CN103668471A - 一种构建dna高通量测序文库的方法及其配套试剂盒 - Google Patents
一种构建dna高通量测序文库的方法及其配套试剂盒 Download PDFInfo
- Publication number
- CN103668471A CN103668471A CN201310706375.5A CN201310706375A CN103668471A CN 103668471 A CN103668471 A CN 103668471A CN 201310706375 A CN201310706375 A CN 201310706375A CN 103668471 A CN103668471 A CN 103668471A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- adapter
- nucleic acid
- sequence
- chain
- magnetic bead
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
本发明提供了一种构建DNA高通量测序文库的方法及其配套试剂盒，具体地，本发明提供了一种基于核酸样品构建测序文库的方法，所述方法包括：对用于构建测序文库的核酸样品进行变性处理使其解链为单链核酸，将其与第一衔接子进行退火反应和连接反应，从而形成“第一衔接子-单链核酸”复合物；将所述复合物吸附于磁珠，与第二衔接子进行退火反应和连接反应，从而形成吸附有“第一衔接子-单链核酸-第二衔接子”复合物的磁珠，将经清洗的磁珠进行PCR反应，获得扩增产物，用于构建测序文库。
Description
技术领域
本发明涉及生物技术领域，更具体地，涉及一种构建DNA高通量测序文库的方法及其配套试剂盒。
背景技术
随着高通量测序技术的不断普及，已经出现了针对不同形式核酸样品的各种高通量测序文库构建方法，其中包括双链DNA(Bentley,D.R.,et al.,Accuratewhole human genome sequencing using reversible terminator chemistry.Nature,2008.456(7218):p.53-9)、单链DNA(Smith,D.J.and I.Whitehouse,Intrinsiccoupling of lagging-strand synthesis to chromatin assembly.Nature,2012.483(7390):p.434-8.)、RNA(Mortazavi,A.,et al.,Mapping and quantifyingmammalian transcriptomes by RNA-Seq.Nat Methods,2008.5(7):p.621-8)以及小RNA(Zhang,H.,et al.,Genome-wide analysis of small RNA and novelMicroRNA discovery in human acute lymphoblastic leukemia based on extensivesequencing approach.PLoS One,2009.4(9):p.e6849)等。这些方法通常都要求较大的样品起始量，一般是200ng以上。然而，当起始样品量较少时(少至50pg)，由于分子碰撞几率降低以及杂质干扰，连接和扩增反应的难度都会大大增加。
因此，本领域尚缺乏一种专门针对少量DNA样品的高通量测序文库构建方法。
发明内容
本发明的目的是提供一种专门针对少量DNA样品的高通量测序文库构建方法。
本发明的第一方面，提供了一种基于核酸样品构建测序文库的方法，所述方法包括步骤：
(a)提供一用于构建测序文库的核酸样品；
(b)对所述核酸样品进行变性处理，使所述核酸解链为单链核酸；
(c)将所述单链核酸与第一衔接子(adaptor)进行退火反应，从而使得第一衔接子捕获所述单链，并进行连接反应，从而形成“第一衔接子-单链核酸”复合物，其中所述第一衔接子为双链，正链的5’端连接有生物素并且3’端具有呈单链形式的、用于捕获单链核酸的第一捕获序列，而负链为与正链互补的序列；
(d)将“第一衔接子-单链核酸”复合物与表面包被有亲和素的磁珠进行混合，从而将所述的“第一衔接子-单链核酸”复合物吸附于所述磁珠；
(e)对上一步骤获得的磁珠进行清洗，获得经清洗的、吸附有“第一衔接子-单链核酸”复合物的磁珠；
(f)将上一步骤获得的、经清洗的且吸附有“第一衔接子-单链核酸”复合物的磁珠与第二衔接子进行退火反应，从而使得第二衔接子结合于所述单链的游离端，并进行连接反应，从而形成吸附有“第一衔接子-单链核酸-第二衔接子”复合物的磁珠，
其中所述第二衔接子为双链，正链的5’端具有呈单链形式的、用于结合于单链核酸的第二捕获序列，而负链为与正链互补的序列；
(g)对上一步骤获得的磁珠进行清洗，获得经清洗的、吸附有“第一衔接子-单链核酸-第二衔接子”复合物的磁珠；
(h)将上一步骤获得的经清洗的磁珠，用特异性结合于第一衔接子的第一引物和特异性结合于第二衔接子的第二引物，进行PCR反应，获得第一扩增产物，用于构建测序文库。
