PCR法にはSYBR Select Master Mix(ライフテクノロジーズ)を用い、NRG1用のプライマーは以下に示すものを用いた。内部標準として、β−アクチンを用いた。リアルタイムRT−PCRの操作は定められた方法に従い、NRG1 mRNAの発現量を内部標準であるβ−アクチン mRNAの発現量に対する割合として求めた。NRG1の発現率は、未添加のmRNAの発現量に対するH添加群のmRNAの発現量の比率として算出した。
Experimental Example 3 Effect of Promoting NRG1 Production by Oxidative Stress Hydrogen peroxide (H 2 O 2 ) prepared to final concentrations of 250 and 500 μM was added to human skin fibroblasts (NB1RGB) in a confluent state by adding 24 After time culture, total RNA was extracted using RNAiso plus (TAKARA). Based on the total RNA, the NRG1 mRNA expression level was measured by the real-time RT-PCR method. For the real-time RT-PCR method, SYBR Select Master Mix (Life Technologies) was used, and the following primers were used for NRG1. Β-actin was used as an internal standard. The operation of real-time RT-PCR was determined according to a predetermined method, and the expression level of NRG1 mRNA was determined as a ratio with respect to the expression level of β-actin mRNA as an internal standard. The expression rate of NRG1 was calculated as the ratio of the expression level of mRNA in the H 2 O 2 added group to the expression level of unadded mRNA.

NRG1用のプライマーセット
GCCCATCACTCCACTACTGTCA(配列番号11)
GCTTTCAGTGTGTCCGTTGCT(配列番号12)
Primer set GCCCATCACTCCACTACTGTCA for NRG1 (SEQ ID NO: 11)
GCTTTCAGTGTGTCCGTTGCT (SEQ ID NO: 12)

実験結果を表5に示した。その結果、H添加による酸化ストレスは、NRG1の発現を促進した。従って、線維芽細胞に酸化ストレスを負荷すると、NRG1の産生が亢進されることが示された。 The experimental results are shown in Table 5. As a result, the oxidative stress due to the addition of H 2 O 2 promoted the expression of NRG1. Therefore, it was shown that when oxidative stress is applied to fibroblasts, the production of NRG1 is enhanced.

実験例4 NRG1の産生量を指標とする美白成分のスクリーニング方法
コンフルエントな状態のヒト皮膚線維芽細胞(NB1RGB)に、最終濃度が50、100及び200μg/mLになるように調製した月下美人抽出物(製造例1)及びメラニン生成抑制効果を有することが知られているシラカバ抽出物(比較例3、一丸ファルコス)を添加して24時間培養後、RNAiso plus(TAKARA)を用いて総RNAの抽出を行った。総RNAを基に、リアルタイムRT−PCR法により、NRG1 mRNA発現量の測定を行った。リアルタイムRT−PCR法にはSYBR Select Master Mix(ライフテクノロジーズ)を用い、NRG1用のプライマーは実験例3と同様のものを用いた。内部標準として、β−アクチンを用いた。リアルタイムRT−PCRの操作は定められた方法に従い、NRG1 mRNAの発現量を内部標準であるβ−アクチン mRNAの発現量に対する割合として求めた。NRG1の発現率は、未添加のmRNAの発現量に対する試料添加群のmRNAの発現量の比率として算出した。
Experimental Example 4 Screening method for whitening ingredients using NRG1 production as an index Extraction of beauty of the moon under beautiful human skin fibroblasts (NB1RGB) prepared to final concentrations of 50, 100 and 200 μg / mL Product (Production Example 1) and birch extract (Comparative Example 3, Ichimaru Falcos), which is known to have a melanin production inhibitory effect, were cultured for 24 hours, and then total RNA was extracted using RNAiso plus (TAKARA). Extraction was performed. Based on the total RNA, the NRG1 mRNA expression level was measured by the real-time RT-PCR method. For the real-time RT-PCR method, SYBR Select Master Mix (Life Technologies) was used, and the primer for NRG1 was the same as in Experimental Example 3. Β-actin was used as an internal standard. The operation of real-time RT-PCR was determined according to a predetermined method, and the expression level of NRG1 mRNA was determined as a ratio with respect to the expression level of β-actin mRNA as an internal standard. The expression rate of NRG1 was calculated as the ratio of the expression level of mRNA in the sample addition group to the expression level of unadded mRNA.

実験結果を表6に示した。その結果、シラカバ抽出物はNRG1の発現に影響を及ぼさなかったが、月下美人抽出物はNRG1の発現を顕著に抑制した。従って、NRG1産生に対し、月下美人抽出物は優れた抑制効果を示した。   The experimental results are shown in Table 6. As a result, the birch extract had no effect on the expression of NRG1, but the Tsukishita beauties extract significantly suppressed the expression of NRG1. Therefore, Tsukishita Beauty extract showed an excellent inhibitory effect on NRG1 production.

実験例5 酸化ストレスを負荷することを特徴とする美白成分のスクリーニング方法
コンフルエントな状態のヒト皮膚線維芽細胞(NB1RGB)に、最終濃度が500μMになるように調製した過酸化水素(H)と同時に、最終濃度が100及び200μg/mLになるように調製した月下美人抽出物(製造例1)を添加した。24時間培養後、RNAiso plus(TAKARA)を用いて総RNAの抽出を行った。総RNAを基に、リアルタイムRT−PCR法により、NRG1 mRNA発現量の測定を行った。リアルタイムRT−PCR法にはSYBR Select Master Mix(ライフテクノロジーズ)を用い、NRG1用のプライマーは実験例3と同様のものを用いた。内部標準として、β−アクチンを用いた。リアルタイムRT−PCRの操作は定められた方法に従い、NRG1 mRNAの発現量を内部標準であるβ−アクチン mRNAの発現量に対する割合として求めた。NRG1の発現率は、未添加のmRNAの発現量に対する試料添加群のmRNAの発現量の比率として算出した。
Experimental Example 5 Screening Method for Whitening Component Characterized by Loading Oxidative Stress Hydrogen peroxide (H 2 O 2) prepared to a final concentration of 500 μM in confluent human skin fibroblasts (NB1RGB) At the same time, Tsukishita Bijin extract (Production Example 1) prepared so as to have final concentrations of 100 and 200 μg / mL was added. After incubation for 24 hours, total RNA was extracted using RNAiso plus (TAKARA). Based on the total RNA, the NRG1 mRNA expression level was measured by the real-time RT-PCR method. For the real-time RT-PCR method, SYBR Select Master Mix (Life Technologies) was used, and the primer for NRG1 was the same as in Experimental Example 3. Β-actin was used as an internal standard. The operation of real-time RT-PCR was determined according to a predetermined method, and the expression level of NRG1 mRNA was determined as a ratio with respect to the expression level of β-actin mRNA as an internal standard. The expression rate of NRG1 was calculated as the ratio of the expression level of mRNA in the sample addition group to the expression level of unadded mRNA.

実験結果を表7に示した。その結果、月下美人抽出物は酸化ストレスによるNRG1の発現亢進を抑制した。従って、酸化ストレスを負荷した時に増加するNRG1に対し、月下美人抽出物は優れた抑制効果を示した。   The experimental results are shown in Table 7. As a result, the beautiful moon extract suppressed the increase in NRG1 expression due to oxidative stress. Therefore, Tsukishita Beauty Extract showed an excellent inhibitory effect against NRG1 that increases when oxidative stress is applied.