在另一优选例中，所述核酸样品的总量为10-200pg。
在另一优选例中，所述方法还包括：
(i)以第一扩增产物为模板，用第三引物和第四引物进行PCR扩增，从而获得第二扩增产物，其中所述的第二扩增产物的两端引入了测序接头序列。
在另一优选例中，所述的第三引物的5’端含有测序接头序列且3’端含有部分或全部第一引物序列；而所述的第四引物与第二引物相同。
在另一优选例中，所述的第一衔接头的结构如下，从5’至3’端：
生物素标记物-双链互补区-单链捕获区
其中，双链互补区的长度为15-100bp；而单链捕获区的长度为5-10bp。
在另一优选例中，所述的核酸样品的总量为20-100pg。
在另一优选例中，所述的核酸样品包括DNA样品、RNA样品。
在另一优选例中，所述的捕获序列为5-8个碱基的随机序列。
在另一优选例中，
所述的第一衔接子的正链双链区序列如SEQ ID NO:1所示；
所述的第一衔接子的反链双链区序列如SEQ ID NO:2所示；
所述的第二衔接子的正链双链区序列如SEQ ID NO:3所示；
所述的第二衔接子的反链双链区序列如SEQ ID NO:4所示。
在另一优选例中，所述第一引物的序列如SEQ ID NO:5所示。
在另一优选例中，所述第二引物的序列如SEQ ID NO:6所示。
在另一优选例中，所述第三引物的序列如SEQ ID NO:7所示。
在另一优选例中，所述阳性对照序列如SEQ ID NO:8所示。
在另一优选例中，所述的核酸样品的总量为20-100pg。
在另一优选例中，第一衔接子的负链的5’端是磷酸化的。
在另一优选例中，第一衔接子的负链的3’端是氨基封闭的。
在另一优选例中，第一衔接子的负链的3’端是氨基封闭的。
在另一优选例中，第一衔接子的双链部分的长度为15-100bp，较佳地为20-80bp。
在另一优选例中，在步骤(a)中，额外提供一对照核酸样品，或者所述核酸样品中含有对照核酸序列。
在另一优选例中，所述核酸样品中对照核酸序列的数量为10-200pg，较佳地20-100pg。
在另一优选例中，所述的测序为Solexa高通量测序。
本发明的第二方面，提供了一种基于核酸样品构建测序文库的试剂盒，所述试剂盒包括：
一第一衔接子，所述第一衔接子为双链，正链的5’端连接有生物素标记物并且3’端具有呈单链形式的、用于捕获单链核酸的第一捕获序列，而负链为与正链互补的序列；
一第二衔接子，所述的第二衔接子为双链，正链的5’端具有呈单链形式的、用于结合于单链核酸的第二捕获序列，而负链为与正链互补的序列；
一磁珠，所述磁珠表面包被有亲和素；
和说明书，所述的说明书记载了使用方法。
在另一优选例中，所述的使用方法包括：用如本发明第一方面所述的方法构建测序文库。
在另一优选例中，所述试剂盒还包括：特异性结合于第一衔接子的第一引物；和特异性结合于第二衔接子的第二引物。
在另一优选例中，所述的试剂盒还包括一对照核酸样品。
在另一优选例中，所述对照核酸序列的数量为10-200pg，较佳地20-100pg。
应理解，在本发明范围内中，本发明的上述各技术特征和在下文(如实施例)中具体描述的各技术特征之间都可以互相组合，从而构成新的或优选的技术方案。限于篇幅，在此不再一一累述。
附图说明
图1为用本发明方法基于50pg单链DNA构建DNA测序文库的电泳图；
图2为用本发明方法基于500ng单链DNA构建DNA测序文库的电泳图；
图3为用本发明方法基于11ng酵母冈崎片段构建DNA测序文库的电泳图；
图4显示了本发明一个优选例中第一衔接子和第二衔接子的结构；
图5为用本发明的一种优选实施例中，用本发明方法构建DNA测序文库的示意图；其中，“primer”为引物，“Adaptor”为衔接子，第四引物与第二引物相同。
具体实施方式
本发明人经过长期而深入的研究，意外开发出了一种能够用于构建DNA高通量测序文库的方法，使用所述方法，能够基于极少量(200pg以下)的核酸样本建立测序文库。基于上述发现，发明人完成了本发明。
构建DNA高通量测序文库的方法
本发明提供了一种基于核酸样品构建测序文库的方法，所述方法包括步骤：
(a)提供一用于构建测序文库的核酸样品；
(b)对所述核酸样品进行变性处理，使所述核酸解链为单链核酸；
(c)将所述单链核酸与第一衔接子(adaptor，或译为“接头”)进行退火反应，从而使得第一衔接子捕获所述单链，并进行连接反应，从而形成“第一衔接子-单链核酸”复合物；
(d)将“第一衔接子-单链核酸”复合物与表面包被有亲和素的磁珠进行混合，从而将所述的“第一衔接子-单链核酸”复合物吸附于所述磁珠；
(e)对上一步骤获得的磁珠进行清洗，获得经清洗的、吸附有“第一衔接子-单链核酸”复合物的磁珠；
(f)将上一步骤获得的、经清洗的且吸附有“第一衔接子-单链核酸”复合物的磁珠与第二衔接子进行退火反应，从而使得第二衔接子结合于所述单链的游离端，并进行连接反应，从而形成吸附有“第一衔接子-单链核酸-第二衔接子”复合物的磁珠；
(g)对上一步骤获得的磁珠进行清洗，获得经清洗的、吸附有“第一衔接子-单链核酸-第二衔接子”复合物的磁珠；
(h)将上一步骤获得的经清洗的磁珠作为模板，用特异性结合于第一衔接子的第一引物和特异性结合于第二衔接子的第二引物，进行PCR反应，获得第一扩增产物，作为测序文库。
其中，所述的第一衔接子为双链，正链的5’端连接有生物素标记物并且3’端具有呈单链形式的、用于捕获单链核酸的第一捕获序列，而负链为与正链互补的序列；所述第二衔接子为双链，正链的5’端具有呈单链形式的、用于结合于单链核酸的第二捕获序列，而负链为与正链互补的序列。
本发明的方法中，还可以任选地包括以下步骤：以第一扩增产物为模板，用第三引物和第四引物进行PCR扩增，从而获得第二扩增产物，其中所述的第二扩增产物的两端引入了测序接头序列。
其中，一种优选的所述的第三引物的5’端含有测序接头序列且3’端含有部分或全部第一引物序列。一种优选的所述的第四引物与第二引物相同。
在另一优选例中，所述的第一衔接头的结构如下，从5’至3’端：
生物素标记物-双链互补区-单链捕获区
其中，双链互补区的长度为15-100bp；而单链捕获区的长度为5-10bp。
所述的核酸样品的总量可以为≤200pg，优选地，所述核酸样品的总量为10-200pg。在本发明的一个优选例中，所述的核酸样品的总量为20-100pg。
在另一优选例中，所述的核酸样品包括DNA样品、RNA样品。
在另一优选例中，所述的捕获序列为5-8个碱基的随机序列。
在另一优选例中，所述的第一衔接子的正链双链区序列如SEQ ID NO:1所示。
在另一优选例中，所述的第一衔接子的反链双链区序列如SEQ ID NO:2所示。
在另一优选例中，所述的第二衔接子的正链双链区序列如SEQ ID NO:3所示。
在另一优选例中，所述的第二衔接子的反链双链区序列如SEQ ID NO:4所示。
在另一优选例中，所述第一引物的序列如SEQ ID NO:5所示。
在另一优选例中，所述第二引物的序列如SEQ ID NO:6所示。
在另一优选例中，所述第三引物的序列如SEQ ID NO:7所示。
在另一优选例中，所述阳性对照序列如SEQ ID NO:8所示。
在另一优选例中，所述的核酸样品的总量为20-100pg。
在另一优选例中，第一衔接子的负链的5’端是磷酸化的。
在另一优选例中，第一衔接子的负链的3’端是氨基封闭的。
在另一优选例中，第一衔接子的负链的3’端是氨基封闭的。
在另一优选例中，第一衔接子的双链部分的长度为15-100bp，较佳地为20-80bp。
在另一优选例中，在步骤(a)中，额外提供一对照核酸样品，或者所述核酸样品中含有对照核酸序列。
在另一优选例中，所述核酸样品中对照核酸序列的数量为10-200pg，较佳地20-100pg。
在另一优选例中，所述的测序为Solexa高通量测序。
基于微量核酸样品构建测序文库的试剂盒
本发明还提供了一种用上述方法构建测序文库的试剂盒，所述试剂盒包括：
一第一衔接子，所述第一衔接子为双链，正链的5’端连接有生物素标记物并且3’端具有呈单链形式的、用于捕获单链核酸的第一捕获序列，而负链为与正链互补的序列；
一第二衔接子，所述的第二衔接子为双链，正链的5’端具有呈单链形式的、用于结合于单链核酸的第二捕获序列，而负链为与正链互补的序列；
一磁珠，所述磁珠表面包被有亲和素；
和说明书，所述的说明书记载了使用方法。
在另一优选例中，所述的使用方法包括：用本发明的方法构建测序文库。
所述试剂盒还可以任选地包括其他组件，如PCR反应单元、磁珠分离单元等。在一个优选例中，所述的试剂盒还包括：特异性结合于第一衔接子的第一引物；和特异性结合于第二衔接子的第二引物。
在另一优选例中，所述的试剂盒还包括一对照核酸样品。
在另一优选例中，所述对照核酸序列的数量为10-200pg，较佳地20-100pg。
一种优选的试剂盒包括：
第一衔接子(5μL，1μM)，正链双链区序列如SEQ ID NO:1所示，5’端连接有生物素标记物，3’端具有5-10个随机碱基(第一捕获序列)；反链双链区序列如SEQ ID NO:2所示，5’端磷酸化以便捕获，3’端为氨基(NH2)封闭。
第二衔接子(5μL，10μM)，正链双链区序列如SEQ ID NO:3所示，5’端具有5-10个随机碱基(第二捕获序列)，3’端为氨基(NH2)封闭；反链双链区序列如SEQ ID NO:4所示；
T4多聚核苷酸激酶(20μL，10U/μL)；
T4DNA连接酶(90μL，400U/μL)
快速连接酶缓冲液(2×，132mM Tris-HCl，pH7.6，20mM MgCl2，2mM ATP，2mM DTT，15%PEG6000，400μL)；
第一引物(5μL，10μM)，序列如SEQ ID NO:5所示；
第二引物(10μL，10μM)，序列如SEQ ID NO:6所示；
第三引物(5μL，10μM)，序列如SEQ ID NO:7所示；
阳性对照DNA(5ng)，序列如SEQ ID NO:8所示；
MyOne链霉亲和素磁珠(200μL)。
本发明的主要优点包括：
(1)本方法利用生物素和磁珠的亲和反应，将少量的DNA样品连接到磁珠上进行后续的连接和扩增处理，便于去除杂质和多余的接头，得到的产物纯度高，且已包含双向测序接头，可以直接用于高通量测序。
(2)与现有技术相比，本发明最大程度去除了杂质，通过反复清洗磁珠，减少了多余接头对后续扩增的影响，使用pfu酶通过两轮放大，引入测序接头的同时能够准确放大目标样品。