実験例6 B16マウスメラノーマを用いたメラニン生成抑制試験
マウスメラノーマ由来細胞株であるB16細胞を6cmディッシュに3×10個播種し、10%FBSを含むMEM with NEAAにて5%CO、37℃条件下で5日間培養した。その時、最終濃度が50、100及び200μg/mLになるように調製した月下美人抽出物(製造例1)及びメラニン生成抑制効果を有することが知られているシラカバ抽出物(比較例3、一丸ファルコス)を添加した。次に、細胞をPBS(−)にて2回洗浄した後、PBS(−)1mLを加え、ラバーポリスマンにて集めた。遠心操作をして得られたペレットにPBS(−)0.5mLを加え、超音波破砕操作をしてペレットを溶解させた。タンパク量はLowry法{J.Biol.Chem.,193,265−275(1951)}により測定した。又、1mgタンパクあたりのメラニン量を測定する場合、タンパク定量用に取った残りの細胞破砕溶液に4N水酸化ナトリウム0.5mLを加え、60℃で2時間反応させた後O.D.475を測定し、検量線からメラニン定量を行った。データは1mgタンパクあたりのメラニン量を算出し、試料未添加のメラニン生成量をコントロールとし、コントロールに対する試料添加時のメラニン生成量の値からメラニン生成抑制率を算出した。
Experimental Example 6 Inhibition test of melanin production using B16 mouse melanoma 3 × 10 4 B16 cells, which are a mouse melanoma-derived cell line, were seeded in a 6 cm dish, and 5% CO 2 , 37 in MEM with NEAA containing 10% FBS. The cells were cultured for 5 days under the condition of 0C. At that time, the beautiful moon extract (Production Example 1) prepared to have final concentrations of 50, 100 and 200 μg / mL and the birch extract known to have a melanin production inhibitory effect (Comparative Example 3, Ichimaru) Falcos) was added. Next, after the cells were washed twice with PBS (−), 1 mL of PBS (−) was added and collected with a rubber policeman. PBS (-) 0.5mL was added to the pellet obtained by centrifugation, and the pellet was dissolved by ultrasonic crushing operation. The amount of protein was determined by the Lowry method {J. Biol. Chem. , 193, 265-275 (1951)}. When measuring the amount of melanin per mg of protein, 0.5 mL of 4N sodium hydroxide was added to the remaining cell disruption solution taken for protein determination and reacted at 60 ° C. for 2 hours. D. 475 was measured, and melanin was determined from the calibration curve. The data calculated the amount of melanin per 1 mg protein, the amount of melanin not added to the sample was taken as a control, and the inhibition rate of melanin generation was calculated from the value of the amount of melanin generated when the sample was added to the control.

これらの試験結果を表8に示す。その結果、月下美人抽出物はメラノーマにおけるメラニン生成に影響を及ぼさなかったが、シラカバ抽出物はメラニン生成を抑制した。従って、メラノーマにおけるメラニン生成に対し、月下美人抽出物は抑制効果を示さなかった。   These test results are shown in Table 8. As a result, Tsukishita beautiful woman extract did not affect melanin production in melanoma, but birch extract suppressed melanin production. Therefore, Tsukishita Beauty extract did not show an inhibitory effect on melanin production in melanoma.

実験例7 使用試験
処方例1のクリーム、比較例1の従来のクリーム1及び比較例2の従来のクリーム2を用いて、各々女性30人(20〜45歳)を対象に3カ月間の使用試験を行った。使用後、シミ及びソバカスの改善についてのアンケート調査を行って、美白効果を判定した。アンケートの評価基準は、有効なものを「優」、やや有効なものを「良」、わずかに有効なものを「可」、無効なものを「不可」として評価した。
Experimental Example 7 Use Test Using the cream of Formulation Example 1, the conventional cream 1 of Comparative Example 1 and the conventional cream 2 of Comparative Example 2, each for 30 women (20-45 years) for 3 months A test was conducted. After use, a questionnaire survey on the improvement of spots and freckles was conducted to determine the whitening effect. The evaluation criteria of the questionnaire were evaluated as “excellent” for valid, “good” for slightly effective, “good” for slightly effective, and “impossible” for invalid.

これらの結果を表9に示した。処方例1の月下美人抽出物を含有する本発明のクリームは優れた美白効果を示した。又、比較例1のシラカバ抽出物を含有する従来のクリーム1は美白効果を示したが、処方例1の月下美人抽出物を含有する本発明のクリームよりも効果は低かった。尚、試験期間中皮膚トラブルは一人もなく、安全性においても問題なかった。   These results are shown in Table 9. The cream of the present invention containing the extract of beautiful moon moon of Formulation Example 1 showed an excellent whitening effect. Moreover, although the conventional cream 1 containing the birch extract of the comparative example 1 showed the whitening effect, the effect was lower than the cream of the present invention containing the moon beautiful woman extract of the prescription example 1. During the test period, there was no skin problem and there was no problem with safety.