(3)本发明适合于各种DNA构建高通量测序文库，且所需都是常规实验技术以及容易购买到的试剂和药品，条件易得，且操作简便，一般实验技术人员皆可操作完成。
下面结合具体实施例，进一步阐述本发明。应理解，这些实施例仅用于说明本发明而不用于限制本发明的范围。下列实施例中未注明具体条件的实验方法，通常按照常规条件，或按照制造厂商所建议的条件。除非另外说明，否则百分比和份数按重量计算。
实施例1DNA高通量测序文库的构建
1.将DNA样品溶于8μL10mM Tris-HCl(pH7.5)，于95℃加热5分钟后立刻插冰上使之迅速冷却。
2.加入2μL T4多聚核苷酸激酶、10μL2×T4DNA快速连接酶缓冲液(132mM Tris-HCl，pH7.6，20mM MgCl2，2mM ATP，2mM DTT，15%PEG6000)。
3.37℃反应4小时后于70℃加热15分钟使酶失活。
4.加入5.1μL ddH2O后于95℃加热5分钟使之完全变性，然后立刻插于冰上使之冷却。
5.加入0.5μL1μM的第一衔接子(见图4。正链双链区序列如SEQ ID NO:1所示，5’端连接有生物素标记物，3’端具有5-10个随机碱基；反链双链区序列如SEQ ID NO:2所示，5’端磷酸化以便捕获，3’端为胺基封闭。)后于37℃温育10分钟。
6.加入3μL T4连接酶、10μL2×快速连接酶缓冲液后混匀。
7.于16℃反应8h。
8.取出20μL MyOne链霉亲和素磁珠(Life Technology公司，美国；货号65001)后用40μL2×Binding&Washing缓冲液(10mM Tris-HCl(pH7.5)，1mMEDTA，2.0M NaCl)清洗3次并最终重悬于40μL2×Binding & Washing缓冲液中。
9.将步骤8中的MyOne链霉亲和素磁珠加至步骤7中得到的连接产物后于室温连接8小时，期间置旋转混匀仪。
10.用100μL1×Binding&Washing缓冲液清洗3次。
11.再用20μL1×快速连接酶缓冲液清洗一次后将磁珠重悬于20μL1×快速连接酶缓冲液。
12.加入0.5μL10μM的第二衔接子(正链双链区序列如SEQ ID NO:3所示，5’端具有5-10个随机碱基，3’端为胺基封闭；反链双链区序列如SEQ ID NO:4所示)后于55℃孵育2分钟，然后立刻插入冰中使之迅速冷却。
13.加入2μL T4连接酶后于16℃连接反应8小时，期间置旋转混匀仪。
14.吸去上清后加入20μL1×快速连接酶缓冲液与0.5μL10μM的接头2后于55℃旋转2分钟，然后立刻插入冰中使之迅速冷却。
15.加入2μL T4连接酶后于16℃再旋转混匀5小时。
16.用100μL1×Binding&Washing缓冲液清洗3次后再用100μL Washing缓冲液(10mM Tris-HCl(pH7.5)，2mM EDTA，50mM KCl，0.02%Triton X-100)清洗5次，最后重悬于20μL1×Binding&Washing缓冲液中。
17.PCR扩增，反应体系及PCR程序如下所示：
PCR循环程序：95℃变性30秒，68℃退火20秒，72℃延伸10秒；15个循环。
18.用8%聚丙烯酰胺凝胶电泳进行检测并将目标条带进行回收，并定容至10μL10mM Tris-HCl(pH8.0)。
19.使用SEQ ID NO:6与SEQ ID NO:7作为引物，重复步骤17的PCR扩增步骤。
PCR循环程序：95℃变性30秒，68℃退火20秒，72℃延伸10秒；5～15个循环。实验过程可参考图5。
用4%琼脂糖凝胶电泳检测，现实目标条带长度为156bp，利用QIAquick GelExtraction试剂盒回收该PCR产物。
50pgDNA样品的电泳结果如图1所示，图中各列上方的数字为步骤19中进行PCR反应的循环数。结果显示，15个循环的PCR放大后得到的目标条带清晰，长度为156bp。
500ngDNA样品的电泳结果如图2所示，图中各列上方的数字为步骤19中进行PCR反应的循环数。结果显示，5个循环的PCR放大后得到的目标条带清晰，长度为156bp。
11ng芽殖酵母冈崎片段样品的电泳结果如图3所示，图中各列上方的数字为步骤19中进行PCR反应的循环数。结果显示，15个循环的PCR放大后得到弥散状的目标条带符合要求，长度分散在200～400bp的范围。
在本发明提及的所有文献都在本申请中引用作为参考，就如同每一篇文献被单独引用作为参考那样。此外应理解，在阅读了本发明的上述讲授内容之后，本领域技术人员可以对本发明作各种改动或修改，这些等价形式同样落于本申请所附权利要求书所限定的范围。
Claims (10)
1.一种基于核酸样品构建测序文库的方法，其特征在于，包括步骤：
(a)提供一用于构建测序文库的核酸样品；
(b)对所述核酸样品进行变性处理，使所述核酸解链为单链核酸；
(c)将所述单链核酸与第一衔接子(adaptor)进行退火反应，从而使得第一衔接子捕获所述单链，并进行连接反应，从而形成“第一衔接子-单链核酸”复合物，其中所述第一衔接子为双链，正链的5’端连接有生物素并且3’端具有呈单链形式的、用于捕获单链核酸的第一捕获序列，而负链为与正链互补的序列；
(d)将“第一衔接子-单链核酸”复合物与表面包被有亲和素的磁珠进行混合，从而将所述的“第一衔接子-单链核酸”复合物吸附于所述磁珠；
(e)对上一步骤获得的磁珠进行清洗，获得经清洗的、吸附有“第一衔接子-单链核酸”复合物的磁珠；
(f)将上一步骤获得的、经清洗的且吸附有“第一衔接子-单链核酸”复合物的磁珠与第二衔接子进行退火反应，从而使得第二衔接子结合于所述单链的游离端，并进行连接反应，从而形成吸附有“第一衔接子-单链核酸-第二衔接子”复合物的磁珠，
其中所述第二衔接子为双链，正链的5’端具有呈单链形式的、用于结合于单链核酸的第二捕获序列，而负链为与正链互补的序列；
(g)对上一步骤获得的磁珠进行清洗，获得经清洗的、吸附有“第一衔接子-单链核酸-第二衔接子”复合物的磁珠；
(h)将上一步骤获得的经清洗的磁珠，用特异性结合于第一衔接子的第一引物和特异性结合于第二衔接子的第二引物，进行PCR反应，获得第一扩增产物，用于构建测序文库。
2.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述方法还包括：
(i)以第一扩增产物为模板，用第三引物和第四引物进行PCR扩增，从而获得第二扩增产物，其中所述的第二扩增产物的两端引入了测序接头序列。
3.如权利要求2所述的方法，其特征在于，所述的第三引物的5’端含有测序接头序列且3’端含有部分或全部第一引物序列；而所述的第四引物与第二引物相同。
4.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述的第一衔接头的结构如下，从5’至3’端：
生物素标记物-双链互补区-单链捕获区
其中，双链互补区的长度为15-100bp；而单链捕获区的长度为5-10bp。
5.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述的核酸样品的总量为20-100pg。
6.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述的核酸样品包括DNA样品、RNA样品。
7.如权利要求1所述的方法，其特征在于，所述的捕获序列为5-8个碱基的随机序列。
8.如权利要求1所述的方法，其特征在于，
所述的第一衔接子的正链双链区序列如SEQ ID NO:1所示；
所述的第一衔接子的反链双链区序列如SEQ ID NO:2所示；
所述的第二衔接子的正链双链区序列如SEQ ID NO:3所示；
所述的第二衔接子的反链双链区序列如SEQ ID NO:4所示。
9.一种基于核酸样品构建测序文库的试剂盒，其特征在于，所述试剂盒包括：
一第一衔接子，所述第一衔接子为双链，正链的5’端连接有生物素标记物并且3’端具有呈单链形式的、用于捕获单链核酸的第一捕获序列，而负链为与正链互补的序列；
一第二衔接子，所述的第二衔接子为双链，正链的5’端具有呈单链形式的、用于结合于单链核酸的第二捕获序列，而负链为与正链互补的序列；
一磁珠，所述磁珠表面包被有亲和素；
和说明书，所述的说明书记载了使用方法。
10.如权利要求9所述的试剂盒，其特征在于，所述试剂盒还包括：特异性结合于第一衔接子的第一引物；和特异性结合于第二衔接子的第二引物。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201310706375.5A CN103668471B (zh) | 2013-12-19 | 2013-12-19 | 一种构建dna高通量测序文库的方法及其配套试剂盒 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201310706375.5A CN103668471B (zh) | 2013-12-19 | 2013-12-19 | 一种构建dna高通量测序文库的方法及其配套试剂盒 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN103668471A true CN103668471A (zh) | 2014-03-26 |
| CN103668471B CN103668471B (zh) | 2015-09-30 |
Family
ID=50307221
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN201310706375.5A Active CN103668471B (zh) | 2013-12-19 | 2013-12-19 | 一种构建dna高通量测序文库的方法及其配套试剂盒 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CN (1) | CN103668471B (zh) |
Cited By (14)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN104003902A (zh) * | 2014-05-14 | 2014-08-27 | 上海交通大学 | 三氮烯连接单元的合成及其在dna测序中的用途 |