前記図1及び表1〜4より、NRG1は線維芽細胞から産生されてメラニン生成に関与していることが確認された。そして、前記表5より、酸化剤曝露にてNRG1の発現が亢進されることが分かった。又、前記表9より、月下美人抽出物は最終的に美白効果を有する薬剤であることが認められた。しかしながら、前記表8より、そのメカニズムはメラノサイトのみによるものではないことが分かった。一方、前記表6及び7より、月下美人抽出物の美白効果は、真皮線維芽細胞におけるNRG1の発現量と相関があることが認められた。   From FIG. 1 and Tables 1 to 4, it was confirmed that NRG1 was produced from fibroblasts and involved in melanin production. From Table 5, it was found that the expression of NRG1 was enhanced by exposure to the oxidizing agent. Further, from Table 9, it was confirmed that the moonlight beauty extract is a drug having a whitening effect. However, from Table 8, it was found that the mechanism is not solely due to melanocytes. On the other hand, from Tables 6 and 7 above, it was confirmed that the whitening effect of the moon moon bean extract was correlated with the expression level of NRG1 in dermal fibroblasts.

以上より、線維芽細胞における神経栄養因子NRG1発現量を指標とすることで美白成分のスクリーニングが可能となった。又、同様に、神経栄養因子NRG1の産生抑制効果を指標とすることで美白成分のスクリーニングが可能となった。   From the above, it became possible to screen for whitening components by using the expression level of neurotrophic factor NRG1 in fibroblasts as an index. Similarly, the whitening component can be screened by using the production inhibitory effect of the neurotrophic factor NRG1 as an index.

本発明の線維芽細胞を用いることを特徴とする美白成分のスクリーニング方法は、これまでのケラチノサイトやメラノサイトを用いる美白成分のスクリーニング方法では評価することができなかった化粧料や皮膚外用剤等に用いる美白成分の開発に用いられるものである。   The screening method for whitening ingredients characterized by using the fibroblasts of the present invention is used for cosmetics and skin external preparations that could not be evaluated by conventional screening methods for whitening ingredients using keratinocytes and melanocytes. It is used for the development of whitening ingredients.

Claims (1)

線維芽細胞に過酸化水素と試料を添加し、過酸化水素による神経栄養因子neureglin1(NRG1)の産生上昇に対する試料の抑制作用を、NRG1の産生抑制効果を指標として評価することを特徴とする美白成分のスクリーニング方法 Whitening, characterized in that hydrogen peroxide and a sample are added to fibroblasts, and the inhibitory effect of the sample on the increase in production of the neurotrophic factor neuroglin1 (NRG1) by hydrogen peroxide is evaluated using the NRG1 production inhibitory effect as an index. Ingredient screening method .
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JP6824689B2 (en) * 2016-10-27 2021-02-03 株式会社ナリス化粧品 Screening method for dermis stain preventive / ameliorating agent and / or macrophage attractant
JP6992220B2 (en) * 2017-06-23 2022-02-15 ポーラ化成工業株式会社 Screening method for pigmentation inhibitors
JP6810288B2 (en) * 2020-01-22 2021-01-06 株式会社ナリス化粧品 Screening method for dermis stain preventive / ameliorating agent and / or macrophage attractant
JP2021171036A (en) * 2020-04-30 2021-11-01 富士フイルム株式会社 Whitening agent screening method, bone-forming protein 4 inhibitor, cosmetics, and method for manufacturing cosmetics

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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101347640A (en) * 2008-09-05 2009-01-21 西安交通大学 Analogue model of skin with pigments for selecting stripping agent and construction method thereof
JP5970148B2 (en) * 2008-09-12 2016-08-17 丸善製薬株式会社 Tyrosinase activity inhibitor, melanin production inhibitor, and SCF mRNA expression inhibitor
JP2011092179A (en) * 2009-09-30 2011-05-12 Toyobo Co Ltd 3-dimensional cultured skin model containing melanocyte, and use of the same
WO2011163466A1 (en) * 2010-06-23 2011-12-29 The United States Of America, As Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Regulation of skin pigmentation by neuregulin-1 (nrg-1)
WO2013058578A2 (en) * 2011-10-18 2013-04-25 (주)아모레퍼시픽 System for screening skin-whitening material

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