| CN105483267A (zh) * | 2016-01-15 | 2016-04-13 | 古博 | 血浆游离DNA双分子标记、标记和检测血浆cfNDA的方法及其用途 |
| CN105734679A (zh) * | 2016-03-29 | 2016-07-06 | 重庆市肿瘤研究所 | 核酸靶序列捕获测序文库的制备方法 |
| CN105986324A (zh) * | 2015-02-11 | 2016-10-05 | 深圳华大基因研究院 | 环状小rna文库构建方法及其应用 |
| CN107217052A (zh) * | 2017-07-07 | 2017-09-29 | 上海交通大学 | 一种定量高通量测序文库的制备方法及其配套试剂盒 |
| CN108431233A (zh) * | 2015-11-11 | 2018-08-21 | 分析生物科学有限公司 | Dna文库的高效率构建 |
| CN109844137A (zh) * | 2016-10-31 | 2019-06-04 | 豪夫迈·罗氏有限公司 | 用于鉴定嵌合产物的条形码化环状文库构建 |
| CN110791814A (zh) * | 2019-10-07 | 2020-02-14 | 深圳易倍科华生物科技有限公司 | 一种快速型的单链建库方法 |
| CN111020711A (zh) * | 2019-10-07 | 2020-04-17 | 深圳易倍科华生物科技有限公司 | 一种带有分子标签的单链建库方法和接头组合、试剂盒 |
| CN111455469A (zh) * | 2020-04-07 | 2020-07-28 | 深圳易倍科华生物科技有限公司 | 一种单链快速建库方法及建库仪器 |
| CN114293264A (zh) * | 2021-12-21 | 2022-04-08 | 翌圣生物科技(上海)股份有限公司 | 酶法靶序列随机sgRNA文库的制备方法 |
| US11319594B2 (en) | 2016-08-25 | 2022-05-03 | Resolution Bioscience, Inc. | Methods for the detection of genomic copy changes in DNA samples |
| CN118086457A (zh) * | 2024-02-22 | 2024-05-28 | 纳昂达(南京)生物科技有限公司 | Dna文库的构建方法及应用 |
| US11999949B2 (en) | 2012-12-10 | 2024-06-04 | Resolution Bioscience, Inc. | Methods for targeted genomic analysis |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2007121489A2 (en) * | 2006-04-19 | 2007-10-25 | Applera Corporation | Reagents, methods, and libraries for gel-free bead-based sequencing |
| CN101263227A (zh) * | 2005-09-16 | 2008-09-10 | 454生命科学公司 | cDNA文库制备 |
| US20120108440A1 (en) * | 2010-11-03 | 2012-05-03 | Illumina, Inc. | Reducing adapter dimer formation |
| CN102797044A (zh) * | 2012-08-16 | 2012-11-28 | 北京诺兰信生化科技有限责任公司 | 一种快速高效的均一化全长cDNA文库构建方法 |
-
2013
- 2013-12-19 CN CN201310706375.5A patent/CN103668471B/zh active Active
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN101263227A (zh) * | 2005-09-16 | 2008-09-10 | 454生命科学公司 | cDNA文库制备 |
| WO2007121489A2 (en) * | 2006-04-19 | 2007-10-25 | Applera Corporation | Reagents, methods, and libraries for gel-free bead-based sequencing |
| US20120108440A1 (en) * | 2010-11-03 | 2012-05-03 | Illumina, Inc. | Reducing adapter dimer formation |
| CN102797044A (zh) * | 2012-08-16 | 2012-11-28 | 北京诺兰信生化科技有限责任公司 | 一种快速高效的均一化全长cDNA文库构建方法 |
Cited By (21)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US11999949B2 (en) | 2012-12-10 | 2024-06-04 | Resolution Bioscience, Inc. | Methods for targeted genomic analysis |
| CN104003902B (zh) * | 2014-05-14 | 2016-05-04 | 上海交通大学 | 三氮烯连接单元的合成及其在dna测序中的用途 |
| CN104003902A (zh) * | 2014-05-14 | 2014-08-27 | 上海交通大学 | 三氮烯连接单元的合成及其在dna测序中的用途 |
| CN105986324A (zh) * | 2015-02-11 | 2016-10-05 | 深圳华大基因研究院 | 环状小rna文库构建方法及其应用 |
| CN108431233B (zh) * | 2015-11-11 | 2022-04-01 | 分析生物科学有限公司 | Dna文库的高效率构建 |
| CN108431233A (zh) * | 2015-11-11 | 2018-08-21 | 分析生物科学有限公司 | Dna文库的高效率构建 |
| US11339391B2 (en) | 2015-11-11 | 2022-05-24 | Resolution Bioscience, Inc. | High efficiency construction of DNA libraries |
| CN105483267A (zh) * | 2016-01-15 | 2016-04-13 | 古博 | 血浆游离DNA双分子标记、标记和检测血浆cfNDA的方法及其用途 |
| CN105483267B (zh) * | 2016-01-15 | 2018-12-04 | 古博 | 血浆游离DNA双分子标记、标记和检测血浆cfDNA的方法及其用途 |
| CN105734679A (zh) * | 2016-03-29 | 2016-07-06 | 重庆市肿瘤研究所 | 核酸靶序列捕获测序文库的制备方法 |
| CN105734679B (zh) * | 2016-03-29 | 2018-10-30 | 重庆市肿瘤研究所 | 核酸靶序列捕获测序文库的制备方法 |
| US11319594B2 (en) | 2016-08-25 | 2022-05-03 | Resolution Bioscience, Inc. | Methods for the detection of genomic copy changes in DNA samples |
| CN109844137A (zh) * | 2016-10-31 | 2019-06-04 | 豪夫迈·罗氏有限公司 | 用于鉴定嵌合产物的条形码化环状文库构建 |
| CN109844137B (zh) * | 2016-10-31 | 2022-04-26 | 豪夫迈·罗氏有限公司 | 用于鉴定嵌合产物的条形码化环状文库构建 |
| CN107217052A (zh) * | 2017-07-07 | 2017-09-29 | 上海交通大学 | 一种定量高通量测序文库的制备方法及其配套试剂盒 |
| CN111020711A (zh) * | 2019-10-07 | 2020-04-17 | 深圳易倍科华生物科技有限公司 | 一种带有分子标签的单链建库方法和接头组合、试剂盒 |
| CN110791814A (zh) * | 2019-10-07 | 2020-02-14 | 深圳易倍科华生物科技有限公司 | 一种快速型的单链建库方法 |
| CN111455469A (zh) * | 2020-04-07 | 2020-07-28 | 深圳易倍科华生物科技有限公司 | 一种单链快速建库方法及建库仪器 |
| CN111455469B (zh) * | 2020-04-07 | 2023-08-18 | 深圳易倍科华生物科技有限公司 | 一种单链快速建库方法及建库仪器 |
| CN114293264A (zh) * | 2021-12-21 | 2022-04-08 | 翌圣生物科技(上海)股份有限公司 | 酶法靶序列随机sgRNA文库的制备方法 |
| CN118086457A (zh) * | 2024-02-22 | 2024-05-28 | 纳昂达(南京)生物科技有限公司 | Dna文库的构建方法及应用 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CN103668471B (zh) | 2015-09-30 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN103668471A (zh) | 一种构建dna高通量测序文库的方法及其配套试剂盒 | |
| JP7550816B2 (ja) | シークエンシングによって評価されるゲノムワイドでバイアスのないＤＳＢの同定（ＧＵＩＤＥ－Ｓｅｑ） | |
| US10731152B2 (en) | Method for controlled DNA fragmentation | |
| AU2016319110B2 (en) | Full interrogation of nuclease DSBs and sequencing (FIND-seq) | |
| US20130143774A1 (en) | Methods and compositions for generating polynucleic acid fragments | |
| CN105400776B (zh) | 寡核苷酸接头及其在构建核酸测序单链环状文库中的应用 | |
| US20180245128A1 (en) | Composition and methods for detecting adenosine modifications | |
| JP2019520828A (ja) | 単細胞全ゲノムライブラリおよびそれを作成する組み合わせインデックス付加方法 | |
| CN107002292A (zh) | 一种核酸的双接头单链环状文库的构建方法和试剂 | |
| JP2023506631A (ja) | 共有結合で閉端された核酸分子末端を使用したｎｇｓライブラリー調製 | |
| US20230175078A1 (en) | Rna detection and transcription-dependent editing with reprogrammed tracrrnas | |
| Gabriel et al. | Linear amplification mediated PCR–localization of genetic elements and characterization of unknown flanking DNA | |
| EP4121532A1 (en) | Crispr system high throughput diagnostic systems and methods | |
| JP7436493B2 (ja) | 次世代シーケンスにおいて低サンプルインプットを扱うための正規化対照 | |
| EP3812472B1 (en) | A truly unbiased in vitro assay to profile off-target activity of one or more target-specific programmable nucleases in cells (abnoba-seq) | |
| Olzog et al. | cyPhyRNA-seq: a genome-scale RNA-seq method to detect active self-cleaving ribozymes by capturing RNAs with 2ʹ, 3ʹ cy clic p hosphates and 5ʹ hy droxyl ends | |
| US11136576B2 (en) | Method for controlled DNA fragmentation | |
| US11828684B2 (en) | Detection of molecular associations | |
| Mizi et al. | iHi-C 2.0: A simple approach for mapping native spatial chromatin organisation from low cell numbers | |
| Schiller | A bacterial surface display platform for the discovery of cytosine modification readers from cDNA libraries | |
| Ali et al. | Enzymes of Genetic Engineering | |
| WO2024015869A2 (en) | Systems and methods for variant detection in cells | |
| CN117881796A (zh) | 使用靶向表观遗传测定、邻近诱导标签化、链侵入、限制或连接来检测分析物 | |
| Maxwell et al. | Original publication | |
| CN118086457A (zh) | Dna文库的构建方法及应用 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| PB01 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| C10 | Entry into substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| C14 | Grant of patent or utility model | ||
| GR01 | Patent grant |